ヒールシャー超音波技術

ヒールシャーの超音波組織ホモジナイザーを使用する方法

このようなタンパク質、細胞小器官、酵素または活性化合物のような細胞内の巨大分子の精製又は特徴付けの前に、組織溶解および細胞崩壊のための効率的な方法が必要とされています。超音波は、緩衝液中に急速に細胞の内部区画から細胞内物質を放出する細胞の調製のための有効な方法です。超音波組織均質化の機械的剪断力は、軽度超音波処理または激しい超音波キャビテーションにより破壊細胞破壊(例えばナンノクロロプシスのために、酵母)によって(例えば、DNA / RNAの場合)のいずれかで非常に柔らかい組織調製物、特定の材料に正確に調整することができます。

効率的に超音波ホモジナイザーを使用して試料を調製する方法、超音波処理プロトコルおよび関連勧告に組織、細胞および他の生物学的物質の選択の下にして下さい。

超音波は、細胞溶解、破壊、崩壊のアプリケーションを含む試料調製のための非常に効率的な技術であります & 抽出。

超音波組織ホモジナイザー UP100H

生物学的材料から、あなたの溶解物、ホモジネートおよび抽出物を調製する方法

アルファベット順:

アセトバクターsuboxydans

超音波アプリケーション:
5-15秒で細胞破砕。
デバイスの推奨事項:
UP200St

放線菌

超音波アプリケーション:
3-5分で破壊し、タンパク質抽出。
デバイスの推奨事項:
UP50H

ALP及びLDH活性

超音波アプリケーション:
ALP及びLDH活性およびタンパク質含有量の決意
凍結細胞試料をPBSを氷上で50分間、1%トリトンX-100を含有する細胞溶解、続いて、氷上で20分間解凍しました。細胞溶解の際に、各サンプルは超音波処理で80 Wで1分間超音波処理しました。 UP100H (ヒールシャー超音波)。
デバイスの推奨事項:
UP100H
リファレンス/リサーチペーパー:
ベルナール、A.ら。 (2008):鉱化コラーゲン人工細胞外骨骨髄間質細胞の骨形成分化をマトリックスは、改善されます。

アモルファスリン酸三カルシウム(ATCP)

超音波アプリケーション:
ヒドロキシアパタイトの形成のための非常に反応性前駆体であるATCPナノ粒子は、(w / w)の5%を含有するクロロホルムに分散させたTween20で5分間320Wでヒールシャー超音波デバイスUP400Sを用いてPLGAと称される。粒子の緩和を可能にするために、パルス間隔(50%)を適用します。
デバイスの推奨事項:
UP400S
リファレンス/リサーチペーパー:
モーン、ディルク。エーゲ、Duygu。フェルドマン、Kirifl。シュナイダー、オリバーD; Imfeld、トーマス。 Boccaccini、アルドR.(2014):球状リン酸カルシウムナノ粒子充填剤は高い生物活性を有する骨固定装置のポリマー加工を可能にします。フリー図書館5月1日、2010年2014年1月21日。

アントシアニン

超音波アプリケーション:
アントシアニン:ジ - グルコシド、モノグルコシド、アシル化モノグルコシドおよびペオニジン、マルビジン、シアニジン、ペチュニジン及びデルフィニジンのアシル化ジ - グルコシド:40秒でブドウの皮から抽出.; pH5.0の; 6:1の材料/抽出溶媒の比率。
デバイスの推奨事項:
UP100H

アントラキノン

超音波アプリケーション:
ヤエヤマアオキの根からのアントラキノン類の抽出
デバイスの推奨事項:
UP400S

アプリコット種子

超音波アプリケーション:
抽出を改善するために、ナンヨウアブラギリL.の種子から油を抽出する前に、超音波前処理。
デバイスの推奨事項:
UP400S

ヨモギselengensis Turcz

超音波アプリケーション:
ルチン(30mLメタノールで1.0g粉砕サンプル)を5〜10分で25°Cで抽出。
デバイスの推奨事項:
UP50H

アスペルギルス・フラバス

超音波アプリケーション:
サブロー増殖培地中のアスペルギルス・フラバスの超音波不活化
デバイスの推奨事項:
UP200S

B.スファエリカス/バチルス・スフェリカス

超音波アプリケーション:
1-3分で破壊。
デバイスの推奨事項:
UP200S

炭疽菌スターン34F2胞子

超音波アプリケーション:
炭疽菌スターン34F2、セレウス菌ATCC 21281、及びバチルス・チューリンゲンシスATCC 33680個の胞子の超音波除去。超音波と共に次亜塩素酸ナトリウム150ppmでの使用は、胞子の不活性化を導くました。
デバイスの推奨事項:
UP200S 100%の振幅で
リファレンス/リサーチペーパー:
Pamarthi、S。R. Desoilingバチルス属胞子における超音波のほか:有効性は、様々な接触表面に付着複合食品マトリックス中に包埋しました。

セレウス菌ATCC 21281個の胞子

超音波アプリケーション:
炭疽菌スターン34F2、セレウス菌ATCC 21281、及びバチルス・チューリンゲンシスATCC 33680個の胞子の超音波除去。超音波と共に次亜塩素酸ナトリウム150ppmでの使用は、胞子の不活性化を導くました。
デバイスの推奨事項:
UP200S 100%の振幅で
リファレンス/リサーチペーパー:
Pamarthi、S。R. Desoilingバチルス属胞子における超音波のほか:有効性は、様々な接触表面に付着複合食品マトリックス中に包埋しました。

枯草菌

超音波アプリケーション:
ハイパワー、細菌細胞数の連続的な減少に細菌懸濁液の結果の低容量低周波超音波即ち殺傷率優勢です。大容量で、細菌のdeclumpingを示唆している細胞数の立ち上がりが、この立ち上がりで超音波処理結果は、declumping仕上げとして低下し、死滅率はより重要になります。
デバイスの推奨事項:
UP200St
リファレンス/リサーチペーパー:
ジョイス、E .; Phull、S. S .;ロリマー、J. P .;メイソン、T. J.(2003):細菌懸濁液の治療のための超音波の開発および評価。培養したバチルス種の周波数、パワー、超音波処理時間の研究。ウルトラ。 Sonochem。 10/2003。 PP。315-318。

大麦のアルファ - アミラーゼ

超音波アプリケーション:
刺激または大麦のアルファ - アミラーゼの活性を阻害する:サンプル(10gの大麦種子)を50%のcyleおよびさらなる攪拌しながら、20、60および100%の振幅の超音波強度で直接超音波処理の水道水80mlに分散させました。ソノトロードは、溶液中に約9mmを浸漬しました。溶液を5、10、15分間30℃°の一定温度で処理しました。
デバイスの推奨事項:
UP200S、振幅:20、60および100%。 50%のcyle。ソノトロードS3、30C°。
リファレンス/リサーチペーパー:
Yaldagardら。 (2008):種子のポスト播種トリートから大麦のアルファ - アミラーゼの活性に対する超音波パワーの影響

