Ultraschall-gestützte Zell-Deagglomerierung von Bakterienproben
Bakterienproben liegen selten als echte Einzelzellsuspensionen vor. Kulturen wachsen in Ketten und Flocken, Umweltisolate bilden Aggregate, die durch extrazelluläre polymere Substanzen gebunden sind, und zentrifugierte Pellets lassen sich trotz gründlichem Vortexen oft nicht resuspendieren. Lebensfähigkeitszählungen, optische Dichte, Durchflusszytometrie und Mikrobiomprofilierung gehen alle davon aus, dass ein Partikel einer Zelle entspricht. Die ultraschallgestützte Zelldisaggregation löst diesen Konflikt: Kurze, kontrollierte Ultraschallimpulse trennen Aggregate in einzelne Zellen auf, ohne diese zu lysieren.
Warum Zellaggregation Ihre Ergebnisse beeinträchtigt
Die Aggregation ist ein biologisches Phänomen und kein Fehler bei der Probenvorbereitung. Staphylococcus, Streptococcus, Lactobacillus, Actinomyces und viele Umweltkeime wachsen in Ketten, Clustern oder Biofilmfragmenten, und extrazelluläre DNA sowie Polysaccharide verbinden die Zellen in Pelletproben und Abstrich-Eluaten miteinander. Die analytischen Konsequenzen sind systematischer Natur:
- Die Koloniezahlen werden unterschätzt, da ein Klumpen als eine Kolonie gezählt wird, unabhängig davon, wie viele Zellen er enthält.
- Optische Dichte- und Partikelzähler erfassen Aggregate anstelle von Zellen, was zu einer Verzerrung der Wachstumskurven führt.
- Bei der Durchflusszytometrie und der Zellsortierung werden verklumpte Ereignisse falsch gezählt und aus der Analyse ausgeschlossen.
- Bei der DNA- und Proteinextraktion werden lediglich die Zellen auf der Oberfläche des Aggregats berücksichtigt, was zu einer Verzerrung der Mikrobiom- und Omics-Daten führt.
Herkömmliche Verfahren sind langsam, unvollständig oder führen zu chemischen Veränderungen. Durch kräftiges Pipettieren und Vortexen bleiben Mikroaggregate zurück. Die enzymatische oder chelatbasierte Dispersion verändert die Zelloberfläche, die Sie möglicherweise analysieren möchten. Die mechanische Disaggregation durch kontrollierte Kavitation wirkt innerhalb von Sekunden und erfordert keine Zusatzstoffe.
Ein Aggregat entspricht einer Kolonie – und ein falsches Ergebnis. Sehen Sie selbst, wie durch Ultraschall-Disaggregation echte Einzelzellsuspensionen ohne Zelllyse, Aerosole oder den Einsatz von Sonden hergestellt werden. Fordern Sie weitere Informationen an!
Multi-Tube Sonicator VialTweeter für die berührungslose Probenvorbereitung: Zellagglomerate werden in geschlossenen Vials dispergiert
Wie die Ultraschallbehandlung Zellen auflöst, ohne sie zu lysieren
Bei der Ultraschall-Zelldisaggregation wird ein Unterschied in der mechanischen Festigkeit ausgenutzt. Bakterielle Aggregate werden durch relativ schwache interzelluläre Bindungen und eine extrazelluläre Matrix zusammengehalten, während eine intakte Zellhülle wesentlich höheren Scherkräften standhält. Wenn kalibrierter Ultraschall in die Suspension eintritt, erzeugt akustische Kavitation Mikroströmungen, Druckimpulse und Scherkräfte, die zunächst an den Grenzflächen der Aggregate wirken. Klumpen, Ketten und Biofilmfragmente werden auseinandergerissen (Deagglomeration), bevor das Energieniveau erreicht wird, bei dem die Membranen reißen (Lyse).
Disaggregation oder Lyse – Die Bedeutung der Ultraschallparameter
In der Praxis bedeutet dies, dass Disaggregation und Lyse mit demselben Gerät bei unterschiedlichen Parametern durchgeführt werden. Bei mäßiger Amplitude, kurzen Impulszyklen und kontrollierter Temperatur erhält man eine lebensfähige Einzelzellsuspension. Durch Erhöhen der Amplitude, der Einwirkzeit oder der Probentemperatur wird der Prozess in Richtung eines vollständigen Zellaufschlusses für intrazelluläre Ziele verschoben. Mit Hielscher-Generatoren können Sie Amplitude, Leistung, Impuls und Energiezufuhr präzise einstellen und die Methode speichern, sodass der Disaggregationsschritt über Proben, Bediener und Durchläufe hinweg reproduzierbar ist.
