Lyse von Hefezellen in Mikrotiterplatten mit hochintensivem Ultraschall
Mikrobiologen und Forschende in den Lebenswissenschaften, die mit Saccharomyces cerevisiae, Pichia pastoris / Komagataella phaffii und anderen Hefesystemen arbeiten, kennen die Herausforderung: Hefezellen sind robust, eine reproduzierbare Lyse kann schwierig sein, und der manuelle Probenaufschluss wird schnell zum Engpass, wenn viele Stämme, Klone, Kulturbedingungen oder Expressionskonstrukte untersucht werden müssen.
Hochdurchsatz-Hefelyse für Mikrobiologie, Molekularbiologie und Proteinanalytik
Mikrotiterplatten-Ultraschallgeräte von Hielscher wie der UIP400MTP (400 W) und der UIP550MTP (550 W) bieten eine Hochdurchsatzlösung für die mechanische Lyse von Hefezellen direkt in Mikrotiterplatten. Statt Proben einzeln mit einer Sonotrode zu bearbeiten, können ganze Mikrotiterplatten unter einheitlichen Bedingungen beschallt werden. Dadurch wird die ultraschallgestützte Hefelyse schneller, reproduzierbarer und leichter in moderne Arbeitsabläufe der Mikrobiologie, der Proteinexpression, des Enzymscreenings und der Omics-Analytik integrierbar.
Ob Sie rekombinante Proteine aus P. pastoris freisetzen, Hefelysate für Enzymassays vorbereiten, S. cerevisiae für die Proteinanalyse aufschließen oder Dutzende Hefeklone parallel untersuchen möchten: Mikrotiterplatten-Ultraschallgeräte von Hielscher ermöglichen einen leistungsstarken, kavitationsbasierten Zellaufschluss mit präziser Prozesskontrolle.
Benötigen Sie eine reproduzierbare Lyse von S. cerevisiae, P. pastoris oder anderen Hefestämmen in Mikrotiterplatten? Teilen Sie uns Ihr Plattenformat, Probenvolumen, Ihre Zelldichte und Ihren Zielanalyten mit. Wir helfen Ihnen, geeignete Beschallungsparameter für Ihren Arbeitsablauf mit dem UIP400MTP oder UIP550MTP festzulegen.
Multiwellplatten-Ultraschallgerät von Hielscher für die Hefelyse – Probenvorbereitung mit hohem Probendurchsatz
Warum Hefezellen eine effiziente mechanische Lyse erfordern
Hefezellen lassen sich schwieriger lysieren als viele Bakterien- oder Säugetierzellen, da sie durch eine starre Zellwand geschützt sind, die hauptsächlich aus Polysacchariden, Glucanen, Mannoproteinen und Chitin besteht. Diese Zellwand verleiht mechanische Stabilität, begrenzt aber auch die Freisetzung intrazellulärer Proteine, Nukleinsäuren, Metaboliten und Enzyme.
Konventionelle Methoden zur Hefelyse umfassen den Aufschluss mit Mahlperlen, enzymatischen Verdau, Gefrier-Auftau-Zyklen, chemische Lyse und die Beschallung mit einer Sonotrode. Diese Methoden können wirksam sein, haben aber auch Einschränkungen. Der Aufschluss mit Mahlperlen kann Partikel eintragen und zu Erwärmung führen, enzymatischer Verdau kann zusätzliche Kosten und Variabilität verursachen, und die Beschallung einzelner Proben mit einer Sonotrode ist zeitaufwendig, wenn große Probenzahlen verarbeitet werden müssen.
Hochintensive, fokussierte Ultraschallkavitation überwindet diese Einschränkungen, indem sie intensive mechanische Scherkräfte, Druckschwankungen und Mikroströmungen auf die Hefesuspension ausübt. Das Ergebnis sind ein schneller Aufschluss von Zellwänden und Membranen, eine verbesserte Freisetzung intrazellulärer Bestandteile und eine hochgradig reproduzierbare Probenvorbereitung im Plattenformat.