フジツボノープリウス

超音波アプリケーション:
細胞破壊/ mesozooplanktonの殺害:超音波処理フォー流量(200、400、520及び800 LH-1)と4つの振幅(25、50、75および100%)61と97%との間の死滅率を有し、以下の条件の下で達成されました。
デバイスの推奨事項:
UIP2000hd
リファレンス/リサーチペーパー:
Viitasloら。 (2005):バラスト水処理剤としてオゾン、紫外線、超音波および過酸化水素 – 低生理食塩水汽水でMesozooplanktonを用いた実験。

ビフィドバクテリウム株:B.ブレーベATCC 15700、B.のアニマリス亜種。ラクティス(BB-12)、B。ロンガム(BB-46)

超音波アプリケーション:
ビフィズス菌株からのβ-ガラクトシダーゼの細菌細胞破壊および放出:B.breve ATCC 15700、B.動物サブスサブスクライブラクティス(BB-12)、B.ロングム(BB-46):細菌培養と配合した100mL低温殺菌乳を超音波で塗布した。キャビテーションは、細菌細胞の破壊を引き起こすと同時に、β-ガラクトーシダーゼの放出を引き起こす。
デバイスの推奨事項:
UIP1000hd:振幅:10%、パワー:80W、振幅:100%、パワー:200W。ソノトロードBS2d34; 15〜30分。
リファレンス/リサーチペーパー:
ハングら。 (2009):超音波は、プロバイオティクスヨーグルトで発酵を支援しました。

BL21(DE3)pAtHNL細胞(シロイヌナズナ細胞)

超音波アプリケーション:
細胞破壊:15gのBL21-(DE3)_pAtHNL細胞をゆっくりと0摂氏度で50 mMリン酸カリウム緩衝液(pH7.5)に懸濁しました。
デバイスの推奨事項:
UP200S +ソトロードS14D:70W/cm2(4 x 5分)で、氷浴で冷却
リファレンス/リサーチペーパー:
Okrob、D.ら(2009):ヒドロキシニトリルリアーゼシロイヌナズナから:ピュア固定化触媒によるエナンチオ純粋シアンヒドリン合成のための反応パラメータの同定。前売。シンセ。 CATAL。 2011、353、2399年から2408年。

血液細胞(赤と白)

超音波アプリケーション:
3-10秒で破壊。
デバイスの推奨事項:
UP100H

ボルド葉からBoldine(Peumus boldusモリーナ

超音波アプリケーション:
ボルドにおける重要な活性化合物(カテキン以外であるboldine((S)-2,9-ジヒドロキシ-1,10- dimethoxiaporphine)、である(2S、3R)-2-(3,4-ジヒドロキシフェニル)-3 、4-ジヒドロ-1(2H) - ベンゾピラン-3,5,7-トリオール)ボルド葉のアルカロイド及びフラボノイド画分の主要成分。 Boldineは過酸化フリーラジカル媒介性損傷を受け、効率的なヒドロキシルラジカルスカベンジャーとして作用する強力な抗酸化剤です。
抽出手順: 典型的な抽出方法については、ボルド葉のサンプルを、超音波発生装置を用いて大気圧で蒸留水1Lで抽出しました。 UIP1000hd バッチおよびフロースルーモードインチ10と40分の間に抽出範囲。、10 23 W / cmでの超音波強度での時間2、および10~70℃の温度範囲。 23 W / cmの超音波強度:最良の結果は、以下の条件の下で達成WER2 40分間。 36°Cの温度で
結果: 分析結果は、高出力超音波処理は、従来の方法と比較して有意に良好な速度でボルドの植物性マトリックス材料の分析物の放出を増強することを示しています等しい収率は30分間で超音波処理によって放出されました。従来の抽出時間ながら2時間でした。
Chemat(2013)と共同研究者は、超音波支援抽出は、抽出物の増加濃度(溶媒及び植物材料の同じ量)で抽出時間を低減しながら、植物抽出の効率を改善することが示されています。超音波処理パワー23 W / cmで:分析は、最適化された条件があったことを明らかにしました2 とともに UIP1000hd 40分間。 36℃の温度。超音波抽出の最適化されたパラメータは、プロセス時間の点で、従来の浸漬と比較してより良好な抽出を提供する(30分の代わりに120分)、より高い収率、より高いエネルギー効率、改善された清浄度、より高い安全性と優れた製品品質を。
デバイスの推奨事項:
UIP1000hd ソノトロードBS2d34とフローセルと
リファレンス/リサーチペーパー:
Petigny、L .;ペリーノ-Issartier、S .; Wajsman、J .; Chemat、F.(2013):バッチおよびボルド葉の連続超音波支援抽出(Peumus boldusモル)。分子科学14、2013 5750から5764の国際ジャーナル。

ウシ血清アルブミン(BSA)

超音波アプリケーション:
40秒でのポリ(乳酸-co-グリコール酸)でマイクロカプセル化。
デバイスの推奨事項:
dmini
リファレンス/リサーチペーパー:
フレイタスら。 (2005):溶媒抽出によるミクロスフェアの無菌製造のための静的ミクロ組み合わせるフロースルー超音波乳化。

脳幹+副腎

超音波アプリケーション:
分散とnucleotid分析。サンプルサイズ:10ml中の10 mgのサンプル流体。
デバイスの推奨事項:
UP50H

カンジダ・アルビカンス

超音波アプリケーション:
9分で15mlのの破壊。
デバイスの推奨事項:
UP100H

炭水化物、多糖類及び他の官能性化合物

超音波アプリケーション:
炭水化物、多糖類及び他の官能性化合物の抽出
デバイスの推奨事項:
UP200St

ローズマリーからカルノシン酸

超音波アプリケーション:
ローズマリーからカルノシン酸、活性化合物の抽出。
デバイスの推奨事項:
UP400S

カプサイシノイド

超音波アプリケーション:
唐辛子からカプサイシノイド(カプサイシン、ノルジヒドロ)の抽出:カプサイシノイドから キダチトウガラシ 溶媒:95%(v / v)エタノールを10ml / gで、40分の質量/溶媒比ピーマンは、以下の条件で超音波抽出を介して得られました。超音波処理抽出時間、45℃の抽出温度。抽出収量:カプサイシノイドの85%
デバイスの推奨事項:
UP400S

