Hielscher Ultrasonics
Örömmel egyeztetünk az Ön folyamatáról.
Hívjon minket: +49 3328 437-420
Írjon nekünk: [email protected]

C. Elegans minták ultrahangos előkészítése

A C. elegans fonálféreg a biológiában széles körben használt modellszervezet. Az elemzés előtti minta-előkészítéshez lízisre, fehérje- és lipidextrakcióra, valamint RNS-fragmentálásra van szükség, amelyek ultrahangos kezeléssel megbízhatóan elvégezhetők. Az ultrahangos sejtfeltárók megbízható, korszerű és könnyen használható készülékek a C. elegans minták gyors előkészítéséhez.

C. elegans minták ultrahangos előkészítése

A C. elegans fonálférgeket kutatólaboratóriumokban széles körben használják genomikai, fejlődésbiológiai és betegségekkel kapcsolatos vizsgálatokhoz. A C. elegans genomjának számos génje rendelkezik funkcionális megfelelővel az emberben. Ezáltal ez a fonálféreg rendkívül hasznos modell az emberi betegségek vizsgálatához. A C. elegans széles körű használatának további előnyei közé tartozik a baktériumokat (pl. E. coli) tartalmazó lemezeken történő egyszerű és olcsó tenyésztése, átlátszósága, kényelmes kezelhetősége, valamint az, hogy a férgek lefagyaszthatók és hosszabb ideig tárolhatók.
A fehérje- és lipidelemzés rendszeresen végzett laboratóriumi eljárás, és az ultrahangos minta-előkészítés bevett módszer a C. elegans fonálférgek lizálására minden fejlődési stádiumban (azaz embriók, L1-L4 lárvák, kifejlett egyedek esetében). Mivel a C. elegans fehérjeexpressziós rendszerként is használatos célfehérjék túltermeltetésére, megbízható, reprodukálható, nagy fehérjehozamot biztosító lízis- és fehérjeextrakciós módszerre van szükség. Az ultrahangos sejtfeltáró és extrakciós rendszerek szondás homogenizátorokként és többmintás ultrahangos kezelőkészülékekként is elérhetők. A kényelmes minta-előkészítéshez, bármilyen mintamérethez és mintaszámhoz a Hielscher Ultrasonics ideális ultrahangos sejtfeltárót kínál az Ön laboratóriumi eljárásához.
A C. elegans a biológiai kutatásban széles körben használt modellszervezet. Az ultrahangos lízis korszerű, megbízható, reprodukálható és gyors technika kiváló minőségű fehérjekivonatok készítésére C. elegans férgekből.

A C. elegans ultrahangos lízisének alkalmazásai

  • Féreghomogenátumok készítése
  • Fehérjeextrakció
  • Lipidextrakció
  • Fehérjék mennyiségi meghatározása
  • Immunprecipitáció
  • Western-blot
  • RNS-extrakció
  • Enzimaktivitási vizsgálatok
VialTweeter az UP200ST ultrahangos processzorral

VialTweeter többmintás minta-előkészítő egység 10 kémcső egyidejű ultrahangos kezeléséhez.

Információkérés



Ultrahangos protokollok a C. Elegans feltárásához és líziséhez

A C. elegans ultrahangos homogenizálása és lízise, valamint az ezt követő fehérje- és lipidextrakció különféle eljárásokkal, eltérő homogenizáló és lízispufferekkel stb. végezhető. Minden lízisprotokoll közös jellemzője, hogy a mintákat folyamatosan jégen kell tartani a fehérjék lebomlásának megelőzése érdekében. Az alábbiakban néhány megbízható és gyors ultrahangos lízis- és extrakciós protokollt mutatunk be kiváló minőségű, fehérjét vagy lipidet tartalmazó C. elegans minták előkészítéséhez.

A C. elegans ultrahangos lízisének előnyei

  • megbízható
  • reprodukálható
  • pontosan szabályozott hőmérséklet
  • megbízható folyamatszabályozás
  • kíméletes módszer
  • könnyen alkalmazható
  • biztonságos

Ultrahangos fehérjeextrakció C. elegans mintákból

A C. elegans férgek ultrahangos lízise és fehérjeextrakciója különféle protokollokkal végezhető. Az alábbiakban néhány megbízható és gyors lízisprotokollt mutatunk be a fehérjeextrakció reprodukálható eredményeihez.