Beschallung von Mikrotiterplatten zur parallelen Vorbereitung von Hefeproben
Die Geräte UIP400MTP und UIP550MTP von Hielscher sind für die gleichmäßige Beschallung von Mikrotiterplatten, Multiwellplatten, PCR-Platten und geeigneten Probengestellen ausgelegt. Anders als bei der Beschallung mit einer Sonotrode müssen die Proben nicht einzeln behandelt werden. Die gesamte Platte wird kontrollierter Ultraschallenergie ausgesetzt, wodurch sich der Arbeitsablauf besonders gut für die parallele Probenverarbeitung eignet.
Dies ist besonders nützlich für:
- Screening von S. cerevisiae-Mutanten oder Expressionsstämmen
- Lyse von Klonen von P. pastoris / K. phaffii nach rekombinanter Proteinexpression
- Vorbereitung von Hefelysaten für Enzymassays
- Proteinextraktion für SDS-PAGE, Western Blot, ELISA, LC-MS/MS oder Aktivitätstests
- Freisetzung intrazellulärer Metaboliten für die Metabolomik
- DNA- und RNA-Probenvorbereitung nach geeigneter nachgeschalteter Aufreinigung
- Hochdurchsatzoptimierung von Lysepuffern, Zusätzen und Extraktionsbedingungen
Wie Ultraschallkavitation Hefezellen aufschließt
Während der Beschallung erzeugt fokussierter Hochleistungsultraschall abwechselnde Kompressions- und Expansionszyklen in der flüssigen Probe. Bei ausreichender Intensität erzeugen diese Druckschwankungen akustische Kavitation. Kavitationsblasen entstehen, oszillieren und kollabieren, wobei lokal Scherkräfte, Mikrostrahlen, Turbulenzen und starke Druckgradienten entstehen.
In Hefesuspensionen schwächen diese mechanischen Effekte die Zellwand und die Zellmembran und reißen sie auf. Intrazelluläre Proteine, Enzyme, Nukleinsäuren und Metaboliten werden in den Lysepuffer freigesetzt. Da der Prozess mechanisch ist, kann er mit vielen verschiedenen Puffersystemen eingesetzt und mit Proteaseinhibitoren, Reduktionsmitteln, Detergenzien, Salzen oder einer milden enzymatischen Vorbehandlung kombiniert werden.
Allgemeines Protokoll: Lyse von Hefezellen in Mikrotiterplatten
Das folgende Protokoll bietet einen praktischen Ausgangspunkt für die Hefelyse mit dem Mikrotiterplatten-Ultraschallgerät UIP400MTP oder UIP550MTP von Hielscher. Die Parameter sollten entsprechend dem Hefestamm, der Zelldichte, dem Zielmolekül, der Pufferzusammensetzung, dem Plattentyp und dem nachgeschalteten Assay optimiert werden.
1. Hefezellen ernten und waschen
Kultivieren Sie Saccharomyces, Pichia, Hansenula, Debaryomyces oder einen anderen Hefestamm unter den gewünschten Kulturbedingungen. Ernten Sie die Zellen durch Zentrifugation und entfernen Sie das Kulturmedium. Waschen Sie das Pellet mit kaltem destilliertem Wasser, PBS oder dem gewählten Lysepuffer, um verbleibende Medienbestandteile zu entfernen, die die nachgeschaltete Analyse beeinträchtigen könnten.
Halten Sie die Proben für die Proteinextraktion kalt und arbeiten Sie zügig. Falls Proteasen problematisch sind, kühlen Sie alle Puffer und Verbrauchsmaterialien vor.
2. Zellpellet resuspendieren
Resuspendieren Sie das Hefepellet in einem geeigneten kalten Lysepuffer. Für eine effiziente Proteinfreisetzung ist eine hohe Zelldichte häufig vorteilhaft. Verwenden Sie als Ausgangspunkt etwa 10–20% w/v feuchtes Zellpellet oder eine dichte Suspension mit einer OD600 von mehr als 10, abhängig vom Assay.
