Estrazione di proteine da tessuti e colture cellulari mediante ultrasuoni
- L’estrazione delle proteine è una fase essenziale della preparazione dei campioni in proteomica.
- Le proteine possono essere estratte da tessuti vegetali e animali, lieviti e microrganismi.
- La sonicazione è un metodo affidabile ed efficiente per l’estrazione delle proteine, che consente di ottenere rese proteiche elevate in tempi di estrazione brevi.
Estrazione di proteine da tessuti e cellule
L’estrazione delle proteine da tessuti e cellule in coltura è una fase essenziale della preparazione dei campioni, eseguita nell’ambito di numerose tecniche biochimiche e analitiche, quali ELISA, PAGE, Western blotting, spettrometria di massa o purificazione delle proteine. La disgregazione cellulare, la lisi e l’estrazione mediante ultrasuoni costituiscono una tecnica non termica, controllabile con precisione, che garantisce rese proteiche elevate.
Estrazione di proteine dalle cellule con la sonda a ultrasuoni UP200St
- Rapidità
- Rese elevate
- Elevata efficienza
- Controllo preciso dei parametri
- Risultati riproducibili
- Scalabilità lineare
Istruzioni generali per la lisi e l’estrazione delle proteine mediante ultrasuoni
- Controllo della temperatura: Per garantire una resa proteica elevata senza denaturazione termica, è necessario controllare la temperatura durante l’estrazione. Gli omogeneizzatori a ultrasuoni all’avanguardia di Hielscher – chiamati anche disintegratori a ultrasuoni o sonicatori – sono controllabili con precisione. Sono dotati di un sensore di temperatura collegabile. Nelle opzioni di configurazione dell’omogeneizzatore a ultrasuoni è possibile impostare una temperatura massima. Quando questa temperatura massima viene raggiunta, il sonicatore si arresta automaticamente finché il campione non si è raffreddato.
- Tampone: La scelta di un tampone idoneo e del volume appropriato varia da tessuto a tessuto e deve essere determinata mediante prove per tentativi.
- Isolamento / purificazione: I lisati proteici possono contenere un eccesso di biomolecole, come DNA o carboidrati, che possono essere rimosse mediante precipitazione delle proteine (desossicolato–acido tricloroacetico) o sostituzione del tampone.
Chittapalo e Noomhorm (2009) hanno riportato nel loro studio che la resa proteica aumentava utilizzando la sonicazione e che il processo di omogeneizzazione e lisi dei tessuti mediante ultrasuoni può migliorare significativamente i processi di estrazione esistenti – aprendo nuove possibilità di estrazione su scala commerciale.
CupHorn a ultrasuoni per la preparazione simultanea e altamente efficace di più campioni nelle stesse condizioni, per l’isolamento delle proteine e la frammentazione del DNA.
Estrazione di proteine da tessuti animali
Per la preparazione di tessuti interi (ad es. rene, cuore, polmone, muscolo ecc.), il tessuto deve essere sezionato in pezzi molto piccoli con strumenti puliti, preferibilmente su ghiaccio, e il più rapidamente possibile per prevenire la degradazione da parte delle proteasi (ad es. tampone di lisi come RIPA o tampone di lisi ipotonico contenente un cocktail di inibitori delle proteasi e delle fosfatasi). Dopo il sezionamento, il campione viene immerso in azoto liquido per il congelamento rapido. Il campione può essere conservato a -80°C per un utilizzo successivo oppure mantenuto su ghiaccio per l’omogeneizzazione immediata. Immediatamente prima dell’estrazione mediante ultrasuoni, si aggiunge rapidamente nella provetta del campione un tampone di lisi freddo come il ghiaccio (con gli inibitori delle proteasi DTT, leupeptina e aprotinina); per ~10 mg di tessuto si raccomandano circa ~600 μL di tampone. Si raccomandano circa 20–60mg di tessuto per provetta.
L’omogeneizzazione, la lisi e l’estrazione mediante ultrasuoni vengono eseguite con un omogeneizzatore a ultrasuoni come UP100H o UP200Ht, dotato di un sonotrodo con micropunta. La durata della sonicazione è di 60–90 sec., in modalità ciclica con 15 sec. di sonicazione e 10 sec. di pausa. Il campione deve essere mantenuto nel ghiaccio per tutto il tempo.
Dopo l’omogeneizzazione / estrazione mediante ultrasuoni, il lisato viene centrifugato a 27.000g per circa 20 min. Successivamente si raccoglie il surnatante, in modo da poter determinare la concentrazione proteica mediante un saggio proteico, come il saggio BCA Pierce.
