大腸菌の超音波溶解

  • 大腸菌細菌が微生物学およびバイオテクノロジーにおいて最も一般的に使用される細菌です。
  • 超音波セル撹乱は、大腸菌の溶解のための信頼できる再現性のある結果を提供します。
  • 激しいまだ正確に制御キャビテーションおよび剪断力が完全破壊および高い抽出収率(例えばタンパク質、DNA)をもたらします。

なぜ大腸菌の超音波細胞破壊が好ましい方法ですか?

超音波ホモジナイザーまたはプローブ型超音波処理器は、強烈な超音波が効率的に細胞壁および膜を破壊するので、大腸菌溶解のためのいくつかの利点を提供する。プローブ型超音波処理器は、以下の理由により大腸菌溶解に広く使用されています。

  • 細胞壁の効率的な破壊: 大腸菌にはペプチドグリカンで構成される半硬質の細胞壁があり、従来の溶解方法では破壊が困難な場合があります。プローブ型超音波処理器は、細胞を取り巻く液体中にキャビテーション気泡を作成する強烈な超音波を生成します。これらの気泡が崩壊すると、高速の液体ジェットと衝撃波が発生し、細胞壁が機械的に破壊され、生体分子などの細胞内容物が効果的に放出されます。
  • 強化された浸透性: プローブ/ソノトロードによって生成された超音波は、サンプルの奥深くまで浸透し、より多くの大腸菌細胞に到達し、それらを均一に処理することができる。これにより、サンプル全体で溶解がより均一になり、細胞破壊効率が向上します。
  • 処理時間の短縮: プローブ型超音波処理器によって供給されるエネルギーは、非常に濃縮され、局在化され、迅速かつ効率的な細胞溶解につながります。ビーズビートや酵素溶解のような他の方法と比較して、超音波処理は数分または数秒以内に大腸菌溶解を達成することができます。凍結融解などの多くの代替技術は数ラウンドの治療を必要としますが、超音波溶解は単一のプロセスステップで細胞を開きます。
  • 温度管理: 最先端の超音波装置は、最高プロセス温度を設定することを可能にする温度センサーとスマートソフトウェアが装備されています。超音波装置は、温度限界に達すると自動的に一時停止し、設定された温度ポイントに達すると超音波処理プロセスを開始します。氷浴でサンプルを冷却することは、サンプル温度を低く保ち、熱によるサンプルの劣化を防ぐための簡単な方法です。
  • 拡張性: プローブ型超音波処理器は、ハンドヘルドデバイスから大規模な産業モデルまで、さまざまなサイズで利用できます。これにより、実験室での少量の処理や、ワクチン製造や分子の生合成などの大規模なバイオプロセシングアプリケーションへのスケールアップに適しています。
  • 万芸: 超音波処理器は、DNAせん断、タンパク質抽出、組織均質化、ナノ粒子分散、乳化など、細胞溶解を超えた様々な用途に使用できます。したがって、プローブ型超音波装置への投資は、研究または産業環境で汎用性を提供します。
  • UP200Stなどのプローブ型超音波処理器は、信頼性の高い組織ホモジナイザーおよび細胞クラッシャーであるため、大腸菌溶解などの遺伝学におけるサンプル調製に広く使用されています。

    大腸菌細胞からのタンパク質抽出は、 超音波プローブ UP200St

    プローブ型超音波処理器は、大腸菌溶解のための多くの利点を提供しています。超音波プロセスパラメータの信頼性の高い正確な制御は、所望の結果を達成するために、電力、持続時間、およびサンプル処理などの動作パラメータを最適化することを可能にする。
     

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    このチュートリアルでは、溶解、細胞破壊、タンパク質単離、実験室でのDNAおよびRNA断片化、分析、研究などのサンプル調製タスクに最適な超音波処理器のタイプについて説明します。アプリケーション、サンプル量、サンプル数、スループットに最適な超音波処理器タイプを選択してください。ヒールシャー超音波はあなたのための理想的な超音波ホモジナイザーを持っています!