Ein typischer Lysepuffer für die Proteinextraktion aus Hefe kann Folgendes enthalten:
- ein Puffersystem wie Tris-HCl, Phosphatpuffer oder HEPES
- ein Salz wie NaCl oder KCl
- einen Proteaseinhibitor-Cocktail
- optional ein Reduktionsmittel wie DTT oder β-Mercaptoethanol
- optional ein Detergens wie Triton X-100, NP-40, SDS oder CHAPS, abhängig von der Kompatibilität mit nachgeschalteten Anwendungen
- optional Phosphataseinhibitoren für Phosphorylierungsstudien
Bei schwer aufzuschließenden Hefestämmen oder für eine besonders schonende Proteinextraktion kann vor der Beschallung eine kurze Vorbehandlung mit Zymolyase, Lyticase oder einem anderen zellwandabbauenden Enzym durchgeführt werden. Diese enzymatische Vorbehandlung ist optional, kann jedoch die Lyseeffizienz verbessern oder die erforderliche Ultraschallintensität reduzieren.
3. Proben in eine geeignete Mikrotiterplatte überführen
Verteilen Sie die Hefesuspension auf eine für die Beschallung geeignete Mikrotiterplatte. Rundbodenplatten werden häufig bevorzugt, da sie die Probenentnahme verbessern und Totzonen reduzieren. Verwenden Sie in allen Wells gleiche Probenvolumina, um die Reproduzierbarkeit zu verbessern.
Verschließen Sie die Platte mit einer geeigneten Verschlussmatte oder Versiegelungsfolie, um Verdunstung, Aerosolbildung und Kreuzkontamination zu verhindern. Stellen Sie sicher, dass der Verschluss mit den gewählten Temperatur- und Beschallungsbedingungen kompatibel ist.
Typische Arbeitsvolumina hängen vom Plattenformat und der Anwendung ab. Gängige Formate umfassen 96-Well-Platten, Deepwellplatten, PCR-Platten oder geeignete Röhrchengestelle.
4. Kühlung einrichten
Die Hefelyse erfordert eine hohe Ultraschallintensität, und der mechanische Aufschluss erzeugt Wärme. Die Temperaturkontrolle ist daher entscheidend, insbesondere für Protein-, Enzym-, RNA- oder Phosphorylierungsanalysen.
Verwenden Sie eine geeignete Kühlstrategie, beispielsweise:
- vorgekühlten Lysepuffer
- vorgekühlte Mikrotiterplatten
- Kühlpausen zwischen den Beschallungsintervallen
- gegebenenfalls externe Kühlung der Beschallungsplattform
Ziel ist es, die Probe ausreichend kalt zu halten, um Proteindenaturierung, Enzyminaktivierung, RNA-Abbau und wärmebedingte Probenvariabilität zu verhindern.
5. Hefesuspension beschallen
Setzen Sie die verschlossene Platte in das Mikrotiterplatten-Ultraschallgerät UIP400MTP oder UIP550MTP von Hielscher ein und wählen Sie ein gepulstes Beschallungsprogramm. Der Pulsbetrieb wird empfohlen, da er den mechanischen Aufschluss während der EIN-Phasen und die Wärmeabfuhr während der AUS-Phasen ermöglicht.
