Formulazione ad ultrasuoni di Niosomi
Preparazione del niosoma
Un niosoma è una vescicola non ionica a base di tensioattivi, formata per lo più da tensioattivi non ionici e dall'incorporazione del colesterolo come eccipiente. I niosomi sono più stabili contro la degradazione chimica o l'ossidazione e hanno un lungo tempo di conservazione rispetto ai liposomi. Grazie ai tensioattivi utilizzati per la preparazione dei niosomi, sono biodegradabili, biocompatibili e non immunogenici. I niosomi sono osmoticamente attivi, chimicamente stabili e offrono un tempo di conservazione più lungo rispetto ai liposomi. A seconda delle dimensioni e della lamellarità, sono disponibili vari metodi di preparazione come la sonicazione, l'evaporazione in fase inversa, l'idratazione a film sottile o il processo di assorbimento di farmaci a gradiente di pH trans-membrana. La preparazione ad ultrasuoni del niosoma è la tecnica preferita per produrre vescicole unilamellari, che sono piccole e di dimensioni uniformi.
Formulazione ultrasonica del niosoma
Per formulare i niosomi, un'emulsione olio in acqua (o/w) deve essere preparata a partire da una soluzione organica di tensioattivo, colesterolo, e una soluzione acquosa contenente il composto bioattivo, cioè il farmaco. L'emulsione ad ultrasuoni è la tecnica superiore per miscelare liquidi immiscibili come olio e acqua. Tosando le goccioline di entrambe le fasi e spezzandole in nano-dimensioni, si ottiene una nano-emulsione. Successivamente, il solvente organico viene evaporato, dando luogo a niosomi caricati con agenti terapeutici, che vengono dispersi in fase acquosa. Rispetto all'agitazione meccanica, la tecnica di formulazione del niosoma ad ultrasuoni eccelle formando niosomi con una dimensione media più piccola e un indice di polidispersità più basso in un processo veloce. L'uso di vescicole più piccole è generalmente preferibile, considerando che esse tendono ad evitare i meccanismi di clearance del corpo meglio delle particelle più grandi, e rimangono più a lungo nel flusso sanguigno. (cfr. Bragagni et al. 2014)
- vescicole unilamellari, piccole e uniformi
- processo semplice e veloce
- riproducibile
- Precisamente controllabile
- Sicuro
- facilmente scalabile
Protocolli di preparazione del niosoma a ultrasuoni
N-palmitoyl glucosamina niosomi (Glu) caricati con doxorubicina, un farmaco antitumorale, sono stati preparati agitando una miscela di NPG (16 mg), Span 60 (65 mg), colesterolo (58 mg), e Solulan C24 (54 mg) in soluzione di doxorubicina (1,5 mg/ml, 2 ml, preparato in PBS) a 90°C per 1 h, seguita da sonicazione con sonda per 10 min (75% del max).
Le vescicole di palmitoyl glycol chitosan (GCP) sono state preparate come descritto in precedenza (11) mediante sonda sonicating glycol chitosan (10 mg) e colesterolo (4 mg) in soluzione di doxorubicina (1,5 mg/ml). (Dufes et al. 2004)

UP400St – Dispositivo ad ultrasuoni da 400W per nano-emulsioni
Metodi alternativi di preparazione del niosoma
Metodi alternativi di formulazione del niosoma, come la tecnica di evaporazione in fase inversa o il processo di assorbimento del farmaco a gradiente di pH trans-membrana, prevedono l'applicazione di energia ultrasonica. Entrambe le tecniche sono utilizzate principalmente per formulare vescicole multilamellari (MLV). Qui di seguito è possibile trovare una breve descrizione di entrambe le tecniche e della fase di sonicazione coinvolta.
Sonicazione nella preparazione del niosoma tramite evaporazione in fase inversa
Nel metodo dell'evaporazione in fase inversa (REV), i componenti della formulazione niosomica vengono sciolti in una miscela di etere e cloroformio e aggiunti alla fase acquosa, che contiene il farmaco. Emulsificazione ad ultrasuoni viene utilizzato per trasformare la miscela in una emulsione di piccole dimensioni. Successivamente, la fase organica viene evaporata. Il niosoma ottenuto durante l'evaporazione del solvente organico sono vescicole unilamellari di grandi dimensioni.
