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Entparaffinierung und Proteinextraktion aus FFPE

Erleichtern Sie die Proteinextraktion aus formalinfixierten, paraffineingebetteten (FFPE) Gewebeschnitten durch eine optimierte Kombination aus Entparaffinierung, Solubilisierung und Ultraschallbehandlung mit einem VialTweeter Mehrfachröhrchen-Ultraschallgerät. Dieses Protokoll unterstützt die anschließende massenspektrometriebasierte Proteomik und ist mit Arbeitsabläufen zur SP3-Aufreinigung und zum enzymatischen Verdau kompatibel.

Diese Standardarbeitsanweisung (SOP) richtet sich an Laborpersonal, das FFPE-Gewebeproben mittels Hochleistungs-Ultraschallbehandlung für die proteomische Analyse aufbereitet. Sie ist für die parallele Verarbeitung von bis zu zehn FFPE-Proben mit dem VialTweeter Mehrfachröhrchen-Ultraschallgerät optimiert.

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VialTweeter am Ultraschallprozessor UP200ST

VialTweeter Ultraschallgerät zur gleichzeitigen Ultraschallbehandlung von 10 Proben, z. B. zur Lyse und Proteinextraktion aus FFPE-Proben

Protokoll: Proteinextraktion aus FFPE-Proben mit dem VialTweeter

Materialien und Reagenzien

Reagenzien

  • Xylol (Histologie-Qualität)
  • Ethanol (absolut, 96%)
  • Lysepuffer:
  • 6 M Guanidinhydrochlorid
    50 mM Tris-HCl, pH 8,5
    10 mM TCEP (Tris(2-carboxyethyl)phosphin)
    40 mM CAA (2-Chloracetamid)

  • Proteaseinhibitor (optional; z. B. cOmplete™ mini EDTA-free)

 
 

Ausstattung

  • VialTweeter Mehrfachröhrchen-Ultraschallgerät
  • Low-Binding-Mikrozentrifugenröhrchen mit einem Volumen von 1,5 mL oder 2,0 mL
  • Heizblock oder Inkubator (Temperatureinstellungen von 95°C und 80°C)
  • Mikrozentrifuge
  • Thermomixer (optional, aber empfohlen)

Ausgangsprobenmenge

  • 1–2 FFPE-Gewebeschnitte mit einer Dicke von 10 µm pro Probe (d. h. pro Röhrchen)
  • ODER

  • Insgesamt ~100 µg Gewebe pro Probe (d. h. pro Röhrchen)

Hinweis: Verwenden Sie für die Mikrotomie frische Klingen, um die Kontamination durch Paraffinreste zu minimieren.

Durchführung

  1. Entparaffinierung
    1. Überführen Sie die FFPE-Schnitte in Low-Binding-Mikrozentrifugenröhrchen.
    2. Geben Sie 1 mL Xylol hinzu und vortexen Sie kurz.
    3. Inkubieren Sie 10 Minuten bei Raumtemperatur.
    4. Zentrifugieren Sie 2 Minuten bei 14.000 × g; verwerfen Sie den Überstand.
    5. Wiederholen Sie den Waschschritt mit Xylol ein weiteres Mal (Schritte 2–4).
    6. Waschen Sie das Pellet mit 1 mL 96%igem Ethanol, vortexen Sie und zentrifugieren Sie anschließend 2 Minuten bei 14.000 × g. Verwerfen Sie den Überstand.
    7. Wiederholen Sie den Waschschritt mit Ethanol ein weiteres Mal (insgesamt 2 Waschschritte mit Ethanol).
    8. Lassen Sie das Pellet bei geöffneten Deckeln 10 Minuten bei Raumtemperatur an der Luft trocknen, damit das restliche Ethanol verdunstet.
  2. Proteinextraktion und Ultraschallbehandlung
    1. Geben Sie zu jedem trockenen Pellet 200 µL Lysepuffer.

      Hinweis: Obwohl das Ultraschallgerät bis zu 1 mL aufnehmen kann, sind 200 µL für die anschließende Verarbeitung optimal.

