Entparaffinierung und Proteinextraktion aus FFPE
Erleichtern Sie die Proteinextraktion aus formalinfixierten, paraffineingebetteten (FFPE) Gewebeschnitten durch eine optimierte Kombination aus Entparaffinierung, Solubilisierung und Ultraschallbehandlung mit einem VialTweeter Mehrfachröhrchen-Ultraschallgerät. Dieses Protokoll unterstützt die anschließende massenspektrometriebasierte Proteomik und ist mit Arbeitsabläufen zur SP3-Aufreinigung und zum enzymatischen Verdau kompatibel.
Diese Standardarbeitsanweisung (SOP) richtet sich an Laborpersonal, das FFPE-Gewebeproben mittels Hochleistungs-Ultraschallbehandlung für die proteomische Analyse aufbereitet. Sie ist für die parallele Verarbeitung von bis zu zehn FFPE-Proben mit dem VialTweeter Mehrfachröhrchen-Ultraschallgerät optimiert.
VialTweeter Ultraschallgerät zur gleichzeitigen Ultraschallbehandlung von 10 Proben, z. B. zur Lyse und Proteinextraktion aus FFPE-Proben
Protokoll: Proteinextraktion aus FFPE-Proben mit dem VialTweeter
Materialien und Reagenzien
Reagenzien
- Xylol (Histologie-Qualität)
- Ethanol (absolut, 96%)
- Lysepuffer:
- Proteaseinhibitor (optional; z. B. cOmplete™ mini EDTA-free)
6 M Guanidinhydrochlorid
50 mM Tris-HCl, pH 8,5
10 mM TCEP (Tris(2-carboxyethyl)phosphin)
40 mM CAA (2-Chloracetamid)
Ausstattung
- VialTweeter Mehrfachröhrchen-Ultraschallgerät
- Low-Binding-Mikrozentrifugenröhrchen mit einem Volumen von 1,5 mL oder 2,0 mL
- Heizblock oder Inkubator (Temperatureinstellungen von 95°C und 80°C)
- Mikrozentrifuge
- Thermomixer (optional, aber empfohlen)
Ausgangsprobenmenge
- 1–2 FFPE-Gewebeschnitte mit einer Dicke von 10 µm pro Probe (d. h. pro Röhrchen)
- Insgesamt ~100 µg Gewebe pro Probe (d. h. pro Röhrchen)
ODER
Hinweis: Verwenden Sie für die Mikrotomie frische Klingen, um die Kontamination durch Paraffinreste zu minimieren.
Durchführung
- Entparaffinierung
- Überführen Sie die FFPE-Schnitte in Low-Binding-Mikrozentrifugenröhrchen.
- Geben Sie 1 mL Xylol hinzu und vortexen Sie kurz.
- Inkubieren Sie 10 Minuten bei Raumtemperatur.
- Zentrifugieren Sie 2 Minuten bei 14.000 × g; verwerfen Sie den Überstand.
- Wiederholen Sie den Waschschritt mit Xylol ein weiteres Mal (Schritte 2–4).
- Waschen Sie das Pellet mit 1 mL 96%igem Ethanol, vortexen Sie und zentrifugieren Sie anschließend 2 Minuten bei 14.000 × g. Verwerfen Sie den Überstand.
- Wiederholen Sie den Waschschritt mit Ethanol ein weiteres Mal (insgesamt 2 Waschschritte mit Ethanol).
- Lassen Sie das Pellet bei geöffneten Deckeln 10 Minuten bei Raumtemperatur an der Luft trocknen, damit das restliche Ethanol verdunstet.
- Proteinextraktion und Ultraschallbehandlung
- Geben Sie zu jedem trockenen Pellet 200 µL Lysepuffer.
Hinweis: Obwohl das Ultraschallgerät bis zu 1 mL aufnehmen kann, sind 200 µL für die anschließende Verarbeitung optimal. - Mischen Sie durch Vortexen oder vorsichtiges Pipettieren.
- Geben Sie zu jedem trockenen Pellet 200 µL Lysepuffer.
- Erste thermische Inkubation
- Inkubieren Sie die Röhrchen 30 min bei 95 °C unter Schütteln bei 400 rpm in einem Thermomixer oder Heizblock.
- Lassen Sie die Proben 5 min bei Raumtemperatur abkühlen.
- Erste Ultraschallbehandlung mit dem VialTweeter
- Setzen Sie die Röhrchen in den VialTweeter ein.
- Stellen Sie am VialTweeter UP200St die unten angegebenen Werte ein und führen Sie die Ultraschallbehandlung durch.
- Zweite thermische Inkubation
Entnehmen Sie die Röhrchen und inkubieren Sie sie erneut 15 min bei 95 °C und 400 rpm. - Zweite Ultraschallbehandlung
Wiederholen Sie die Ultraschallbehandlung mit dem VialTweeter bei denselben Einstellungen (wie oben) für weitere 10 Zyklen (insgesamt 15 min). - Klärung des Lysats
- Zentrifugieren Sie die Proben 10 min bei 13.000 × g und 23°C (Raumtemperatur).