Citoszolikus kivonat gyors készítése C. elegans férgekből ultrahangos kezeléssel

A következő protokollal kevesebb mint 30 perc alatt készíthet C. elegans lizátumokat.
A C. elegans begyűjtése
Helyezze a kívánt C. elegans férgeket foszfáttal pufferelt sóoldatot (PBS) tartalmazó 1,5ml-es csőbe, vagy mossa le őket egy lemezről 1,5ml PBS-sel. Centrifugálja 1min időtartamig 2000rpm fordulatszámon, hogy üledéket kapjon. A mintákat mindvégig tartsa jégen.
Ezután mossa át a férgeket kétszer PBS-sel.
Ezt követően mossa át a férgeket kétszer ddH2O-val.
Szuszpendálja újra a férgeket legalább 500ul homogenizáló pufferben (HB). A féregminták ekkor készen állnak az ultrahangos lízisre.
A jobb minőségű fehérjekivonat érdekében érdemes lehet csökkenteni a bakteriális szennyeződést a férgek egyenként 5min időtartamú átmosásával PBS-ben és steril, ultratiszta vízben (ddH2O), vagy szacharózos flotálást végezni. A féregmintákat folyamatosan tartsa jégen.

A C. elegans ultrahangos lízisének protokollja

  • Előzetesen készítse elő az ultrahangos kezelőkészüléket, hogy az ultrahangos homogenizátor használatra kész legyen (felszerelt szonda, előre beállított ultrahangos kezelési program). 
  • UP200Ht ultrahangos kezelőkészülék (200 watt, 26kHz) S26d2 mikroheggyel biológiai minták előkészítéséhezHa az ultrahangos kezelőkészülék állványra van szerelve, helyezze a mintacsöveket tartalmazó jégfürdőt az ultrahangos szonda alá, és vezesse be az ultrahangos szondát az 1,5ml-es csőbe.

  • A C. elegans UP200St vagy UP200Ht készülékkel végzett líziséhez az ultrahangos kezelést mikroheggyel (pl. 2mm-es S26d2 szonda; lásd a bal oldali képet), 40% amplitúdón, 1sec időtartamig, a kezelések között 30sec szünetekkel kell végezni. A C. elegans líziséhez 5, egyenként 1 másodperces ultrahangos kezelési ciklus ideális, 30sec szünetekkel. Ha először végzi a lízist, minden impulzus után mikroszkóppal ellenőrizheti a lízis előrehaladását a minta kis alikvotjaiban.
  • A lízis akkor fejeződött be sikeresen, amikor a férgek feltáródtak. A túlzott ultrahangos kezelés a sejtmagok szétesését okozza, ami a minta viszkózussá válásából vagy habzásából válik láthatóvá. A minta károsodásának megelőzése érdekében szükség esetén alkalmazzon több impulzust. A kiváló minőségű fehérjekivonatok előállítása érdekében ne növelje az egyes ultrahangos impulzusciklusok időtartamát.
  • Tisztítsa meg a sejtlizátumot az ultrahangosan lizált férgek 14 000rpm fordulatszámon, 10min időtartamig, 4ºC-on végzett centrifugálásával.
  • Ezután vigye át a felülúszót egy új csőbe, és készítse elő immunprecipitációhoz vagy más vizsgálatokhoz.

Megjegyzés a homogenizáló pufferhez: A fenti ultrahangos lízisprotokollhoz a következőképpen készítse el a homogenizáló puffert:

  • 15 mM Hepes pH 7,6 – 15 ml a 0,5 M oldatból
  • 10 mM KCl – 2,5 ml a 2 M oldatból
  • 1,5 mM MgCl2 – 0,75 ml az 1 M oldatból
  • 0,1 mM EDTA – 100 ul a 0,5 M oldatból
  • 0,5 mM EGTA – 2,5 ml a 0,1 M oldatból
  • 44 mM szacharóz – 14,7 ml az 50 % oldatból
  • Közvetlenül használat előtt adja hozzá: 1mM DTT – 1000x az 1M oldatból
  • valamint egy proteázgátló

 

Hogyan válasszuk ki a tökéletes ultrahangos készüléket sejtfeltáráshoz és fehérjeextrakcióhoz tudományos és analitikai feladatokraEz az útmutató bemutatja, melyik ultrahangos készüléktípus a legalkalmasabb az Ön minta-előkészítési feladataihoz, például lízishez, sejtfeltáráshoz, fehérjeizoláláshoz, valamint DNS- és RNS-fragmentáláshoz laboratóriumi, analitikai és kutatási munkák során. Válassza ki az alkalmazásának, a mintatérfogatnak, a mintaszámnak és a feldolgozási teljesítménynek megfelelő ultrahangos készüléktípust. A Hielscher Ultrasonics kínálatában megtalálja az Ön számára ideális ultrahangos homogenizátort!
Ez az útmutató bemutatja, melyik ultrahangos készüléktípus a legalkalmasabb az Ön minta-előkészítési feladataihoz, például lízishez, sejtfeltáráshoz, fehérjeizoláláshoz, valamint DNS- és RNS-fragmentáláshoz laboratóriumi, analitikai és kutatási munkák során. Válassza ki az alkalmazásának, a mintatérfogatnak, a mintaszámnak és a feldolgozási teljesítménynek megfelelő ultrahangos készüléktípust. A Hielscher Ultrasonics kínálatában megtalálja az Ön számára ideális ultrahangos homogenizátort!