カロテノイド、ベータカロテノイド

超音波アプリケーション:
ニンジンから抽出。
デバイスの推奨事項:
UP50H

cDNAを

超音波アプリケーション:
ポリA RNAを、製造業者の説明書に従ってダイナビーズmRNA精製キット(Invitrogen)を用いて精製し、TURBO DNアーゼ(Ambion社; RNAの0.2単位/μgの1)を用いて37℃で30分間処理しました。一次および第二鎖合成を、製造業者のプロトコールに従いました。約500ngの二本鎖cDNAのは、ヒールシャーさんと超音波処理によって断片化されました UTR200。 DNAは2%高分解能アガロースゲルでparceledし、230から270個のbpの断片を切り出しました。
デバイスの推奨事項:
UTR200 または TD_カップホーン
リファレンス/リサーチペーパー:
デルフト、J.バン。 GAJ、セント; Lienhard、M .;アルブレヒト、M. W .; Kirpiy、A .; Brauers、K .; Claessen、S .; Lizarraga、D .; Lehrach、H .; HERWIG、R .; Kleinjans、J.(2012):RNA-配列は、発癌物質ベンゾ[a]ピレンにより誘発トランスクリプトーム応答における新しい洞察を提供します。毒物学科学2分の130、2012年427から439まで。

大Caryophanon;

超音波アプリケーション:
caryophanonデータムからグルコサミン、ムラミン酸、アラニン、グルタミン酸およびリジンを抽出します。
デバイスの推奨事項:
UP100H

セルロース

超音波アプリケーション:
同位体均質なセルロースの均質化/準備。
デバイスの推奨事項:
UP200S;氷浴中で
リファレンス/リサーチペーパー:
Laumerら。 (2009):安定同位体分析のためmicroamountsを使用するセルロースの均質化のための新規なアプローチ。

ユーカリセルロースのCNCから調製したセルロースナノ結晶(CNC)

超音波アプリケーション:
ユーカリセルロースCNCから調製したセルロースナノ結晶(CNC)は、塩化メチルアジポイル、CNCm、または酢酸と硫酸、CNCaの混合物との反応により修飾した。したがって、凍結乾燥CNC、CNCmおよびCNCaは0.1重量%で純粋な溶媒(EA、THFまたはDMF)に再分散し、(24±1)Cで一晩磁性撹拌することにより、UP100Hヒールシャー超音波(ドイツ)を用いた超音波浴場で20分、130W/cm2を装備した。ソトロード、24 ± 1 degC で。その後、CABをCNC分散に添加し、最終的なポリマー濃度が0.9重量%となった。
デバイスの推奨事項:
UP100H; 20分間24 degCにで。
リファレンス/リサーチペーパー:
Blachechen、L. S.ら(2013):セルロースナノ結晶セルロースアセテートブチレートマトリックスにおけるそれらの分散のコロイド安定性の相互作用。セルロース2013。

サトウキビのバガスからセルロース

超音波アプリケーション:
サトウキビのバガスからのセルロースの抽出
デバイスの推奨事項:
UP200St

ChIPアッセイ

超音波アプリケーション:
超音波処理は、クロマチンを解放するために細胞溶解のために使用されています。軽度(パルス)超音波処理は、クロマチンを断片化するために使用されます。また、超音波は、標的タンパク質に結合する抗体の速度を加速し、それによって免疫沈降時間を減少させます。
デバイスの推奨事項:
UP100H
リファレンス/リサーチペーパー:
Basselet、P.ら。 (2008):腸管出血性大腸菌(EHEC)のDNAチップアレイベースの分析のための試料処理。
ラウリ、A.(2005):X-チップツーハイブリッド技術による花弁開発の分子分析。ケルン2005年の論文大学。

クロマチン

超音波アプリケーション:
クロマチンのせん断
デバイスの推奨事項:
UP400S; 30%の振幅及び0.5サイクルで、冷やして。
リファレンス/リサーチペーパー:
ああら。 (2003):アセチルCoAカルボキシラーゼ遺伝子を肝にステロール調節エレメント結合タンパク質-1によって調節されています。

クロマチン抽出

超音波アプリケーション:
MEL DS19細胞の溶解物をヒールシャー200W超音波処理を使用して、最大出力の70%で、20秒毎の10ラウンドで超音波処理したUP200H
デバイスの推奨事項:
Uf200ः; 最大出力の70%。パルスモード:それぞれ20秒の10サイクル。
リファレンス/リサーチペーパー:
Kang, H. Ch. et al.(2010): PIAS1は、赤血球細胞特異的a-globin発現におけるCP2c局在化および活性プロモーター複合体形成を調節する。核酸の再び。 2010年38月16日pp. 5456-5471.

クロマトグラフィー

超音波アプリケーション:
溶媒中の吸着剤の超音波処理は、数秒以内に凝集体を排除し、均一な、簡単に充填したカラムを準備します。カラムクロマトグラフィーの前吸着剤調製物(例えば、シリカゲル)に関連します。
デバイスの推奨事項:
UP400S

クラドセラン

超音波アプリケーション:
mesozooplanktonの細胞破壊
デバイスの推奨事項:
UP2000hd フローセルと
リファレンス/リサーチペーパー:
Viitasloら。 (2005):バラスト水処理剤としてオゾン、紫外線、超音波および過酸化水素 – 低生理食塩水汽水でMesozooplanktonを用いた実験。

カイアシ大人とcopepodites

超音波アプリケーション:
mesozooplanktonの細胞破壊:超音波処理フォー流量(200、400、520及び800 LH-1)と4つの振幅(25、50、75、100%)を以下の条件で死滅率87から99%が達成されています。
デバイスの推奨事項:
UIP2000hd フローセルと
リファレンス/リサーチペーパー:
Viitasloら。 (2005):バラスト水処理剤としてオゾン、紫外線、超音波および過酸化水素 – 低生理食塩水汽水でMesozooplanktonを用いた実験。

カイアシ類ノープリウス

超音波アプリケーション:
mesozooplanktonの細胞破壊:超音波処理フォー流量(200、400、520及び800 LH-1)と4つの振幅(25、50、75、100%)を以下の条件で死滅率87から99%が達成されています。
デバイスの推奨事項:
UIP2000hd フローセルと
リファレンス/リサーチペーパー:
Viitasloら。 (2005):バラスト水処理剤としてオゾン、紫外線、超音波および過酸化水素 – 低生理食塩水汽水でMesozooplanktonを用いた実験。

COS7細胞

超音波アプリケーション:
400μlのバッファーで溶解
デバイスの推奨事項:
UP200S; 7サイクル
リファレンス/リサーチペーパー:
Zaimの(2005):Nesprin-2欠損マウスの解析。

クリプトスポリジウムparvaum

超音波アプリケーション:
水中でのクリプトスポリジウムparvaum(原虫)の超音波不活性化。
デバイスの推奨事項:
UP400S
リファレンス/リサーチペーパー:
塚本、私は、イム、B.スタバラシュ,C. E. 古田橋場前田Y. (2004):超音波照射によるサッカロマイセスセレビシエの不活性化。ウルトラソンソノケム2004年11月11日。pp. 61-65.