Effiziente berührungslose Ultraschallbehandlung
Die Ultraschallbehandlung im Bad kann diese Präzision nicht erreichen. Ultraschallreinigungsbäder und -behälter liefern nur geringe Ultraschallenergie, was zu einer unvollständigen Aufbereitung führt, und die Kavitation erfolgt ungleichmäßig, sodass jedes Röhrchen entsprechend seiner Position im Bad behandelt wird. Der VialTweeter überträgt intensive, gebündelte Ultraschallkräfte direkt durch die Gefäßwand auf bis zu 10 verschlossene Proben gleichzeitig. Behandlungen, die eine lange, variable Einwirkzeit in einem Bad erfordern, werden in einem standardisierten Impulsmuster durchgeführt.
Die berührungslosen Ultraschallgeräte von Hielscher übertragen intensiven, fokussierten Ultraschall durch die Wände geschlossener Fläschchen. Der VialTweeter verarbeitet bis zu 10 Fläschchen gleichzeitig mit identischer Intensität – ohne Sonde in der Probe, ohne Kreuzkontamination und ohne Aerosolbildung. Wo der Durchsatz es erfordert, übertragen die Mikroplatten-Ultraschallgeräte UIP400MTP und UIP550MTP dieselbe kontrollierte Energieübertragung auf Multiwell-Platten.
Der VialTweeter beschallt bis zu 10 kleinere Röhrchen und bis zu 5 größere Reagenzgefäße gleichzeitig.
Vorteile der berührungslosen Ultraschall-Disaggregation
- Keine Kreuzkontamination: Da die Probenfläschchen dauerhaft verschlossen bleiben und keine Sonde in die Probe eingetaucht wird, werden Kreuzkontaminationen und Probenverluste vollständig vermieden. Zwischen den einzelnen Proben muss nichts sterilisiert werden, und ein Durchlauf hat keinen Einfluss auf den nächsten.
- Schutz vor Aerosolen: Bei der Ultraschallbehandlung mit offener Sonde entstehen infektiöse Aerosole, die die Oberflächen der Geräte kontaminieren. Bei der Ultraschallbehandlung in verschlossenen Röhrchen bleibt die Probe in ihrem eigenen Röhrchen eingeschlossen, was beim Umgang mit pathogenen Bakterien wie Mycobacterium tuberculosis und anderen BSL-2- oder BSL-3-Erregern von Bedeutung ist.
- Keine Verringerung des Trinkgeldes: Titan-Sonden können während des Betriebs eine geringe Menge an Mikropartikeln in die Probe abgeben. Diese Partikel verändern die optische Dichte und die Partikelzahl im nachgeschalteten Bereich. Durch indirekte Ultraschallbehandlung durch die Behälterwand wird diese Quelle von Feststoffen vollständig beseitigt.
- Gleichmäßiger Durchsatz: Der VialTweeter liefert an jedes der bis zu 10 Fläschchen die gleiche Ultraschallintensität, sodass die Ultraschallbehandlungsergebnisse gleichmäßig und reproduzierbar sind. Positionseffekte, die bei Ultraschallbädern und der Untersuchung einzelner Proben auftreten, entfallen, und Ihre Basislinien bleiben über alle Wiederholungen hinweg vergleichbar.
- Probenintegrität: Die Röhrchen bleiben während des gesamten Verarbeitungsprozesses verschlossen, sodass die Probe weder kontaminiert noch verdorben werden oder verflüchtigen kann. Kleine Volumina können ohne Verdünnung verarbeitet werden, darunter auch wertvolle klinische Pellets, bei denen ein zusätzlicher Umfüllschritt nicht möglich ist.
- Prozesskontrolle: Die Amplitude ist von 20 bis 100 % einstellbar, der Impulsmodus von 0 bis 100 %, und die Systeme unterstützen die Temperaturüberwachung, sodass temperaturempfindliche Stämme und Proteine unterhalb der Schadensschwelle bleiben.
Typische Anwendungen
- Mikrobiom- und Darminhaltsanalyse: Aufschlämmung von Lactobacillus-, Bifidobacterium- und Stuhlproben vor dem Ausplattieren oder der Sequenzierung, damit die Keimzahlen nicht durch Klumpen verfälscht werden.
- Mikrobiologie von Lebensmitteln und Wasser: Aufschlüsselung von Flocken in Abstrichen, Spülproben und Anreicherungsbrühen zur genauen Bestimmung der Kolonienzahl und Lebensfähigkeit.