Processo di assorbimento del farmaco a gradiente di pH trans-membrana
Per il gradiente di pH trans-membrana (all'interno acido) processo di assorbimento del farmaco (con caricamento a distanza), tensioattivo e colesterolo sono disciolti in cloroformio. Il solvente viene poi fatto evaporare sotto vuoto per ottenere un sottile film sulla parete del pallone a fondo tondo. Il film viene idratato con 300 mM di acido citrico (pH 4,0) vortexando la sospensione. Le vescicole multilamellari vengono congelate e scongelate tre volte e successivamente sonicate con un ultrasuonatore a sonda. A questa sospensione niosomica viene aggiunta e vortexata una soluzione acquosa contenente 10 mg/ml di farmaco. Il pH del campione viene poi portato a pH 7,0-7,2 con 1M di fosfato disodico. Quindi, la miscela viene riscaldata a 60°C per 10 minuti. Questa tecnica produce in vescicole multilamellari. (cfr. Kazi et al. 2010)
Riduzione della dimensione ultrasonica dei niosomi
I niosomi sono di solito all'interno della gamma di dimensioni da 10 nm a 1000 nm. A seconda della tecnica di preparazione, i niosomi sono spesso di dimensioni relativamente grandi e tendono a formare aggregati. Tuttavia, le dimensioni specifiche dei niosomi sono un fattore importante quando si tratta del tipo di sistema di rilascio mirato. Per esempio, una dimensione molto piccola del niosoma nell'intervallo nanometrico è la più adatta per il rilascio sistemico del farmaco, dove il farmaco deve essere erogato attraverso le membrane cellulari per raggiungere il sito bersaglio cellulare, mentre i niosomi più grandi sono raccomandati per il rilascio intramuscolare e intracavitario del farmaco o per applicazioni oftalmiche. La riduzione delle dimensioni ad ultrasuoni dei niosomi è un passo comune durante la preparazione di niosomi altamente potenti. La cesoia a ultrasuoni forza il deagglomerato e disperde i niosomi in nano-niosomi mono-dispersi.
Protocollo – Riduzione delle dimensioni a ultrasuoni di LipoNiosomi
Naderinezhad et al. (2017) hanno formulato LipoNiosomi biocompatibili (una combinazione di niosomi e liposomi) contenenti Tween 60: colesterolo: DPPC (a 55 : 30 : 15 : 3) con 3% DSPE-mPEG. Per ridurre le dimensioni dei LipoNiosomi preparati, dopo l'idratazione hanno sonicato la sospensione per 45 minuti (15 secondi acceso e 10 secondi spento, ampiezza 70% a 100 watt) per ridurre al minimo l'aggregazione di particelle utilizzando l'omogeneizzatore ad ultrasuoni UP200St (Hielscher Ultrasonics GmbH, Germania). Per il metodo a pH-gradiente, i film essiccati di CUR, tensioattivi e lipidi sono stati idratati con 1300 mL di solfato di ammonio (pH 1⁄4 4) a 63 C per 47 min. Poi, le nanoparticelle sono state sonicate su un bagno di ghiaccio per produrre piccole vescicole.
Ultrasuoni per la preparazione del niosoma
Hielscher Ultrasonic ha una lunga esperienza nella progettazione, produzione, distribuzione e assistenza di omogeneizzatori ad ultrasuoni ad alte prestazioni per l'industria farmaceutica, alimentare e cosmetica.
La preparazione di niosomi di alta qualità, liposomi, nanoparticelle lipidiche solide, nanoparticelle polimeriche, complessi di ciclodestrine e altri vettori di farmaci nanostrutturati sono processi in cui i sistemi a ultrasuoni Hielscher eccellono per la loro elevata affidabilità, la costante potenza in uscita e la precisa controllabilità. Gli ultrasuoni Hielscher consentono un controllo preciso di tutti i parametri di processo, come l'ampiezza, la temperatura, la pressione e l'energia di sonicazione. Il software intelligente protocolla automaticamente tutti i parametri di sonicazione (ora, data, ampiezza, energia netta, energia totale, temperatura, pressione) sulla scheda SD integrata.
La robustezza delle apparecchiature ad ultrasuoni Hielscher consente un funzionamento 24/7 in ambienti gravosi e impegnativi.
La tabella seguente fornisce un'indicazione della capacità di lavorazione approssimativa dei nostri ultrasuoni:
Volume di batch | Portata | Dispositivi raccomandati |
---|---|---|
1 - 500mL | 10 - 200mL/min | UP100H |
10 - 2000mL | 20 - 400mL/min | UP200Ht, UP400St |
0,1 - 20L | 0,2 - 4L/min | UIP2000hdT |
10 - 100L | 2 - 10L/min | UIP4000hdT |
n.a. | 10 - 100L/min | UIP16000 |
n.a. | più grande | cluster di UIP16000 |
Contattaci! / Chiedi a noi!