キュボソーム

超音波アプリケーション:
キュボソーム – 空または蛍光団分子がドープされたいずれか – 超音波処理装置UP100Hを使用してのPluronic F108の溶液中にモノオレインの適切な量を分散させることによって調製しました。蛍光キュボソームを得るためには、蛍光色素分子は、プルロニックF108で分散前に穏やか超音波処理により溶融したモノオレイン中に分散させました。蛍光キュボソームはまたケルセチンをロードしたときと同じ手順に従いました。
試料:試料サイズ:4ミリリットル – 約水96.4重量%、モノオレインの3.3重量%、プルロニックF108の0.3重量%。蛍光体の割合は、2.5×10-3と2.8×10-3重量%でした。追加ケルセチンの量:6.4×10-6重量%。
超音波処理: UP100H、10分間、90%、パルス周期0.9振幅。
デバイスの推奨事項:
UP100H
リファレンス/リサーチペーパー:
ムルジャ、S。;テックス、S。;女の子、A.のM。; Lampis、S。;舞台裏、V。メリ、V。 Monduzzi、M。;プロディ、L。;シュミット、J。;タルモン、Y。;カルタジローネ、C.(2013):薬物負荷蛍光キュボソーム:多彩なナノ粒子の潜在的なアプリケーションのためのセラノスティクス。ラングミュア29、2013 6673から6679まで。

デッケラbruxellensis

超音波アプリケーション:
デッケラの超音波不活性化は、水にbruxellensis
デバイスの推奨事項:
UIP1500hd
リファレンス/リサーチペーパー:
ボルスウィック,K.A.J.コークリー、W. T.マクドネル、M. B.ノウトニー,H.;ベネス,E.;グリフシュル, .M (2005): 細胞破壊のための新しいコンパクトソニケーターの開発.J. マイクロバイオメス60/2005。pp. 207-216./ Lörincz, A. (2004): 水ベースの懸濁液中の酵母の超音波細胞破壊.バイオシス89/ 2004.pp. 297-308./ 塚本, I.;イム、B.スタバラシュ,C. E.古田橋場前田Y. (2004):超音波照射によるサッカロマイセスセレビシエの不活性化。ウルトラソンソノケム2004年11月11日。pp. 61-65.

デッケラ/ブレタノマイセスbruxellensis

超音波アプリケーション:
90〜120秒で不活化。
デバイスの推奨事項:
UIP1500hd
リファレンス/リサーチペーパー:
上記を参照

Dna

超音波アプリケーション:
DNA断片化:2分。 UP100H又は4分と100μLの音波処理。 UTR200と100μLの超音波処理。
デバイスの推奨事項:
UP100HUTR200 または VialTweeter
リファレンス/リサーチペーパー:
Larguinho M.ら。 (2010):DNA断片化のための迅速かつ効率的な超音波ベースの戦略の開発。

キイロショウジョウバエS2細胞

超音波アプリケーション:
ショウジョウバエメラノガスターS2細胞からの細胞タンパク質の抽出:凍結S2細胞(1.56108)を1mL氷冷均質化バッファー(100mMトリス-HCl pH 7.5、1%SDS)で凍結し、氷上に残した細胞ライシスは10分間、氷上に残した(656100個)。バースト、0.5 sパルス;ヒールシャーUP200S超音波プロセッサを搭載した75%の強度)。
デバイスの推奨事項:
UP200S (200W)、75%intensitypulseモード:6615バースト、0.5秒パルス。
リファレンス/リサーチペーパー:
Schwientek、T.ら。 (2007):キイロショウジョウバエS2細胞のムチン型O-glycoproteomeシリアルレクチンアプローチ。プロテオミクス7、2007頁。3264から3277まで。

大腸菌誘導体

超音波アプリケーション:
E.coli誘導体の細胞破壊:Vculture = 4 / OD mLのサンプル容量に対応する凍結ペレットを580μLの10mMリン酸カリウム緩衝液pH7,1mM EDTAに再懸濁した。 20μLのリゾチーム(1g L-1の濃度)を添加し、細胞懸濁液を氷上で約30分間インキュベートした。その後、氷上で超音波装置(UP 200S Ultraschallprozessor、Dr.Hielscher GmbH、Teltow)を用いて連続的に超音波処理することにより細胞を50%の振幅で20秒間破壊した。可溶性および不溶性細胞画分を、13000rpmで20分間の遠心分離によって分離した。不溶性タンパク質を10mMリン酸カリウム緩衝液pH7,1mM EDTAで2回洗浄し、-20℃で保存した。
デバイスの推奨事項:
UP200S 50%の振幅で
リファレンス/リサーチペーパー:
HA(2005):活性な組換えタンパク質生産の最適化、封入体のインビボ活性化に大腸菌(Escherichia coli)、のIbpAとIbpBの小さい熱ショックタンパク質の影響を探索します。

エキノコックスgranulosus抗原

超音波アプリケーション:
細胞溶解および崩壊:成熟したE. granulosusのタンパク質の可溶性の均質化サンプル、液体窒素及び42◦Cに凍結融解することにより調製し、3のために110V、170Wで超音波処理されています×氷上で15秒。その後、サンプルは、万グラムで15分間遠心分離しました。タンパク質concentarationはブラッドフォード法により測定し、-20◦Cで保存しました。
デバイスの推奨事項:
UP200S; 170W、氷上で冷却。 3×15秒。
リファレンス/リサーチペーパー:
Tabarら。 (2010):エキノコックスgranulosus抗原の流体包虫、Protoscolex全身有するヒツジHydatidosisの血清診断。

Escherchia大腸菌GR-

超音波アプリケーション:
牛乳やジュースでEscherchia大腸菌GR-の超音波不活性化。
デバイスの推奨事項:
UP100H
リファレンス/リサーチペーパー:
Zenker、M .;ハインツ、V .;クノール、D.(2003):超音波の適用は、液体食品の保存と品質保持のための熱処理をアシスト。 J食品Protの2003分の66。頁。1642年から1649年。

生理食塩水でEscherchia大腸菌GR-

超音波アプリケーション:
生理食塩水でEscherchia大腸菌GR-の超音波不活性化。
デバイスの推奨事項:
UP100H
リファレンス/リサーチペーパー:
ダックハウス, H.メイソン、T. J.プル, S. S.ロリマー、J.P.(2004):次亜塩素酸塩を用いて微生物消毒に及ぼす超音波処理の効果。ウルトラソンソノケム11/ 2004。pp. 173-176.

水にEscherchia大腸菌GR-

超音波アプリケーション:
水中のエッシャーキア大腸菌Gr-の超音波不活性化。
デバイスの推奨事項:
UP100H
リファレンス/リサーチペーパー:
古田山口塚本、T.イム、B.スタバラシュ,C. E.ハシバ, K.前田Y. (2004):超音波照射による大腸菌の不活性化。ウルトラソンソノケム2004年11月11日。pp. 57-60.