    科学と分析における細胞破壊とタンパク質抽出のための完璧な超音波処理器を見つける方法

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    超音波DNA断片化は、次世代シーケンシング(NGS)におけるサンプル調製ステップとして頻繁に使用される

    大腸菌EDL933のゲノムDNAの電気泳動分析は、0 – 15分超音波処理にかけた。LはDNAラダーを示す。
    (研究と画像:©Basseletら2008)

    超音波キャビテーションを用いた細胞破壊

    超音波プローブ型ホモジナイザーは、毎秒約20,000サイクル(20kHzで)で動作し、液体または懸濁液にキャビテーションを引き起こします。細胞を引き裂く真空のような圧力と高温の音響キャビテーション微視的領域。温度は摂氏数千度に達する可能性がありますが、キャビテーション量は非常に小さいため、プロセスを大幅に加熱することはありません。超音波は、音響キャビテーションとせん断力を生成し、大腸菌などの細菌細胞の細胞膜を穿孔または破壊します。ヒールシャー超音波処理器は、超音波強度、振幅、エネルギー入力、および温度などのプロセスパラメータを正確に制御することができます。これにより、超音波溶解プロセスは、細胞型、細胞培養、およびプロセス目標に最適に調整することができる。
     

    超音波溶解のメリット

    • 溶解の正確な制御(強度、振幅、温度)
    • 信頼性が高く、再現性のある結果
    • 具体的なサンプルに最適な適応
    • 温度管理
    • 非常に大規模なサンプル(リットルμL)と非常に小さいため
    • 純粋な機械的処理
    • ユーザーフレンドリーで安全な操作
    • 生産への研究室からリニアスケールアップ
    同じプロセス条件下で最大10本のバイアルの同時サンプル調製を可能にするVialTweeter超音波装置。 (拡大するにはクリックしてください!)

    VialTweeter 超音波溶解のため

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    超音波ホモジナイザー対他の溶解技術

    化学的および酵素的溶解は問題になる可能性がありますが – 化学的溶解は、タンパク質の構造を変更し、精製の問題を紹介し、酵素的溶解が長いインキュベーション時間を必要とし、再現性がないことができるので – 超音波破砕は、洗練された、高速の細胞破壊方法です。
    超音波溶解は、機械的な力のみに基づいています。化学物質は添加されていません、超音波処理はせん断力によって細胞壁を破壊します。化学溶解はタンパク質の構造を変化させ、精製の問題を引き起こす可能性があります。酵素破壊は長いインキュベーション時間を必要とし、再現性がありません。大腸菌細胞の超音波細胞破壊は、高速、シンプル、信頼性と再現性です。そのため、ヒールシャー超音波処理器は、サンプル調製、前麻酔、インビトロ対角線およびマニホールドアッセイのために、世界中の生物学的および生化学的実験室で使用されています。

    超音波溶解のための一般的な推奨事項

    超音波処理は、細胞懸濁液の非常に小中規模および大規模の量を溶解するための最も一般的な技術であります – 100L /時間までのピコリットルから(超音波フローセルを用いて)。細胞を液体剪断およびキャビテーションによって溶解されます。 DNAはまた、超音波処理の間に剪断されるので、細胞懸濁液にDNアーゼを添加する必要はありません。
     

    超音波大腸菌溶解中の温度制御
    植物化合物の細胞破壊と抽出のための超音波細胞破壊装置UP100H(100W)。サンプルを予冷し、氷上で超音波処理中に試料を保持することによって、試料の試料の熱分解を容易に防止することができます。
    理想的には、溶解中はサンプルを氷冷に保つ必要がありますが、ほとんどのサンプルでは、温度が培養物または組織源の温度を超えて上昇しなければ十分です。したがって、懸濁液を氷上に保ち、5〜10秒のいくつかの短い超音波パルスと10〜30秒の休止で超音波処理することをお勧めします。一時停止中、低温を再確立するために熱が放散される可能性があります。より大きなセルサンプルの場合、冷却ジャケットを備えたさまざまなフローセルリアクターが利用可能です。
    超音波溶解を成功させるための詳細なヒントと推奨事項をここでお読みください!