Als Ausgangspunkt für die Lyse von Hefezellen:
| Parameter | Empfohlener Ausgangsbereich | Zweck |
|---|---|---|
| Amplitude | 60–100% | Hohe Kavitationsintensität für robuste Hefezellen |
| Pulsmodus | 10–30 sec EIN / 30–60 sec AUS | Effiziente Lyse mit kontrollierter Wärmeentwicklung |
| Kumulierte Einschaltzeit | 5–15 min | Je nach Stamm, Dichte und Zielmolekül anpassen |
| Temperatur | Proben kalt halten | Proteine, Enzyme, RNA und Metaboliten schützen |
| Plattenversiegelung | Empfohlen | Verhindert Verdunstung, Aerosolbildung und Kreuzkontamination |
Bei besonders widerstandsfähigen Hefesuspensionen, dichter P. pastoris-Biomasse oder schwieriger Extraktion rekombinanter Proteine erhöhen Sie die kumulierte Einschaltzeit schrittweise. Verwenden Sie für wärmeempfindliche Proteine oder Enzymassays kürzere Pulse, längere Kühlpausen und eine niedrigere Ausgangsamplitude.
Hochdurchsatz-Hefelyse in Multiwellplatten mit dem UIP400MTP
6. Lysat klären
Zentrifugieren Sie nach der Beschallung die Mikrotiterplatte oder überführen Sie die Proben zur Zentrifugation in Röhrchen. Entfernen Sie Zelltrümmer durch Zentrifugation bei geeigneter Drehzahl und Temperatur. Gewinnen Sie den Überstand für die nachgeschaltete Analyse.
Je nach Anwendung kann das Lysat verwendet werden für:
- Proteinquantifizierung
- Enzymaktivitätsassays
- SDS-PAGE und Western Blotting
- ELISA und Immunoassays
- LC-MS/MS-Proteomik
- Metabolitenanalyse
- DNA- oder RNA-Aufreinigung
7. Methode optimieren und dokumentieren
Dokumentieren Sie für eine reproduzierbare Hefelyse alle relevanten Parameter, einschließlich Stamm, Kulturbedingung, OD600, Zellfeuchtmasse, Pufferzusammensetzung, Plattentyp, Probenvolumen, Amplitude, Pulszyklus, kumulierter Einschaltzeit, Kühlmethode und Endtemperatur der Probe.
Wenn das Ultraschallgerät von Hielscher mit einer automatischen Datenaufzeichnung ausgestattet ist, können die Prozessdaten für Dokumentation, Methodenentwicklung, Maßstabsvergrößerung und Qualitätskontrolle verwendet werden.
Optimierungstipps für die Hefelyse
Verwenden Sie für eine maximale Proteinfreisetzung dichte Hefesuspensionen, eine hohe Ultraschallintensität und eine ausreichende kumulierte Einschaltzeit. Reduzieren Sie bei empfindlichen Proteinen die Amplitude, verlängern Sie die Kühlpausen und halten Sie die Platte während des gesamten Durchlaufs kalt.
Wenn die Lyse unvollständig ist, erhöhen Sie die Beschallungszeit schrittweise, testen Sie eine enzymatische Vorbehandlung, reduzieren Sie die Probenviskosität oder optimieren Sie den Puffer. Wenn Proteine abgebaut werden oder ihre Aktivität verlieren, verbessern Sie die Kühlung, verkürzen Sie die EIN-Intervalle, fügen Sie Inhibitoren hinzu und prüfen Sie, ob das Detergenssystem mit dem Zielprotein kompatibel ist.
Da sich Hefestämme hinsichtlich Zellwandstruktur, Wachstumsphase, Expressionssystem und Biomassedichte erheblich unterscheiden, wird eine kleine Optimierungsmatrix empfohlen. Testen Sie beispielsweise drei Amplituden, zwei Pulszyklen und zwei Gesamteinschaltzeiten und bewerten Sie anschließend die Lyseeffizienz und die Proteinintegrität.
Ob Sie wenige Assayplatten bearbeiten oder ein Hochdurchsatz-Hefescreening durchführen: Hielscher kann Ihnen helfen, das richtige Mikrotiterplatten-Ultraschallgerät auszuwählen und ein robustes Lyseprotokoll zu entwickeln. Kontaktieren Sie uns und teilen Sie uns Ihren Hefestamm, Ihren Arbeitsablauf und Ihre Anforderungen an den Probendurchsatz mit!
