Herstellung von Chitin und Chitosan aus Pilzen
Die Ultraschallbehandlung ist eine hocheffiziente Methode zur Freisetzung von Chitin und Chitosan aus pilzbasierten Rohstoffen wie Speise- und Heilpilzen. Chitin und Chitosan müssen in nachgelagerten Verarbeitungsschritten depolymerisiert und deacetyliert werden, um ein hochwertiges Biopolymer zu erhalten. Die ultraschallunterstützte Depolymerisation und Deacetylierung ist ein hochwirksames, einfaches und schnelles Verfahren, das hochwertige Chitosane mit hohem Molekulargewicht und hervorragender Bioverfügbarkeit liefert.
Chitin und Chitosan aus Pilzen durch Ultraschallbehandlung
Speise- und Heilpilze wie Lentinus edodes (Shiitake), Ganoderma lucidum (Lingzhi oder Reishi), Inonotus obliquus (Chaga), Agaricus bisporus (Champignon), Hericium erinaceus (Igelstachelbart), Cordyceps sinensis (Chinesischer Raupenpilz), Grifola frondosa (Klapperschwamm), Trametes versicolor (Coriolus versicolor, Polyporus versicolor, Schmetterlingstramete) und viele andere Pilzarten werden häufig als Lebensmittel und zur Extraktion bioaktiver Verbindungen verwendet. Diese Pilze sowie Verarbeitungsrückstände (Pilzabfälle) können zur Herstellung von Chitosan genutzt werden. Die Ultraschallbehandlung fördert nicht nur die Freisetzung von Chitin aus der Zellwandstruktur der Pilze, sondern treibt auch die Umwandlung von Chitin in wertvolles Chitosan durch ultraschallunterstützte Depolymerisation und Deacetylierung voran.
Eine intensive Ultraschallbehandlung mit einem Sonotrodensystem fördert die Depolymerisation und Deacetylierung von Chitin und führt so zur Bildung von Chitosan. Chitin ist ein natürlich vorkommendes Polysaccharid, das in den Exoskeletten von Krebstieren und Insekten sowie in den Zellwänden bestimmter Pilze vorkommt. Chitosan wird aus Chitin gewonnen, indem die Acetylgruppen vom Chitinmolekül entfernt werden.
Ultraschallverfahren zur Umwandlung von Pilzchitin in Chitosan
Bei der Herstellung von Chitosan aus Chitin mittels intensiver Ultraschallbehandlung wird eine Chitinsuspension mit hochintensiven, niederfrequenten Ultraschallwellen beschallt, typischerweise im Bereich von 20 kHz bis 30 kHz. Der Prozess erzeugt intensive akustische Kavitation, also die Bildung, das Wachstum und den Kollaps mikroskopisch kleiner Vakuumblasen in der Flüssigkeit. Die Kavitation erzeugt lokal extrem hohe Scherkräfte, hohe Temperaturen (bis zu mehreren tausend Grad Celsius) und Drücke (bis zu mehreren hundert Atmosphären) in der die Kavitationsblasen umgebenden Flüssigkeit. Diese extremen Bedingungen tragen zum Abbau des Chitinpolymers und zur anschließenden Deacetylierung bei.
Rasterelektronenmikroskopische Aufnahmen von Chitinen und Chitosanen aus zwei Pilzarten: a) Chitin aus L. vellereus; b) Chitin aus P. ribis; c) Chitosan aus L.vellereus; d) Chitosan aus P. ribis.
Bild und Studie: © Erdoğan et al., 2017
Ultraschallgestützte Depolymerisation von Chitin
Die Depolymerisation von Chitin erfolgt durch das Zusammenwirken mechanischer Kräfte, etwa durch Mikroströmungen und Flüssigkeitsstrahlen, sowie durch ultraschallinitiierte chemische Reaktionen, die von freien Radikalen und anderen während der Kavitation gebildeten reaktiven Spezies ausgelöst werden. Die bei der Kavitation erzeugten Hochdruckwellen setzen die Chitinketten einer Scherbeanspruchung aus, wodurch das Polymer in kleinere Fragmente gespalten wird.