 

A C. elegans nagy mintaáteresztő képességű lízise 96 lyukú lemezeken a UIP400MTP lemezkezelő ultrahangos készülékkel

C. elegans lízis (kifejlett fonálférgek)
UIP400MTP 80% amplitúdó, 20 ciklus (minden ultrahangos kezelési ciklus: 30 sec BE, 30 sec KI)
Lízispuffer:

  • 1. lehetőség) 4% SDS, 0,1 M Tris/HCl pH 8,0, 1 mM EDTA
  • 2. lehetőség) koimmunprecipitációhoz (co-IP): 10 mM Tris HCl (pH 7,5), 150 mM NaCl, 0,5 mM EDTA, 0,5 % NP-40 (Complete proteinázgátló koktél)

Nagy mintaáteresztő képességű DNS-fragmentálás
C. elegans (kifejlett fonálférgek) DNS 200–300bp: UIP400MTP lemezkezelő ultrahangos készülék – állítson be 80% amplitúdót, 30 impulzust – mindegyiknél 30sec bekapcsolva, 30sec kikapcsolva

UIP400MTP lemezkezelő ultrahangos készülék nagy mintaáteresztő képességű minta-előkészítéshez: A UIP400MTP egyenletesen kezeli ultrahanggal a többlyukú, mikrotiter- és 96 lyukú lemezeken lévő mintákat, feltárja a sejteket, extrahálja a fehérjéket, és fragmentálja a DNS-t, az RNS-t és az alfa-szinuklein fibrillumokat.

A nagy mintaáteresztő képességű minta-előkészítésre szolgáló UIP400MTP lemezkezelő ultrahangos készülék egyenletesen kezeli ultrahanggal a többlyukú, mikrotiter- és 96 lyukú lemezeken lévő mintákat

A C. elegans ultrahangos lízise kvantitatív affinitástisztítási vizsgálatokhoz

A C. elegans embriókat (ismétlésenként ∼2 millió) három biológiai ismétlésben, fiatal, petéket hordozó hermafroditák hipokloritos kezelésével frissen gyűjtötték be, majd jégen ultrahangos kezelésnek vetették alá (ciklus: 0,5 s, amplitúdó: 40–45%, 5 impulzus/kezeléssorozat, 5 kezeléssorozat, a kezeléssorozatok közötti időköz: 30 s; UP200S ultrahangos processzor S26d2 mikroheggyel (Hielscher Ultrasonics GmbH)) lízispufferben (teljes térfogat: ∼600 μl; 50 mm Tris-HCl, pH 7,4, 100 mm KCl, 1 mm MgCl2, 1 mm EGTA, 1 mm DTT, 10% glicerin, proteázgátló keverék, 0,1% Nonidet P-40 Substitute). Az ultrahangos kezelés után Nonidet P-40 Substitute anyagot adtak hozzá 1%-ig, és a lizátumokat vég-over-vég forgatással inkubálták 4°C-on 30 min időtartamig, majd 20 000 × g mellett 20 min időtartamig centrifugálták 4°C-on. A tisztított lizátumot ezután leszívták a felső lipidréteg megzavarása nélkül, és két egyenlő részre osztva anti-GFP agarózgyöngyökhöz, illetve blokkolt kontrollgyöngyökhöz adták (40–50 μl). A 4°C-on 60–90 min időtartamig végzett vég-over-vég forgatás után a gyöngyöket egyszer átmosták 0,1% Nonidet P-40 Substitute anyagot tartalmazó lízispufferrel, majd kétszer átmosták az I. pufferrel (25 mm Tris-HCl, pH 7,4, 300 mm NaCl, 1 mm MgCl2) vagy a II. pufferrel (1 mm Tris-HCl, pH 7,4, 150 mm NaCl, 1 mm MgCl2), vagy mindkettővel. A GFP:MBK-2 pull-down vizsgálatokhoz két külön kísérletet végeztek eltérő mosási körülmények alkalmazásával. A fehérjéket orbitális rázással eluálták 50 μl 6 m karbamid/2 M tiokarbamid oldatban, szobahőmérsékleten. Az MBK-1::GFP pull-down kísérletekhez a fehérjéket kétszer eluálták rázással 50μl 8 m guanidinium-kloridban, 90°C-on, majd etanolos kicsapást végeztek. Az eluált fehérjemintákat ezután oldatban emésztették.
(vö. Chen et al., 2016)

Az MTP-24-8-96 szonotróda nyolc ultrahangos szondával rendelkezik a mikrotiterlemezek lyukainak ultrahangos kezeléséhez.

Az MTP-24-8-96 szonotróda nyolc ultrahangos szondával rendelkezik a mikrotiterlemezek lyukainak ultrahangos kezeléséhez.