Estrazione di proteine dal siero ematico
Per ottenere una miscela omogenea di siero e tampone fosfato, il campione viene prima miscelato con un agitatore vortex, prima della lisi cellulare mediante ultrasuoni. Per la lisi mediante ultrasuoni, il campione viene sottoposto a sonicazione con un omogeneizzatore a ultrasuoni da laboratorio, come UP100H, per 8 cicli al 20% di ampiezza, ciascuno con 5 secondi di attività e 15 secondi di pausa. L’estrazione delle proteine viene eseguita mediante sonicazione a cicli (modalità pulsata), collocando il campione su ghiaccio per evitarne il surriscaldamento e la degradazione termica. Poiché il siero contiene una grande quantità di proteine ad alto peso molecolare (come albumina, α1-antitripsina, transferrina, aptoglobulina, immunoglobulina G e immunoglobulina A), che interferiscono con la separazione delle proteine a basso peso molecolare durante l’IEF, si raccomanda di rimuoverle dal siero utilizzando una colonna di deplezione.
Estrazione di proteine da tessuti vegetali
I tessuti vegetali freschi e morbidi, ad es. il muschio ecc., possono essere facilmente disgregati semplicemente collocando il materiale del campione sminuzzato nel tampone di lisi per la sonicazione. I tessuti vegetali resistenti e lignificati, come semi, aghi di abete ecc., devono essere macinati a secco. Alcuni materiali vegetali duri e legnosi devono essere congelati e macinati in azoto liquido prima dell’estrazione mediante sonicazione. Per le sospensioni di colture cellulari vegetali, un trattamento a ultrasuoni di durata compresa tra 30 e 150 secondi in un tampone di lisi è generalmente sufficiente. I materiali più resistenti, come i semi di zucca, richiedono una sonicazione più intensa, come descritto di seguito.
Protocollo per l’estrazione dell’albumina dai semi di zucca mediante ultrasuoni
Per l’estrazione dell’albumina mediante ultrasuoni dalla polvere di semi di zucca finemente macinati, si aggiungono 10 g di polvere di semi di zucca sgrassata e 100 mL di acqua deionizzata come solvente in un becher di vetro da 250mL. L’estrazione delle proteine consiste in due fasi: inizialmente, il campione viene sottoposto a sonicazione con un sonicatore a sonda UP400St (400W, 24kHz) dotato di sonotrodo S24d7. Il becher di vetro viene collocato in un bagno di acqua fredda durante l’omogeneizzazione mediante ultrasuoni. Il sensore di temperatura collegabile e le impostazioni di controllo della temperatura del sonicatore UP400St garantiscono che la temperatura del campione sia sempre mantenuta al di sotto di 30°C. Il controllo preciso della temperatura durante la sonicazione evita la denaturazione dell’albumina. Nella seconda fase, l’estrazione è stata eseguita con un miscelatore a una velocità di 200 rpm e a 30°C. Successivamente, il becher viene trasferito in un agitatore termostatato. La globulina viene rimossa mediante dialisi con acqua distillata. Dopo la rimozione della globulina, è possibile prelevare un campione dell’estratto proteico per determinare il profilo dell’albumina; successivamente, l’estratto viene portato a pI=3,0 utilizzando HCl 0,1 M per la coagulazione dell’albumina. La fase solida viene separata mediante centrifugazione a 5000g, 20°C e ridisciolta in acqua deionizzata. La coagulazione dell’albumina viene eseguita due volte per aumentare la proporzione di proteine nel concentrato di albumina.
L’estrazione alcalina delle proteine mediante ultrasuoni per la preparazione di concentrato proteico dalla crusca di riso mostra che il trattamento a ultrasuoni consente di ottenere una resa proteica più elevata in un tempo di estrazione significativamente più breve – rispetto ai metodi di estrazione convenzionali.
Protocollo di preparazione del campione per l’enzima iNOS funzionale
Per ottenere l’enzima iNOS pienamente funzionale (ad es. per lo screening di farmaci), si raccomanda il seguente protocollo: la sospensione cellulare deve essere collocata su ghiaccio e sottoposta a sonicazione con un UP100H a un’ampiezza di 10µm, in modalità ciclica con 5 sec. di sonicazione e 25 sec. di pausa su ghiaccio. La procedura deve essere ripetuta circa 3 volte. Il tempo di pausa tra i cicli di sonicazione limita l’aumento della temperatura e riduce quindi il rischio di denaturazione.
