Alpha-Synuclein-Fragmentierung mit dem VialTweeter-Ultraschallgerät
α-Synuclein-Fibrillen und -Bänder werden in der wissenschaftlichen Forschung fragmentiert, um kleinere Fibrillenfragmente oder sogar einzelne Proteinmoleküle zu erzeugen, die sich mit verschiedenen experimentellen Techniken leichter analysieren lassen. Das VialTweeter-Ultraschallgerät gehört zu den am häufigsten verwendeten Ultraschallgeräten für die effiziente und zuverlässige Fragmentierung von Alpha-Synuclein.
α-Synuclein in der Forschung
Alpha-Synuclein-Fibrillen sind Proteinaggregate, die eng mit neurodegenerativen Erkrankungen wie der Parkinson-Krankheit und bestimmten Demenzformen, einschließlich der Demenz mit Lewy-Körperchen, in Verbindung stehen. Die Forschung zu Alpha-Synuclein-Fibrillen zielt darauf ab, ihre Rolle beim Fortschreiten der Erkrankungen zu verstehen und mögliche therapeutische Interventionen zu entwickeln. Durch die Zerlegung von Alpha-Synuclein-Fibrillen in kleinere Fragmente können Forschende deren spezifische strukturelle Merkmale untersuchen. Beispielsweise ermöglicht die Fragmentierung von Alpha-Synuclein-Fibrillen die Untersuchung ihrer Wechselwirkungen mit anderen Molekülen wie Proteinen, Lipiden oder kleinen Molekülen. Durch die Erzeugung kleinerer Fragmente lassen sich die Bindungsstellen und die Affinität zu diesen Interaktionspartnern effektiver untersuchen. Kleinere α-Syn-Fibrillen und -Bänder können auch eine veränderte Toxizität und veränderte biochemische Wirkungen aufweisen. Daher ist eine zuverlässige und effiziente Fragmentierungstechnik entscheidend, die bei einer schnellen und einfachen Probenbehandlung reproduzierbare Ergebnisse liefert.
Alpha-Syn-Fragmentierung mittels Ultraschall: Das VialTweeter-Ultraschallgerät ist das etablierte Ultraschallsystem zur Probenvorbereitung, das bis zu 10 Probengefäße gleichzeitig unter exakt gleichen Bedingungen beschallt. Programmierbare Einstellungen ermöglichen die einfache und schnelle Wiederholung derselben Experimente, wodurch äußerst zuverlässige und reproduzierbare Ergebnisse bei der Fragmentierung von Alpha-Synuclein-Fibrillen erzielt werden.
VialTweeter-Ultraschallgerät zur gleichzeitigen Fragmentierung mehrerer Alpha-Synuclein-Proben mittels Ultraschall.
α-Synuclein-Probenvorbereitung mit einem Ultraschallgerät
Ein Ansatz zur Untersuchung von Alpha-Synuclein-Fibrillen umfasst deren Extraktion und Fragmentierung mit Techniken wie der Ultraschallbehandlung. Die Ultraschallbehandlung ist ein Verfahren, bei dem niederfrequente Ultraschallwellen hoher Intensität eingesetzt werden, um Proteinaggregate aufzubrechen und zu zerlegen, wodurch kleinere Fibrillen oder einzelne Proteinmoleküle freigesetzt werden. Das Ultraschallgerät VialTweeter wird zu diesem Zweck häufig in Forschungsstudien zu α-Synuclein eingesetzt.
Zahlreiche Forschungsstudien beschreiben präzise Protokolle zur Probenvorbereitung durch Beschallung von Alpha-Synuclein-Fibrillen, bei denen der Hielscher VialTweeter zur effizienten und zuverlässigen Fragmentierung von α-Synuclein-Fibrillen eingesetzt wird. Durch die Fragmentierung der Fibrillen mittels Ultraschall können Forschende die entstehenden Produkte analysieren und deren Struktur, Toxizität und Wechselwirkungen mit anderen Molekülen untersuchen. Diese Forschung liefert wichtige Einblicke in die Mechanismen, die der Neurodegeneration zugrunde liegen, und kann potenziell neue therapeutische Zielstrukturen identifizieren. Die gut etablierten Protokolle zur Beschallung von α-Synuclein mit dem VialTweeter-Ultraschallgerät ermöglichen zuverlässige und reproduzierbare Ergebnisse.
