Ersetzen Sie den Zellschaber mit dem Sonicator UIP400MTP
Die Ablösung und Extraktion von adhärenten Zelllinien aus Multi-Well-Platten für die Multi-omics-Analyse ist eine tägliche Aufgabe in Labors. Die Hochdurchsatz-Zellablösung mit dem Multiwell-Platten-Sonicator UIP400MTP ersetzt das manuelle Abschaben der Zellen und führt zu einer höheren Ausbeute an RNA, Gesamtlipiden und polaren Gesamtmetaboliten. Eine neue Methode integriert den Hielscher UIP400MTP Sonicator mit der Beckman Coulter i7 Liquid-Handling-Workstation und ermöglicht eine reproduzierbare und effiziente Hochdurchsatzverarbeitung von Zellen für die RNA-, Metaboliten- und Lipidextraktion. Die vorgestellte Methode übertrifft herkömmliche manuelle Zellausschabungsmethoden, indem sie eine hervorragende Reproduzierbarkeit und Ausbeute bei verschiedenen Zelltypen und Versuchsbedingungen erzielt.
Effizienteres Ablösen von Zellen mit dem Mikroplatten-Sonicator UIP400MTP
Adhärente Zellkultursysteme spielen in der toxikologischen und biomedizinischen Forschung eine entscheidende Rolle. In diesem Zusammenhang haben Cruchley-Fuge et al. (2024) im Rahmen des PrecisionTox-Projekts, das sich mit der Nutzung von Omics-Technologien für die Bewertung chemischer Gefahren befasst, eine bedeutende Herausforderung angenommen. Ziel des Projekts war eine Hochdurchsatzanalyse von Tausenden von Proben, die mit verschiedenen Chemikalien behandelt wurden. Um diesen Anforderungen gerecht zu werden, entwickelten die Forscher einen automatisierten Arbeitsablauf, der den UIP400MTP-Sonicator mit etablierten biphasischen Extraktionsprotokollen für die Flüssigchromatographie-Massenspektrometrie (LC-MS)-Analyse kombiniert. Ihre Studie bewertet die Wirksamkeit des UIP400MTP Multi-Well Plate Sonicator bei der Ablösung anhaftender Zellen im Vergleich zum manuellen Abschaben und anderen traditionellen Methoden.
Hochdurchsatz in der Multi-Omik: Automatisierte Extraktion adhärenter Zellen mit dem UIP400MTP
Das Forscherteam von Laura Cruchley-Fuge von der Universität Birmingham verwendete drei menschliche Zelllinien: HepG2 (Leberkrebszellen), HepaRG (differenzierte hepatozytenähnliche Zellen) und H295R (Nebennierenkrebszellen). Diese Zellen wurden in 24-Well- und 96-Well-Platten kultiviert und mit Testchemikalien wie Aflatoxin B1 und Forskolin behandelt.
Experimenteller Aufbau:
- Phase 1: Optimierung der Leistungseinstellungen des UIP400MTP-Sonicators und Vergleich mit manueller Zellabschabung und Schallwasserbädern. HepG2-Zellen wurden zur Bewertung der RNA-, Metaboliten- und Lipidrückgewinnung eingesetzt.
- Phase 2: Integration des UIP400MTP in einen biphasischen Extraktions-Workflow unter Verwendung des Beckman Coulter i7-Systems. Die Validierung wurde mit HepaRG- und H295R-Zellen durchgeführt.
Arbeitsablauf der Extraktion: Der Arbeitsablauf umfasste die chemische Exposition in Multiwell-Platten, die Ablösung der Zellen mit dem UIP400MTP und die biphasische Extraktion mit dem Bligh & Färber (B&D) Methode. Die LC-MS-Analyse wurde mit einer Thermo Scientific Orbitrap Exploris 120 für lipophile und polare Verbindungen durchgeführt. Die B&D-Methode, ein Goldstandard für die Lipidquantifizierung, beinhaltet eine zweistufige Extraktion mit Methanol, Chloroform und Wasser, gefolgt von einer Lipidquantifizierung in der Chloroformphase.
Der Mikroplate-Sonicator UIP400MTP erleichtert das Ablösen von adhärenten Zelllinien von Multiwell-Platten und Petrischalen
Ergebnisse:
- Phase 1: Die optimalen Beschallungsbedingungen wurden bei 60 % Leistung ermittelt.
Das UIP400MTP erbrachte die höchste RNA-Rückgewinnung mit außergewöhnlicher Reproduzierbarkeit im Vergleich zum manuellen Schaben und zu Ultraschallbädern.
Die Wiederfindung von polaren Metaboliten war bei allen Methoden gleich, während die Wiederfindung von Lipiden mit dem UIP400MTP deutlich besser war. - Phase 2: Die Validierung an HepaRG- und H295R-Zellen zeigte eine hohe Reproduzierbarkeit der Lipidomik- und Metabolomikdaten, wie die eng geclusterten PCA-Ergebnisse belegen.
Aflatoxin-B1- und Forskolin-Behandlungen wurden effektiv von den Kontrollen unterschieden, was die Empfindlichkeit und Zuverlässigkeit der Methode unterstreicht.