Ultraschallgestützte Deacetylierung von Chitin
Neben der Depolymerisation fördert eine intensive Ultraschallbehandlung auch die Deacetylierung von Chitin. Bei der Deacetylierung werden Acetylgruppen vom Chitinmolekül entfernt, wodurch Chitosan entsteht. Intensive Ultraschallenergie, insbesondere die bei der Kavitation erzeugten hohen Temperaturen und Drücke, beschleunigt die Deacetylierungsreaktion. Die durch Kavitation geschaffenen reaktiven Bedingungen helfen, die Bindungen der Acetylgruppen im Chitin zu spalten, was zur Freisetzung von Essigsäure und zur Umwandlung von Chitin in Chitosan führt.
Insgesamt verstärkt eine intensive Ultraschallbehandlung sowohl die Depolymerisation als auch die Deacetylierung, indem sie die notwendige mechanische und chemische Energie bereitstellt, um das Chitinpolymer abzubauen und die Umwandlung zu Chitosan zu erleichtern. Dieses Verfahren bietet eine schnelle und effiziente Methode zur Herstellung von Chitosan aus Chitin mit zahlreichen Anwendungen in verschiedenen Branchen, darunter Pharmazie, Landwirtschaft und Biomedizintechnik.
Industrielle Herstellung von Chitosan aus Pilzen mit Leistungsultraschall
Die kommerzielle Herstellung von Chitin und Chitosan basiert hauptsächlich auf Abfällen der marinen Wirtschaftszweige (d. h. Fischerei, Gewinnung von Schalen- und Krustentieren usw.). Unterschiedliche Rohstoffquellen führen zu unterschiedlichen Chitin- und Chitosanqualitäten, wobei saisonale Schwankungen in der Fischerei Produktions- und Qualitätsschwankungen verursachen. Darüber hinaus bietet Chitosan aus Pilzen Berichten zufolge bessere Eigenschaften wie eine einheitliche Polymerkettenlänge und eine höhere Löslichkeit als Chitosan aus marinen Quellen. (Vgl. Ghormade et al., 2017) Um Chitosan gleichbleibender Qualität bereitzustellen, hat sich die Extraktion von Chitin aus Pilzarten als stabile Produktionsalternative etabliert. Chitin und Chitosan lassen sich mithilfe ultraschallgestützter Extraktions- und Deacetylierungstechnologie einfach und zuverlässig aus Pilzen herstellen. Intensive Beschallung bricht Zellstrukturen auf, um Chitin freizusetzen, und fördert den Stofftransport in wässrigen Lösungsmitteln, wodurch höhere Chitinausbeuten und eine höhere Extraktionseffizienz erzielt werden. Die anschließende ultraschallgestützte Deacetylierung wandelt das Chitin in das wertvolle Chitosan um. Sowohl die ultraschallgestützte Chitinextraktion als auch die Deacetylierung zu Chitosan lassen sich linear auf jeden kommerziellen Produktionsmaßstab skalieren.
Ultraschallgerät UP400St zur Pilzextraktion: Die Beschallung liefert hohe Ausbeuten an bioaktiven Verbindungen wie den Polysacchariden Chitin und Chitosan
Forschungsergebnisse zur ultraschallgestützten Deacetylierung von Chitin und Chitosan
Zhu et al. (2018) kommen in ihrer Studie zu dem Schluss, dass sich die ultraschallgestützte Deacetylierung als entscheidender Durchbruch erwiesen hat, da sie β-Chitin bei niedrigeren Reaktionstemperaturen in Chitosan mit einem Deacetylierungsgrad von 83–94% umwandelt. Das Bild links zeigt eine rasterelektronenmikroskopische Aufnahme von ultraschallgestützt deacetyliertem Chitosan (90 W, 15 min, 20 w/v% NaOH, 1:15 (g: mL)). (Bild und Studie: © Zhu et al., 2018)
In ihrem Versuchsprotokoll wurde eine NaOH-Lösung (20 w/v %) durch Auflösen von NaOH-Flocken in deionisiertem Wasser hergestellt. Die alkalische Lösung wurde anschließend in einem Zentrifugenröhrchen bei einem Feststoff-Flüssigkeits-Verhältnis von 1:20 (g: mL) zu GLSP-Sediment (0,5 g) gegeben. Chitosan wurde zu NaCl (40 mL, 0,2 M) und Essigsäure (0,1 M) bei einem Volumenverhältnis der Lösungen von 1:1 gegeben. Die Suspension wurde anschließend bei einer milden Temperatur von 25°C für 60 min mit einem Sonotrodengerät (250W, 20kHz) beschallt. (Vgl. Zhu et al., 2018)
