細菌試料の超音波による細胞分散
細菌の検体が、真の単一細胞懸濁液として届くことはめったにありません。培養菌は鎖状やフロック状に増殖し、環境由来の分離株は細胞外高分子物質によって結合した凝集体を形成し、遠心分離後の沈殿物は、徹底的にボルテックス処理を行っても再懸濁しにくいことがよくあります。生菌数、光学密度、フローサイトメトリー、マイクロバイオームプロファイリングはいずれも、1つの粒子が1つの細胞に相当することを前提としています。 超音波による細胞分散法は、この矛盾を解決します。短時間の制御された超音波処理により、凝集塊を細胞を破壊することなく単一細胞へと分離します。
細胞凝集が結果に悪影響を与える理由
凝集は生物学的特性であり、検体調製上の誤りではない。ブドウ球菌、連鎖球菌、乳酸菌、放線菌、および多くの環境微生物は、鎖状、塊状、あるいはバイオフィルムの断片として増殖し、細胞外DNAや多糖類が細胞同士を接着させ、ペレットやスワブ抽出液中に凝集塊を形成する。これによる分析上の影響は系統的である:
- コロニー数は過小評価されています。なぜなら、1つの塊には、そこに含まれる細胞の数にかかわらず、1つのコロニーとしてカウントされるからです。
- 光学密度や粒子カウンターは、細胞ではなく凝集体を測定するため、増殖曲線に偏りが生じます。
- フローサイトメトリーおよび細胞選別では、凝集したイベントが誤ってカウントされ、解析から除外されてしまう。
- DNAおよびタンパク質の抽出は、凝集体表面にある細胞のみを対象としているため、マイクロバイオームデータやオミクスデータに偏りが生じます。
従来の処理法は、時間がかかり、不完全であるか、あるいは化学的変化を伴うものです。激しくピペッティングやボルテックス処理を行っても、微細な凝集体が残ってしまいます。酵素やキレート剤を用いた分散処理では、分析対象とする細胞表面が変化してしまう可能性があります。一方、制御されたキャビテーションによる機械的分散は、数秒で作用し、添加物を一切必要としません。
1つの集合体が1つのコロニーに相当する – そして、1つの誤った結果。超音波分散法が、細胞の破砕やエアロゾルの発生、プローブの取り扱いを一切伴わずに、真の単一細胞懸濁液をどのように生成するかをご覧ください。詳細情報をご請求ください!
マルチチューブ・ソニケーター・バイアル・トゥイーター 非接触による試料調製:密閉チューブ内の細胞塊を分散させる
超音波処理が、細胞を破壊することなくどのように分散させるか
超音波による細胞解離は、機械的強度の違いを利用しています。細菌の凝集体は、比較的弱い細胞間結合と細胞外マトリックスによって保持されていますが、無傷の細胞膜はそれよりもはるかに高いせん断力に耐えることができます。 調整された超音波が懸濁液に入ると、音響キャビテーションによって微小流、圧力パルス、およびせん断力が発生し、これらはまず凝集体の界面で作用する。膜が破裂(溶解)するエネルギーレベルに達する前に、塊、鎖状構造、およびバイオフィルムの断片はせん断されて分離される(脱凝集)。
分解または溶解 – 超音波処理のパラメータがなぜ重要なのか
実際の問題として、分散と溶解は、異なるパラメータで動作させる同一の装置による処理であると言えます。適度な振幅、短いパルスサイクル、および温度制御下では、生存可能な単一細胞懸濁液が得られます。 振幅、照射時間、または試料温度を上げると、細胞内標的を対象とした完全な細胞破砕へとプロセスが移行します。Hielscher製ジェネレーターでは、振幅、出力、パルス、エネルギー入力を精密に設定し、その設定を保存することができるため、分散工程は試料、操作者、実行回数を問わず再現性が確保されます。
効率的な非接触超音波処理
浴槽式超音波洗浄では、このような制御は不可能です。超音波洗浄槽やタンクから得られる超音波エネルギーは低いため、前処理が不完全になる上、キャビテーションの発生も不均一であり、各チューブは槽内での位置に応じて異なる処理を受けることになります。 VialTweeterは、強力で集束された超音波エネルギーを容器の壁を直接透過させ、最大10個の密閉サンプルを同時に処理します。浴槽内での長時間の変動する照射を必要とする処理も、標準化されたパルスパターンで完了します。
Hielscher社の非接触型超音波処理装置は、密閉されたバイアルの壁を通して、強力で集束された超音波を照射します。VialTweeterは、サンプル内にプローブを挿入することなく、交差汚染やエアロゾルの放出も発生させずに、最大10本のバイアルを同時に同一の強度で処理します。 処理能力が求められる場合、UIP400MTPおよびUIP550MTPマイクロプレート用超音波処理装置は、マルチウェルプレートに対しても同様に制御されたエネルギー伝達を実現します。