    大腸菌溶解物の超音波調製のためのプロトコル

    研究者は、大腸菌細胞破壊のためのヒールシャー超音波ホモジナイザーを使用しています。以下に、様々な大腸菌関連のアプリケーションのためのヒールシャー超音波ホモジナイザーを使用して大腸菌溶解のための様々なテストされ、証明されたプロトコルを見つけることができます。
     

    このビデオクリップは、ヒールシャー超音波ホモジナイザーUP100H、実験室でのサンプル調製に広く使用されている超音波装置を示しています。

    超音波ホモジナイザー UP100H

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    超音波を用いた大腸菌細胞抽出物の細胞増殖、架橋および調製

    SeqAおよびRNAポリメラーゼチップ間大腸菌MG1655 MG1655またはΔseqAためODに37℃で増殖させました600の 培地1mlあたりホルムアルデヒド(37%)27μlを加えた(最終濃度1%)前に、50mlのLB(+ 0.2%グルコース)中に約0.15の濃度で添加した。架橋は室温で20分間ゆっくり振盪(100rpm)し、続いて10mlの2.5Mグリシン(最終濃度0.5M)でクエンチした。熱ショック実験のために、E.coli MG1655を65mlのLB培地中、30℃でOD600の 約0.3の。続いて、30mlの培養液を43°Cで予め温めたフラスコに移し、残りは30°Cに保温した。 架橋および消光は、細胞を30または43°Cで5分間保持した後、室温でさらにゆっくりと振とうしたことを除いて、上記のとおりでした。遠心分離により細胞を回収し、冷TBS(pH7.5)で2回洗浄した。1mlの溶解バッファー(10mMトリス(pH 8.0)、20%スクロース、50mM NaCl、10mM EDTA、10mg/mlリゾチーム)に再懸濁し、37°Cで30分間インキュベートした後、4mlのIPバッファーを添加した後、細胞を100%電力設定でヒールシャー超音波プロセッサUP400Stを使用して12回30秒および30秒の休憩で氷上で超音波処理した。9000 gで10分間遠心分離した後、上清の800 μlアリコートを-20°Cで保存しました。 (ヴァルトミングハウス 2010)
     

    超音波プローブによる酵素の過剰生産と精製

    超音波装置UP100Hは、細胞培養プレートのサンプル調製によく使用されるラボホモジナイザーです。デカヒスチジン(His10)タグ付きタンパク質の過剰産生については、大腸菌BL21(DE3)をpET19bコンストラクトで形質転換しました。一晩前培養物を遠心分離により回収し、1%を用いて発現培養物を接種した。pET19mgtBを担持した細胞は、600 nmでの光学密度(OD600)が0.7になるまで22°Cで増殖しました。培養液を17°Cに移し、100 μM IPTGで誘導しました。16時間後、4°Cで7,500 × gの遠心分離により培養物を回収しました。 細胞は、pH 7.4で0.3M NaClを含む50mMリン酸緩衝生理食塩水(PBS)に再懸濁され、ヒールシャー超音波装置UP200StでS2マイクロチップソノトロードによる超音波によって0.5のサイクルおよび75%の振幅で破壊された。
    decahistidineタグGTFCの過剰産生は、ODで37℃で誘導しました600の 100μMのIPTGで0.6の。次いで、細胞を、4時間インキュベートし回収し、MgtBについて上で述べたように溶解しました。
    粗細胞抽出物を15,000 × gおよび4°Cで遠心分離して、細胞破片を沈降させた。清澄化した抽出物は、ÄKTAprime Plusシステムを使用して1 mlのHisTrap FF原油カラムにロードされました。酵素は、Hisタグ付きタンパク質のグラジエント溶出に関するメーカーのプロトコルに従って精製されました。溶出したタンパク質溶液を、1,000容量の50 mM PBS、pH 7.4、0.3 M NaCl、4°Cで2回透析しました。 精製を12%SDS-PAGEにより分析した。タンパク質の濃度は、Roti-Quantを用いたブラッドフォード法により決定した。(ラバウシュら 2013)
     

    大腸菌からのタンパク質の超音波抽出
    関心のベイトタンパク質(この場合には、シロイヌナズナのMTV1)は、GSTタグに融合され、BL21大腸菌(E. coli)細胞で発現します。

    1. GST-MTV1とGST(50 mlの細菌培養に相当)のペレットを1つ取り、それぞれを2.5 mLの氷冷抽出バッファーに再懸濁します。
    2. 超音波装置UP100H(約2〜5mLの少量のためのMS3マイクロチップソノトロードを装備)を使用して、それらが溶解するまで細菌細胞を破壊し、これは不透明度の低下と粘度の増加によって示されます。これは氷上で実行する必要があり、間隔を空けて超音波処理することをお勧めします(例えば、10秒の超音波処理に続いて氷上で10秒の一時停止など)。高すぎる強度で超音波処理しないように注意する必要があります。発泡または白色沈殿物の形成が検出された場合は、強度を下げる必要があります。
    3. 溶解した菌液を1.5 mLのマイクロ遠心チューブに移し、4°C、16,000 x gで20分間遠心分離します。