緑内障、視神経頭

超音波アプリケーション:
(ラットの眼から)視神経ヘッドのRNA断片化:視神経頭(ONH)は、ドライアイス上で凍結させ、抽出前に80℃で保存しました。 RNAはDNase処理を含むアルクトゥルスキットによって提供される命令は、任意のDNAを除去した後、次いで、MS 0.5プローブ(UP50H)とを用いて、キットの抽出緩衝液中の凍結神経ヘッドを超音波処理することによって単離しました。精製したRNAを定量しました。
デバイスの推奨事項:
UP50H プローブMS0.5と
リファレンス/リサーチペーパー:
Johnsonら。 (2007):ラット緑内障モデルにおける高眼圧への曝露後の視神経乳頭遺伝子発現のグローバル変更。

グリコサミノグリカン、コンドロイチン硫酸(CS)

超音波アプリケーション:
ジメチルメチレンブルーアッセイによってCSの決定
細胞の再懸濁:マイクロ遠心チューブ内のCSペレットは、サイクル1における超音波ホーン(UP 100H、ヒールシャー超音波社、ドイツ)からのパルスを用いてハンクス平衡塩溶液(HBSS)中を0.1mg / mlのパパイン溶液0.5mlに再懸濁し、 3秒間100%の振幅。その後、消化を24時間60℃で行われました。
酵素結合免疫吸着アッセイ(ELISA)のために、細胞を、次いで、106細胞/ mlの濃度で蒸留脱イオン水に懸濁し、そして細胞溶解を容易にするために、-70℃で一晩冷凍庫に保存しました。次いで、細胞を40秒間超音波処理によってホモジナイズしました。ヒールシャー超音波組織ホモジナイザーUP100Hを使用。
デバイスの推奨事項:
UP100H
リファレンス/リサーチペーパー:
Vandrovcovaら。 (2011):MG 63骨芽細胞様細胞に対するポリ - (ラクチド-co-グリコリド)(PLGA)のコラーゲンとコンドロイチン硫酸(CS)コーティングの影響。 Physiol。 RES。 60; 2011年797から813まで。

HaCaT細胞

超音波アプリケーション:
クロマチン免疫沈降(チップ)のためのHaCaT細胞の溶解:HaCaT細胞を、37uCで10分間1%ホルムアルデヒドで固定しました。固定した細胞は、12一分(12×1分)パルスで= 100%をRIPA緩衝液に溶解し、振幅= 1及びデューティサイクルで100Wの超音波装置と、氷上で超音波処理しました。
デバイスの推奨事項:
UP100H; 12分間。氷の上で、
リファレンス/リサーチペーパー:
Zhangら。 (2007):BasonuclinはHaCaT細胞におけるリボソームRNA遺伝子のサブセットを調節します。

ヘパリン:ヘパリンの解重合

超音波アプリケーション:
超音波法は、低分子量ヘパリン(LMWH)を製造することができます。したがって、ヘパリンは過酸化水素触媒ラジカル解重合を受けます。反応は非常に高速であり、物理化学的解重合プロセスは、温和な反応条件に依存していない過酷な又は有毒な試薬を必要とせず、化学的アーチファクトのない製品を提供しながら、1時間未満を要します。このように、超音波処理は、LMWHの大規模生産に適しているだけでなく、天然の硫酸化多糖から製造アナログ。
超音波手順:
超音波アシストラジカル解重合による未分画ヘパリンの物理化学的解重合のために、ヘパリンは、25 mg / mlと(5mL)中の最終濃度まで水に溶解しました。反応混合物を、プローブ型超音波発生装置を用いて超音波処理しました。 UP50H。超音波発生装置は、180μmの振幅を提供し3ミリメートルの直径を有するプローブ(マイクロチップMS3)を備えていました。プロセッサは、電気的励起によって生成された30キロヘルツの周波数で機械的な縦振動を発生させました。反応混合物をRadleys®反応器中で60℃に維持し、超音波を混合加熱を防止するために、0.5秒のパルスとして適用しました。 zerotimeアリコート(250μlの)を過酸化水素及び超音波のアプリケーションの同時添加により、反応前の起動に溶液から除去しました。過酸化水素は、0.15(3.75 mg / mlと)の比(w / w)の最終的な過酸化水素/ヘパリンを得ました。
デバイスの推奨事項:
UP50H ソノトロードMS3と
リファレンス/リサーチペーパー:
アクール、ウッサマ; ブリディアウ、ニコラス;ゴドバニ、アッツァ;ル・ジュビウ, フロリアン;ボルデナベ・ジュチェロー、ステファニー;サニエ、フレデリック;ピオット、ジャン=マリー;フルーティエ・アルナウディン, イングリッド;マウガルド、ティエリー(2013):抗凝固活性を有する低分子量ヘパリン(LMWH)の超音波補助製剤。炭水化物ポリマー 97;2013. 684-689.

ホップ

超音波アプリケーション:
水とエタノールの活性化合物/ハーブ抽出物の抽出。
デバイスの推奨事項:
UP400S

ラクトバチルス(溶解/種々のラクトバチルス株のDNA単離)

超音波アプリケーション:
クロストリジウム株:L.橋、L. sanfranciscensis L.ソーセージ、パン、L.、L.口、膣L.ロイテリ及びL.、L.属。
手順:単一のコロニーのDNA単離のために、超音波溶解プロトコールを開発しました。一つのコロニー(2〜3 mmの直径)を100μlの溶解緩衝液(20mMのEDTA、10mMトリス[pHを7.9]、1%トリトンX-100、500mMのグアニジン-HCl、250mMのNaCl)中に懸濁しました。細胞は、プローブ型超音波発生装置を用いて超音波の1分間によって溶解しました UP50H.150μlの冷たいエタノール(-20°C)を添加した後、混合物をQIAamp組織キットのスピンカラム上に遠心分離し、最終的に60μlの緩衝液(10mMトリス[pH 7,5])でelfufueした。
単一の純粋培養の迅速かつ信頼性の高い同定のためのツールを持って、PCRアッセイは、高速DNA分離手順と合わせました。時間のかかる酵素溶解手順およびリゾチームに対する細菌の感受性変数をシリカマトリックスにDNAを結合することにより、後続の精製および濃縮して、細胞の超音波処理することによって克服されました。単一コロニーの細胞材料は、PCRのために十分であることが見出されました。
デバイスの推奨事項:
UP50H
リファレンス/リサーチペーパー:
ミュラー、M. R.のA.(2000):分子生物学的方法を用いて、穀物発酵の微生物生態系の特徴付け。ケルン、2000年の論文大学。

