Ultraschallextraktion von Pektin aus Obst- und Bioabfällen
- Pektine sind sehr häufig verwendete Lebensmittelzusatzstoffe, die hauptsächlich wegen ihrer gelierenden Wirkung zugesetzt werden.
- Die Ultraschallextraktion erhöht die Ausbeute und Qualität von Pektinextrakten erheblich.
- Die Ultraschallbehandlung ist für ihre prozessintensivierende Wirkung bekannt, die bereits in zahlreichen industriellen Verfahren genutzt wird.
Pektine und Pektinextraktion
Pektin ist ein natürliches, komplexes Polysaccharid (Heteropolysaccharid), das insbesondere in den Zellwänden von Früchten vorkommt, vor allem in Zitrusfrüchten und Apfeltrester. Hohe Pektingehalte finden sich sowohl in Apfel- als auch in Zitrusfruchtschalen. Apfeltrester enthält bezogen auf die Trockenmasse 10–15% Pektin, während Zitrusfruchtschalen 20–30% enthalten. Pektine sind biokompatible, biologisch abbaubare und nachwachsende Polysaccharide mit hervorragenden Gelier- und Verdickungseigenschaften, die sie zu besonders geschätzten Zusatzstoffen machen. Sie werden in großem Umfang in Lebensmitteln, Kosmetika und pharmazeutischen Produkten zur Modifizierung der Rheologie eingesetzt und dienen dabei als Gelier-, Überzugs-, Stabilisierungs- und Verdickungsmittel sowie in einigen Formulierungen als Emulgatoren. Die Ultraschallextraktion ist eine effiziente Methode zur Isolierung hochwertiger Pektine aus Fruchtschalen und Trester, die die Ausbeute erhöht und gleichzeitig die Verarbeitungszeit und die Gesamtkosten senkt.
Ultraschallgerät UIP1000hdT mit Sonotrode zur Extraktion von Pektinen und Phenolen aus Obstabfällen.
Ultraschallextraktion von Pektin
Die Ultraschallextraktion ist eine schonende, nichtthermische Behandlung, die in zahlreichen Prozessen der Lebensmittelverarbeitung eingesetzt wird. Bei der Extraktion von Pektinen aus Obst und Gemüse liefert die Ultraschallbehandlung hochwertiges Pektin. Ultraschallextrahierte Pektine zeichnen sich durch ihren Gehalt an Anhydrouronsäure, Methoxylgruppen und Calciumpektat sowie durch ihren Veresterungsgrad aus. Die schonenden Bedingungen der Ultraschallextraktion verhindern einen thermischen Abbau der hitzeempfindlichen Pektine.
Qualität und Reinheit des extrahierten Pektins können je nach Anhydrogalacturonsäuregehalt, Veresterungsgrad und Aschegehalt variieren. Pektin mit hohem Molekulargewicht, niedrigem Aschegehalt (unter 10%) und hohem Anhydrogalacturonsäuregehalt (über 65%) gilt als hochwertig. Da sich die Intensität der Ultraschallbehandlung sehr präzise steuern lässt, können die Eigenschaften des Pektinextrakts durch die Einstellung von Amplitude, Extraktionstemperatur, Druck, Verweilzeit und Lösungsmittel beeinflusst werden.
Die Ultraschallextraktion lässt sich mit verschiedenen Lösungsmitteln durchführen, beispielsweise mit Wasser, Zitronensäure, Salpetersäurelösung (HNO3, pH 2,0) oder Ammoniumoxalat/Oxalsäure. Dadurch lässt sich die Ultraschallbehandlung auch in bestehende Extraktionslinien integrieren (Nachrüstung).
- hohe Gelierfähigkeit
- gute Dispergierbarkeit
- Pektinfarbe
- hohen Calciumpektatgehalt
- geringeren Abbau
- Umweltfreundlichkeit
Obstabfälle als Rohstoffquelle: Hochleistungsultraschall wurde bereits erfolgreich zur Isolierung von Pektinen aus Apfeltrester, Zitrusfruchtschalen (beispielsweise von Orangen, Zitronen und Grapefruits), Traubentrester, Granatäpfeln, Zuckerrübenschnitzeln, Drachenfruchtschalen, Kladodien des Feigenkaktus, Passionsfruchtschalen und Mangoschalen eingesetzt.
Pektinfällung nach der Ultraschallextraktion
Die Zugabe von Ethanol zu einer Extraktlösung kann helfen, Pektin durch einen als Fällung bezeichneten Prozess abzutrennen. Pektin, ein komplexes Polysaccharid in den Zellwänden von Pflanzen, ist unter normalen Bedingungen wasserlöslich. Durch die Zugabe von Ethanol wird jedoch die Lösungsmittelumgebung verändert, wodurch die Löslichkeit von Pektin sinken und es aus der Lösung ausfallen kann.