Obere Bilder: unfragmentierte Alpha-Synuclein-Fibrillen
Untere Bilder: mit dem VialTweeter-Ultraschallgerät fragmentierte Alpha-Synuclein-Fibrillen
(Studie und Bilder: ©Dieriks et al., 2022)
Fragmentierung von α-Synuclein-Fibrillen mittels Ultraschall – Protokolle
Da zahlreiche Forschende das VialTweeter-Ultraschallgerät als bevorzugte Fragmentierungstechnik zur Herstellung einheitlicher α-Synuclein-Fibrillenfragmente einsetzen, sind etablierte Protokolle ohne Weiteres verfügbar. Nachfolgend finden Sie einige beispielhafte Fragmentierungsprotokolle.
Herstellung von ClearTau-Keimen: Die ClearTau-Fibrillen wurden in dH2O auf 10 μM verdünnt und mit dem Ultraschallgerät UP200St mit VialTweeter direkt im Röhrchen bei 70 % Amplitude für 50 s mit einem Zyklus von 1 s EIN und 1 s AUS beschallt. Die Keime wurden mittels Elektronenmikroskopie charakterisiert.
ThS-Fluoreszenzmessung: Die ClearTau-Fibrillen wurden in dH2O auf 2,5 μM verdünnt und mit UP200St mit VialTweeter direkt im Röhrchen bei 70 % Amplitude für 50 s mit einem Zyklus von 1 s EIN und 1 s AUS beschallt. Als Kontrolle wurde 2,5 μM monomeres Tau 4R2N in voller Länge verwendet. Zum Reaktionsansatz von 100 μl wurden 100 μl ThS (10 μM) hinzugefügt, wodurch sich endgültige Proteinkonzentrationen von 1,25 μM ergaben. Die ThS-Fluoreszenz wurde zu einem einzelnen Zeitpunkt unter Verwendung von 96-Well-Platten mit transparentem Boden im FLUOstar Omega-Mikroplattenlesegerät gemessen; die Anregung erfolgte bei 445 nm und die Emission wurde bei 485 nm aufgezeichnet.
(vgl. Limorenko et al., 2023)
Einheitliche α-Synuclein-Länge durch Ultraschallbehandlung: Die Längenheterogenität von α-syn-Fibrillen und -Bändern wurde durch Beschallung für 20 min auf Eis in 2-ml-Eppendorf-Röhrchen in einem VialTweeter bei 75% Amplitude mit 0,5 s langen Pulsen reduziert.
(vgl. Bousset et al., 2013)
Es wurde eine Qualitätskontrolle von humanem rekombinantem monomerem WT- oder S129A-a-Syn und den daraus entstehenden fibrillären Polymorphen sowie von a-Syn 1–110 durchgeführt. Anschließend wurden die fibrillären Polymorphe durch Beschallung für 20 min in 2-mL-Eppendorf-Röhrchen im VialTweeter-Ultraschallgerät fragmentiert, um fibrilläre Partikel mit einer durchschnittlichen Größe von 42–52 nm zu erzeugen, die für die Endozytose geeignet sind.
(vgl. Shrivastava et al., 2020)
Charakterisierung von fünf fibrillären α-Syn-Polymorphen. (A) Gezeigt werden transmissionselektronenmikroskopische Aufnahmen der negativ kontrastierten fibrillären α-Syn-Polymorphe fibrils, ribbons, fibrils-91, fibrils-65 und fibrils-110 vor (obere Reihe) und nach der Fragmentierung mit dem VialTweeter (untere Reihe). (B) Gezeigt wird die Längenverteilung der fragmentierten fibrillären Polymorphe. Die Anzahl (n) der fibrillären Aggregate, aus denen die Histogramme abgeleitet wurden, ist angegeben.