- Überführen Sie den Überstand vorsichtig in ein neues Safe-lock-Eppendorf-Röhrchen mit einem Volumen von 2,0 mL. Vermeiden Sie es, das Pellet aufzuwirbeln.
- Anschließende Verarbeitung
Das Lysat ist nun für die SP3-Aufreinigung und den enzymatischen Verdau bereit.
• Stellen Sie die Amplitude (A) auf 100% ein.
• Stellen Sie den Pulsationsmodus (C) auf 100% ein.
• Periodentaktgeber: Ein
• Einschaltzeit: 60s
• Ausschaltzeit: 30s
• Grenzwert: 15 min (entspricht 10 Zyklen)
(Hinweis zur Berechnung: (60 s eingeschaltet + 30 s ausgeschaltet) × 10 Zyklen = 900 s = 15 min)
Hielscher VialTweeter mit 10 Eppendorf-Röhrchen
Hinweise und bewährte Vorgehensweisen
- Das Überhitzungsrisiko während der Ultraschallbehandlung wird durch programmierte Ein-/Aus-Zyklen verringert.
- Vermeiden Sie nach der Ultraschallbehandlung das Vortexen, um eine Proteinaggregation zu verhindern.
Abfallentsorgung und Sicherheit
Die folgende Tabelle gibt Ihnen einen Anhaltspunkt für die ungefähre Verarbeitungskapazität unserer Ultraschallgeräte im Labormaßstab:
| Empfohlene Geräte | Chargenvolumen | Volumenstrom |
|---|---|---|
| UIP400MTP Ultraschallgerät für 96-Well-Platten | Multiwell- / Mikrotiterplatten | n.a. |
| Ultraschall-CupHorn | CupHorn für Röhrchen oder Becherglas | n.a. |
| GDmini2 | Ultraschall-Mikrodurchflussreaktor | n.a. |
| VialTweeter | 0,5 bis 1,5mL | n.a. |
| UP100H | 1 bis 500mL | 10 bis 200mL/min |
| UP200Ht, UP200St | 10 bis 1000mL | 20 bis 200mL/min |
| UP400St | 10 bis 2000mL | 20 bis 400mL/min |
| Ultraschall-Siebschüttler | n.a. | n.a. |
Literatur / Quellen
- Georgios Mermelekas, Mahshid Zarrineh, Rudi Branca, Fabio Socciarelli (2025): FFPE sections SP3 digestion – rapizyme and ACN. Protocols.io 2025
- Li, W., Chi, H., Salovska, B. et al. (2019): Assessing the Relationship Between Mass Window Width and Retention Time Scheduling on Protein Coverage for Data-Independent Acquisition. Journal of American Society for Mass Spectrometry. 30, 2019. 1396–1405.
- Salovska B., Li W., Bernhardt O.M., Germain P.L., Gandhi T., Reiter L., Liu Y. (2024): A Comprehensive and Robust Multiplex-DIA Workflow Profiles Protein Turnover Regulations Associated with Cisplatin Resistance. bioRxiv [Preprint]. Oct 31, 2024.
Häufig gestellte Fragen
Warum werden Gewebeproben als FFPE fixiert?
Die Konservierung durch Formalinfixierung und Paraffineinbettung (FFPE) stabilisiert die Gewebemorphologie und die Proteinstrukturen durch die Bildung kovalenter Quervernetzungen mittels Formaldehyd. Die Einbettung in Paraffin ermöglicht eine langfristige Lagerung bei Raumtemperatur unter Erhaltung der histologischen und molekularen Integrität für retrospektive Analysen.
Wie entparaffiniere ich FFPE-Proben?
Bei der Entparaffinierung wird Paraffin durch aufeinanderfolgende Waschschritte mit Lösungsmitteln entfernt: typischerweise durch zwei Inkubationen mit Xylol, gefolgt von zwei Waschschritten mit Ethanol (96%). Nach dem Zentrifugieren und Trocknen ist das Gewebe für die anschließende Extraktion bereit. Dieses Verfahren macht die Probe wieder für die Lyse und den enzymatischen Verdau zugänglich.
Welchen Zweck hat die thermische Inkubation?
Bei der thermischen Inkubation wird eine Probe kontrolliert für einen bestimmten Zeitraum einer definierten Temperatur ausgesetzt, um biochemische oder physikalische Veränderungen hervorzurufen. In der Proteomik wird sie häufig eingesetzt, um Proteine zu denaturieren, Formaldehyd-Quervernetzungen in FFPE-Geweben aufzuheben oder die Wirksamkeit des Lysepuffers zu erhöhen. Temperatur und Dauer sind entscheidende Parameter, die auf die angestrebte Reaktion oder den Probentyp abgestimmt werden.
Was ist der SP3-Verdau?
Single-Pot Solid-Phase-enhanced Sample Preparation (SP3) ist ein beadbasierter Arbeitsablauf für die Proteomik. Dabei werden paramagnetische Beads zur Bindung von Proteinen verwendet, was eine effiziente Aufreinigung, Konzentrierung und einen enzymatischen Verdau direkt an den Beads unter denaturierenden Bedingungen ermöglicht. SP3 minimiert Probenverluste und ist sehr gut mit Proben geringer Ausgangsmenge und FFPE-Proben kompatibel.
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