Die chemischen Vorgänge bei der Pektinfällung mit Ethanol lassen sich anhand von drei Reaktionen erklären:
- Aufbrechen von Wasserstoffbrückenbindungen: Pektinmoleküle werden durch Wasserstoffbrückenbindungen zusammengehalten, die zu ihrer Löslichkeit in Wasser beitragen. Ethanol stört diese Wasserstoffbrückenbindungen, indem es mit Wassermolekülen um Bindungsstellen an den Pektinmolekülen konkurriert. Wenn Ethanolmoleküle die Wassermoleküle in der Umgebung der Pektinmoleküle ersetzen, werden die Wasserstoffbrückenbindungen zwischen den Pektinmolekülen geschwächt, wodurch deren Löslichkeit im Lösungsmittel abnimmt.
- Verringerte Lösungsmittelpolarität: Ethanol ist weniger polar als Wasser und kann daher polare Substanzen wie Pektin schlechter lösen. Wird der Extraktlösung Ethanol zugesetzt, nimmt die Gesamtpolarität des Lösungsmittels ab, sodass es für die Pektinmoleküle weniger günstig ist, in Lösung zu bleiben. Dadurch fällt Pektin aus der Lösung aus, da es im Ethanol-Wasser-Gemisch weniger löslich ist.
- Erhöhte Pektinkonzentration: Wenn Pektinmoleküle aus der Lösung ausfallen, steigt die Pektinkonzentration in der verbleibenden Lösung. Dadurch lässt sich das Pektin leichter durch Filtration oder Zentrifugation von der flüssigen Phase trennen.
Die Fällung von Pektin mit Ethanol ist eine einfache und wirksame Methode zur Isolierung von Pektinen aus der Extraktlösung. Dieser Prozessschritt lässt sich problemlos nach der Ultraschallextraktion von Pektin durchführen. Die Zugabe von Ethanol zur Extraktlösung verändert die Lösungsmittelumgebung so, dass die Löslichkeit von Pektin sinkt, wodurch es ausfällt und anschließend von der Lösung getrennt werden kann. Diese Technik wird häufig bei der Extraktion und Reinigung von Pektin aus Pflanzenmaterial für verschiedene industrielle Anwendungen und Lebensmittelanwendungen eingesetzt.
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- höhere Ausbeute
- bessere Qualität
- nichtthermisch
- verkürzte Extraktionszeit
- Prozessintensivierung
- Nachrüstung möglich
- umweltfreundliche Extraktion
Industrielle Ultraschallgeräte zur Pektinextraktion
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Alle digitalen Ultraschallgeräte verfügen über ein Farb-Touchdisplay, eine integrierte SD-Karte zur automatischen Datenprotokollierung und eine Fernsteuerung über den Browser zur umfassenden Prozessüberwachung. Die ausgereiften Ultraschallsysteme von Hielscher ermöglichen auf einfache Weise eine weitreichende Prozessstandardisierung und Qualitätskontrolle.
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Die folgende Tabelle gibt Ihnen einen Überblick über die ungefähre Verarbeitungskapazität unserer Ultraschallgeräte:
| Chargenvolumen | Volumenstrom | Empfohlene Geräte |
|---|---|---|
| 10 bis 2000mL | 20 bis 400mL/min | UP200Ht, UP400St |
| 0,1 bis 20L | 0,2 bis 4L/min | UIP2000hdT |
| 10 bis 100L | 2 bis 10L/min | UIP4000 |
| n.a. | 10 bis 100L/min | UIP16000 |
| n.a. | höher | Cluster aus UIP16000 |
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Labor-Ultraschallgerät UP200Ht bei der Extraktion von Pektinen aus Grapefruitschalen mit Wasser als Lösungsmittel.
Forschungsergebnisse zur Ultraschallextraktion von Pektin
Tomatenabfälle: Um lange Extraktionszeiten (12–24 h) beim Rückflussverfahren zu vermeiden, wurde die Ultraschallbehandlung zur zeitlichen Intensivierung des Extraktionsprozesses eingesetzt (15, 30, 45, 60 und 90 min). Je nach Extraktionszeit betrugen die Pektinausbeuten im ersten Ultraschallextraktionsschritt bei Temperaturen von 60°C und 80°C jeweils 15,2–17,2% bzw. 16,3–18,5%. Bei einem zweiten Ultraschallextraktionsschritt stieg die Ausbeute an Pektinen aus Tomatenabfällen je nach Temperatur und Dauer auf 34–36%. Offensichtlich verstärkt die Ultraschallextraktion den Aufschluss der Zellwandmatrix der Tomate und verbessert dadurch die Wechselwirkungen zwischen Lösungsmittel und extrahiertem Material.