(Studie und Bilder: Shrivastava et al., 2020)
Die α-Syn-Fibrillen wurden durch Beschallung für 20 min in 2 ml-Eppendorf-Röhrchen in einem VialTweeter fragmentiert, um fibrilläre Partikel mit einer mittels TEM-Analyse bestimmten durchschnittlichen Größe von 42–52 nm zu erzeugen.
(vgl. Negrini et al., 2022)
Die resuspendierten fibrils91 (in PBS) wurden vor der Zugabe zu Zellkulturen durch Beschallung für 20 min in 2 mL-Eppendorf-Röhrchen mit dem Vial Tweeter-Ultraschallgerät fragmentiert, aliquotiert, in flüssigem Stickstoff schockgefroren und bis zur Verwendung bei -80 ̊C gelagert.
(vgl. Vajhøj et al., 2021)
VialTweeter und Labor-Ultraschallgeräte für die α-Syn-Fragmentierung
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Die folgende Tabelle gibt Ihnen einen Anhaltspunkt für die ungefähre Verarbeitungskapazität unserer Labor-Ultraschallgeräte:
| Empfohlene Geräte | Chargenvolumen | Volumenstrom |
|---|---|---|
| UIP400MTP | Multiwell-/Mikrotiterplatten | n.a. |
| Ultraschall-CupHorn | CupHorn für Probengefäße oder Becherglas | n.a. |
| GDmini2 | Ultraschall-Mikrodurchflussreaktor | n.a. |
| VialTweeter | 0,5 bis 1,5mL | n.a. |
| UP100H | 1 bis 500mL | 10 bis 200mL/min |
| UP200Ht, UP400St | 10 bis 2000mL | 20 bis 400mL/min |
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Der VialTweeter wird häufig zur Fragmentierung von Alpha-Synuclein-Fibrillen als Schritt der präanalytischen Probenvorbereitung eingesetzt
Literatur / Quellen
- Emil Dandanell Agerschou, Marie P. Schützmann, Nikolas Reppert, Michael M. Wördehoff, Hamed Shaykhalishahi, Alexander K. Buell, Wolfgang Hoyer (2021): β-Turn exchanges in the α-synuclein segment 44-TKEG-47 reveal high sequence fidelity requirements of amyloid fibril elongation. Biophysical Chemistry, Volume 269, 2021.
- Bousset, L., Pieri, L., Ruiz-Arlandis, G. et al. (2013): Structural and functional characterization of two alpha-synuclein strains. Nature Communications 4, 2575 (2013).
- Vajhøj, Charlott; Schmid, Benjamin; Alik, Ania; Melki, Ronald; Fog, Karina; Holst, Bjørn; Stummann, Tina (2021): Establishment of a human induced pluripotent stem cell neuronal model for identification of modulators of A53T α-synuclein levels and aggregation. PLOS ONE 16, 2021.
- Dieriks B.V.; Highet B.; Alik A.; Bellande T.; Stevenson T.J.; Low V.; Park T.I.; Correia J.; Schweder P.; Faull R.L.M.; Melki R.; Curtis M.A.; Dragunow M. (2022): Human pericytes degrade diverse α-synuclein aggregates. PLoS One, Nov 18;17(11), 2022.
- Amulya Nidhi Shrivastava, Luc Bousset, Marianne Renner, Virginie Redeker, Jimmy Savistchenko, Antoine Triller, Ronald Melki (2020): Differential Membrane Binding and Seeding of Distinct α-Synuclein Fibrillar Polymorphs. Biophysical Journal, Volume 118, Issue 6, 2020. 1301-1320.