Pandit et al. (2021) stellten fest, dass die Abbaugeschwindigkeit in Chitosanlösungen nur selten von der Konzentration der zum Lösen des Polymers verwendeten Säure beeinflusst wird und weitgehend von der Temperatur, der Intensität der Ultraschallwellen und der Ionenstärke der zum Lösen des Polymers verwendeten Medien abhängt. (Vgl. Pandit et al., 2021)
In einer weiteren Studie verwendeten Zhu et al. (2019) Sporenpulver von Ganoderma lucidum als pilzbasierten Rohstoff und untersuchten die ultraschallunterstützte Deacetylierung sowie die Auswirkungen von Prozessparametern wie Beschallungsdauer, Feststoff-Flüssigkeits-Verhältnis, NaOH-Konzentration und Beschallungsleistung auf den Deacetylierungsgrad (DD) von Chitosan. Der höchste DD-Wert wurde mit folgenden Ultraschallparametern erzielt: 20 min Beschallung bei 80W, 10% (g:ml) NaOH, 1:25 (g:ml). Die Oberflächenmorphologie, die chemischen Gruppen, die thermische Stabilität und die Kristallinität des mittels Ultraschall gewonnenen Chitosans wurden mit SEM, FTIR, TG und XRD untersucht. Das Forschungsteam berichtet über eine signifikante Erhöhung des Deacetylierungsgrads (DD), der dynamischen Viskosität ([η]) und des Molekulargewichts (Mv¯) des ultraschallgestützt hergestellten Chitosans. Die Ergebnisse unterstrichen, dass die ultraschallgestützte Deacetylierung von Pilzmaterial ein hochwirksames Herstellungsverfahren für Chitosan ist, das sich für biomedizinische Anwendungen eignet. (Vgl. Zhu et al., 2019)
Hervorragende Chitosanqualität durch ultraschallgestützte Depolymerisation und Deacetylierung
Ultraschallgestützte Prozesse zur Extraktion und Depolymerisation von Chitin / Chitosan lassen sich präzise steuern, und die Ultraschallprozessparameter können an die Rohstoffe und die angestrebte Endproduktqualität angepasst werden (z. B. Molekulargewicht, Deacetylierungsgrad). Dadurch lässt sich der Ultraschallprozess an äußere Faktoren anpassen, und optimale Parameter für hervorragende Ergebnisse und eine hohe Effizienz können eingestellt werden.
Ultraschallgestützt deacetyliertes Chitosan weist eine ausgezeichnete Bioverfügbarkeit und Biokompatibilität auf. Beim Vergleich der biomedizinischen Eigenschaften von ultraschallgestützt hergestellten Chitosanbiopolymeren mit thermisch gewonnenem Chitosan zeigt das ultraschallgestützt hergestellte Chitosan eine deutlich verbesserte Viabilität von Fibroblasten (L929-Zellen) sowie eine verstärkte antibakterielle Aktivität sowohl gegen Escherichia coli (E. coli) als auch gegen Staphylococcus aureus (S. aureus).
(Vgl. Zhu et al., 2018)
Rasterelektronenmikroskopische Aufnahmen (SEM) bei 100× Vergrößerung von a) Gladius, b) ultraschallbehandeltem Gladius, c) β-Chitin, d) ultraschallbehandeltem β-Chitin und e) Chitosan (Quelle: Preto et al. 2017)
Hochleistungs-Ultraschallgeräte für die Verarbeitung von Chitin und Chitosan
Die Fragmentierung von Chitin und die Deacetylierung von Chitin zu Chitosan erfordern leistungsstarke und zuverlässige Ultraschallgeräte, die hohe Amplituden liefern, eine präzise Steuerung der Prozessparameter ermöglichen und unter hoher Last sowie in anspruchsvollen Umgebungen im 24/7-Betrieb eingesetzt werden können. Das Produktsortiment von Hielscher Ultrasonics erfüllt diese Anforderungen zuverlässig. Neben einer hervorragenden Ultraschallleistung zeichnen sich die Ultraschallgeräte von Hielscher durch eine hohe Energieeffizienz aus, was einen erheblichen wirtschaftlichen Vorteil darstellt – insbesondere beim Einsatz in der kommerziellen Großproduktion.