     

    超音波プローブは、細胞を破壊し、大腸菌から分子やDNAを抽出するために音響キャビテーションの力を使用します。

    UP400Stなどのプローブ型超音波装置 大腸菌の効率的な溶解のために音響キャビテーションの動作原理を使用してください。

    超音波処理を用いた組換えタンパク質の発現解析と精製

    大腸菌ペレットをヒールシャー超音波処理器UP100Hで超音波処理した。この目的のために、細胞ペレットをチルド溶解バッファー(50 mM Tris-HCl pH=7.5、100 mM NaCl、5 mM DTT、1 mM PMSF)に再懸濁し、氷上で10分間冷却しました。次いで、細胞懸濁液を、冷却のための10秒の間隔に続いて10秒の短いバーストで超音波処理した。最後に、細胞残渣を4°C、14000rpmで15分間超遠心して除去した。rPR発現の確認のために、上清を12%ポリアクリルアミドゲル上で実行し、SDS-PAGEおよびウエスタンブロッティングにより分析した。rPRの精製は、メーカーガイドに従ってNi2+-NTA樹脂(インビトロジェン社、米国)を使用して行われました。この段階では、天然精製法を使用した。精製タンパク質の純度は、12%ポリアクリルアミドゲル上での電気泳動およびその後のクーマシーブルー染色を用いて評価した。精製タンパク質濃度は、マイクロBCAタンパク質アッセイキット(PIERCE、米国)により測定した。(アザルネザドら2016)
     

    このビデオは、ラボサンプルの分散、均質化、抽出または脱気のための200ワットの超音波カップホーンを示しています。

    超音波カップホーン(200ワット)

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    大腸菌溶解のための超音波ホモジナイザー

    ヒールシャー超音波は、大腸菌および他の細胞型、組織および細胞培養の信頼性および効率的な溶解のための高性能超音波ホモジナイザーを設計、製造および供給する。
    超音波プローブと間接超音波処理システムの幅広いポートフォリオにより、細胞破壊および抽出アプリケーションに最適な超音波組織ホモジナイザーを提供できます。

    設計・製造・コンサルティング – ドイツ製の品質

    ヒールシャー超音波処理器は、ブラウザコントロールを介してリモート制御することができます。超音波処理パラメータを監視し、プロセス要件に正確に調整することができます。ヒールシャー超音波処理器は、その最高の品質と設計基準でよく知られています。スマートソフトウェア、直感的なメニュー、プログラム可能な設定と自動データプロトコルは、ヒールシャー超音波処理器のほんのいくつかの機能です。堅牢性と簡単な操作により、当社の超音波装置を研究およびバイオテクノロジー施設にスムーズに統合できます。過酷な条件や要求の厳しい環境でも、ヒールシャー超音波処理器によって簡単に処理されます。

    ヒールシャー超音波はISO認定企業であり、最先端の技術と使いやすさを備えた高性能超音波装置に特に重点を置いています。もちろん、ヒールシャー超音波処理器はCEに準拠しており、UL、CSAおよびRoHsの要件を満たしています。

    下の表は私達のultrasonicatorsのおおよその処理能力の目安を与えます:

    バッチ容量流量推奨デバイス
    マルチウェル/マイクロタイタープレートN.A。UIP400MTP
    バイアルまたはビーカー用のカップホーンN.A。超音波cuphorn
    超音波マイクロフローリアクターN.A。GDmini2
    0.5〜1.5mLで最大10本のバイアルN.A。VialTweeter
    01.5mlの0.5へN.A。VialTweeter
    500mLの1〜200mL /分で10UP100H
    2000mlの10〜20 400mLの/分Uf200ःトンUP400St
    00.1 20Lへ04L /分の0.2UIP2000hdT
    100Lへ1010L /分で2UIP4000
    N.A。10 100L /分UIP16000
    N.A。大きなのクラスタ UIP16000

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    以下のフォームを使用して、超音波組織ホモジナイザーとセルクラッシャー、溶解アプリケーションと価格に関する追加情報を要求してください。私たちはあなたとあなたのプロセスについて話し合い、あなたの要件を満たす超音波ホモジナイザーを提供することを嬉しく思います!