Férgek ultrahangos homogenizálása és lízise

A C.elegans líziséhez és fehérjeextrakciójához mintánként 30 000, a megfelelő stádiumban lévő fonálférget gyűjtöttek be, jéghideg S-basal közegben átmosták őket, 1500 rpm fordulatszámon 2 min időtartamig végzett centrifugálással koncentrálták, hatszor átmosták jéghideg S-basal közeggel a visszamaradt baktériumok eltávolítására, majd felhasználásig jégen tárolták őket. A fehérjeextrakcióhoz az utolsó S-basal mosás után hagyták, hogy a petéket hordozó, kifejlett férgek tömör üledéket képezzenek. A féregüledéket ezután 1 ml jéghideg extrakciós pufferben [20 mM kálium-foszfát, pH 7,4, 2mM EDTA, 1% Triton-X-100, proteázgátlók (Sigma P2714)] újraszuszpendálták, és azonnal feldolgozták.
∼30 000 petéket hordozó, kifejlett férget (∼100 mg nedves tömegnek megfelelő mennyiség) jégen ultrahangos kezelésnek vetettek alá szondás ultrahangos kezelőkészülékkel (pl. UP50H MS2 mikroheggyel), 40% amplitúdón, 10 ciklusban, 3 sec bekapcsolt és 30 sec kikapcsolt időtartammal, 1 ml jéghideg extrakciós pufferben. (vö. Baskharan et al. 2012)

Ultrahangos lipidextrakció C. elegans férgekből

A lipidomikában, a metabolomika egyik ágában, a biológiai rendszerek teljes lipidállományát jellemzik és elemzik. A C. elegans széles körben használatos a lipidomikában az anyagcserében részt vevő lipidek kölcsönhatásainak, valamint az egészségre és az élettartamra gyakorolt hatásainak vizsgálatára.
Ultrahangos lízist és extrakciót alkalmaznak lipidek, például szfingolipidek felszabadítására C. elegans embriókból, lárvákból és kifejlett férgekből. Az ultrahangos kezelést féreghomogenátumok készítésére, majd a lipidek mintából történő extrakciójára használják.
A C. elegans ultrahangos lipidextrakciójának protokollja
Olvassza fel a C. elegans üledéket jégen, és szuszpendálja újra 0,5 ml ultrawater hozzáadásával. 
Kezelje ultrahanggal a C. elegans mintákat 1,5mL-es kémcsövekben, miközben a mintákat folyamatosan jégen tartja.
Az ultrahangos kezeléshez használható szondás ultrahangos kezelőkészülék, például az UP200Ht, vagy ultrahangos minta-előkészítő egység, például a VialTweeter (10 minta egyidejű ultrahangos kezeléséhez), illetve a UIP400MTP (többlyukú lemezek, például 96 lyukú lemezek ultrahangos kezeléséhez).
Az UP200Ht készülékkel végzett ultrahangos lízishez használja az S26d2 mikrohegyet. Állítsa be előre az ultrahangos ciklusüzemmódot a digitális menüben. Állítson be 10% amplitúdót, az ultrahangos kezelési ciklusüzemmódot pedig 20 ciklusra, 2 sec impulzusokkal és az egyes ultrahangos impulzusok között 30 sec. szünettel.
Vigye át a felülúszókat csavaros kupakkal ellátott üvegcsövekbe. 
Végezzen Folch-extrakciót úgy, hogy minden üvegcsőbe 1 ml ultrawater anyagot ad, majd minden üvegcsőbe 6 ml kloroform/metanol keveréket (arány = 2:1) ad.
Minden üvegcsövet kezeljen vortexkeverővel 4 alkalommal, alkalmanként 30 sec időtartamig. 
Centrifugálja a csöveket 1 258 x g mellett 15 min időtartamig (Eppendorf, 5810 R) a fázisszétválás további elősegítésére. 
Üveg Pasteur-pipettával vigye át az alsó hidrofób frakciót egy tiszta üvegcsőbe. 
Szárítsa meg az alsó hidrofób frakciót nitrogénáramban, nitrogénes bepárlóban. 
A megszárított üledéket felhasználásig -80 °C hőmérsékletű fagyasztóban tárolja. 