ラクトバチルス・アシドフィルス(Lactobacillus acidophilus)のGr +

超音波アプリケーション:
牛乳やジュースでアシドフィルス菌のGr +の超音波不活性化。
デバイスの推奨事項:
UIP500hd
リファレンス/リサーチペーパー:
Zenker、M .;ハインツ、V .;クノール、D.(2003):超音波の適用は、液体食品の保存と品質保持のための熱処理をアシスト。 J食品Protの2003分の66。頁。1642年から1649年。

希釈培地中レジオネラニューモフィラのGr +

超音波アプリケーション:
希釈培地中レジオネラニューモフィラのGr +の超音波の不活性化。
デバイスの推奨事項:
UIP500hd
リファレンス/リサーチペーパー:
ダジュール,M.F.萩野松村 S.中村 S.清水N.(2006):TiO2による超音波処理によるレジオネラ肺炎の消毒ウォーターレス40/2006。pp.1137-1142。

ロイコノストックmesenteroides

超音波アプリケーション:
骨髄性白血病における白血球lysozme活性:細胞懸濁液を15分間超音波処理しました。サンプルは、リゾチーム活性についてアッセイしました。白血球ug./10細胞のリゾチーム濃度を測定しました。
デバイスの推奨事項:
UP50H

骨髄性白血病における白血球isozym活動

超音波アプリケーション:
サンプル調製:細胞懸濁液を超音波処理し、サンプルをリゾチーム活性についてアッセイしました。白血球UG / 106のリゾチーム濃度を決定しました。
デバイスの推奨事項:
UP200St

マラカイトグリーン

超音波アプリケーション:
マラカイトグリーン(強い殺菌剤)のSonophotocatalytic分解:単独で光触媒分解がsonolytic分解よりもかなり高速で、効率は、2つのプロセスを結合することによって改善することができます。マラカイトグリーン、強力な殺菌剤は、海洋細菌に非常に生態毒性であるが、それは、より少ない又はない毒性である有機物に変換されます。
デバイスの推奨事項:
UP400S

マンゴー配糖体アシル化

超音波アプリケーション:
マンゴー配糖体(1,3,6,7テトラ-2- [3,4,5-トリヒドロキシ-6-(ヒドロキシメチル)oxan -2-イル]キサンテン-9-オン;式:C19歳H18歳ザ・11歳)は、多くの植物種に見られるC-グリコシルキサントネ構造のポリフェノールである。マンギフェリンは、様々な薬理学的活動を示す。マンギフェリンのレジオ選択的アシル化は、超音波下でリパセによって非常に効率的に触媒することができる。従来の方法と比較して、超音波支援触媒は、より短い反応時間とより高い収率の利点によって優れています。超音波マンギフェリンアシレーションの最適な条件は、次のように見出されました:
リパーゼ:PCL、アシル供与体:ビニルアセテート;反応溶媒:DMSO、反応温度:45摂氏度、超音波パワー:200W。基質比:アシル供与体/マンゴー配糖体6/1、酵素ローディング:6 mg / mlと
位置選択的アシル化収率は最大84%でした。
デバイスの推奨事項:
UP200St または Uf200ःトン
リファレンス/リサーチペーパー:
CP:王、Z .;王、R .;天、J .;趙、B;魏、X.F;蘇、Y.L;李、C.Y;曹操、S.G .;王、L.(2010):非水性溶媒中マンゴー配糖体のリパーゼ触媒位置選択的アシル化に対する超音波の影響。 J.アジアナットのProd。 RES。 12月1日、2010年56-63。

分子抽出

超音波アプリケーション:
石膏、rheolite、玄武岩、edfell灰と黒曜石ガラスから抽出するための抽出プロトコル:
レゴリス又は砕石1gの試料は、液体抽出する超音波照射下での抽出および可溶化した標的分子にさらされます。したがって、3ミリリットルのMeOH中のP80は、ガラス試験管中の1Gアナログサンプルに添加し、超音波プローブ型デバイスで20分間超音波処理しました。 UP50H 40%の振幅で設定します。混合物を10分間放置した後、沈降したアナログサンプルの上方に形成された曇った上清を1.5ml遠心管にデカントしました。疎水性ポリマーの遠心チューブの表面に吸着することによって抽出された成分の損失を最小限に抑えるために、管は最初の100mM HEPES pH7.4中の0.5%(w / v)のBSAでブロックしました。イムノアッセイにおいて試験されるまで、ガラスバイアル中で8℃ - 上清を10分間、17000×gでの遠心分離によって清澄化し、2で保存しました。
デバイスの推奨事項:
UP50H
リファレンス/リサーチペーパー:
RIX、C.(2012):火星サンプルの液体抽出物において検出する有機分子のための抗体アッセイ:火星生命マーカーチップ上の生命を検出することを含みます。論文クランフィールド大学2012。

マウスの肝臓ペレット

超音波アプリケーション:
ペレットを洗浄し、5分間超音波処理LB2のさらなる0.5mlをさらに20分間、12,000gで遠心分離し、上清を得られた二フラクションを回収しました。最後に、ペレットを40mMのトリス塩基、5 M尿素、2 Mチオ尿素、4%CHAPS、100mMのDTT、0.5%(v / v)のbiolyte 3-10(LB3)を含有する緩衝液0.5mLで溶解し、そしてありました。超音波処理し、20分間12,000gで遠心分離しました。
デバイスの推奨事項:
UP200S; 5分間。
リファレンス/リサーチペーパー:
Gazzanaら。 (2009):マウス肝臓プロテオームに更新。

マウス肝臓懸濁液

超音波アプリケーション:
サンプルの均質化は、細胞溶解物を生成します。
デバイスの推奨事項:
UP200S; 3×20秒間。
リファレンス/リサーチペーパー:
Gazzanaら。 (2009):マウス肝臓プロテオームに更新。

ミドリカビ病菌

超音波アプリケーション:
サブロー増殖培地中ミドリカビ病菌(植物病原体)の超音波不活性化。
デバイスの推奨事項:
UP200St
リファレンス/リサーチペーパー:
ロペス・マロ、A。;パロウ、E。;ヒメネス・フェルナンデス、M。; Alzamora、S. M。ゲレロ、S.(2005):thermosonicationと抗菌剤とを組み合わせる多因子真菌の不活性化。 J.食品工学。 67/2005頁。 87-93。

スピルリナプラテンシスからフィコシアニン(アルスロスピラプラテンシス)

超音波アプリケーション:
スピルリナプラテンシス(アルスロスピラのプラテンシス)細胞からのフィコシアニンの抽出。
デバイスの推奨事項:
UP400S

植物細胞および植物組織

超音波アプリケーション:
30%充填された植物細胞(W / V)と蒸留水を1〜15分間の超音波処理によって破壊し;植物組織崩壊:アルコールに懸濁1グラム乾燥した組織は、約5分間の超音波処理中に崩壊します。
デバイスの推奨事項:
UP100H