    予めご了承ください。 個人情報保護方針


    ビデオは高強度の超音波を使用して任意の標準的なマルチウェルプレートの信頼できるサンプルの準備を可能にする超音波サンプル調製システムUIP400MTPを示しています。UIP400MTPの代表的な用途としては、細胞溶解、DNA、RNA、クロマチンのせん断、タンパク質抽出などがあります。

    マルチウェルプレート超音波処理用超音波UIP400MTP

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    超音波大腸菌溶解のための追加のプロトコル

    超音波バイアルツイーターを用いた大腸菌中のアリシン修飾タンパク質

    超音波プロセッサUP200STでVialTweeter5,5'-ジチオビス(2-ニトロ安息香酸)(DTNB)アッセイによるスルフヒドリル内容の決意
    大腸菌MG1655の一晩培養を使用して、MOPS最小培地(1:100)を接種しました。培養物は、0.4のA600に達するまで好気的に成長させた。培養物をストレス治療のために3つの15ml培養物に分割した。未処理の培養物はネガティブコントロールとして役立った。0.79 mMアリシン(128 μg ml-1)または1 mMジアミドを残りの2つの培養液の1つにそれぞれ加えました。培養物を15分間インキュベートし、各培養物5 mlを遠心分離(8,525 × g、4°C、10分間)により回収した。細胞を1 mlのPBS(137 mM NaCl、2.7 mM KCl、10 mM Na2HPO4、2 mM KH2PO4、pH 7.4、使用前に嫌気的に保存)で2回洗浄し、遠心分離(13,000 × g、4°C、10分間)しました。細胞を溶解バッファー(6mMグアニジニウムHClを含むPBS、pH 7.4)に再懸濁した後、超音波処理による4°Cでの破壊(VialTweeter 超音波装置、ヒールシャーGmbH、ドイツ)(3 × 1分)。細胞残渣を遠心分離(13,000 × g、4°C、15分間)によりペレット化した。上清を磁気攪拌子付きの3.5 mlQSマクロキュベット(10 mm)に移し、1 mlの溶解バッファーと混合しました。サンプルの消光は、室温でPSC-718温度制御セルホルダーを備えたJasco V-650分光光度計を使用して412nmでモニターされました。100μlの3mMジチオビス(2-ニトロ安息香酸)溶液を添加した。絶滅は飽和に達するまで監視された。チオール濃度の算出は吸光係数を用いて行ったε412の = 13,700 M-1 Cm-1 チオ-2-ニトロ安息香酸(TNB)のために。セルラチオール濃度は6.7×10の大腸菌細胞の体積に基づいて計算しました-15歳 リットルとA600 = 0.5のセル密度(1×10に相当)8 細胞ミリリットル-1 文化)。 (Mullerら。2016)
     

    超音波セルクラッシャーを用いたin vivoグルタチオン測定

    大腸菌MG1655は、0.5のA600に達するまで、総容量200mlのMOPS最小培地で増殖させた。培養物をストレス治療のために50mlの培養物に分割した。0.79 mMアリシン、1 mMジアミド、またはジメチルスルホキシド(コントロール)で15分間インキュベートした後、細胞を4,000gで4°Cで10分間回収しました。細胞を、700μlのKPE緩衝液中のペレットの再懸濁の前にKPE緩衝液で2回洗浄した。除タンパクのために、超音波による細胞の破壊の前に10%(w / v)スルホサリチル酸の300リットルを添加した(3 x 1分; VialTweeter 超音波装置)。上清を遠心分離(30分、13000グラム、4℃)後に回収しました。スルホサリチル酸濃度は、KPE緩衝液の3つの容量の添加により1%まで減少しました。上述したように、総グルタチオンおよびGSSGの測定を行いました。細胞グルタチオン濃度が6.7の大腸菌細胞の体積に基づいて計算しました×10歳-15歳 リットルとA600 0.5のセル密度(1に相当)×10歳8 細胞ミリリットル-1 文化)。 GSH濃度は、総グルタチオンから2 [GSSG]の減算によって計算しました。 (Mullerら。2016)