Die Ultraschallgeräte von Hielscher sind Hochleistungssysteme, die mit Zubehör wie Sonotroden, Boostern, Reaktoren oder Durchflusszellen ausgestattet werden können, um Ihre Prozessanforderungen optimal zu erfüllen. Mit digitalem Farbdisplay, der Möglichkeit zur Voreinstellung von Beschallungsabläufen, automatischer Datenaufzeichnung auf einer integrierten SD-Karte, Fernsteuerung über einen Browser und vielen weiteren Funktionen gewährleisten die Ultraschallgeräte von Hielscher ein Höchstmaß an Prozesskontrolle und Benutzerfreundlichkeit. Dank ihrer Robustheit und hohen Belastbarkeit sind die Ultraschallsysteme von Hielscher zuverlässige Arbeitspferde in Ihrer Produktion. Die Fragmentierung und Deacetylierung von Chitin erfordern leistungsstarken Ultraschall, um die angestrebte Umsetzung und ein hochwertiges Chitosan-Endprodukt zu erzielen. Insbesondere für die Fragmentierung der Chitinflocken sowie die Depolymerisations- und Deacetylierungsschritte sind hohe Amplituden und erhöhte Drücke entscheidend. Die industriellen Ultraschallprozessoren von Hielscher Ultrasonics liefern problemlos sehr hohe Amplituden. Amplituden von bis zu 200µm können kontinuierlich im 24/7-Betrieb eingesetzt werden. Für noch höhere Amplituden sind kundenspezifische Ultraschallsonotroden erhältlich. Das Leistungsvermögen der Ultraschallsysteme von Hielscher ermöglicht eine effiziente und schnelle Depolymerisation und Deacetylierung in einem sicheren und benutzerfreundlichen Prozess.
Ultraschallreaktor mit 2000W-Ultraschallsonotrode UIP2000hdT zur Chitinextraktion aus Pilzen und anschließenden Depolymerisation / Deacetylierung
| Chargenvolumen | Durchfluss | Empfohlene Geräte |
|---|---|---|
| 1 bis 500mL | 10 bis 200mL/min | UP100H |
| 10 bis 2000mL | 20 bis 400mL/min | UP200Ht, UP400St |
| 0,1 bis 20L | 0,2 bis 4L/min | UIP2000hdT |
| 10 bis 100L | 2 bis 10L/min | UIP4000hdT |
| n.a. | 10 bis 100L/min | UIP16000 |
| n.a. | höher | Verbund aus mehreren UIP16000 |
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Synergistische Chitinbehandlung durch Ultraschall verbessert
Um die Nachteile (d. h. geringe Effizienz, hohe Energiekosten, lange Verarbeitungszeiten, toxische Lösungsmittel) der herkömmlichen chemischen und enzymatischen Deacetylierung von Chitin zu überwinden, wurde hochintensiver Ultraschall in die Verarbeitung von Chitin und Chitosan integriert. Hochintensive Beschallung und die daraus resultierenden Effekte der akustischen Kavitation führen zu einer schnellen Spaltung der Polymerketten und verringern die Polydispersität, wodurch die Synthese von Chitosan gefördert wird. Darüber hinaus intensivieren ultraschallerzeugte Scherkräfte den Stofftransport in der Lösung, sodass chemische, hydrolytische oder enzymatische Reaktionen verstärkt werden. Die Ultraschallbehandlung von Chitin kann mit bereits bestehenden Verfahren zur Chitinverarbeitung wie chemischen Methoden, Hydrolyse oder enzymatischen Verfahren kombiniert werden.