- Biofilmforschung: Gewinnung von Zellen aus Trägern und Oberflächen als Einzelzellsuspensionen, ohne enzymatische Behandlung, die Oberflächenproteine entfernen würde.
- Klinische Diagnostik: Resuspension von Sputum, Eiter und Abstrich-Eluaten unter Sicherheitsbedingungen.
- Zellkultur: Aufbrechen von Aggregaten aus Säugetierzellen, Insektenzellen und CHO-Zellen vor der Zählung und Passagierung.
- Vorbereitung des gesamten Arbeitsablaufs: Das gleiche Gerät, das bei niedriger Amplitude eine Disaggregation bewirkt, führt bei höheren Einstellungen einen vollständigen Zellaufschluss durch, sodass Lyse, Proteinextraktion und DNA-Fragmentierung ohne Umfüllen in andere Röhrchen erfolgen können.
Multi-well plate Sonicator UIP400MTP zur Deagglomerierung von Zellklumpen im Hochdurchsatzverfahren
Finden Sie den richtigen Ultraschallapparat für Ihren Disaggregations-Workflow
VialTweeter Multi-Tube Sonicator
Die Methode der Wahl für die Disaggregation in sterilen, verschlossenen Fläschchen. Angetrieben vom 200-Watt-Prozessor UP200St bei 26 kHz mit automatischer Abstimmung, überträgt der VialTweeter Ultraschall indirekt durch die Wände von bis zu 10 geschlossenen Fläschchen gleichzeitig, mit bis zu 10 W pro Fläschchen, für gleichmäßige und reproduzierbare Ergebnisse ohne Kreuzkontamination und ohne Probenverlust. Die VialTweeter-Sonotrode aus Titan ist autoklavierbar; Amplitude und Impuls sind einstellbar und speicherbar – genau der Regelbereich, den ein Disaggregationsprotokoll benötigt. Die serienmäßige 10-Positionen-Sonotrode nimmt Autosampler-Fläschchen, Mikrozentrifugenröhrchen sowie Eppendorf- oder Nunc-Röhrchen von 1 bis 5 ml auf. Die VialPress-Klemmvorrichtung fasst bis zu 5 größere Gefäße mit einem Durchmesser von bis zu 20 mm.
Für Falcon-Röhrchen sowie für einzelne, an die Gefäßgröße angepasste Probenfläschchen sind spezielle Einröhrchen-VialTweeter-Modelle erhältlich. Nach dem Zerlegen der Block-Sonotrode fungiert die UP200St-Kerneinheit als herkömmlicher Ultraschallsonikator zur direkten Behandlung kleiner bis mittelgroßer Proben.
Mikroplatten-Ultraschallgeräte
Skalierung auf eine Probenvorbereitung mit hohem Durchsatz durch Ultraschallbehandlung in Mehrfach-Well-Platten: Für plattenbasierte Arbeitsabläufe erweitern die Mikroplatten-Ultraschallgeräte UIP400MTP und UIP550MTP die berührungslose, gleichmäßige Ultraschallbehandlung von zehn Röhrchen auf eine gesamte Platte.
Der 400-Watt-Ultraschallreiniger UIP400MTP eignet sich für die Bearbeitung von Standard-Mikrotiter- und Multiwell-Platten, einschließlich 96-Well-Formaten, und verfügt über eine präzise Steuerung von Amplitude, Leistung und Pulsfrequenz sowie über einen Timer, einen Temperaturfühler und eine Wasserbadkühlung. Die Entfernung von Biofilmen und die Aufbereitung von Bakterienkulturen sind etablierte Anwendungsbereiche des Mikroplatten-Ultraschallgeräts UIP400MTP.
Das 550-Watt-Modell UIP550MTP ist die leistungsstärkere Variante – ideal für anspruchsvollere Anwendungen.
Beide berührungslosen Ultraschallsysteme verarbeiten zuverlässig 6-, 12-, 24-, 48-, 96- und 384-Well-Platten sowie Röhrchenracks und Petrischalen. Die Mikroplatten-Ultraschallgeräte von Hielscher sind mit jeder Standardplatte kompatibel, wodurch teure herstellerspezifische Verbrauchsmaterialien vermieden werden. Dank programmierbarer Temperaturgrenzwerte wird die Ultraschallbehandlung bei Erreichen der maximalen Probentemperatur automatisch unterbrochen und nach dem Abkühlen fortgesetzt, wodurch die Lebensfähigkeit der Proben auch bei wiederholten Zyklen gewährleistet bleibt. Intelligente und zuverlässige Probenvorbereitung mit hohem Durchsatz für reproduzierbare Ergebnisse.