Vorteile der Mikrotiterplatten-Ultraschallgeräte von Hielscher für die Hefelyse
Mikrotiterplatten-Ultraschallgeräte von Hielscher sind ideal für Labore, die eine reproduzierbare Lyse vieler Proben benötigen. Sie machen die langsame Einzelprobenbearbeitung bei der Beschallung mit einer Sonotrode überflüssig und reduzieren die Variabilität, die durch manuelle Sonotrodenpositionierung, Eintauchtiefe und Unterschiede bei der Handhabung einzelner Proben entsteht.
Zu den wichtigsten Vorteilen gehören:
- Verarbeitung mit hohem Probendurchsatz: Beschallen Sie viele Hefeproben parallel in Mikrotiterplatten oder kompatiblen Probengestellen.
- Reproduzierbare Bedingungen: Gleiche Beschallungsbedingungen in allen Wells für einheitliche, vergleichbare Lyseergebnisse.
- Keine Kreuzkontamination durch Sonotroden: Die Proben bleiben während der Beschallung verschlossen, wodurch Verschleppungen und Reinigungsschritte reduziert werden.
- Geeignet für robuste Zellen: Hochintensiver Ultraschall unterstützt den Aufschluss von Hefezellwänden.
- Effizienter Arbeitsablauf: Ideal für das Screening von Stämmen, Klonen, Expressionsbedingungen und Lysepuffern.
- Effizienter Arbeitsablauf: Programmierbare Einstellungen, automatisierte Datenprotokollierung und Eignung für die Laborautomatisierung.
Anwendungen in der Hefebiotechnologie und der lebenswissenschaftlichen Forschung
Die ultraschallgestützte Hefelyse in Mikrotiterplatten unterstützt viele Forschungs- und Screeningabläufe. Bei der rekombinanten Proteinexpression können P. pastoris- und S. cerevisiae-Klone parallel lysiert werden, um Expressionsniveaus oder Enzymaktivität zu vergleichen. In der Systembiologie und der Omics-Analytik verbessert eine standardisierte Lyse die Vergleichbarkeit zwischen verschiedenen Bedingungen. In der Mikrobiologie unterstützt die Beschallung die schnelle Herstellung von Lysaten aus mehreren Stämmen, unter verschiedenen Medienbedingungen oder nach unterschiedlichen Stressbehandlungen.
Typische Anwendungsbereiche umfassen:
- Proteinextraktion aus Hefe
- Screening rekombinanter Proteine
- Enzymaktivitätsscreening
- Klonselektion nach Transformation
- Fermentationsoptimierung
- Probenvorbereitung für die Proteomik
- Probenvorbereitung für die Metabolomik
- Studien zum Zellwandaufschluss
- mikrobiologische Hochdurchsatzassays
Zuverlässige Hefelyse beginnt mit kontrollierter Beschallung
Die Hefelyse kann bei steigenden Probenzahlen schwierig werden, doch Mikrotiterplatten-Ultraschallgeräte von Hielscher machen den Prozess schneller, sauberer und reproduzierbarer. Der UIP400MTP und der UIP550MTP ermöglichen Forschenden, komplette Platten unter definierten Ultraschallbedingungen zu bearbeiten, wodurch der Probendurchsatz verbessert und gleichzeitig die manuelle Handhabung reduziert wird.
Für Mikrobiologen, Molekularbiologen, Proteinforschende und Biotechnologielabore ist die Beschallung von Mikrotiterplatten ein leistungsstarkes Werkzeug, um intrazelluläre Hefebestandteile effizient und reproduzierbar freizusetzen.
Häufig gestellte Fragen zur Lyse von Hefezellen durch Beschallung von Mikrotiterplatten
Können Hefezellen durch Beschallung lysiert werden?
Ja. Hefezellen wie Saccharomyces cerevisiae und Pichia pastoris können durch hochintensive Beschallung lysiert werden. Ultraschallkavitation erzeugt starke mechanische Scherkräfte, die die Zellwand und die Membran der Hefezellen aufschließen und dabei Proteine, Enzyme, Nukleinsäuren und Metaboliten freisetzen.