Ultraschallunterstützte chemische Deacetylierung und Depolymerisation
Da Chitin ein nicht reaktives und unlösliches Biopolymer ist, muss es die Prozessschritte der Demineralisierung, Deproteinierung und Depolymerisation / Deacetylierung durchlaufen, um lösliches und biozugängliches Chitosan zu erhalten. Diese Prozessschritte umfassen Behandlungen mit starken Säuren wie HCl und starken Basen wie NaOH und KOH. Da diese herkömmlichen Prozessschritte ineffizient und langsam sind und viel Energie erfordern, verbessert die Prozessintensivierung durch Beschallung die Chitosanherstellung erheblich. Der Einsatz von Leistungsultraschall erhöht die Chitosanausbeute und -qualität, verkürzt den Prozess von Tagen auf wenige Stunden, ermöglicht mildere Lösungsmittel und macht den gesamten Prozess energieeffizienter.
Durch Ultraschall verbesserte Deproteinierung von Chitin
Vallejo-Dominguez et al. (2021) stellten in ihrer Untersuchung zur Deproteinierung von Chitin fest: „Der Einsatz von Ultraschall zur Herstellung von Biopolymeren verringerte sowohl den Proteingehalt als auch die Partikelgröße des Chitins. Mithilfe von Ultraschall wurde Chitosan mit hohem Deacetylierungsgrad und mittlerem Molekulargewicht hergestellt.“
Ultraschallgestützte Hydrolyse zur Depolymerisation von Chitin
Bei der chemischen Hydrolyse werden entweder Säuren oder Alkalien zur Deacetylierung von Chitin verwendet, wobei die alkalische Deacetylierung (z. B. mit Natriumhydroxid NaOH) weiter verbreitet ist. Die saure Hydrolyse ist eine Alternative zur herkömmlichen chemischen Deacetylierung, bei der Lösungen organischer Säuren zur Depolymerisation von Chitin und Chitosan eingesetzt werden. Das Verfahren der sauren Hydrolyse wird vor allem dann angewendet, wenn das Molekulargewicht von Chitin und Chitosan einheitlich sein muss. Dieses herkömmliche Hydrolyseverfahren ist als langsam sowie energie- und kostenintensiv bekannt. Die Notwendigkeit starker Säuren, hoher Temperaturen und Drücke macht die hydrolytische Chitosanverarbeitung zu einem sehr teuren und zeitaufwendigen Verfahren. Die verwendeten Säuren erfordern nachgelagerte Prozesse wie Neutralisation und Entsalzung.
Durch die Integration von Hochleistungsultraschall in den Hydrolyseprozess lassen sich die für die hydrolytische Spaltung von Chitin und Chitosan erforderlichen Temperaturen und Drücke deutlich senken. Darüber hinaus ermöglicht die Beschallung niedrigere Säurekonzentrationen oder den Einsatz milderer Säuren. Dadurch wird der Prozess nachhaltiger, effizienter, kostengünstiger und umweltfreundlicher.
Ultraschallunterstützte chemische Deacetylierung
Der chemische Aufschluss und die Deacetylierung von Chitin und Chitosan erfolgen hauptsächlich durch die Behandlung von Chitin oder Chitosan mit Mineralsäuren (z. B. Salzsäure HCl), Natriumnitrit (NaNO2) oder Wasserstoffperoxid (H2O2). Ultraschall erhöht die Deacetylierungsrate und verkürzt dadurch die Reaktionszeit, die zum Erreichen des angestrebten Deacetylierungsgrads erforderlich ist. Das bedeutet, dass die Beschallung die erforderliche Verarbeitungszeit von 12–24 Stunden auf wenige Stunden reduziert. Darüber hinaus ermöglicht die Beschallung deutlich niedrigere Chemikalienkonzentrationen, beispielsweise 40% (w/w) Natriumhydroxid bei Beschallung, während ohne Ultraschall 65% (w/w) erforderlich sind.
Ultraschallgestützte enzymatische Deacetylierung
Die enzymatische Deacetylierung ist zwar ein mildes, umweltverträgliches Verfahren, ist jedoch hinsichtlich ihrer Effizienz und Kosten unwirtschaftlich. Aufgrund der komplexen, arbeitsintensiven und teuren nachgelagerten Isolierung und Reinigung der Enzyme aus dem Endprodukt wird die enzymatische Deacetylierung von Chitin nicht in der kommerziellen Produktion eingesetzt, sondern nur in wissenschaftlichen Forschungslaboren.