Solubilizzazione delle proteine mediante ultrasuoni
La sonicazione può accelerare il processo di solubilizzazione delle proteine, che solitamente richiede diverse ore. Per evitare il surriscaldamento del campione e prevenire la degradazione e le modificazioni delle proteine nelle soluzioni contenenti urea, gli impulsi ultrasonici non devono durare più di pochi secondi.
Sonicatore UP200Ht con micropunta S26d2 da 2mm per la sonicazione di piccoli campioni.
Apparecchiature a ultrasuoni per l’estrazione delle proteine
Hielscher Ultrasonics offre un’ampia gamma di omogeneizzatori a ultrasuoni per la disgregazione di cellule, tessuti, batteri, microrganismi, lieviti e spore.
I sonicatori da laboratorio Hielscher sono potenti e facili da utilizzare. Costruiti per il funzionamento 24/7, sono progettati come dispositivi da laboratorio e da banco robusti ed efficienti. Per tutti i dispositivi, l’energia erogata e l’ampiezza possono essere controllate con precisione. L’ampia gamma di accessori offre ulteriori opzioni di configurazione. I sonicatori digitali, come VialTweeter, UP200Ht, UP200St e UP400St, dispongono di un controllo della temperatura integrato e di una scheda SD incorporata per la registrazione automatica dei dati.
Per la sonicazione indiretta, simultanea e senza contaminazione incrociata di più campioni, offriamo VialTweeter o CupHorn a ultrasuoni.
La tabella seguente offre una panoramica dei nostri sonicatori per la preparazione dei campioni, la disgregazione cellulare e l’estrazione. Fate clic sul modello del dispositivo per ottenere maggiori informazioni su ciascun omogeneizzatore a ultrasuoni. Il nostro personale tecnico, altamente qualificato e con una lunga esperienza, sarà lieto di aiutarvi a scegliere il sonicatore più adatto alla preparazione dei vostri campioni!
| Volume del lotto | Portata | Dispositivi consigliati |
|---|---|---|
| fino a 10 fiale o provette | n.a. | VialTweeter |
| piastre multipozzetto / per microtitolazione | n.a. | UIP400MTP |
| più provette / recipienti | n.a. | CupHorn |
| da 1 a 500mL | da 10 a 200mL/min | UP100H |
| da 10 a 1000mL | da 20 a 200mL/min | UP200Ht, UP200St |
| da 10 a 2000mL | da 20 a 400mL/min | UP400St |
In base alla vostra applicazione, al materiale e al volume del campione, vi consiglieremo la configurazione più adatta alla preparazione dei vostri campioni. Contattateci oggi stesso!
Contattateci! / Chiedeteci informazioni!
I sonicatori digitali Hielscher sono dotati di controllo remoto tramite browser e registrazione automatica dei dati su una scheda SD integrata.
VialTweeter per la sonicazione indiretta.
Informazioni utili
Proteomica
La proteomica è il campo di ricerca che studia le proteine e il proteoma. Le proteine svolgono un’ampia varietà di funzioni vitali all’interno degli organismi. Il proteoma è l’insieme completo delle proteine espresse da un genoma, una cellula, un tessuto o un organismo in un determinato momento. Il proteoma varia nel tempo e in funzione delle diverse esigenze o degli stress a cui è sottoposta una cellula o un organismo. Più precisamente, è l’insieme delle proteine espresse in un determinato tipo di cellula o organismo, in un dato momento e in condizioni definite. Il termine deriva dalla fusione delle parole proteine e genoma. La proteomica è lo studio del proteoma.
Proteine
Le proteine sono grandi biomolecole, dette macromolecole – composte da una o più lunghe catene di residui amminoacidici. Le proteine sono presenti in tutti gli organismi di origine sia vegetale sia animale e sono fondamentali per la maggior parte delle funzioni biologiche. Poiché contengono molte informazioni biologiche, vengono estratte per scopi analitici, ad es. per la ricerca proteomica. Le funzioni più importanti svolte dalle proteine includono la catalisi delle reazioni metaboliche, la replicazione del DNA, la risposta agli stimoli e il trasporto di molecole da una posizione a un’altra. Le proteine differiscono tra loro principalmente per la sequenza degli amminoacidi, che è determinata dalla sequenza nucleotidica dei loro geni e che solitamente porta al ripiegamento della proteina in una specifica struttura tridimensionale che ne determina l’attività. Le proteine sono – insieme ai peptidi – uno dei componenti fondamentali degli alimenti. Pertanto, la proteomica è uno strumento potente nelle scienze alimentari per ottimizzare i processi, la sicurezza alimentare e la valutazione nutrizionale.