Omogeneizzatori ad ultrasuoni ad alta potenza di laboratorio a pilota e Industriale scala.
Letteratura/riferimenti
- Ashraf Alemi, Javad Zavar Reza, Fateme Haghiralsadat, Hossein Zarei Jaliani, Mojtaba Haghi Karamallah, Seyed Ahmad Hosseini, Somayeh Haghi Karamallah (2018): Paclitaxel and curcumin coadministration in novel cationic PEGylated niosomal formulations exhibit enhanced synergistic antitumor efficacy. J Nanobiotechnol (2018) 16:28.
- Samira Naderinezhad, Ghasem Amoabediny, Fateme Haghiralsadat (2017): Co-delivery of hydrophilic and hydrophobic anticancer drugs using biocompatible pH-sensitive lipid-based nano-carriers for multidrug-resistant cancers. RSC Adv., 2017, 7, 30008–30019.
- Didem Ag Seleci, Muharrem Seleci, Johanna-Gabriela Walter, Frank Stahl, Thomas Scheper (2016): Niosomes as Nanoparticular Drug Carriers: Fundamentals and Recent Applications. Nanostructural Biomaterials and Applications; Journal of Nanomaterials Vol. 2016.
- C. Dufes, J.-M. Muller, W. Couet, J.-C. Olivier, I. F. Uchegbu, G.Schätzlein (2004): Anticancer drug delivery with transferrin targeted polymeric chitosan vesicles. Pharmaceutical Research, vol. 21, no. 1, pp. 101–107, 2004.
- Karim Masud Kazi, Asim Sattwa Mandal, Nikhil Biswas, Arijit Guha, Sugata Chatterjee, Mamata Behera, Ketousetuo Kuotsu (2010): Niosome: A future of targeted drug delivery systems. J Adv Pharm Technol Res. 2010 Oct-Dec; 1(4): 374–380.
- Raquel Martínez-González, Joan Estelrich, Maria Antònia Busquets (2016): Liposomes Loaded with Hydrophobic Iron Oxide Nanoparticles: Suitable T2 Contrast Agents for MRI. International Journal of Molecular Science 2016.
- M. Bragagni et al. (2014): Development and characterization of functionalized niosomes for brain targeting of dynorphin-B. European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics 87, 2014. 73–79.
Particolarità / Cose da sapere
Niosomi vs Liposomi
Liposomi e niosomi sono vescicole microscopiche, che possono essere caricate con composti bioattivi per la somministrazione di farmaci. I niosomi sono simili ai liposomi, ma si differenziano per la loro composizione a doppio strato. Mentre i liposomi hanno un doppio strato di fosfolipidi, il doppio strato del niosoma è costituito da tensioattivi non ionici, il che porta ad una differenza chimica nelle unità strutturali. Questa differenza strutturale conferisce ai niosomi una maggiore stabilità chimica, una capacità di penetrazione cutanea superiore e una minore impurità.
I niosomi sono differenziati per dimensioni in tre gruppi principali: Le piccole vescicole unilamellari (SUV) hanno un diametro medio di 10-100 nm, le grandi vescicole unilamellari (LUV) hanno una dimensione media di 100-3000 nm, e le vescicole multilamellari (MLV) sono caratterizzate da più di un doppio strato.
"I niosomi si comportano in vivo come i liposomi, prolungando la circolazione del farmaco intrappolato e alterandone la distribuzione degli organi e la stabilità metabolica. Come per i liposomi, le proprietà dei niosomi dipendono dalla composizione del doppio strato e dal metodo di produzione. È stato riportato che l'intercalazione del colesterolo nei due strati diminuisce il volume dell'intrappolamento durante la formulazione, e quindi l'efficienza dell'intrappolamento". (Kazi et al. 2010)
I niosomi possono essere preparati con varie tecniche come la tecnica di idratazione a film sottile, l'ultrasonicazione, il metodo di evaporazione a fase inversa, il metodo del gelo e del disidratazione, la microfluidizzazione o il metodo di reidratazione per disidratazione. Scegliendo la forma appropriata di preparazione, il tensioattivo, il contenuto di colesterolo, gli additivi di carica superficiale e la concentrazione della sospensione, la composizione, la lamellarità, la stabilità e la carica superficiale dei niosomi possono essere formulati al fine di soddisfare i requisiti specifici del vettore del farmaco.
Per produrre niosomi altamente biocompatibili con una citotossicità molto bassa, i tensioattivi utilizzati nella preparazione dei niosomi devono essere biodegradabili, biocompatibili e non immunogenici.