Eine Ultraschallvorbehandlung vor der enzymatischen Deacetylierung fragmentiert die Chitinmoleküle, vergrößert dadurch deren Oberfläche und stellt den Enzymen mehr Angriffsfläche zur Verfügung. Eine leistungsstarke Beschallung trägt zur Verbesserung der enzymatischen Deacetylierung bei und macht den Prozess wirtschaftlicher.
Literatur / Referenzen
- Ospina Álvarez S.P., Ramírez Cadavid D.A., Escobar Sierra D.M., Ossa Orozco C.P., Rojas Vahos D.F., Zapata Ocampo P., Atehortúa L. (2014): Comparison of extraction methods of chitin from Ganoderma lucidum mushroom obtained in submerged culture. Biomed Research International 2014.
- Valu M.V., Soare L.C., Sutan N.A., Ducu C., Moga S., Hritcu L., Boiangiu R.S., Carradori S. (2020): Optimization of Ultrasonic Extraction to Obtain Erinacine A and Polyphenols with Antioxidant Activity from the Fungal Biomass of Hericium erinaceus. Foods, Dec 18;9(12), 2020.
- Erdoğan, Sevil & Kaya, Murat & Akata, Ilgaz (2017): Chitin extraction and chitosan production from cell wall of two mushroom species (Lactarius vellereus and Phyllophora ribis). AIP Conference Proceedings 2017.
- Zhu, L., Chen, X., Wu, Z., Wang, G., Ahmad, Z., & Chang, M. (2019): Optimization conversion of chitosan from Ganoderma lucidum spore powder using ultrasound‐assisted deacetylation: Influence of processing parameters. Journal of Food Processing and Preservation 2019.
- Li-Fang Zhu, Jing-Song Li, John Mai, Ming-Wei Chang (2019): Ultrasound-assisted synthesis of chitosan from fungal precursors for biomedical applications. Chemical Engineering Journal, Volume 357, 2019. 498-507.
- Zhu, Lifang; Yao, Zhi-Cheng; Ahmad, Zeeshan; Li, Jing-Song; Chang, Ming-Wei (2018): Synthesis and Evaluation of Herbal Chitosan from Ganoderma Lucidum Spore Powder for Biomedical Applications. Scientific Reports 8, 2018.
- G.J. Price, P.J. West, P.F. Smith (1994): Control of polymer structure using power ultrasound. Ultrasonics Sonochemistry, Volume 1, Issue 1, 1994. S51-S57.
Wissenswertes
Wie funktionieren die ultraschallgestützte Extraktion und Deacetylierung von Chitin?
Wenn Leistungsultraschallwellen in eine Flüssigkeit oder eine Aufschlämmung eingekoppelt werden (z. B. eine Suspension aus Chitin in einem Lösungsmittel), breiten sich die Ultraschallwellen durch die Flüssigkeit aus und erzeugen abwechselnde Hochdruck- und Niederdruckzyklen. Während der Niederdruckzyklen entstehen winzige Vakuumblasen (sogenannte Kavitationsblasen), die über mehrere Druckzyklen hinweg wachsen. Sobald die Blasen eine bestimmte Größe erreicht haben und keine weitere Energie aufnehmen können, implodieren sie während eines Hochdruckzyklus heftig. Die Blasenimplosion ist durch starke kavitationsbedingte (sogenannte sonomechanische) Kräfte gekennzeichnet. Diese sonomechanischen Bedingungen treten lokal im Kavitations-Hotspot auf und sind durch sehr hohe Temperaturen von bis zu 4000K und Drücke von bis zu 1000atm sowie entsprechend hohe Temperatur- und Druckdifferenzen gekennzeichnet. Darüber hinaus entstehen Mikroturbulenzen und Flüssigkeitsströmungen mit Geschwindigkeiten von bis zu 100m/s. Die ultraschallgestützte Extraktion von Chitin und Chitosan aus Pilzen und Krebstieren sowie die Depolymerisation und Deacetylierung von Chitin beruhen hauptsächlich auf sonomechanischen Effekten: Die Bewegung und die Turbulenzen schließen Zellen auf und fördern den Stofftransport. In Kombination mit sauren oder alkalischen Lösungsmitteln können sie auch Polymerketten spalten.