血小板

超音波アプリケーション:
血小板溶解液の準備:1-5分で破壊。
デバイスの推奨事項:
Uf200ःトン

牡蠣tuberregium

超音波アプリケーション:
食用菌ヒラタケtuberregiumからの多糖類の抽出
デバイスの推奨事項:
UP400S

ポリ(乳酸-co-グリコール酸)(PLGA)

超音波アプリケーション:
40秒での超音波処理により、ウシ血清アルブミン(BSA)-loadedポリ(乳酸-co-グリコール酸)(PLGA)の調製。
デバイスの推奨事項:
dmini; 40秒のため。
リファレンス/リサーチペーパー:
フレイタスら。 (2005):溶媒抽出によるミクロスフェアの無菌製造のための静的ミクロ組み合わせるフロースルー超音波乳化。

リンゴからポリフェノール

超音波アプリケーション:
リンゴからポリフェノールの超音波抽出。溶媒:水。 6%増加した収率。超音波強度:20-75Ws / mlでプロセス温度:80摂氏度に加熱しました。
デバイスの推奨事項:
UIP2000hd
リファレンス/リサーチペーパー:
Vilkhu、K .;マナセ、R .;モーソン、R .; Ashokkumar、M.(2011):食品成分の超音波回復と変更。中:風水/バルボサ-カノバス/ワイス(2011):食品・バイオプロセスのための超音波技術。ニューヨーク:スプリンガー、2011頁345から368まで。

紅茶のポリフェノール

超音波アプリケーション:
紅茶のポリフェノールの超音波抽出。溶媒:水。 6から18パーセント増加した収率。超音波強度:8-10Ws / mlで周囲圧力、処理温度:90摂氏度まで加熱しました。
デバイスの推奨事項:
UIP2000hd
リファレンス/リサーチペーパー:
Vilkhu、K .;マナセ、R .;モーソン、R .; Ashokkumar、M.(2011):食品成分の超音波回復と変更。中:風水/バルボサ-カノバス/ワイス(2011):食品・バイオプロセスのための超音波技術。ニューヨーク:スプリンガー、2011頁345から368まで。

赤ブドウの絞りかすからポリフェノール

超音波アプリケーション:
赤ブドウの絞りかすからポリフェノールの超音波抽出。溶媒:水。 11から35までパーセント増加収率。超音波強度:20-75Ws / mlで周囲圧力。
デバイスの推奨事項:
UIP2000hd
リファレンス/リサーチペーパー:
Vilkhu、K .;マナセ、R .;モーソン、R .; Ashokkumar、M.(2011):食品成分の超音波回復と変更。中:風水/バルボサ-カノバス/ワイス(2011):食品・バイオプロセスのための超音波技術。ニューヨーク:スプリンガー、2011頁345から368まで。

ポリフェノール、緑茶からのアミノ酸とカフェイン

超音波アプリケーション:
水中の緑茶からの活性化合物の抽出
デバイスの推奨事項:
UP400S

豚:豚ロースのBrining

超音波アプリケーション:
超音波を用いたブラインでは、豚の腰(Longissimus dorsi)を塩化ナトリウムブライン(40g L-1)に浸漬し、5℃で低周波超音波(20kHz)を低強度(2〜4W / cm -2)。ブタ組織微細構造、タンパク質変性、水結合能(WBC)、保水能力(WHC)、塩化ナトリウム拡散係数(D)および肉組織プロファイル(TPA)に対する超音波補助硬化の効果を調べた。結果は、超音波処理が肉組織の良好な微細構造変化を引き起こしたことを示した。水保持能力およびテクスチャー特性は、タンブリングおよび静的なブラインドサンプルの両方に比べて、超音波処理によって改善された。しかし、これらの正の効果は超音波強度に大きく依存していた。より高い強度および/またはより長い処理時間は、タンパク質の変性を引き起こした。一定の拡散係数モデルは、ブリニングの間のNaCl拡散動力学を正確に表すことができた。超音波処理は、静的条件下でブリージングされたサンプルと比較して塩の拡散を有意に高め、拡散係数は超音波強度の増加に伴って指数関数的に増加した。
デバイスの推奨事項:
Uf200ःトン ソノトロードS26d40と
リファレンス/リサーチペーパー:
シーロ、I;ヴェン、セシウム;バッラ、セシウム;ジョナス、G .;ジーク、I;フリードリヒ、L.(2009):ブタ肉中の塩化ナトリウムの拡散を向上させるための超音波アシスト硬化技術の応用。食品エンジニアリング2分の91、2009年353から362のジャーナル。

スサビノリ

超音波アプリケーション:
スサビノリからの多糖類の超音波分解:1.0グラム/ 100mLのスサビノリの多糖類(乾燥重量)の50mLの溶液をUP400Sで4時間超音波処理されています。
デバイスの推奨事項:
UP400S;パルス超音波(サイクル:/ 2秒オフで2秒)、20℃。

パウダー

超音波アプリケーション:
粉砕、脱凝集および分散を小さく、相対様均一な粒子サイズにする。
デバイスの推奨事項:
UP200St

ラットの骨

超音波アプリケーション:
5-7分で1グラムの破壊。
デバイスの推奨事項:
UP200St

ラットの肝臓

超音波アプリケーション:
UP400Sで破壊し、組織の均質化。
デバイスの推奨事項:
UP400S; 30秒間3回;冷やして。
リファレンス/リサーチペーパー:
Oh et al. (2003): [アセチル-CoA カルボキシラーゼ遺伝子は、肝臓でステロール調節要素結合タンパク質-1によって調節される.

ラットの皮膚

超音波アプリケーション:
1分で1グラムの破壊。
デバイスの推奨事項:
UP400S

Rawolfiaコイル

超音波アプリケーション:
アルカロイドレセルピンの抽出。
デバイスの推奨事項:
UP100H

レバウディオサイドA

超音波アプリケーション:
10グラムの乾燥及び接地ステビアの葉のサンプルを100mLの水連続攪拌下(電磁攪拌機付き)で抽出しました。 pH値を0.01 M pH7のリン酸ナトリウムを用いて制御しました。試料を(150mLのガラスビーカーに入れ、プローブ型超音波発生装置を用いて超音波処理しました。UIP500hd、20kHzの、500W)。ソノトロードの先端は約1.5cmステビアの葉のスラリーに浸漬しました。超音波装置は、350Wの電力出力に設定しました。 5〜10分間350 Wの穏やかな音波処理処置。 30°Cの一定の処理温度でレバウジオシドA 100グラムの試料当たり30〜34グラムの収量を得ました。超音波処理後、抽出液を遠心分離し、0.45μmの微多孔膜を通して濾過します。濾液を総レバウジオシドA含有量分析のために採取しました。総レバウジオシドAのコンテンツの抽出収率は、HPLCにより分析しました。
無溶剤型超音波支援抽出によって、レバウジオシドAの高収量は、熱抽出または浸漬などの従来の抽出法と比較して得ました。
デバイスの推奨事項:
UIP500hd