Mikroplatten-Sonicator UIP400MTP für die Zellablösung im Hochdurchsatz
„Das Beschallungsgerät UIP400MTP von Hielscher bietet eine qualitativ hochwertige und reproduzierbare Alternative zum Goldstandard" des manuellen Ausschabens von Zellen, was zu einer höheren Ausbeute an RNA, Gesamtlipiden und polaren Gesamtmetaboliten führt.“ (Cruchley-Fuge et al., 2024)
Cruchley-Fuge et al. heben die Vorteile des UIP400MTP-Sonicators für die Verarbeitung adhärenter Zellen hervor. Durch den Ersatz des manuellen Ausschabens verbessert diese Methode die Reproduzierbarkeit, den Durchsatz und die Ausbeute, was sie zu einem unschätzbaren Werkzeug für groß angelegte Studien wie PrecisionTox macht. Die Integration des UIP400MTP in automatisierte Arbeitsabläufe verringert nicht nur die Variabilität, sondern rationalisiert auch arbeitsintensive Prozesse und ermöglicht so eine hochwertige Multi-omics-Datenerfassung.
Die Arbeit von Cruchley-Fuge et al. (2024) erleichtert und rationalisiert die Verarbeitung von adhärenten Zellkulturen für die Multi-omics-Analyse. Die Integration des UIP400MTP-Sonicators in automatisierte Arbeitsabläufe gewährleistet eine konsistente und effiziente Probenvorbereitung und ist damit ideal für die toxikologische Forschung im Hochdurchsatz geeignet.
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Literatur / Literaturhinweise
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
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Häufig gestellte Fragen
Was ist das Ablösen von Zellen?
Unter Zellablösung versteht man in der Forschung den Prozess der Ablösung von adhärenten Zellen von der Oberfläche eines Kulturgefäßes oder Substrats. Dies geschieht in der Regel, um Zellen für nachgeschaltete Anwendungen wie Analyse, Subkultur oder Kryokonservierung zu gewinnen. Das Ablösen kann je nach Zelltyp und Forschungsanforderungen durch enzymatische Methoden (z.B. Trypsin), chemische Mittel (z.B. EDTA), mechanische Methoden (z.B. Zellschaber) oder physikalische Techniken wie Ultraschall erfolgen.
Wie löst man adhärente Zellen ab?
Die Ablösung anhaftender Zellen durch Beschallung beinhaltet die Anwendung fokussierter Ultraschallwellen, um die Zelloberflächenhaftung in einer kontrollierten Umgebung zu unterbrechen. Der Mikroplatten-Sonicator UIP400MTP erreicht dies durch die Erzeugung lokaler mechanischer Schwingungen, die die Bindungen zwischen den Zellen und der Kulturoberfläche aufbrechen. Die wichtigsten Schritte umfassen:
- Vorbebereitung: Die Zellen werden in Multiwell-Platten gezüchtet und können als Teil des Versuchsplans bestimmten Chemikalien ausgesetzt werden.
- Sonication: Der Sonicator UIP400MTP kann auf optimierte Einstellungen (z. B. 60 % Leistung) eingestellt und programmiert werden, um ein effektives Ablösen von Zellen und Biofilmen zu gewährleisten, ohne die Zellen zu beschädigen oder die Integrität der Biomoleküle zu beeinträchtigen.
- Temperaturregelung: Das Gerät ist temperaturstabil, um einen hitzebedingten Zell- oder Molekularabbau während des Prozesses zu verhindern.
- Nach dem Ablösen: Die abgetrennten Zellen werden nachgeschalteten Extraktionsprotokollen unterzogen, wie z.B. der biphasischen Methode nach Bligh & Dyer für die Rückgewinnung von RNA, Lipiden und Metaboliten.
Diese Methode ist aufgrund ihrer Automatisierung, Reproduzierbarkeit und der Fähigkeit, Proben mit hohem Durchsatz effizient zu verarbeiten, dem manuellen Abschaben überlegen.
Was ist das nicht-schädigende Ablösen von Zellen?
Unter schonender Zellablösung versteht man den Prozess des Ablösens adhärenter Zellen von ihrem Substrat ohne Beeinträchtigung der Viabilität, Integrität oder Funktionalität der Zellen. Dies wird durch schonende Methoden wie dem enzymfreien Ablösen via kontrollierter Beschllung mit dem UIP400MTP erreicht.
Die Vermeidung der Zellzerstörung ist entscheidend für den Erhalt der Zellen‘ strukturelle und molekulare Merkmale, die für genaue nachgeschaltete Anwendungen wie Multi-omics-Analysen, funktionelle Assays oder therapeutische Anwendungen unerlässlich sind. Beschädigte Zellen können intrazelluläre Inhalte freisetzen, die die Versuchsergebnisse verfälschen oder die Qualität der Proben beeinträchtigen können.
Was ist der Vorteil der enzymfreien Zellablösung?
Die enzymfreie Zellablösung bietet mehrere Vorteile, darunter die Erhaltung von Zelloberflächenproteinen und -rezeptoren, die Erhaltung der Lebensfähigkeit der Zellen und die Vermeidung potenzieller enzymatischer Schäden an Biomolekülen. Dieser Ansatz ist besonders vorteilhaft für empfindliche Downstream-Anwendungen wie Durchflusszytometrie, Proteomik oder funktionelle Tests, bei denen enzymatische Veränderungen die Datenqualität oder die Versuchsergebnisse beeinträchtigen könnten. Darüber hinaus sind enzymfreie Methoden oft besser reproduzierbar und können für Arbeitsabläufe mit hohem Durchsatz angepasst werden.
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