Die ultraschallextrahierten Pektine lassen sich als hochmethoxylierte Pektine (HM-Pektin) mit schnell gelierenden Eigenschaften (DE größer als 70%) und einem Veresterungsgrad von 73,3–85,4% einordnen. n. Der gemessene Calciumpektatgehalt des ultraschallextrahierten Pektins lag je nach Extraktionsparametern (Temperatur und Dauer) zwischen 41,4% und 97,5%. Bei höherer Ultraschallextraktionstemperatur sind die Calciumpektatgehalte höher (91–97%) und stellen damit im Vergleich zur konventionellen Extraktion einen wichtigen Parameter für die Gelierfähigkeit des Pektins dar.
Eine konventionelle Lösungsmittelextraktion über 24hr liefert ähnliche Pektinausbeuten wie eine Ultraschallextraktion über 15 min. Aus den erzielten Ergebnissen lässt sich schließen, dass die Ultraschallbehandlung die Extraktionszeit erheblich verkürzt. Die NMR- und FTIR-Spektroskopie bestätigen das Vorliegen von überwiegend verestertem Pektin in allen untersuchten Proben. [Grassino et al. 2016]
Passionsfruchtschalen: Die Extraktionsausbeute, der Galacturonsäuregehalt und der Veresterungsgrad wurden als Indikatoren für die Extraktionseffizienz herangezogen. Die höchste durch ultraschallunterstützte Extraktion erzielte Pektinausbeute betrug 12,67% (Extraktionsbedingungen: 85ºC, 664 W/cm2, pH 2,0 und 10 min). Unter denselben Bedingungen wurde eine konventionelle Extraktion durch Erhitzen durchgeführt, deren Ergebnis 7,95% betrug. Diese Ergebnisse stimmen mit anderen Studien überein, die über die kurze Zeit für eine wirksame ultraschallunterstützte Extraktion von Polysacchariden berichten, darunter Pektin, Hemicellulosen und andere wasserlösliche Polysaccharide. Zudem wurde beobachtet, dass die Extraktionsausbeute durch Ultraschallunterstützung auf das 1,6-Fache anstieg. Die erzielten Ergebnisse zeigten, dass Ultraschall eine effiziente und zeitsparende Technik zur Extraktion von Pektin aus Passionsfruchtschalen ist. [Freitas de Oliveira et al. 2016]
Kladodien des Feigenkaktus: Die ultraschallunterstützte Extraktion (UAE) von Pektin aus Kladodien von Opuntia ficus indica (OFI) nach Entfernung der Schleimstoffe wurde mithilfe der Antwortflächenmethodik untersucht. Die Prozessvariablen wurden mit einem isovarianten zentral zusammengesetzten Versuchsplan optimiert, um die Pektinextraktionsausbeute zu verbessern. Die ermittelten optimalen Bedingungen waren: Beschallungsdauer 70 min, Temperatur 70, pH 1,5 und ein Wasser-Material-Verhältnis von 30 ml/g. Diese Bedingungen wurden validiert, und die experimentelle Extraktionsausbeute betrug 18,14% ± 1,41%, was nahe am vorhergesagten Wert (19,06%) lag. Somit stellt die Ultraschallextraktion dank ihrer hohen Effizienz, die in kürzerer Zeit und bei niedrigeren Temperaturen erreicht wurde, eine vielversprechende Alternative zum konventionellen Extraktionsverfahren dar. Das durch Ultraschallextraktion aus OFI-Kladodien gewonnene Pektin (UAEPC) weist einen niedrigen Veresterungsgrad, einen hohen Uronsäuregehalt, wichtige funktionelle Eigenschaften und eine gute radikalfangende Aktivität auf. Diese Ergebnisse sprechen für den Einsatz von UAEPC als potenziellem Zusatzstoff in der Lebensmittelindustrie. [Bayar et al. 2017]
Traubentrester: In der Forschungsarbeit „Ultrasound-assisted extraction of pectins from grape pomace using citric acid: A response surface methodology approach“ wird Ultraschall eingesetzt, um Pektine aus Traubentrester mit Zitronensäure als Extraktionsmittel zu gewinnen. Nach der Antwortflächenmethodik lässt sich die höchste Pektinausbeute (∼32,3%) erzielen, wenn die Ultraschallextraktion bei 75ºC über 60 min mit einer Zitronensäurelösung bei pH 2,0 durchgeführt wird. Diese pektischen Polysaccharide, die hauptsächlich aus Galacturonsäureeinheiten bestehen (∼97% der Gesamtzucker), weisen ein durchschnittliches Molekulargewicht von 163,9kDa und einen Veresterungsgrad (DE) von 55,2% auf.
