組織および細胞培養からの超音波タンパク質抽出
- タンパク質抽出は、プロテオミクスにおける不可欠なサンプル前処理工程です。
- タンパク質は、植物および動物の組織、酵母、微生物から抽出できます。
- 超音波処理は、短い抽出時間で高いタンパク質収量が得られる、信頼性が高く効率的なタンパク質抽出法です。
組織および細胞からのタンパク質抽出
組織および培養細胞からのタンパク質抽出は、ELISA、PAGE、ウェスタンブロッティング、質量分析、タンパク質精製など、多くの生化学的手法や分析手法で実施される不可欠なサンプル前処理工程です。超音波による細胞破砕、溶解、抽出は、精密に制御できる非熱的な技術であり、高いタンパク質収量を確保します。
細胞からのタンパク質抽出に使用する 超音波プローブUP200St
- 迅速
- 高収量
- 高い効率
- パラメーターの精密な制御
- 再現性のある結果
- 線形のスケールアップが可能
超音波による溶解とタンパク質抽出の一般的な手順
- 温度制御: 熱変性を起こさずに高いタンパク質収量を確保するには、抽出中の温度を制御する必要があります。Hielscherの最先端の超音波ホモジナイザー – 超音波破砕装置または超音波処理装置とも呼ばれます – は、精密に制御できます。接続式の温度センサーが付属しています。超音波ホモジナイザーの設定オプションで最高温度を設定できます。この最高温度に達すると、超音波処理装置はサンプルが冷却されるまで自動的に停止します。
- 緩衝液: 適切な緩衝液の選択と適正な緩衝液量は組織によって異なるため、試行錯誤による試験で決定する必要があります。
- 単離/精製: タンパク質を含む溶解液には、DNAや炭水化物などの生体分子が過剰に含まれている場合があります。これらは、タンパク質沈殿(デオキシコール酸塩–トリクロロ酢酸)または緩衝液交換によって除去できる場合があります。
ChittapaloとNoomhorm(2009)は、超音波処理によってタンパク質収量が増加し、超音波による組織ホモジナイズおよび溶解プロセスが既存の抽出プロセスを大幅に改善できることを研究で報告しました – これにより、商業的な抽出に新たな機会が生まれます。
超音波CupHorn は、タンパク質の単離およびDNAの断片化のために、複数のサンプルを同じ条件で同時に、極めて効果的に前処理します。
動物組織からのタンパク質抽出
組織全体(腎臓、心臓、肺、筋肉など)を前処理する場合は、プロテアーゼによる分解を防ぐため、清潔な器具を用い、できれば氷上で、できるだけ速やかに組織を非常に小さな断片に切り分ける必要があります(例えば、RIPAなどの溶解緩衝液、またはプロテアーゼおよびホスファターゼ阻害剤カクテルを含む低張溶解緩衝液)。切り分けた後、サンプルを液体窒素に浸して急速凍結します。サンプルは、後で使用するために -80°C で保存するか、すぐにホモジナイズするために氷上に保持できます。超音波抽出の直前に、氷冷した溶解緩衝液(プロテアーゼ阻害剤であるDTT、ロイペプチン、アプロチニンを含む)をサンプルチューブに速やかに加えます(組織 ~10 mg あたり、約 ~600 μL の緩衝液を推奨します)。サンプルチューブあたり、約 20–60mg の組織を推奨します。
超音波によるホモジナイズ、溶解、抽出は、マイクロチップ型ソノトロードを装備したUP100HやUP200Htなどの超音波ホモジナイザーで実施します。超音波処理時間は60–90秒で、15秒間の超音波処理と10秒間の休止からなる超音波サイクルモードを使用します。サンプルは常に氷中に保持する必要があります。
超音波によるホモジナイズ/抽出の後、溶解液を27,000gで約20分間遠心分離します。その後、上清を回収し、Pierce BCAタンパク質アッセイなどのタンパク質アッセイでタンパク質濃度を測定できるようにします。
血清からのタンパク質抽出
血清とリン酸緩衝液を均一に混合するため、超音波による細胞溶解の前に、まずサンプルをボルテックス混合します。超音波による溶解では、UP100Hなどの実験室用超音波ホモジナイザーを用い、振幅20%で、各サイクルを5秒間の処理と15秒間の休止として8サイクルの超音波処理を行います。タンパク質抽出は、サイクル式の超音波処理(パルスモード)を行い、サンプルを氷上に置くことで、サンプルの過熱および熱分解を防ぎながら実施します。血清には、IEF中の低分子量タンパク質の分離を妨げる高分子量タンパク質(アルブミン、α1-アンチトリプシン、トランスフェリン、ハプトグロブリン、免疫グロブリンG、免疫グロブリンAなど)が大量に含まれるため、除去カラムを用いてこれらを血清から除去することを推奨します。
植物組織からのタンパク質抽出