ヴァイアル・ツイーター 最大10本の小バイアルと最大5本の大試験管を同時に超音波処理。
非接触型超音波分散法の利点
- 相互汚染ゼロ: バイアルは常に密閉された状態が保たれ、プローブが試料に浸漬されることがないため、交差汚染や試料の損失を完全に防ぐことができます。試料の切り替え時に滅菌が必要な部品はなく、ある測定結果が次の測定に影響を与えることもありません。
- エアロゾルからの保護: 開放型プローブによる超音波処理では、感染性エアロゾルが発生し、機器の表面が汚染されます。密閉バイアルを用いた超音波処理では、試料が専用のチューブ内に封じ込められるため、結核菌(Mycobacterium tuberculosis)やその他のBSL-2・BSL-3指定病原体を扱う際に重要です。
- チップの摩耗がない: チタン製プローブは、稼働中に少量の微粒子を試料中に放出することがあります。これらの粒子は、下流の吸光度や粒子数を変化させます。容器の壁を介した間接的な超音波処理を行うことで、この固形物の発生源を完全に排除することができます。
- 均一なスループット: VialTweeterは、最大10本のバイアルのそれぞれに均一な超音波強度を照射するため、超音波処理の結果は均一で再現性が高くなります。超音波浴や単一サンプルへのプローブ照射に見られる位置による影響がなくなり、反復実験間でもベースラインの比較が可能になります。
- 試料の完全性:処理の全工程を通じてチューブは密閉された状態を保つため、試料が汚染されたり、劣化したり、揮発したりすることはありません。希釈なしで微量の試料も処理可能であり、余分な移し替え工程を避ける必要がある貴重な臨床用ペレットなども対象となります。
- プロセス制御: 振幅は20~100%の範囲で調整可能であり、パルスモードは0~100%の範囲で設定可能です。また、本システムは温度モニタリング機能を備えており、温度に敏感な菌株やタンパク質が損傷を受ける閾値を下回るよう管理されます。
代表的なアプリケーション
- マイクロバイオームおよび腸内容物の分析:プレート培養やシーケンシングを行う前に、ラクトバチルス属、ビフィドバクテリウム属、および糞便サンプルを分散させ、凝集によって菌数が過小評価されないようにする。
- 食品および水の微生物学:正確な菌落数および生存率の測定のために、スワブ、洗浄液、および増菌培地中のフロックを分散させる。
- バイオフィルム研究:表面タンパク質を剥離させるような酵素処理を行わずに、担体や表面から細胞を単一細胞懸濁液として回収すること。
- 臨床診断:封じ込め条件下での喀痰、膿、およびスワブ抽出液の再懸濁。
- 細胞培養:計数および継代を行う前に、凝集した哺乳類、昆虫、およびCHO細胞の凝集体を分離する。
- ワークフロー全体の準備:低振幅で細胞を分散させるのと同じ装置が、高設定では細胞を完全に破砕するため、チューブへの移し替えをせずに、細胞溶解、タンパク質抽出、DNA断片化を連続して行うことができます。
マルチウェルプレートソニケーター UIP400MTP 細胞凝集塊の高スループットな分散処理のために
お客様の分散処理ワークフローに最適なソニケーターを見つけましょう
バイアルトゥイーター・マルチチューブ・ソニケーター
無菌の密閉バイアルの分散に最適な方法。自動チューニング機能を備えた26 kHz、200ワットのUP200Stプロセッサによって駆動され、 VialTweeterは、最大10本の密閉バイアルの壁を介して同時に間接的に超音波を伝達し、1本あたり最大10 Wの超音波を照射することで、交差汚染や試料の損失を伴わず、均一で再現性の高い結果を実現します。 チタン製のVialTweeterソノトロードはオートクレーブ対応であり、振幅とパルスは調整・保存が可能で、これは解凝集プロトコルに必要な制御範囲を満たしています。 標準の10ポジションソノトロードは、オートサンプラー用バイアル、マイクロ遠心管、および1~5 mLのエッペンドルフまたはヌンク製チューブに対応しています。VialPressクランプ装置は、直径20 mmまでの大型容器を最大5本まで固定可能です。
Falconチューブ用、および容器サイズに合わせてカスタマイズされた単一バイアル用の専用シングルチューブ型VialTweeterモデルをご用意しています。ブロックソノトロードを分解すれば、UP200Stコアユニットは従来型のプローブ式超音波処理装置として機能し、小~中型のサンプルを直接処理することができます。
マイクロプレート用超音波処理装置
マルチウェルプレートを用いた超音波処理による高スループットな試料前処理へのスケールアップ:プレートベースのワークフローにおいて、マイクロプレート用超音波処理装置「UIP400MTP」および「UIP550MTP」は、非接触かつ均一な超音波処理の対象を10本のチューブからプレート全体へと拡大します。