Féreglizátumok ultrahangos előállítása

Féreglizátum: Az L4 stádiumú férgeket begyűjtötték, és háromszor átmosták M9 pufferrel (42,26 mM Na2HPO4, 22,04 mM KH2PO4, 85,56 mM NaCl és 0,87 mM MgSO4) az összes baktérium eltávolítása érdekében. Az M9 puffer lehető legnagyobb részének eltávolítása után a férgeket lízispufferben szuszpendálták újra: 50 mM HEPES, 50 mM KCl, 1mM EDTA, 1mM EGTA, 5 mM β-glicerofoszfát, 0,1% (v/v) Triton X-100, 50 mM nátrium-fluorid, 1 mM nátrium-ortovanadát, 5 mM nátrium-pirofoszfát, 0,2 mM fenilmetánszulfonil-fluorid és proteázgátló. A férgeket háromszor folyékony nitrogénben lefagyasztották és 37°C-on felolvasztották, majd szárazjégen ultrahangos kezelésnek vetették alá egy ultrahangos VialTweeter egységgel, amely 10 mintacső egyidejű előkészítésére szolgál. Az ultrahangos kezelést 50% amplitúdón, 10, egyenként 2 sec. időtartamú ciklusban végezték, az ultrahangos impulzusok között 30 sec szünettel. Ezt követően a mintákat 12 000 rpm fordulatszámon, 4°C-on, 15 min időtartamig centrifugálták. A felülúszót összegyűjtötték, és -70°C-on tárolták. Egy alikvotot a fehérjemennyiség Bradford-módszerrel történő meghatározására használtak.
Az összes glutation, a GSH és a GSSG meghatározása: A glutation mennyiségi meghatározásához a lizátumokat és a meghatározást ugyanazon a napon készítették, illetve végezték el. A glükózzal táplált és a kontroll L4 lárvákat begyűjtötték, és háromszor átmosták M9 pufferrel. Az M9 puffer lehető legnagyobb részének eltávolítása után a férgeket jéghideg metafoszforsavban (5% w/v) szuszpendálták újra, majd jégen ultrahangos VialTweeter készülékkel kezelték őket 50% amplitúdón, tíz, egyenként 2 sec. időtartamú ultrahangos kezelési ciklusban, minden ciklus között 30 sec. szünettel. Ezt követően 12 000 rpm fordulatszámon, 4 ̊C-on, 15 min időtartamig centrifugálták őket.
(vö. Alcántar-Fernández et al., 2018)

C. elegans minták előkészítése immunprecipitáció és Western-blot előtt

Röviden: az embrionális kivonatokhoz C. elegans L1 lárvákat nagyméretű, folyékony S-tápközeges tenyészetekben neveltek kifejlett egyedekké. Az embriókat a standard hipokloritos módszerrel gyűjtötték be, lízispufferben szuszpendálták (50 mM Tris, pH 7,5, 100 mM KCl, 1 mM EDTA, 1 mM MgCl2, 8,7% glicerin, 0,05% NP-40, 1􏰅 proteázgátló koktél és 1􏰅 foszfatázgátló koktél I és II), gyorsan lefagyasztották folyékony nitrogénben, majd ultrahangos sejtfeltárással lizálták mikroheggyel ellátott ultrahangos kezelőkészülékkel, például az UP200Ht készülékkel, S26d2 mikroheggyel, 10 s alatt 10 impulzust alkalmazva, 30% amplitúdón. Ha nagyobb számú mintát kell előkészíteni, az ultrahangos VialTweeter vagy a többlyukú lemezekhez való többmintás UIP400MTP ultrahangos kezelőkészülék ajánlott. Az ultrahangos kezelés után a kivonatokat 30 000g mellett, 20 min időtartamig, 4°C-on végzett centrifugálással előtisztították. Az előtisztított kivonatot (300µg összfehérje) 40µ􏰂g, affinitástisztított, protein A-agarózhoz keresztkötött anti-CDC-25.1 antitesttel (ez a vizsgálat) inkubálták, vagy kontrollként hasonló mennyiségű, protein A-agarózhoz keresztkötött nyúl immunglobulin (Ig)G-t használtak, összesen 200µl, 1% NP-40-et tartalmazó lízispufferben; az NP-40 hozzáadása csökkentette a fehérjék nem specifikus kötődését a mátrixhoz. A mintákat 1 h időtartamig forgatták 4°C-on, a gyöngyöket háromszor átmosták lízispufferrel, majd 30µl glicin/HCl és 200 mM NaCl segítségével eluálták, pH 2,2 mellett. Az immunprecipitáció után az eluátumokat 30µ􏰂l SDS-mintapufferben hígították, 4 min időtartamig 95°C-ra melegítették, majd rendszerint a teljes mennyiség 3%-át kiindulási mintaként, az eluátumok 30%-át pedig eluátummintaként vitték fel SDS-PAGE-re. Ezt Western-blot követte anti-CDC-25.1 (1:400), anti-LIN-23 (1:750), anti-ubiquitin (1:1000), anti-GSK3􏰁 (1:500) vagy anti-􏰁β-actin (1:2000) antitestekkel. Ha a kivonatokat nem vetették alá immunprecipitációnak, az ezekből a kivonatokból származó azonos mennyiségű összfehérjét SDS-mintapufferben újraszuszpendálták, 95°C-ra melegítették, majd közvetlenül SDS-PAGE-re vitték fel, és Western-blottal elemezték. (vö. Segref et al. 2020)

UP200St szondás ultrahangos kezelőkészülék lízishez

UP200St ultrahangos sejtfeltáró S26d2 mikroheggyel lízishez és fehérjeextrakcióhoz

Ultrahangos lízis pontos hőmérséklet-szabályozás mellett

A VialTweeter többmintás ultrahangos kezelőkészülék, amely pontosan szabályozott hőmérsékleti körülmények között teszi lehetővé a megbízható minta-előkészítést.A pontos és megbízható hőmérséklet-szabályozás döntő fontosságú a biológiai minták kezelésekor. A magas hőmérséklet hő által kiváltott fehérjebomlást indít el a mintákban.
Mint minden mechanikai minta-előkészítési technika, az ultrahangos kezelés is hőt termel. A VialTweeter használatával azonban a minták hőmérséklete jól szabályozható. Különféle lehetőségeket mutatunk be a minták hőmérsékletének figyelésére és szabályozására, miközben a VialTweeter és a VialPress segítségével előkészíti őket az elemzéshez.