コケなどの新鮮で柔らかい植物組織は、細かく切ったサンプル材料を溶解緩衝液に入れて超音波処理するだけで、容易に破砕できます。種子やモミの針葉などの硬い木質化した植物組織は、乾燥状態で粉砕する必要があります。一部の硬い木質植物材料は、超音波処理による抽出の前に、液体窒素中で凍結して粉砕する必要があります。植物細胞培養懸濁液の場合、溶解緩衝液中で30–150秒間の超音波処理を行えば、通常は十分です。カボチャの種子など、より硬い材料には、以下に記載するような、より強い超音波処理が必要です。
カボチャの種子からアルブミンを超音波抽出するためのプロトコル
微粉砕したカボチャ種子粉末からアルブミンを超音波で抽出するには、脱脂カボチャ種子粉末10 gと、溶媒として脱イオン水100 mLを250mLのガラスビーカーに加えます。タンパク質抽出は二つの工程からなります。まず、サンプルの超音波処理には ソノトロードS24d7を装備したプローブ型超音波処理装置UP400St(400W、24kHz)を使用します。 超音波ホモジナイズ中は、ガラスビーカーを冷水浴に入れます。超音波処理装置UP400Stの接続式温度センサーと温度制御設定により、サンプル温度が常に30°C未満に保たれます。超音波処理中の精密な温度制御によって、アルブミンの変性を防ぎます。第二の工程では、ミキサーを用いて200 rpm、30°Cで抽出を行いました。その後、ビーカーを恒温振とう機に移します。蒸留水を用いた透析によってグロブリンを除去します。グロブリンを除去した後、アルブミンのプロファイルを測定するためにタンパク質抽出液を採取できます。その後、アルブミンを凝固させるため、0.1 M HClを用いてpI=3.0に調整します。5000g、20°Cで遠心分離して固相を分離し、脱イオン水に再溶解します。アルブミン濃縮物中のタンパク質比率を高めるため、アルブミンの凝固を二回行います。
米ぬかからタンパク質濃縮物を調製するための超音波アルカリタンパク質抽出では、従来の抽出法と比較して、超音波処理により大幅に短い抽出時間で、より高いタンパク質収量が得られることが示されています。
機能を保持したiNOS酵素のサンプル前処理プロトコル
完全な機能を保持したiNOS酵素を得るため(例えば、薬剤スクリーニング用)、以下のプロトコルを推奨します。細胞懸濁液を氷上に置き、UP100Hを用いて振幅10µmで、5秒間の超音波処理と氷上での25秒間の休止からなるサイクルモードで超音波処理します。この手順を約3回繰り返す必要があります。超音波処理サイクル間の休止時間によって温度上昇が抑えられるため、変性のリスクが低下します。
超音波によるタンパク質の可溶化
超音波処理は、通常数時間を要するタンパク質の可溶化プロセスを促進する可能性があります。サンプルの過熱を防ぎ、尿素を含む溶液中でのタンパク質の分解や修飾を防ぐため、超音波の各照射時間は数秒を超えないようにする必要があります。
超音波処理装置UP200Ht は、2mmのマイクロチップS26d2を装備し、少量サンプルの超音波処理に使用します。
タンパク質抽出用の超音波装置
Hielscher Ultrasonicsは、細胞、組織、細菌、微生物、酵母、胞子の破砕に使用する幅広い超音波ホモジナイザーを提供しています。
Hielscherの実験室用超音波処理装置は、強力で操作が簡単です。24/7の運転に対応するよう製造されており、堅牢で効率的な実験室用および卓上型の装置として設計されています。すべての装置で、エネルギー出力と振幅を精密に制御できます。幅広いアクセサリーにより、さらに多様な構成が可能になります。VialTweeter、UP200Ht、UP200St、UP400Stなどのデジタル超音波処理装置には、温度制御機能と自動データ記録用のSDカードが内蔵されています。
複数のサンプルを間接的に、交差汚染なく同時に超音波処理するために、VialTweeterまたは超音波CupHornを提供しています。
以下の表は、サンプル前処理、細胞破砕、抽出に使用する当社の超音波処理装置の概要を示しています。各超音波ホモジナイザーの詳細については、装置名をクリックしてください。十分な訓練を受け、長年の経験を持つ当社の技術スタッフが、お客様のサンプル前処理に最も適した超音波処理装置の選定を喜んでお手伝いします。
| バッチ容量 | 流量 | 推奨装置 |
|---|---|---|
| 最大10本のバイアルまたはチューブ | 該当なし | VialTweeter |
| マルチウェル/マイクロタイタープレート | 該当なし | UIP400MTP |
| 複数のチューブ/容器 | 該当なし | CupHorn |
| 1–500mL | 10–200mL/min | UP100H |
| 10–1000mL | 20–200mL/min | UP200Ht, UP200St |
| 10–2000mL | 20–400mL/min | UP400St |
お客様の用途、材料、サンプル量に応じて、サンプル前処理に最も適した構成を提案します。ぜひお問い合わせください。
お問い合わせ/ご質問