    超音波ホモジナイザーを用いた大腸菌におけるヒトmAspATの発現

    細胞内物質の抽出のための超音波細胞破壊UP400St(400W)(例えばタンパク質、細胞小器官、DNA、RNA等)大腸菌BL21(DE3)の単一コロニーを、100μgの/ mLのアンピシリンを含むルリア - ベルターニ(LB)培地30mlに発現ベクターを保有し、その後光学密度まで37℃で培養し(OD600の)0.6に達しました。細胞を10分間、4,000×gでの遠心分離によって回収し、そして100μgの/ mLのアンピシリンを含有する3Lの新鮮なLB培地に再懸濁しました。
    続いて、1 mMイソプロピルβ-ᴅ-1-チオガラクトピラノシド(IPTG)を用いて16ºCで20時間タンパク質発現を誘導した。細胞を8,000 × gで15分間遠心分離して回収し、バッファーA(20 mM NaH2PO4、0.5 M NaCl、pH 7.4)で洗浄しました。約45g(湿重量)の細胞を3L培養物から得た。遠心分離後、細胞ペレットを40mL(1L培養用)氷冷抽出バッファーAに再懸濁し、ヒールシャー超音波細胞破砕機UP400Stを用いて氷冷温度で超音波処理により溶解した。細胞溶解を12,000rpmで15分間遠心分離し、可溶性(上清)画分と沈殿画分(ペレット)を分離した。(江ら 2015)
     



    知る価値のある事実

    大腸菌

    エシェリヒア・コリ(E.coli)は、温血動物の下部腸内に一般に見出されるグラム陰性で、通性嫌気性の、桿状の大腸菌(Escherichia)属細菌である(吸熱)。多様な特性を有する多数の大腸菌株(または亜型)が存在する。大部分の大腸菌株はヒトに無害であり、例えば実験室での研究に一般的に用いられるBおよびK-12株である。しかし、いくつかの系統は有害であり、深刻な病気を引き起こす可能性があります。
    細菌は操作が容易であるため、大腸菌は、現代生物学、エンジニアリングおよび産業用微生物学において重要な役割を果たしています。例えば、多くの場合、大腸菌の使用を含む一般的なラボアプリケーション組換えデオキシリボ核酸(DNA)を作成する、またはモデル生物として作用します。
    大腸菌は、異種タンパク質の生産のための非常に汎用性の高いホストで、マニホールドタンパク質発現系は、大腸菌における組換えタンパク質の生産に利用できます。タンパク質の高レベルの発現を可能にするプラスミドを用いて、遺伝子は、工業発酵プロセスにおいて大量にこのようなタンパク質を製造することができる細菌に導入することができます。
    大腸菌は、インスリンを生産するための細胞工場として使用されます。さらなる用途には、ワクチンおよび固定化酵素の開発および製造、バイオ燃料の製造、ならびにバイオレメディエーションのための改変大腸菌細胞の使用が含まれる。
    K-12株は、Eの変異形は、酵素アルカリホスファターゼ(ALP)の上に発現することコリです。この突然変異が原因酵素のために絶えずコード遺伝子の欠陥が原因で発生します。遺伝子は、任意の阻害せずに製品を生産する場合、これは恒常的活性として知られています。この特定の変異形は、単離および精製ALP酵素のために使用されます。
    大腸菌は、菌工場としても広く利用されている。操作された微生物(例えば、細菌)および植物細胞は、いわゆる細胞工場として使用することができる。これらの遺伝子組み換え細胞は、例えば製薬、食品、化学工業で使用される分子、化学物質、ポリマー、タンパク質、およびその他の物質を産生する。このような生体工学的細胞の内部で産生された分子を放出するために、超音波溶解は、細胞壁を破壊し、標的物質を周囲の液体に移す一般的な方法である。 バイオエンジニアリングされた細胞の溶解についてもっと読む!

    超音波DNAシャーリング

    超音波せん断力は、分子、細胞小器官、タンパク質を細胞内部から放出し、DNA鎖を断片に分解するために一般的に使用される方法です。音響キャビテーションは、細胞壁と膜を破壊して細胞からDNAを抽出し、約600の断片を生成します – 分析のための理想的な長さは800 bpで、。
    DNAの断片化のための超音波ホモジナイザーの詳細については、こちらをクリック!

    文献 / 参考文献


    高性能超音波!ヒールシャー製品の範囲は、ベンチトップユニット上のコンパクトなラボ超音波装置から完全な産業用超音波システムまで、全スペクトルをカバーしています。

    ヒールシャー超音波は、から高性能超音波ホモジナイザーを製造しています ラボ産業サイズ。


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