ライススターチ

超音波アプリケーション:
破壊、デンプン単離、及び20に米粉のスラリー(33%)におけるタンパク質およびデンプンの間の非共有結合の破断 – 40分。
デバイスの推奨事項:
UP500hd;20歳 – 40分。

ワムシ

超音波アプリケーション:
mesozooplanktonの細胞破壊:超音波処理によって58〜85%の間の殺傷率が達成された4つの流量(200、400、520及び800lh-1)と4つの振幅(25、50、75、100%)を以下の条件で。
デバイスの推奨事項:
UP2000 フローセルと
リファレンス/リサーチペーパー:
Viitasloら。 (2005):バラスト水処理剤としてオゾン、紫外線、超音波および過酸化水素 – 低生理食塩水汽水でMesozooplanktonを用いた実験。

S.フラジリス

超音波アプリケーション:
4分でgalactokineaseのリリース。
デバイスの推奨事項:
UP200St

サッカロマイセス・セレビシエ(Saccharomyces cerevisiae)

超音波アプリケーション:
破壊
デバイスの推奨事項:
UP400S
リファレンス/リサーチペーパー:
ゲレロ、S ,;ロペス・マロ、A .; Alzamora、S. M.(2001):サッカロマイセス・セレビシエ(Saccharomyces cerevisiae)の生存に対する超音波の影響:温度、pHおよび振幅の影響。 INNOV。食品サイ。 EMERG技術総合。 2001分の2。 PP。31-39。

サッカロマイセス・セレビシエ(Saccharomyces cerevisiae)

超音波アプリケーション:
サブロー成長培地中や生理食塩水でサッカロマイセス・セレビシエの超音波不活性化。
デバイスの推奨事項:
UP400S
リファレンス/リサーチペーパー:
うん、A.ジラネク,V.;グラビン、P.バーンズ、M.ベイツ、D.(2007):バレルと板洗浄と消毒のための高出力超音波の適用に関する研究。オーストラニュージーランドワインインダスト。J. 22(3)/ 2007.pp. 96-104。

サルモネラSenftenbergの775W GR-

超音波アプリケーション:
たMcIlvaineクエン酸 - リン酸緩衝液または栄養ブロス中のサルモネラSenftenbergの775W GR-の超音波の不活性化。
デバイスの推奨事項:
UP100H
リファレンス/リサーチペーパー:
アルバレス、私は;マナス、P .; Virtoの、R .;コンドン、S.(2006):異なる水活動の圧力の下で、超音波によるサルモネラSenftenbergの775Wの不活性化。 int型。 J.食品Microbiol。 2006分の108。 PP。218-225。

丹参のブンゲ

超音波アプリケーション:
ナトリウムダンシェンス四のタンシノン(dihydrotanshione I、タンシノンI、クリプトおよびタンシノンIIA):生物学的活性化合物の抽出。
デバイスの推奨事項:
UP100H

サルビア・オフィシナリス

超音波アプリケーション:
2時間未満でサルビア・オフィシナリス(セージ)からの活性化合物の抽出。
デバイスの推奨事項:
UP50H

血清

超音波アプリケーション:
均一化
デバイスの推奨事項:
Uf200ःトン

ヒツジ嚢胞性肝臓、肺および陽性血(エキノコックスgranulosus抗原)

超音波アプリケーション:
ヒツジ嚢胞性肝臓、肺および陽性血液(子羊でエキノコックスgranulosus抗原):全く無傷protoscolicesが見えなくなるまで、サンプルを氷上で2×15秒間超音波処理しました。
デバイスの推奨事項:
UP200S; 2×15秒。
リファレンス/リサーチペーパー:
Tabarら。 (2009):羊におけるエキノコックスgranulosus抗原の包虫流体、protoscolex及び全身に対する抗体応答。

Sorbitantトリオレエート、エタノール(溶剤など)とBi-2212粉末

超音波アプリケーション:
分散剤(溶媒など)Sorbitantトリオレエート、エタノールおよびBi-2212粉末を含むスラリーを解凝集。
デバイスの推奨事項:
UP200S; 3分間。
リファレンス/リサーチペーパー:
モーラら。 (2009):構造セラミックタイル上の超伝導皮膜の作製。

大豆イソフラボン

超音波アプリケーション:
水および溶媒中の大豆イソフラボンの超音波抽出。抽出効率は最大15%増加した収率。
デバイスの推奨事項:
UP200St
リファレンス/リサーチペーパー:
Rostagnoら。 (2003)、Vilkhu、Kによって参照.;マナセ、R .;モーソン、R .; Ashokkumar、M.(2011):食品成分の超音波回復と変更。中:風水/バルボサ-カノバス/ワイス(2011):食品・バイオプロセスのための超音波技術。ニューヨーク:スプリンガー、2011頁345から368まで。

大豆タンパク

超音波アプリケーション:
水中の大豆蛋白質とアルカリ(水酸化ナトリウム)の超音波抽出。53%の収率増加。インライン超音波処理は、バッチ抽出としてより効率的であることが判明しました(インライン超音波処理は、バッチ超音波処理よりも23%高い収率を与えました)。
デバイスの推奨事項:
UIP1000hd バッチ/ビーカーのためのインライン超音波処理のためのフローセルリアクターを有します。
リファレンス/リサーチペーパー:
Vilkhu、Kによって参照モールトンと王(1982);マナセ、R .;モーソン、R .; Ashokkumar、M.(2011):食品成分の超音波回復と変更。中:風水/バルボサ-カノバス/ワイス(2011):食品・バイオプロセスのための超音波技術。ニューヨーク:スプリンガー、2011頁345から368まで。

精子頭部(ヒト)

超音波アプリケーション:
10分の中断。
デバイスの推奨事項:
UP100H

精子尾(ヒト)

超音波アプリケーション:
すぐに破壊
デバイスの推奨事項:
UP100H

ステビアバート。

超音波アプリケーション:
超音波4つの粒子サイズを有するステビアからの乾燥葉を10gのサンプルからステビオシドグリコシドの抽出(0.315ミリメートル、2ミリメートル、6.3ミリメートル、乾燥葉を粉砕)異なる溶媒と混合した:蒸留水、水/エタノール混合物(55%そして体積比を溶媒に対する異なるサンプル量の70%):1/10、1/8、1/5(V)を、室温で超音波に曝さ/ wです。超音波処理時間: < 5 min. デバイスの推奨事項:
UP200St