VialTweeter は、間接的な超音波処理に使用します。
知っておきたい基礎知識
プロテオミクス
プロテオミクスは、タンパク質およびプロテオームを調べる研究分野です。タンパク質は、生物内で多種多様な生命維持機能を担っています。プロテオームとは、特定の時点でゲノム、細胞、組織、または生物が発現するタンパク質の全体です。プロテオームは、時間や、細胞または生物が直面するさまざまな要求やストレスによって変化します。より具体的には、定められた条件下の特定の時点で、ある種類の細胞または生物に発現しているタンパク質の集合を指します。この用語は、タンパク質を意味するproteinとゲノムを意味するgenomeを組み合わせたものです。プロテオミクスは、プロテオームを研究する学問です。
タンパク質
タンパク質は、一本または複数の長いアミノ酸残基鎖から構成される大きな生体分子で、いわゆる高分子です。タンパク質は、植物由来および動物由来のあらゆる生物に存在し、生物学的機能の大部分に不可欠です。タンパク質には多くの生物学的情報が含まれるため、プロテオミクス研究などの分析目的で抽出されます。タンパク質が果たす最も重要な機能には、代謝反応の触媒作用、DNA複製、刺激への応答、ある場所から別の場所への分子の輸送があります。タンパク質は、主にアミノ酸配列によって互いに異なります。この配列は遺伝子のヌクレオチド配列によって規定され、通常、タンパク質がその活性を決定する特定の三次元構造に折り畳まれることにつながります。タンパク質は、ペプチドとともに、食品の主要な成分の一つです。そのため、プロテオミクスは食品科学において、プロセス、食品安全性、栄養評価を最適化するための強力なツールです。
Cloud Point Extraction
Cloud Point Extraction は、分析対象物を分離して予備濃縮する分析前の手順です。超音波処理と組み合わせることで、曇点抽出を強化し、プロセスをより効率的、迅速で、より環境に優しいものにできます。超音波処理によって、曇点抽出は分析対象物の前処理法として大幅に効率が向上します。 超音波支援曇点抽出について詳しくお読みください。
ゲル電気泳動
ゲル電気泳動は、DNA、RNA、タンパク質などの高分子およびその断片を、大きさと電荷に基づいて分離・分析する主要な方法です。臨床化学では、電荷および/または大きさに基づくタンパク質の分離(IEFアガロースでは、基本的に大きさに依存しません)に用いられます。また、生化学、分子生物学、プロテオミクスでは、DNAおよびRNA断片の混合集団を長さに基づいて分離したり、DNAおよびRNA断片の大きさを推定したり、タンパク質を電荷に基づいて分離したりするために用いられます。
細胞培養
細胞培養は、制御された条件下で細胞を培養する、制御された増殖プロセスです。細胞培養の条件は、細胞の種類ごとに異なります。一般に、細胞培養の環境は、適切な容器(ペトリ皿など)と、必須栄養素(アミノ酸、炭水化物、ビタミン、ミネラル)、増殖因子、ホルモン、気体(CO2、O2)を供給し、物理化学的環境(pH緩衝、浸透圧、温度)を調節する基質または培地から構成されます。ほとんどの細胞は表面または人工基質を必要としますが、その他の細胞培養では、培地中に自由に浮遊させた状態で培養できます(懸濁培養、細胞懸濁液)。
動物細胞株の大量培養は、ウイルスワクチンやその他のバイオテクノロジー由来製品の工業生産に利用されています。ヒト幹細胞は、移植を目的として細胞数を増やし、さまざまな種類の体細胞へ分化させるために培養されます。
組織サンプル
組織という用語は、細胞材料が細胞と完全な器官の間の組織化レベルにある、細胞性の中間構造を指します。組織では、同じ起源を持ち、共同で特定の機能を果たす類似した細胞が集まっています。複数の組織が機能的に組み合わさることで、器官の複雑な構造が形成されます。
組織は、生物学、組織学/組織病理学、寄生虫学、生化学、免疫組織化学の研究、および組織の培養とDNAの抽出のために採取されます。動物組織(下位区分:哺乳類組織)と植物組織に区別できます。動物組織は、結合組織、筋組織、神経組織、上皮組織という四つの基本的な種類に分類されます。植物組織は、表皮系、基本組織系、維管束系という三つの組織系に細分されます。
組織サンプルは、骨、筋肉、葉など、動物または植物の各部位から調製できます。
体液
血液、血清、血漿、脳脊髄液、唾液、滑液は体液であり、診断に関連する豊富な情報源となります。そのため、分析用の体液サンプルを適切かつ高度に前処理することが重要です。最初の難しさは、体液中に存在する成分のダイナミックレンジが広いことにあります。
タンパク質濃度の測定
Bradfordアッセイ、Lowryアッセイ、ビシンコニン酸(BCA)アッセイは、タンパク質濃度を測定する一般的なアッセイです。ウシ血清アルブミン(BSA)は、最も頻繁に使用されるタンパク質標準物質の一つです。