Warum lassen sich Hefezellen schwerer lysieren als Bakterienzellen?
Hefezellen besitzen eine dicke und mechanisch widerstandsfähige Zellwand, die hauptsächlich aus Glucanen, Mannoproteinen und Chitin besteht. Diese starre Struktur erschwert den Aufschluss von Hefe im Vergleich zu vielen Bakterien- oder Säugetierzellen. Daher erfordert die Hefelyse üblicherweise eine höhere Intensität, eine längere Behandlung oder eine optionale enzymatische Vorbehandlung.
Welche Ultraschallgeräte von Hielscher eignen sich für die Hefelyse in Mikrotiterplatten?
Die Geräte UIP400MTP und UIP550MTP von Hielscher eignen sich für die Hochdurchsatz-Hefelyse in Mikrotiterplatten. Der UIP400MTP ist ideal für die routinemäßige parallele Probenvorbereitung, während der UIP550MTP eine höhere Ultraschallleistung für anspruchsvolle Lyseaufgaben, dichte Suspensionen und robuste Hefestämme bietet.
Kann Pichia pastoris in einem Mikrotiterplatten-Ultraschallgerät lysiert werden?
Ja. Pichia pastoris, auch als Komagataella phaffii bekannt, kann durch hochintensive Beschallung in Mikrotiterplatten lysiert werden. Da P. pastoris dichte Biomasse bilden kann und eine robuste Zellwand besitzt, wird eine Optimierung von Amplitude, Pulszyklus, Kühlung und gesamter Beschallungszeit empfohlen.
Was sind typische Beschallungsparameter für die Hefelyse?
Als Ausgangspunkt eignen sich eine Amplitude von 50–80%, ein Pulsbetrieb mit beispielsweise 10–30 Sekunden EIN und 30–60 Sekunden AUS sowie eine kumulierte Einschaltzeit von 5–15 Minuten. Die genauen Parameter hängen von Hefestamm, Zelldichte, Probenvolumen, Plattentyp, Puffer und Zielmolekül ab.
Warum sollte die Hefelyse im Pulsmodus durchgeführt werden?
Der Pulsmodus reduziert den Wärmestau während der Beschallung. Während der EIN-Phase schließt die Ultraschallkavitation die Zellen auf. Während der AUS-Phase kann die Probe abkühlen. Dies ist wichtig, da übermäßige Wärme Proteine denaturieren, die Enzymaktivität reduzieren, RNA abbauen und die Reproduzierbarkeit beeinträchtigen kann.
Ist vor der Beschallung von Hefezellen eine enzymatische Vorbehandlung erforderlich?
Eine enzymatische Vorbehandlung ist nicht immer erforderlich, kann aber die Lyseeffizienz verbessern. Enzyme wie Zymolyase oder Lyticase verdauen die Hefezellwand teilweise und können die für eine vollständige Lyse benötigte Ultraschallintensität oder Behandlungszeit reduzieren. Dies kann bei empfindlichen Proteinen oder schwer aufzuschließenden Stämmen nützlich sein.
Wie lässt sich eine Überhitzung während der Beschallung von Hefe verhindern?
Verwenden Sie vorgekühlte Puffer, den Pulsmodus, Kühlpausen und einen gekühlten Plattenaufbau. Halten Sie die Mikrotiterplatte verschlossen und überwachen Sie nach Möglichkeit die Temperatur. Verwenden Sie bei empfindlichen Proteinen kürzere EIN-Intervalle und längere AUS-Intervalle und bearbeiten Sie die Proben unter kalten Bedingungen.
Kann die Beschallung von Mikrotiterplatten den Aufschluss mit Mahlperlen bei der Hefelyse ersetzen?