  1. A mintahőmérséklet figyelése: A VialTweeter meghajtására szolgáló UP200St ultrahangos processzor intelligens szoftverrel és csatlakoztatható hőmérséklet-érzékelővel rendelkezik. Csatlakoztassa a hőmérséklet-érzékelőt az UP200St készülékhez, és helyezze a hőmérséklet-érzékelő végét az egyik mintacsőbe. A digitális, színes érintőkijelzőn az UP200St menüjében meghatározott hőmérséklet-tartományt állíthat be a minta ultrahangos kezeléséhez. Az ultrahangos kezelőkészülék automatikusan leáll a maximális hőmérséklet elérésekor, és szünetel, amíg a minta hőmérséklete a beállított ∆ hőmérséklet-tartomány alsó értékére nem csökken. Ezután az ultrahangos kezelés automatikusan újraindul. Ez az intelligens funkció megelőzi a hő által kiváltott lebomlást.
  2. A VialTweeter blokk előhűthető. Helyezze a VialTweeter blokkot (csak a szonotródát, az átalakító nélkül!) hűtőszekrénybe vagy fagyasztóba; a titánblokk előhűtése segít késleltetni a minta hőmérsékletének emelkedését. Ha lehetséges, maga a minta is előhűthető.
  3. Az ultrahangos kezelés közbeni hűtéshez használjon szárazjeget. Használjon szárazjéggel megtöltött sekély tálcát, és helyezze a VialTweeter egységet a szárazjégre, hogy a hő gyorsan elvezetődhessen.

Találja meg az optimális ultrahangos sejtfeltárót lízisalkalmazásához

A Hielscher Ultrasonics nagy tapasztalattal rendelkező gyártó, amely nagy teljesítményű ultrahangos sejtfeltárókat és homogenizátorokat készít laboratóriumi, asztali és ipari léptékű rendszerekhez. A bakteriális sejttenyészet mérete, a kutatási vagy termelési cél, valamint az óránként vagy naponta feldolgozandó sejtek térfogata alapvető tényezők az alkalmazásnak megfelelő ultrahangos sejtfeltáró kiválasztásában.
A Hielscher Ultrasonics különféle megoldásokat kínál több minta egyidejű ultrahangos kezelésére (akár 10 mintacső), valamint tömeges mintakezelésre (azaz mikrotiterlemezek / 96 lyukú lemezek), a klasszikus, szondás laboratóriumi ultrahangos kezelőkészülékektől, 50–400 watt közötti különböző teljesítményszintekkel, egészen a készülékenként akár 16 000watt teljesítményű, teljesen ipari ultrahangos processzorokig, üzemi sejtfeltáráshoz és nagyüzemi fehérjeextrakcióhoz. Minden Hielscher ultrahangos kezelőkészüléket teljes terhelés melletti 24/7/365 üzemre terveztek. Ultrahangos készülékeink alapvető jellemzői a robusztusság és a megbízhatóság.
Minden digitális ultrahangos homogenizátor intelligens szoftverrel, színes érintőkijelzővel és automatikus adatnaplózással rendelkezik, amelyek kényelmes munkaeszközzé teszik az ultrahangos készüléket a laboratóriumokban és a termelőlétesítményekben.
Tudassa velünk, milyen típusú sejteket, milyen térfogatban, milyen gyakran és milyen céllal kell feldolgoznia a biológiai mintákban. A folyamat követelményeinek leginkább megfelelő ultrahangos sejtfeltárót fogjuk ajánlani Önnek.

Az alábbi táblázat tájékoztatást nyújt ultrahangos rendszereink hozzávetőleges feldolgozási kapacitásáról, a kompakt kézi homogenizátoroktól és többmintás ultrahangos kezelőkészülékektől az üzemi alkalmazásokhoz készült ipari ultrahangos processzorokig:

Adagtérfogat Térfogatáram Ajánlott készülékek
96 lyukú / mikrotiterlemezek n.a. UIP400MTP
10 mintacső, egyenként 0,5–1,5mL n.a. VialTweeter az UP200St készülékkel
0,01–250mL 5–100mL/min UP50H
0,01–500mL 10–200mL/min UP100H
10–2000mL 20–400mL/min UP200Ht, UP400St
0,1–20L 0,2–4L/min UIP2000hdT
10–100L 2–10L/min UIP4000hdT
n.a. 10–100L/min UIP16000
n.a. nagyobb összekapcsolt készülékek csoportja: UIP16000

Lépjen kapcsolatba velünk! / Kérdezzen tőlünk!