溶解緩衝液
溶解緩衝液は、細胞材料または組織(組織培養、植物、細菌、真菌など)、細胞が構造内に存在するかどうか、およびその構造の種類に応じて選択する必要があります。タンパク質、膜、細胞小器官の抽出に用いられるさまざまな溶解緩衝液には、一種類以上の界面活性剤が配合されています。界面活性剤は、通常、試行錯誤による試験で選択するか、既存のタンパク質抽出プロトコルがあれば、それに従って選択します。界面活性剤は、組織源およびタンパク質と適合する必要があります。一般に、抽出物の機能を最大限に維持するため、対象の組織/タンパク質に有効な界面活性剤のうち、最も穏やかなものを選択します。また、膜や細胞小器官を抽出する場合、穏やかな界面活性剤は膜を損なわずに保ちます。溶解緩衝液で一般的に使用される界面活性剤は、主に非イオン性または双性イオン性で、CHAPS、デオキシコール酸塩、Triton™ X-100、NP40、Tween 20などがあります。
例えば、脳、肝臓、腸、腎臓、脾臓などの組織は、RIPAで簡単に緩衝処理できます – ただし、プロテアーゼ阻害剤とDTT(例えば、ゲル電気泳動用)を含める必要があります。
骨格筋組織用の溶解緩衝液(氷冷):20 mM Tris(pH 7.8)、137 mM NaCl、2.7 mM KCl、1 mM MgCl2、1 % Triton X-100、10 % (w/v) グリセロール、1 mM EDTA、1 mM ジチオトレイトールに、プロテアーゼおよびホスファターゼ阻害剤カクテルを添加します。
一般的な緩衝液とそのpH範囲を表に示します。一般に、これらの緩衝液は通常20–50 mMの濃度で使用されます。
| 緩衝液 | pH範囲 |
|---|---|
| クエン酸 – NaOH | 2.2 – 6.5 |
| クエン酸ナトリウム – クエン酸 | 3.0 – 6.2 |
| 酢酸ナトリウム – 酢酸 | 3.6 – 5.6 |
| カコジル酸ナトリウム – HCl | 5.0 – 7.4 |
| MES – NaOH | 5.6 – 6.8 |
| リン酸二水素ナトリウム – リン酸水素二ナトリウム | 5.8 – 8.0 |
| イミダゾール – HCl | 6.2 – 7.8 |
| MOPS – KOH | 6.6 – 7.8 |
| トリエタノールアミン塩酸塩 – NaOH | 6.8 – 8.8 |
| Tris – HCl | 7.0 – 9.0 |
| HEPES – NaOH | 7.2 – 8.2 |
| トリシン – NaOH | 7.6 – 8.6 |
| 四ホウ酸ナトリウム – ホウ酸 | 7.6 – 9.2 |
| ビシン – NaOH | 7.7 – 8.9 |
| グリシン – NaOH | 8.6 – 10.6 |
ほとんどの緩衝液では、pHが温度に依存します。これは特にTris緩衝液で顕著です。pKaは25°Cでの8.06から、0°Cでの8.85へと変化します。
(緩衝液のpHとpKa:pHは、水溶液中の水素イオン濃度を測る指標です。pKa(= 酸解離定数)は、これに関連する、より具体的な指標であり、特定のpH値で分子がどのように振る舞うかを予測するのに役立ちます。)
TRIzol
TRIzolは、チオシアン酸グアニジニウム–フェノール–クロロホルム抽出において、RNA/DNA/タンパク質を抽出するために使用される化学溶液です。超音波支援TRIzol抽出を用いることで、同じサンプルからDNA、RNA、タンパク質を高収量で得られ、この点で他の抽出法を上回ります。
文献/参考資料
- Chittapalo T, Noomhorm A (2009): Ultrasonic assisted alkali extraction of protein from defatted rice bran and properties of the protein concentrates. Int J Food Sci Technol 44: 1843–1849.
- Simões, André E.S:; Pereira, Diane M.; Amaral, Joana D.; Nunes, Ana F.; Gomes, Sofia E.; Rodrigues, Pedro M.; Lo, Adrian C.; D’Hooge, Rudi; Steer, Clifford J.; Thibodeau, Stephen N.; Borralho, Pedro M.; Rodrigues, Cecília M.P. (2013): Efficient recovery of proteins from multiple source samples after trizol or trizol LS RNA extraction and long-term storage. BMC Genomics 2013, 14:181.