    2. Mischen Sie durch Vortexen oder vorsichtiges Pipettieren.
  3. Erste thermische Inkubation
    1. Inkubieren Sie die Röhrchen 30 min bei 95 °C unter Schütteln bei 400 rpm in einem Thermomixer oder Heizblock.
    2. Lassen Sie die Proben 5 min bei Raumtemperatur abkühlen.
  4. Erste Ultraschallbehandlung mit dem VialTweeter
    1. Setzen Sie die Röhrchen in den VialTweeter ein.
    2. Stellen Sie am VialTweeter UP200St die unten angegebenen Werte ein und führen Sie die Ultraschallbehandlung durch.
  5. Einstellungen des Ultraschallgeräts
    • Stellen Sie die Amplitude (A) auf 100% ein.
    • Stellen Sie den Pulsationsmodus (C) auf 100% ein.
    • Periodentaktgeber: Ein
    • Einschaltzeit: 60s
    • Ausschaltzeit: 30s
    • Grenzwert: 15 min (entspricht 10 Zyklen)
    (Hinweis zur Berechnung: (60 s eingeschaltet + 30 s ausgeschaltet) × 10 Zyklen = 900 s = 15 min)
  6. Zweite thermische Inkubation
    Entnehmen Sie die Röhrchen und inkubieren Sie sie erneut 15 min bei 95 °C und 400 rpm.
  7. Zweite Ultraschallbehandlung
    Wiederholen Sie die Ultraschallbehandlung mit dem VialTweeter bei denselben Einstellungen (wie oben) für weitere 10 Zyklen (insgesamt 15 min).
  8. Klärung des Lysats
    1. Zentrifugieren Sie die Proben 10 min bei 13.000 × g und 23°C (Raumtemperatur).
    2. Überführen Sie den Überstand vorsichtig in ein neues Safe-lock-Eppendorf-Röhrchen mit einem Volumen von 2,0 mL. Vermeiden Sie es, das Pellet aufzuwirbeln.
  9. Anschließende Verarbeitung
    Das Lysat ist nun für die SP3-Aufreinigung und den enzymatischen Verdau bereit.

 

UP200St mit VialTweeter zur Beschallung geschlossener ProbengefäßeDer VialTweeter ist ein einzigartiges Ultraschallsystem zur gleichzeitigen Beschallung von bis zu 10 Probengefäßen unter exakt gleichen Bedingungen ohne Kreuzkontamination.
Der VialTweeter ist ein einzigartiges Ultraschallsystem zur gleichzeitigen Beschallung von bis zu 10 Probengefäßen unter exakt gleichen Bedingungen ohne Kreuzkontamination.

 

VialTweeter mit 2,0mL-Eppendorf-Röhrchen zur zuverlässigen Probenvorbereitung unter sterilen Bedingungen

Hielscher VialTweeter mit 10 Eppendorf-Röhrchen

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Hinweise und bewährte Vorgehensweisen

  1. Das Überhitzungsrisiko während der Ultraschallbehandlung wird durch programmierte Ein-/Aus-Zyklen verringert.
  2. Vermeiden Sie nach der Ultraschallbehandlung das Vortexen, um eine Proteinaggregation zu verhindern.

Abfallentsorgung und Sicherheit

  • Xylol und Guanidinhydrochlorid sind gefährliche Chemikalien; arbeiten Sie damit unter einem Laborabzug.
  • Entsorgen Sie sämtliche Lösungsmittelabfälle und biologischen Abfälle gemäß den institutionellen Vorschriften zur biologischen Sicherheit und zum sicheren Umgang mit Chemikalien.
  •  
     

    Die folgende Tabelle gibt Ihnen einen Anhaltspunkt für die ungefähre Verarbeitungskapazität unserer Ultraschallgeräte im Labormaßstab:

    Empfohlene Geräte Chargenvolumen Volumenstrom
    UIP400MTP Ultraschallgerät für 96-Well-Platten Multiwell- / Mikrotiterplatten n.a.
    Ultraschall-CupHorn CupHorn für Röhrchen oder Becherglas n.a.
    GDmini2 Ultraschall-Mikrodurchflussreaktor n.a.
    VialTweeter 0,5 bis 1,5mL n.a.
    UP100H 1 bis 500mL 10 bis 200mL/min
    UP200Ht, UP200St 10 bis 1000mL 20 bis 200mL/min
    UP400St 10 bis 2000mL 20 bis 400mL/min
    Ultraschall-Siebschüttler n.a. n.a.