In vielen Arbeitsabläufen ja. Die Beschallung von Mikrotiterplatten kann den Aufschluss mit Mahlperlen ersetzen, wenn eine saubere, reproduzierbare und parallele Lyse erforderlich ist. Sie vermeidet die Handhabung von Mahlperlen, vereinfacht den Umgang mit Verbrauchsmaterialien und erleichtert die Automatisierung. Jede Anwendung sollte jedoch durch einen Vergleich von Lyseausbeute, Proteinintegrität und Assayleistung validiert werden.
Eignet sich die Beschallung von Mikrotiterplatten für die Proteinextraktion aus Hefe?
Ja. Die Beschallung von Mikrotiterplatten eignet sich gut für die Proteinextraktion aus Hefe, insbesondere wenn viele Klone oder Kulturbedingungen verglichen werden müssen. Proteaseinhibitoren, kalte Puffer und kontrollierte Pulseinstellungen helfen, die Proteinqualität zu erhalten.
Kann dieselbe Methode für die DNA-, RNA- und Proteinextraktion verwendet werden?
Dasselbe grundlegende Beschallungsprinzip kann verwendet werden, doch Puffer und Prozessbedingungen sollten an das Zielmolekül angepasst werden. Arbeitsabläufe für Proteine erfordern eine Proteasehemmung und Temperaturkontrolle. Arbeitsabläufe für RNA erfordern RNase-freies Arbeiten und eine starke Kühlung. Arbeitsabläufe für DNA können unterschiedliche Lyse- und Aufreinigungsbedingungen erfordern, je nachdem, ob intakte genomische DNA oder fragmentierte DNA gewünscht ist.
Welcher Plattentyp sollte für die Hefelyse verwendet werden?
Verwenden Sie eine für die Beschallung geeignete Mikrotiterplatte oder Deepwellplatte mit geeignetem Verschluss. Rundbodenplatten sind für die Handhabung von Suspensionen häufig nützlich. Die Platte sollte den gewählten Beschallungsbedingungen, der Probentemperatur und den Zentrifugationsschritten standhalten.
Woran erkenne ich, ob die Hefelyse vollständig ist?
Die Lyseeffizienz kann durch Mikroskopie, Proteinausbeute, Enzymaktivität, Viskositätsreduktion, SDS-PAGE-Analyse, DNA-/RNA-Ausbeute oder den Vergleich mit einer bekannten Lysemethode überprüft werden. Bewerten Sie bei der Methodenentwicklung sowohl die Ausbeute als auch die Qualität des freigesetzten Zielmoleküls.
UIP400MTP oder UIP550MTP: Welches Mikrotiterplatten-Ultraschallgerät sollten Sie wählen?
Der UIP400MTP ist ein leistungsstarkes Mikrotiterplatten-Ultraschallgerät für die routinemäßige Hochdurchsatz-Probenvorbereitung, einschließlich Hefelyse, Proteinextraktion, DNA-Scherung, Biofilmablösung und Assayvorbereitung. Er eignet sich für Labore, die eine reproduzierbare Beschallung in Standardplattenformaten benötigen.
Der UIP550MTP bietet eine höhere Ultraschallleistung und wird empfohlen, wenn anspruchsvollere Anwendungen eine höhere akustische Intensität, kürzere Bearbeitungszeiten, höhere Probenmengen oder robustere Aufschlussbedingungen erfordern. Für die Hefelyse ist der UIP550MTP besonders nützlich bei dichter Biomasse, schwer aufzuschließenden Stämmen, größeren Arbeitsvolumina und beim Hochdurchsatz-Expressionsscreening.
Kann die Hefelyse durch Beschallung von Mikrotiterplatten automatisiert werden?
Ja. Die mikrotiterplattenbasierte Beschallung eignet sich gut für automatisierte Laborabläufe, da die Proben im Plattenformat verbleiben. Dies unterstützt die Integration in Pipettiersysteme, Plattenhandhabung, Zentrifugation, Assayvorbereitung und Hochdurchsatz-Screeningabläufe.
Literatur / Referenzen
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- FactSheet UIP550MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
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