Cloud Point Extraction
Cloud Point Extraction è una procedura preanalitica per separare e preconcentrare gli analiti. In combinazione con gli ultrasuoni, l’estrazione al punto di intorbidimento può essere intensificata, rendendo il processo più efficiente, più rapido e più rispettoso dell’ambiente. Con gli ultrasuoni, l’estrazione al punto di intorbidimento è un metodo significativamente più efficiente per la preparazione degli analiti. Scoprite di più sull’estrazione al punto di intorbidimento assistita da ultrasuoni!
Elettroforesi su gel
L’elettroforesi su gel è il principale metodo per la separazione e l’analisi di macromolecole come DNA, RNA e proteine, nonché dei loro frammenti, in base alle dimensioni e alla carica. Viene utilizzata in chimica clinica per separare le proteine in base alla carica e/o alle dimensioni (IEF su agarosio, sostanzialmente indipendente dalle dimensioni) e in biochimica, biologia molecolare e proteomica per separare una popolazione mista di frammenti di DNA e RNA in base alla lunghezza, stimare le dimensioni dei frammenti di DNA e RNA o separare le proteine in base alla carica.
Colture cellulari
La coltura cellulare è il processo di crescita controllata mediante il quale le cellule vengono coltivate in condizioni controllate. Le condizioni di coltura variano per ciascun tipo di cellula. In generale, l’ambiente di una coltura cellulare consiste in un recipiente idoneo (ad es. una piastra di Petri) con un substrato o un terreno che fornisce i nutrienti essenziali (amminoacidi, carboidrati, vitamine, minerali), fattori di crescita, ormoni e gas (CO2, O2), e regola l’ambiente fisico-chimico (tampone del pH, pressione osmotica, temperatura). La maggior parte delle cellule necessita di una superficie o di un substrato artificiale, mentre altre colture cellulari possono essere coltivate liberamente sospese nel terreno di coltura (coltura in sospensione, sospensione cellulare).
Le colture su larga scala di linee cellulari animali vengono utilizzate nella produzione industriale di vaccini virali e di altri prodotti ottenuti mediante biotecnologie. Le cellule staminali umane vengono coltivate per aumentarne il numero e differenziarle in vari tipi di cellule somatiche a scopo di trapianto.
Campioni di tessuto
Il termine tessuto descrive un insieme cellulare intermedio, in cui il materiale cellulare si trova a un livello organizzativo compreso tra le cellule e un organo completo. In un tessuto sono riunite cellule simili, della stessa origine, che svolgono insieme una funzione specifica. Il raggruppamento funzionale di più tessuti dà origine alle strutture complesse degli organi.
I tessuti vengono campionati per la ricerca in biologia, istologia/istopatologia, parassitologia, biochimica e immunoistochimica, nonché per la coltura e l’estrazione del DNA. Si possono distinguere tessuti animali (sottocategoria: tessuti dei mammiferi) e tessuti vegetali. I tessuti animali sono suddivisi nei quattro tipi fondamentali: connettivo, muscolare, nervoso ed epiteliale. I tessuti vegetali sono suddivisi nei seguenti tre sistemi tissutali: epidermide, tessuto fondamentale e tessuto vascolare.
I campioni di tessuto possono essere preparati da parti animali o vegetali, ad es. ossa, muscoli, foglie ecc.
Fluidi corporei
Sangue, siero, plasma, liquido cerebrospinale, saliva e liquido sinoviale sono fluidi corporei che costituiscono una ricca fonte di informazioni rilevanti dal punto di vista diagnostico. È quindi importante preparare accuratamente i campioni di fluidi corporei per l’analisi. La prima difficoltà è legata all’ampio intervallo dinamico dei componenti presenti nei fluidi corporei.
Determinazione della concentrazione proteica
Il saggio di Bradford, il saggio di Lowry e il saggio dell’acido bicinconinico (BCA) sono saggi comunemente utilizzati per determinare la concentrazione delle proteine. L’albumina sierica bovina (BSA) è uno degli standard proteici più frequentemente utilizzati.