Funktionsprinzip der Chitinextraktion durch Ultraschallbehandlung
Die Ultraschallextraktion bricht die Zellstruktur von Pilzen effizient auf und setzt die intrazellulären Verbindungen aus der Zellwand und dem Zellinneren (d. h. Polysaccharide wie Chitin und Chitosan sowie andere bioaktive sekundäre Pflanzenstoffe) in das Lösungsmittel frei. Die Ultraschallextraktion beruht auf dem Funktionsprinzip der akustischen Kavitation. Die Effekte der ultraschallerzeugten / akustischen Kavitation sind hohe Scherkräfte, Turbulenzen und starke Druckdifferenzen. Diese sonomechanischen Kräfte brechen Zellstrukturen wie die chitinhaltigen Pilzzellwände auf, fördern den Stofftransport zwischen Pilzbiomaterial und Lösungsmittel und führen in einem schnellen Prozess zu sehr hohen Extraktausbeuten. Darüber hinaus fördert die Beschallung die Sterilisation von Extrakten durch das Abtöten von Bakterien und Mikroorganismen. Die mikrobielle Inaktivierung durch Beschallung beruht auf der zerstörerischen Wirkung der Kavitationskräfte auf die Zellmembran, der Bildung freier Radikale und einer lokalen Erwärmung.
Funktionsprinzip der Depolymerisation und Deacetylierung durch Ultraschallbehandlung
Die Polymerketten werden vom ultraschallerzeugten Scherfeld um eine Kavitationsblase erfasst, und die Kettensegmente des Polymerknäuels in der Nähe einer kollabierenden Blase bewegen sich schneller als weiter entfernte Segmente. Durch die Relativbewegung der Polymersegmente und der Lösungsmittel entstehen Spannungen in der Polymerkette, die ausreichen, um eine Spaltung zu bewirken. Der Prozess ähnelt somit anderen Schereffekten in Polymerlösungen ~2° und liefert sehr ähnliche Ergebnisse. (Vgl. Price et al., 1994)
Chitin
Chitin ist ein N-Acetylglucosamin-Polymer (Poly-(β-(1–4)-N-acetyl-D-glucosamin)) und ein natürlich vorkommendes Polysaccharid, das im Exoskelett wirbelloser Tiere wie Krebstiere und Insekten, im Innenskelett von Kalmaren und Sepien sowie in den Zellwänden von Pilzen weit verbreitet ist. Eingebettet in die Struktur der Pilzzellwände ist Chitin für die Form und Steifigkeit der Pilzzellwand verantwortlich. Für viele Anwendungen wird Chitin durch einen Depolymerisationsprozess in sein deacetyliertes Derivat, das als Chitosan bekannt ist, umgewandelt.
Chitosan ist das häufigste und wertvollste Derivat von Chitin. Es ist ein hochmolekulares Polysaccharid aus N-Acetylglucosamin und Glucosamin, dessen Bausteine b-1,4-glykosidisch verknüpft sind.
Chitosan lässt sich durch chemische oder enzymatische N-Deacetylierung gewinnen. Bei der chemischen Deacetylierung wird die Acetylgruppe (R-NHCOCH3) durch starke Alkalien bei hohen Temperaturen abgespalten. Alternativ kann Chitosan durch enzymatische Deacetylierung synthetisiert werden. Im industriellen Produktionsmaßstab ist jedoch die chemische Deacetylierung das bevorzugte Verfahren, da die enzymatische Deacetylierung aufgrund der hohen Kosten der Deacetylase-Enzyme und der geringen erzielten Chitosanausbeuten deutlich weniger effizient ist. Die Ultraschallbehandlung wird eingesetzt, um den chemischen Abbau der (1→4)-/β-Bindung (Depolymerisation) zu intensivieren und die Deacetylierung von Chitin zu bewirken, um hochwertiges Chitosan zu erhalten.
Wird die Beschallung als Vorbehandlung für die enzymatische Deacetylierung eingesetzt, verbessern sich ebenfalls die Chitosanausbeute und -qualität.
Hielscher Ultrasonics stellt Hochleistungs-Ultraschallhomogenisatoren vom Labor- bis zum Industriemaßstab her.