Die folgende Tabelle gibt Ihnen einen Überblick über die ungefähre Verarbeitungskapazität unserer Labor-Ultraschallgeräte, die in den Bereichen Life Sciences, Genomik, Proteomik und Diagnostik zum Einsatz kommen:
| Empfohlenes Ultraschallgerät | Batch-Volumen | Durchfluss |
|---|---|---|
| VialTweeter Multi-Tube Sonicator | 0Fläschchen mit 0,5 bis 1,5 ml | n.a. |
| UIP400MTP Ultraschallgerät für Mehrfach-Mikrotiterplatten (440 Watt) | Multiwell-/Mikrotiterplatten | n.a. |
| UIP550MTP Ultraschallgerät für Mehrfach-Mikrotiterplatten (550 Watt) | Multiwell-/Mikrotiterplatten | n.a. |
| Ultraschall-CupHorn | CupHorn für Vials und Becher | n.a. |
| UP100H 100-Watt-Sondensonikator | 1 bis 500ml | 10 bis 200ml/min |
| UP200Ht, UP200St 200-Watt-Sonikatoren mit Sonde | 10 bis 1000mL | 20 bis 200mL/min |
| UP400St 400-Watt-Sondensonikator | 10 bis 2000ml | 20 bis 400ml/min |
| GDmini2 | steriler Ultraschall-Mikroströmungsreaktor | n.a. |
| Ultraschall-Sieb | n.a. | n.a. |
Häufig gestellte Fragen zur Ultraschall-Zelldisaggregation
Was ist der Unterschied zwischen Zelldisaggregation und Zelllyse?
Bei der Disaggregation, auch Deagglomeration genannt, werden verklumpte Zellen in eine Einzelzellsuspension aufgebrochen, wobei die Zellen intakt und lebensfähig bleiben. Bei der Lyse wird die Zellhülle aufgebrochen und der intrazelluläre Inhalt freigesetzt. Beide Vorgänge werden durch Kavitationsscherkräfte angetrieben; der Unterschied liegt im Energieeinsatz. Mit optimierten Einstellungen für Amplitude, Impuls und Temperatur erreicht die Ultraschallbehandlung eine Disaggregation unterhalb der Lyseschwelle.
Warum eignen sich Ultraschallbäder nicht für eine standardisierte Desaggregation?
Bäder liefern nur geringe Ultraschallenergie, was zu einer unvollständigen Aufbereitung führt, und die Kavitation entwickelt sich im gesamten Tank sehr ungleichmäßig, sodass jede Probe je nach ihrer Position unterschiedlich behandelt wird. Mikrobiologische Zählungen und Vergleichsstudien sind auf Vergleichbarkeit angewiesen. Berührungslose Ultraschallgeräte wie der Multi-Tube-Ultraschallbehandler VialTweeter sowie die Mikroplatten-Ultraschallgeräte der Modelle UIP400MTP und UIP550MTP bearbeiten alle Gefäße unter angepassten Ultraschallbedingungen, was die Reproduzierbarkeit über alle Wiederholungen hinweg verbessert.
Kann die Ultraschallbehandlung die Zellen schädigen?
Ja, wenn die Parameter nicht kontrolliert werden. Übermäßige Ultraschallbehandlung oder unkontrollierte Erwärmung können die Zellen schädigen, und freigesetzte DNA macht die Proben zähflüssig und fördert die erneute Aggregation. Deshalb sollte der Prozess sorgfältig entwickelt werden: Moderate Amplitude, gepulste Zyklen, Kühlung und temperaturbegrenzte Geräte sorgen dafür, dass die Behandlung auf der Disaggregationsseite der Kurve bleibt.
Alle digitalen Ultraschallgeräte von Hielscher bieten präzise einstellbare Parameter, einsteckbare Temperatursensoren, programmierbare Einstellungen und eine automatische Datenerfassung für eine zuverlässige Probenvorbereitung.
Muss die Probe in ein anderes Gefäß umgefüllt werden?
Nein. Die Fläschchen und Platten werden in ihren ursprünglichen, verschlossenen Behältern aufbereitet. Durch die indirekte Ultraschallbehandlung werden sowohl Übertragungsverluste als auch die mit der Handhabung der Sonde verbundene Verschleppung vermieden.
Welche Fläschchenformate kann der VialTweeter verarbeiten?