Die Oberflächenmorphologie des beschallten Traubentresters zeigt, dass die Ultraschallbehandlung eine wichtige Rolle beim Aufschluss des pflanzlichen Gewebes und bei der Steigerung der Extraktionsausbeuten spielt. Die nach der Ultraschallextraktion von Pektinen unter optimalen Bedingungen (75°C, 60 min, pH 2,0) erzielte Ausbeute war 20% höher als die Ausbeute bei einer Extraktion unter denselben Temperatur-, Zeit- und pH-Bedingungen ohne Ultraschallunterstützung. Darüber hinaus wiesen die durch Ultraschallextraktion gewonnenen Pektine ein höheres durchschnittliches Molekulargewicht auf. [Minjares-Fuentes et al. 2014]
Wissenswertes
Was ist Pektin?
Pektin ist ein natürlich vorkommendes Heteropolysaccharid, das hauptsächlich in Früchten wie Apfeltrester und Zitrusfrüchten vorkommt. Pektine, auch als pektische Polysaccharide bezeichnet, sind reich an Galacturonsäure. Innerhalb der Pektingruppe wurden mehrere unterschiedliche Polysaccharide identifiziert. Homogalacturonane sind lineare Ketten aus α-(1–4)-verknüpfter D-Galacturonsäure. Substituierte Galacturonane zeichnen sich durch angehängte Saccharidreste aus, die von einem Grundgerüst aus D-Galacturonsäureresten abzweigen, beispielsweise D-Xylose bei Xylogalacturonan oder D-Apiose bei Apiogalacturonan. Rhamnogalacturonan-I-Pektine (RG-I) enthalten ein Grundgerüst aus dem sich wiederholenden Disaccharid: 4)-α-D-Galacturonsäure-(1,2)-α-L-Rhamnose-(1. Viele Rhamnosereste tragen Seitenketten aus verschiedenen neutralen Zuckern. Die neutralen Zucker sind hauptsächlich D-Galactose, L-Arabinose und D-Xylose. Art und Anteil der neutralen Zucker variieren je nach Herkunft des Pektins.
Ein weiterer Strukturtyp von Pektin ist Rhamnogalacturonan II (RG-II), ein komplexes, stark verzweigtes Polysaccharid, das in der Natur seltener vorkommt. Das Grundgerüst von Rhamnogalacturonan II besteht ausschließlich aus D-Galacturonsäureeinheiten. Isoliertes Pektin hat typischerweise ein Molekulargewicht von 60.000–130.000 g/mol, das je nach Herkunft und Extraktionsbedingungen variiert.
Was beeinflusst die Geliereigenschaften von Pektin?
Die Gelierung von Pektin wird durch pH-Wert, Temperatur, Ionenstärke (andere gelöste Stoffe), Molekülgröße, Methylierungsgrad (DM), Seitenkettenanteil und Gesamtladungsdichte bestimmt. In Pflanzengeweben kommt Pektin in wasserlöslichen („freien“) und wasserunlöslichen Fraktionen vor. Die Löslichkeit nimmt im Allgemeinen mit abnehmendem Molekulargewicht und häufig mit höherem Methylestergehalt zu, wird aber auch durch pH-Wert, Temperatur und die weiteren gelösten Stoffe beeinflusst.
Anhand des Methylierungsgrads werden zwei funktionelle Klassen unterschieden:
- Hochmethoxyliertes Pektin (HMP; DM größer als 50%) geliert in sauren Medien (pH 2,0–3,5) bei hohem Gehalt an löslichen Feststoffen (≥55 wt% Saccharose), vorwiegend durch Wasserstoffbrückenbindungen und hydrophobe Assoziationen, die die elektrostatische Abstoßung unterdrücken.
- Niedrigmethoxyliertes Pektin (LMP; DM kleiner als 50%) geliert über einen breiteren pH-Bereich (2,0–6,0) durch Ca²⁺-vermittelte ionische Vernetzung („Egg-Box“-Verknüpfungszonen) zwischen benachbarten Carboxylgruppen.
Wie werden Pektine verwendet?