- Negrini M, Tomasello G, Davidsson M, Fenyi A, Adant C, Hauser S, Espa E, Gubinelli F, Manfredsson FP, Melki R, Heuer A. (2022): Sequential or Simultaneous Injection of Preformed Fibrils and AAV Overexpression of Alpha-Synuclein Are Equipotent in Producing Relevant Pathology and Behavioral Deficits. Journal of Parkinsons Disease 12(4), 2022. 1133-1153.
- Limorenko G, Tatli M, Kolla R, Nazarov S, Weil MT, Schöndorf DC, Geist D, Reinhardt P, Ehrnhoefer DE, Stahlberg H, Gasparini L, Lashuel HA (2023): Fully co-factor-free ClearTau platform produces seeding-competent Tau fibrils for reconstructing pathological Tau aggregates. Nature Communications 4;14(1), July 2023.
Häufig gestellte Fragen
Ist Alpha-Synuclein ein Amyloid?
Ja, Alpha-Synuclein kann amyloidartige Fibrillen bilden. Es ist ein wesentlicher Bestandteil von Lewy-Körperchen, dem pathologischen Kennzeichen der Parkinson-Krankheit und anderer Synucleinopathien. Seine Aggregation folgt einem keimbildungsabhängigen Polymerisationsprozess, ähnlich dem klassischer Amyloide.
Was ist der Unterschied zwischen Amyloid-Beta und Alpha-Synuclein?
Amyloid-Beta (Aβ) und Alpha-Synuclein (α-syn) sind unterschiedliche Proteine, die bei neurodegenerativen Erkrankungen pathologische Aggregate bilden. Aβ entsteht aus dem Amyloid-Vorläuferprotein (APP), wird hauptsächlich mit der Alzheimer-Krankheit in Verbindung gebracht und bildet extrazelluläre Plaques. Im Gegensatz dazu ist α-syn ein präsynaptisches neuronales Protein, das bei der Parkinson-Krankheit und verwandten Erkrankungen intrazellulär aggregiert. Beide weisen zwar β-Faltblatt-reiche Amyloidstrukturen auf, unterscheiden sich jedoch in ihren Sequenzen, Aggregationswegen und ihrer krankheitsspezifischen Pathologie.
Welche Art von Protein ist Amyloid?
Amyloid ist ein fehlgefaltetes, fibrilläres Protein, das eine Kreuz-β-Faltblattstruktur annimmt und zu unlöslichen Fibrillen aggregiert. Diese Proteine entstehen typischerweise aus normalerweise löslichen Vorläufern, die Konformationsänderungen durchlaufen, was zur Selbstassemblierung und Ablagerung führt. Amyloide stehen mit verschiedenen neurodegenerativen und systemischen Erkrankungen in Verbindung, bei denen ihre Aggregation zu zellulärer Toxizität und Gewebeschäden beiträgt. Erfahren Sie, wie das Ultraschallgerät UIP400MTP für 96-Well-Platten dabei hilft, standardisierte Amyloidfibrillen für Forschungszwecke schnell zu bilden!
Welche Erkrankungen werden durch Amyloide verursacht?
Amyloide sind an zahlreichen Erkrankungen beteiligt, die zusammenfassend als Amyloidosen bezeichnet werden. Dazu gehören:
- Neurodegenerative Erkrankungen: Alzheimer-Krankheit (Aβ), Parkinson-Krankheit (α-syn), Huntington-Krankheit (mutiertes Huntingtin) und Prionenerkrankungen (PrPSc). (Lesen Sie mehr über ultraschallgestützte PMCA zur Hochdurchsatz-Prionendetektion!)
- Systemische Amyloidosen: Leichtketten-Amyloidose (AL), Transthyretin-Amyloidose (ATTR) und sekundäre Amyloidose (AA).
- Lokalisierte Amyloidosen: Inselamyloid-Polypeptid (IAPP) bei Typ-2-Diabetes.
Jede amyloidassoziierte Erkrankung ist durch Proteinfehlfaltung, Aggregation und Ablagerung gekennzeichnet, die zu zellulärer Dysfunktion und Toxizität führen.
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