Die Standard-Sonotrode mit 10 Positionen ist für Autosampler-Fläschchen, Mikrozentrifugenröhrchen sowie Eppendorf- oder Nunc-Röhrchen mit einem Fassungsvermögen von 1 bis 5 ml geeignet. Das VialPress-Zubehör bietet Platz für bis zu 5 größere Gefäße mit einem Durchmesser von bis zu 20 mm. Für Falcon-Röhrchen sowie für kundenspezifische Einzelröhrchen oder größere Formate sind spezielle „VialTweeter“-Einzelröhrchenmodelle erhältlich.
Kann ich die Disaggregation und Lyse mit einem einzigen Gerät durchführen?
Ja. Die gleiche Anlage, die bei mäßiger Amplitude eine Desaggregation bewirkt, führt bei höherer Amplitude und längerer Einwirkzeit zu einer vollständigen Zellaufschlämmung, sodass die Herstellung einer Einzelzellsuspension und die anschließende Extraktion nacheinander durchgeführt werden können, ohne die Plattform wechseln zu müssen.
Wird bei MBEC-Assays Ultraschall eingesetzt?
Die Ultraschallbehandlung ist ein etabliertes und weitgehend standardmäßiges Verfahren. Beim MBEC-Assay mit Stiften und Deckeln werden die Stifte, nachdem Biofilme auf Polystyrolstiften gewachsen sind und einem Antibiotikum ausgesetzt wurden, in frisches Medium überführt und einem Vortex-Vorgang sowie einer Ultraschallbehandlung unterzogen, um anhaftende Biofilmzellen zu lösen und zu deaggregieren und in eine planktonische Suspension zu überführen, bevor eine serielle Verdünnung und eine Zählung der lebensfähigen Zellen erfolgt (MBEC wird als die niedrigste Konzentration definiert, bei der die gewonnenen Keimzahlen im Vergleich zum unbehandelten Biofilm um ≥3 log10 reduziert werden). Die Ultraschallbehandlung verbessert die Dispersionsqualität erheblich: Eine unvollständige Freisetzung eingebetteter Zellen aus der EPS-Matrix führt zu einer Unterschätzung der Eradikation und zu überhöhten MBEC-Werten. Die gezielte Beschallung der Peg-Halter-Vertiefungen auf den Assay-Platten mit dem Mikroplatten-Ultraschallgerät UIP400MTP überwindet die herkömmlichen Schwächen der Badbeschallung – nämlich eine ungleichmäßige Energieverteilung, Erwärmung sowie das Risiko einer Aerosolbildung bzw. Kreuzkontamination.
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Wird bei MIK-Bestimmungen Ultraschall eingesetzt?
Die Ultraschallbehandlung wird in verschiedenen, an die MIC angrenzenden Arbeitsabläufen eingesetzt, um die Effizienz und Reproduzierbarkeit zu verbessern:
- Mykobakteriologie, wo Sputum und andere viskose Proben routinemäßig vor der Empfindlichkeitsbestimmung dekontaminiert und homogenisiert werden, manchmal unter Einsatz von Ultraschall, und bei der eine kurze Dispersion der klumpenbildenden mykobakteriellen Inokula für genaue MHK-Werte von Vorteil ist;
- Organismen, die zur Aggregation neigen (z. B. Streptokokken, Staphylokokken in Pellets), bei denen Mikroaggregate die Inokulumdichte verfälschen; und
- Kombinierte Diagnostik wie beispielsweise Ultraschalluntersuchung des Implantats, Flüssigkeitskultur und anschließende Empfindlichkeitsprüfung bei Protheseninfektionen (eine MBEC-ähnliche Anwendung, keine klassische MIK-Anwendung).
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Literatur / Literaturhinweise
- FactSheet VialTweeter – Sonicator for Simultaneous Sample Preparation
- FactSheet UIP400MTP Plate-Sonicator for High-Throughput Sample Preparation – English version – Hielscher Ultrasonics
- FactSheet UIP550MTP Plate-Sonicator for High-Throughput Sample Preparation – English version – Hielscher Ultrasonics
- Bahnan W, Happonen L, Khakzad H, Kumra Ahnlide V, de Neergaard T, Wrighton S, André O, Bratanis E, Tang D, Hellmark T, Björck L, Shannon O, Malmström L, Malmström J, Nordenfelt P. (2023): A human monoclonal antibody bivalently binding two different epitopes in streptococcal M protein mediates immune function. EMBO Mol Med. 2023 Feb 8;15(2):e16208.
- Wrighton S., Ahnlide V.K., André O., Bahnan W., Nordenfelt P. (2023): Group A streptococci induce stronger M protein-fibronectin interaction when specific human antibodies are bound. Frontiers in Microbiology 14:1069789.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
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