In der Lebensmittelindustrie wird Pektin Marmeladen, Fruchtaufstrichen, Konfitüren, Gelees, Getränken, Saucen, Tiefkühlkost, Süßwaren und Backwaren zugesetzt. In Geleesüßwaren sorgt Pektin für eine gute Gelstruktur, einen klaren Biss und eine gute Aromafreisetzung. Pektin wird außerdem zur Stabilisierung saurer Proteingetränke wie Trinkjoghurt, zur Verbesserung von Textur, Mundgefühl und Fruchtfleischstabilität in saftbasierten Getränken sowie als Fettersatz in Backwaren eingesetzt. In kalorienreduzierten bzw. kalorienarmen Produkten werden Pektine als Fett- und/oder Zuckerersatz zugesetzt.
In der pharmazeutischen Industrie wird es zur Senkung des Cholesterinspiegels im Blut und zur Linderung von Magen-Darm-Beschwerden verwendet.
Weitere industrielle Anwendungen von Pektin umfassen den Einsatz in essbaren Filmen, als Emulsionsstabilisator für Wasser/Öl-Emulsionen, als Rheologiemodifikator und Weichmacher sowie als Leimungs- bzw. Schlichtemittel für Papier und Textilien usw.
Was sind gute Pektinquellen?
Obwohl Pektin in den Zellwänden der meisten Pflanzen vorkommt, sind Apfeltrester und Orangenschalen die beiden wichtigsten Quellen für kommerziell hergestellte Pektine, da ihre Pektine eine besonders hohe Qualität aufweisen. Pektine aus anderen Quellen zeigen häufig ein schlechtes Gelierverhalten. Unter den Früchten sind neben Äpfeln und Zitrusfrüchten auch Pfirsiche, Aprikosen, Birnen, Guaven, Quitten, Pflaumen und Stachelbeeren für ihren hohen Pektingehalt bekannt. Bei Gemüse sind Tomaten, Karotten und Kartoffeln für ihren hohen Pektingehalt bekannt.
Warum wird Tomatenfruchtfleisch zur Pektinproduktion verwendet?
Jährlich werden Millionen Tonnen Tomaten (Lycopersicon esculentum Mill.) zu Produkten wie Tomatensaft, Tomatenmark, Tomatenpüree, Ketchup, Tomatensauce und Salsa verarbeitet, wobei große Mengen an Abfällen entstehen. Die nach dem Pressen von Tomaten anfallenden Tomatenabfälle bestehen aus 33% Samen, 27% Schalen und 40% Fruchtfleisch, während getrockneter Tomatentrester 44% Samen und 56% Fruchtfleisch und Schalen enthält. Tomatenabfälle sind eine hervorragende Rohstoffquelle für die Herstellung von Pektinen.
Literatur/Quellen
- Bayar N., Bouallegue T., Achour M., Kriaa M., Bougatef A., Kammoun R. (2017): Ultrasonic extraction of pectin from Opuntia ficus indica cladodes after mucilage removal: Optimization of experimental conditions and evaluation of chemical and functional properties. Ultrasonic pectin extraction from prickly pear cladodes. Food Chemistry 235, 2017.
- Raffaella Boggia, Federica Turrini, Carla Villa, Chiara Lacapra, Paola Zunin, Brunella Parodi (2016): Green Extraction from Pomegranate Marcs for the Production of Functional Foods and Cosmetics. Pharmaceuticals (Basel). 2016 Dec; 9(4): 63.
- Cibele Freitas de Oliveira, Diego Giordani, Rafael Lutckemier, Poliana Deyse Gurak, Florencia Cladera-Olivera, Ligia Damasceno Ferreira Marczak (2016): Extraction of pectin from passion fruit peel assisted by ultrasound. LWT – Food Science and Technology 71, 2016. 110-115.
- Antonela Nincevic Grassino, Mladen Brncic, Drazen Vikic-Topic, Suncica Roca, Maja Dent, Suzana Rimac Brncíc (2016): Ultrasound assisted extraction and characterization of pectin from tomato waste. Food Chemistry 198 (2016) 93–100.
- Krauser, S.; Saeed, A.; Iqbal, M. (2015): Comparative Studies on Conventional (Water-Hot Acid) and Non-Conventional (Ultrasonication) Procedures for Extraction and Chemical Characterization of Pectin from Peel Waste of Mango Cultivar Chausna. Pak. J. Bot., 47(4): 1527-1533, 2015.
- R. Minjares-Fuentes, A. Femenia, M.C. Garaua, J.A. Meza-Velázquez, S. Simal, C. Rosselló (2014): Ultrasound-assisted extraction of pectins from grape pomace using citric acid: A response surface methodology approach. Carbohydrate Polymers 106 (2014) 179–189.