Tampone di lisi
Il tampone di lisi deve essere scelto in base al materiale cellulare o al tessuto (coltura tissutale, piante, batteri, funghi ecc.), alla presenza delle cellule all’interno di una struttura e al tipo di struttura. Un’ampia gamma di tamponi di lisi per l’estrazione di proteine, membrane e organelli viene formulata con uno o più detergenti. Il detergente viene solitamente selezionato mediante prove per tentativi oppure – se disponibile – in base a un protocollo di estrazione delle proteine esistente. Il detergente deve essere compatibile con il tessuto di origine e con le proteine. In generale, si sceglie il detergente più blando che risulta efficace per uno specifico tessuto / una specifica proteina, al fine di mantenere la massima funzionalità dell’estratto. Inoltre, nel caso dell’estrazione di membrane e organelli, un detergente blando mantiene intatta la membrana. I detergenti comunemente utilizzati nei tamponi di lisi sono per lo più non ionici o zwitterionici, ad es. CHAPS, desossicolato, Triton™ X-100, NP40 e Tween 20.
Ad esempio, tessuti come cervello, fegato, intestino, rene, milza ecc. possono essere semplicemente trattati con tampone RIPA – tuttavia, devono essere inclusi inibitori delle proteasi e DTT (ad es. per l’elettroforesi su gel).
Tampone di lisi per tessuto muscolare scheletrico (freddo come il ghiaccio): 20 mM Tris (pH 7,8), 137 mM NaCl, 2,7 mM KCl, 1 mM MgCl2, 1 % Triton X-100, 10 % (w/v) glicerolo, 1 mM EDTA, 1 mM ditiotreitolo, con aggiunta di un cocktail di inibitori delle proteasi e delle fosfatasi
Tabella dei tamponi comuni e del loro intervallo di pH. In generale, questi tamponi vengono normalmente utilizzati a concentrazioni di 20–50 mM.
| Tampone | Intervallo di pH |
|---|---|
| Acido citrico – NaOH | 2,2 – 6,5 |
| Citrato di sodio – acido citrico | 3,0 – 6,2 |
| Acetato di sodio – acido acetico | 3,6 – 5,6 |
| Sale sodico dell’acido cacodilico – HCl | 5,0 – 7,4 |
| MES – NaOH | 5,6 – 6,8 |
| Diidrogenofosfato di sodio – idrogenofosfato disodico | 5,8 – 8,0 |
| Imidazolo – HCl | 6,2 – 7,8 |
| MOPS – KOH | 6,6 – 7,8 |
| Cloridrato di trietanolammina – NaOH | 6,8 – 8,8 |
| Tris – HCl | 7,0 – 9,0 |
| HEPES – NaOH | 7,2 – 8,2 |
| Tricina – NaOH | 7,6 – 8,6 |
| Tetraborato di sodio – acido borico | 7,6 – 9,2 |
| Bicina – NaOH | 7,7 – 8,9 |
| Glicina – NaOH | 8,6 – 10,6 |
Il pH della maggior parte dei tamponi dipende dalla temperatura. Questo vale soprattutto per i tamponi Tris. Il pKa passa da 8,06 a 25°C a 8,85 a 0°C.
(pH e pKa di un tampone: il pH misura la concentrazione degli ioni idrogeno in una soluzione acquosa. Il pKa (= costante di dissociazione acida) è una misura correlata, ma più specifica, poiché aiuta a prevedere come si comporterà una molecola a un determinato valore di pH.)
TRIzol
TRIzol è una soluzione chimica utilizzata per estrarre RNA/DNA/proteine durante l’estrazione con tiocianato di guanidinio-fenolo-cloroformio. L’impiego dell’estrazione con TRIzol assistita da ultrasuoni consente di ottenere rese elevate di DNA, RNA e proteine dallo stesso campione, superando così gli altri metodi di estrazione.
Bibliografia/Riferimenti
- Chittapalo T, Noomhorm A (2009): Ultrasonic assisted alkali extraction of protein from defatted rice bran and properties of the protein concentrates. Int J Food Sci Technol 44: 1843–1849.
- Simões, André E.S:; Pereira, Diane M.; Amaral, Joana D.; Nunes, Ana F.; Gomes, Sofia E.; Rodrigues, Pedro M.; Lo, Adrian C.; D’Hooge, Rudi; Steer, Clifford J.; Thibodeau, Stephen N.; Borralho, Pedro M.; Rodrigues, Cecília M.P. (2013): Efficient recovery of proteins from multiple source samples after trizol or trizol LS RNA extraction and long-term storage. BMC Genomics 2013, 14:181.