400ワットのUIP400MTPは、96ウェル形式を含む標準的なマイクロタイタープレートやマルチウェルプレートを処理でき、正確な振幅・出力・パルス制御に加え、タイマー、温度プローブ、水浴冷却機能を備えています。 バイオフィルムの剥離や細菌培養の処理は、UIP400MTPマイクロプレート超音波処理装置の定評ある用途です。
550ワットのUIP550MTPは、より高出力のモデルです – より厳しい条件での使用に最適です。
どちらの非接触超音波処理システムも、6ウェル、12ウェル、24ウェル、48ウェル、96ウェル、384ウェルプレートに加え、チューブラックやペトリ皿も確実に処理できます。 Hielscherのマイクロプレート用超音波処理装置は、あらゆる標準的なプレートに対応しており、高価な専用消耗品の使用を回避できます。温度上限をプログラムできるため、サンプルの温度が上限に達すると超音波処理が自動的に一時停止し、冷却後に再開されるため、繰り返し処理を行っても細胞の生存率を保護します。再現性の高い結果を得るための、スマートで信頼性の高いハイスループットなサンプル前処理を実現します。
以下の表は、ライフサイエンス、ゲノミクス、プロテオミクス、および診断分野で使用される当社のラボ用サンプル超音波処理装置のおおよその処理能力の概要を示しています:
| 推奨デバイス | バッチ量 | 流量 |
|---|---|---|
| バイアルトゥイーター・マルチチューブ・ソニケーター | 00.5~1.5mLのバイアル | n.a. |
| UIP400MTP マルチウェルプレート用超音波処理装置(440ワット) | マルチウェル/マイクロタイタープレート | n.a. |
| UIP550MTP マルチウェルプレート用超音波処理装置(550ワット) | マルチウェル/マイクロタイタープレート | n.a. |
| 超音波カップホーン | バイアルまたはビーカー用カップホーン | n.a. |
| UP100H 100ワット プローブ型超音波処理装置 | 1〜500mL | 10~200mL/分 |
| UP200Ht, UP200St 200ワットのプローブ型超音波処理装置モデル | 10〜1000mL | 20~200mL/分 |
| UP400St 400ワット プローブ型超音波処理装置 | 10〜2000mL | 20~400mL/分 |
| GDmini2 | 無菌超音波マイクロフローリアクター | n.a. |
| 超音波ふるい振とう機 | n.a. | n.a. |
超音波による細胞分散に関するよくある質問
細胞の分散と細胞溶解の違いは何ですか?
分散(脱凝集とも呼ばれる)とは、細胞をその完全性と生存能力を保ったまま、凝集した状態から単一細胞懸濁液へと分離する処理である。 溶解は細胞膜を破壊し、細胞内の内容物を放出します。どちらもキャビテーションによるせん断力が原動力となっていますが、その違いは投入されるエネルギー量にあります。振幅、パルス、温度の設定を最適化することで、超音波処理は溶解の閾値を下回る範囲で分散を実現します。
なぜ超音波洗浄槽は、標準化された分散処理には適していないのでしょうか?
バス式装置は低レベルの超音波エネルギーしか供給しないため、処理が不完全になる上、タンク内でのキャビテーションの発生が極めて不均一となり、試料の位置によって処理条件が異なってしまいます。微生物数の測定や比較研究においては、比較可能性が不可欠です。 「Multi-Tube Sonicator VialTweeter」のような非接触型超音波処理装置や、マイクロプレート用超音波処理装置「UIP400MTP」および「UIP550MTP」は、調整された超音波条件下ですべての容器を処理するため、反復実験における再現性が向上します。
超音波処理によって細胞に損傷が生じることはありますか?
はい、パラメータが適切に制御されていない場合はその通りです。過度な超音波処理や制御されていない加熱は細胞を損傷させる可能性があり、放出されたDNAによって試料の粘度が高まり、再凝集が促進されます。そのため、このプロセスは慎重に設計する必要があります。適度な振幅、パルスサイクル、冷却、および温度制限機能付きの装置を用いることで、処理を曲線の「解凝集」側に維持することができます。
Hielscher社のすべてのデジタルソニケーターは、パラメータの精密な制御、着脱可能な温度センサー、プログラム可能な設定、および自動データロギング機能を備えており、信頼性の高い試料調製を実現します。
試料を別の容器に移す必要がありますか?