Kérjen további információt

Kérjük, az alábbi űrlap segítségével kérjen további információt az ultrahangos processzorokról, az alkalmazásokról és az árról. Örömmel egyeztetünk Önnel a folyamatáról, és kínálunk az Ön követelményeinek megfelelő ultrahangos rendszert!





A nagy nyíróhatású ultrahangos homogenizátorokat laboratóriumi, asztali, kísérleti üzemi és ipari feldolgozásban használják.

A Hielscher Ultrasonics nagy teljesítményű ultrahangos homogenizátorokat gyárt keverési alkalmazásokhoz, diszpergáláshoz, emulgeáláshoz és extrakcióhoz laboratóriumi, kísérleti üzemi és ipari léptékben.

Szakirodalom / Hivatkozások



Hasznos tudnivalók

Caenorhabditis elegans

A C. elegans szabadon élő, átlátszó, körülbelül 1 mm hosszúságú fonálféreg, amely baktériumokkal (pl. E. coli) táplálkozik, és viszonylag rövid életciklusa van. 20 °C-on a C. elegans laboratóriumi törzsének (N2) átlagos élettartama körülbelül 2–3 hét, generációs ideje pedig 3–4 nap. Ha a C. elegans férgeket nagy egyedszámban tenyésztik, ami pontosan szabályozott laboratóriumi körülmények között könnyen megvalósítható, könnyen felhasználhatók új gyógyszerek hatásmechanizmusának, valamint az emberi betegségek összetett molekuláris folyamataiban kifejtett hatásainak és kölcsönhatásainak szűrővizsgálatára. A rövid genom, a rövid életciklus és az egyszerű laboratóriumi kezelhetőség ideális modellszervezetté teszi a C. elegans férget olyan kutatásokhoz, mint a genomika, a proteomika, a fejlődésbiológia, a betegségkutatás, a gyógyszerfejlesztés stb.
A Caenorhabditis elegans férgek hímek vagy hermafroditák lehetnek. A hermafroditák hím és női ivarszervekkel egyaránt rendelkeznek. Nőstény férgek azonban nem léteznek. A hermafroditák önmegtermékenyítésre is képesek, illetve hím férgekkel is szaporodhatnak. A C. elegans naponta több mint 1 000 petét képes termelni.
Mivel a C. elegans az egyik legegyszerűbb, idegrendszerrel rendelkező szervezet, ezt a fonálférget 1963 óta használják kutatási modellszervezetként. Az idegsejtek nem hoznak létre akciós potenciálokat, és nem expresszálnak feszültségfüggő nátriumcsatornákat. A hermafroditában ez a rendszer 302 idegsejtből áll, amelyek kapcsolati mintázatát átfogóan feltérképezték az úgynevezett konnektomban.
A C. elegans genomjának számos génje rendelkezik funkcionális megfelelővel az emberben, ami rendkívül hasznos modellé teszi az emberi betegségek vizsgálatához; például a fejlődésbiológia, az öregedés és a hosszú élettartamot befolyásoló tényezők tanulmányozására használják. Ezenkívül a C. elegans mutánsok számos emberi betegség modelljeként szolgálnak, beleértve a neurológiai rendellenességeket (pl. Alzheimer-kór), a veleszületett szívbetegségeket és a vesebetegségeket.
Ezek a tényezők a C. elegans férget számos kutatási terület számára rendkívül értékes modellé tették. Ennek eredményeként a C. elegans volt az első többsejtű szervezet, amelynek teljes genomját szekvenálták. A genom becslések szerint 20 470 fehérjekódoló gént tartalmaz. A C. elegans génjeinek körülbelül 35%-a rendelkezik emberi homológgal. Figyelemre méltó, hogy ismételten kimutatták: az emberi gének a C. elegans szervezetébe bejuttatva képesek helyettesíteni a megfelelő C. elegans homológokat. Fordítva, számos C. elegans gén az emlősök génjeihez hasonlóan működhet.