    Fordern Sie weitere Informationen an

    Bitte nutzen Sie das untenstehende Formular, um weitere Informationen zu Ultraschallprozessoren, Anwendungen und dem Preis anzufordern. Wir besprechen gerne Ihren Prozess mit Ihnen und bieten Ihnen ein Ultraschallsystem an, das Ihre Anforderungen erfüllt!





    Ultraschallhomogenisatoren mit hoher Scherwirkung werden bei der Verarbeitung im Labor, mit Tischgeräten sowie im Pilot- und Industriemaßstab eingesetzt.

    Hielscher Ultrasonics stellt Hochleistungs-Ultraschallhomogenisatoren für Mischanwendungen, Dispergierung, Emulgierung und Extraktion im Labor-, Pilot- und Industriemaßstab her.



    Literatur / Quellen

    Häufig gestellte Fragen

    Warum werden Gewebeproben als FFPE fixiert?

    Die Konservierung durch Formalinfixierung und Paraffineinbettung (FFPE) stabilisiert die Gewebemorphologie und die Proteinstrukturen durch die Bildung kovalenter Quervernetzungen mittels Formaldehyd. Die Einbettung in Paraffin ermöglicht eine langfristige Lagerung bei Raumtemperatur unter Erhaltung der histologischen und molekularen Integrität für retrospektive Analysen.

    Wie entparaffiniere ich FFPE-Proben?

    Bei der Entparaffinierung wird Paraffin durch aufeinanderfolgende Waschschritte mit Lösungsmitteln entfernt: typischerweise durch zwei Inkubationen mit Xylol, gefolgt von zwei Waschschritten mit Ethanol (96%). Nach dem Zentrifugieren und Trocknen ist das Gewebe für die anschließende Extraktion bereit. Dieses Verfahren macht die Probe wieder für die Lyse und den enzymatischen Verdau zugänglich.

    Welchen Zweck hat die thermische Inkubation?

    Bei der thermischen Inkubation wird eine Probe kontrolliert für einen bestimmten Zeitraum einer definierten Temperatur ausgesetzt, um biochemische oder physikalische Veränderungen hervorzurufen. In der Proteomik wird sie häufig eingesetzt, um Proteine zu denaturieren, Formaldehyd-Quervernetzungen in FFPE-Geweben aufzuheben oder die Wirksamkeit des Lysepuffers zu erhöhen. Temperatur und Dauer sind entscheidende Parameter, die auf die angestrebte Reaktion oder den Probentyp abgestimmt werden.

    Was ist der SP3-Verdau?

    Single-Pot Solid-Phase-enhanced Sample Preparation (SP3) ist ein beadbasierter Arbeitsablauf für die Proteomik. Dabei werden paramagnetische Beads zur Bindung von Proteinen verwendet, was eine effiziente Aufreinigung, Konzentrierung und einen enzymatischen Verdau direkt an den Beads unter denaturierenden Bedingungen ermöglicht. SP3 minimiert Probenverluste und ist sehr gut mit Proben geringer Ausgangsmenge und FFPE-Proben kompatibel.


    Hochleistungs-Ultraschall! Das Hielscher Produktsortiment deckt das gesamte Spektrum vom kompakten Labor-Ultraschallgerät über Tischgeräte bis hin zu Ultraschallsystemen für den industriellen Großmaßstab ab.

    Hielscher Ultrasonics stellt Hochleistungs-Ultraschallhomogenisatoren vom Labormaßstab bis zum Industriemaßstab her.

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