いいえ。バイアルやプレートは、元の密閉容器のまま処理されます。間接超音波処理を行うことで、移し替えによる損失と、プローブの取り扱いに伴うキャリーオーバーの両方を回避できます。
VialTweeterでは、どのようなバイアル形状を処理できますか?
標準の10ポジションソノトロードは、オートサンプラー用バイアル、マイクロ遠心管、および1~5 mLのエッペンドルフまたはヌンク製チューブに対応しています。VialPressアクセサリーは、直径20 mmまでの大型容器を最大5個まで収容可能です。 Falconチューブ用、および特注の単一バイアル用やより大きなフォーマット用の専用シングルチューブ型「VialTweeter」モデルもご用意しています。
1台の装置で分離と溶解を行うことはできますか?
はい。中程度の振幅で脱凝集を行うのと同じ装置で、振幅を高め、露光時間を長くすれば、細胞を完全に破砕することができます。そのため、単一細胞懸濁液の調製と、その後の抽出工程を、装置を切り替えることなく連続して行うことができます。
MBECアッセイでは超音波処理が行われていますか?
超音波処理は、確立された手法であり、多くの場合標準的な手順の一部となっています。 ペグ・リッド法によるMBECアッセイでは、ポリスチレン製ペグ上でバイオフィルムを培養し、抗生物質に曝露した後、ペグを新しい培地に移し、ボルテックス撹拌と超音波処理を施して、付着したバイオフィルム細胞を剥離・解凝集させ、浮遊懸濁液とした上で、連続希釈および生存菌数測定を行います (MBEC は、未処理のバイオフィルムと比較して、回収された菌数を 3 log10 以上減少させる最低濃度として読み取られます)。超音波処理は分散の質を大幅に改善します。EPS マトリックスから埋め込まれた細胞が不完全に遊離すると、除菌率が過小評価され、MBEC 値が過大評価されます。 マイクロプレート用超音波処理装置UIP400MTPを用いて、アッセイプレート上のPEGホルダーウェルに的を絞った超音波処理を行うことで、バス式超音波処理の従来の弱点を克服できます。 – 具体的には、エネルギーの不均一な分布、発熱、およびエアロゾルや交差汚染のリスクである。
非接触型マイクロプレート超音波処理装置「UIP400MTP」が、MBECアッセイをいかに効率化するのかをご覧ください!
MIC測定では超音波処理が用いられますか?
超音波処理は、効率と再現性を向上させるため、MICに関連するさまざまなワークフローに適用されています:
- マイコバクテリア学では、喀痰やその他の粘性のある検体は、感受性試験の前に、場合によっては超音波処理を用いて、日常的に除染および均質化が行われる。また、凝集を形成するマイコバクテリアの接種液については、正確な最小発育濃度(MIC)を測定するために、短時間の分散処理を行うことが有効である。
- 凝集しやすい微生物(例:ペレット状の連鎖球菌、ブドウ球菌など)で、微小凝集体によって接種液の密度が歪められる場合;および
- 人工関節感染症における、インプラントの超音波洗浄、液体培養、およびそれに続く薬剤感受性試験といった複合的な診断法(MBECに類似した手法であり、従来のMIC法とは異なる)。
文献・参考文献
- FactSheet VialTweeter – Sonicator for Simultaneous Sample Preparation
- FactSheet UIP400MTP Plate-Sonicator for High-Throughput Sample Preparation – English version – Hielscher Ultrasonics
- FactSheet UIP550MTP Plate-Sonicator for High-Throughput Sample Preparation – English version – Hielscher Ultrasonics
- Bahnan W, Happonen L, Khakzad H, Kumra Ahnlide V, de Neergaard T, Wrighton S, André O, Bratanis E, Tang D, Hellmark T, Björck L, Shannon O, Malmström L, Malmström J, Nordenfelt P. (2023): A human monoclonal antibody bivalently binding two different epitopes in streptococcal M protein mediates immune function. EMBO Mol Med. 2023 Feb 8;15(2):e16208.
- Wrighton S., Ahnlide V.K., André O., Bahnan W., Nordenfelt P. (2023): Group A streptococci induce stronger M protein-fibronectin interaction when specific human antibodies are bound. Frontiers in Microbiology 14:1069789.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
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