A C. elegans élettartama körülbelül 3 hét, és hat életszakaszból áll: embriogenezis (petestádium), négy lárvastádium (L1–L4) és a kifejlett stádium. A fonálférgek 560 sejtből álló L1 lárvaként kelnek ki a petékből. Minden lárvastádiumban sejtosztódás és sejthipertrófia révén növekednek. Az egyes lárvastádiumokat kutikulavedlés választja el egymástól. Ha a zord környezeti körülmények azt jelzik a fejlődő féreg számára, hogy a feltételek valószínűleg nem teszik lehetővé a kifejlett egyed termékenységét, a C. elegans megváltoztathatja fejlődését, és alternatív L3 lárvastádiumot alakíthat ki, amelyben a lárvák dauer stádiumba lépnek. Ebben az állapotban az állatok rendkívül stressztűrők és hosszú életűek, és három–kilenc hónapig is túlélhetnek. A dauer lárvák úgy védekeznek a kedvezőtlen körülményekkel szemben, hogy lezárják a száj- és végbélnyílásukat, összezsugorítják a bélrendszerüket, és bekapcsolnak egy daf-16/FOXO-függő genetikai programot, amely többek között dauer-specifikus kutikula expressziójához vezet. (vö. Henderson et al., 2006)

C. elegans dauer lárvák

A dauer lárva kifejezés azokra a fonálféreglárvákra utal, amelyek egy alternatív fejlődési stádiumba léptek. A „dauer lárvák” kifejezést különösen a Rhabditidae családba tartozó férgekre használják, beleértve a Caenorhabditis elegans fajt. A „Dauer” szó német eredetű, és „időtartamot” jelent, „egy időszak” értelemben. A dauer lárvák egyfajta nyugalmi állapotba kerülnek, és képesek túlélni a zord körülményeket. A környezeti körülményektől függ, hogy egy lárva dauer stádiumba lép-e, és ha igen, mikor. A dauer lárvákat széles körben tanulmányozzák a biológiában, mert rendkívüli képességet mutatnak a zord környezet túlélésére és a hosszú ideig tartó életben maradásra. Például a C. elegans dauer lárvák akár négy hónapig is túlélhetnek, ami jóval hosszabb, mint a normális, szaporodáshoz vezető fejlődés során jellemző, körülbelül háromhetes átlagos élettartamuk.

A C. elegans életciklusának áttekintése

A C. elegans fejlődése kedvező környezetben:
A Caenorhabditis elegans (C. elegans) eltérő fejlődésmenetet mutat kedvező és kedvezőtlen környezeti körülmények között.
 
A C. elegans válasza a kedvező körülményekre:
Kedvező körülmények között a mikroszkopikus Caenorhabditis elegans (C. elegans) fonálféreg jól meghatározott fejlődési utat követ. A fonálféreg jellemzően meglehetősen gyorsan végighalad életciklusán, ha a környezeti körülmények optimálisak, rendszerint 15°C és 20°C közötti hőmérsékleten.

  1. Szaporodáshoz vezető fejlődés: A C. elegans embrióként kezdi életciklusát. Ezután négy különálló lárvastádiumon halad át, amelyek rövidítése L1–L4.
  2. Kifejlett stádium: A négy lárvastádium befejezése után a C. elegans mindössze 3–5 nap alatt eléri a kifejlett stádiumot. Ebben a stádiumban képes szaporodni, és a környezeti tényezőktől függően további 2–3 hétig él.

 
A C. elegans válasza a kedvezőtlen körülményekre:

A C. elegans azonban ellenálló szervezet, és a dauerképződésnek nevezett folyamat révén alkalmazkodhat a kedvezőtlen körülményekhez.

  1. Dauerképződés: Amikor a környezeti körülmények kedvezőtlenné válnak, például túlzsúfoltság, korlátozott táplálékellátás vagy magas hőmérséklet esetén, a C. elegans egy rendkívüli, harmadik lárvastádiumba léphet, amelyet „dauer”-nek neveznek, és L3d-vel rövidítenek.
  2. Túlélés dauer stádiumban: A dauer lárvák különösen jól alkalmazkodtak a zord körülmények közötti túléléshez. Ebben a stádiumban több hónapig is élhetnek, miközben energiát takarítanak meg, és ellenállnak a megterhelő környezeti feltételeknek.

 

Visszatérés a normális fejlődéshez kedvező környezetben:
A C. elegans figyelemre méltó tulajdonsága, hogy a körülmények javulásakor képes visszatérni a normális életciklushoz.

  1. A kedvező körülmények visszatérése: Amikor a C. elegans dauer lárvák ismét kedvező körülményekkel találkoznak, például bőséges táplálékkal, kisebb egyedsűrűséggel és megfelelő hőmérséklettel, érzékelik a környezet változását.
  2. Visszatérés a normális fejlődéshez és szaporodás: Ezekre a javuló körülményekre válaszul a dauer lárvák a normális fejlődéshez való visszatérés folyamatán mennek keresztül. Ennek során visszatérnek a lárvastádiumokhoz, és végül normális élettartamú, szaporodóképes kifejlett egyedekké válnak.

 
A C. elegans biológiájának sajátos jellemzője, hogy a környezeti körülményekre reagálva képes váltani a fejlődési stádiumok között. Ez lehetővé teszi számára, hogy a körülmények széles skálája mellett hatékonyan túléljen és szaporodjon, így értékes modellszervezet a tudományos kutatásban, különösen a fejlődés, a genetika és az öregedés vizsgálatában.

Örömmel egyeztetünk az Ön folyamatáról.

✕