Compatibilité universelle : sonication de plaques multipuits avec l’UIP400MTP

Le sonicateur pour plaques multipuits UIP400MTP est conçu pour une compatibilité universelle et permet un traitement par ultrasons efficace et sans contact de pratiquement tous les formats de microplaques standardisés, sans nécessiter de consommables propriétaires. Il accepte les plaques à 6, 12, 24, 48, 96 et 384 puits et fonctionne parfaitement avec elles, qu’elles aient un fond plat, en U, en V ou rond, et qu’elles soient revêtues ou non.

Optimisez votre flux de travail avec le sonicateur pour plaques multipuits UIP400MTP

• Lyse cellulaire et tissulaire
  Disruption efficace de cellules de mammifères, bactériennes, de levures et végétales, ainsi que de tissus frais congelés ou FFPE – idéale pour l’extraction d’ADN/de protéines (génomique, NGS, protéomique).
• Cisaillement des acides nucléiques
  Longueurs de fragments contrôlées (p. ex. pour les banques NGS) avec une haute reproductibilité.
• Détachement cellulaire
  Surpasse la référence absolue qu’est le grattage cellulaire : l’UIP400MTP détache et décolle efficacement les cellules des plaques.
• Extraction et homogénéisation des protéines
  Extraction fiable à partir de cultures cellulaires ou de tissus ; excellente pour la protéomique en aval.
• Mélange pour essais, élimination des biofilms
  Améliore le mélange des réactifs ELISA ; décollement des biofilms dans les plaques à microcavités.
• Flux de travail PCR / qPCR
  La sonication à l’intérieur des plaques PCR facilite la lyse cellulaire, le mélange des réactifs et la préparation de l’ADN de pathogènes.

Efficacité et cadence

La sonication puissante, simultanée, uniforme et sans contact de 1 – 384 puits avec l’UIP400MTP offre un net avantage par rapport au broyage par billes (bead beating), aux kits enzymatiques ou aux bains à ultrasons.
La sonication sans contact évite la contamination croisée d’une plaque à l’autre ou d’un puits à l’autre ; les plaques scellées ou les couvercles en feuille évitent la perte d’échantillons et la contamination.
Les réglages programmables font gagner un temps précieux et évitent les erreurs humaines, ce qui rationalise les flux de travail et permet l’automatisation

Questions fréquentes sur les plaques multipuits

Quels sont les formats des plaques multipuits ?

Les plaques multipuits sont fabriquées dans des formats standardisés tels que les configurations à 6, 12, 24, 48, 96, 384 et 1536 puits, ce qui permet un traitement en parallèle et la compatibilité avec les systèmes automatisés.

Quels sont les différents types de microplaques ?

Les microplaques varient selon le matériau, le traitement de surface et la conception ; on trouve notamment des plaques traitées pour la culture cellulaire, des plaques d’essai non traitées, des plaques filtrantes, des plaques à puits profonds, des plaques PCR ainsi que des surfaces spécialisées à faible adhérence ou à forte liaison.

Que sont les plaques multipuits ?

Les plaques multipuits sont des plaques plates comportant de nombreux petits puits disposés en matrice, utilisées comme récipients standardisés pour des essais biologiques, chimiques ou analytiques à haute cadence.

Quels sont les différents types de plaques à 96 puits ?

Les variantes courantes de plaques à 96 puits comprennent les modèles à fond plat, à fond en U et à fond en V, disponibles en polymères transparents, noirs ou blancs, avec des options de traitement pour culture tissulaire, de revêtements à faible adhérence ou de propriétés optiques spécialisées.

Que sont les plaques de culture cellulaire ?

Les plaques de culture cellulaire sont des plaques en plastique standardisées et stériles – généralement en polystyrène – qui comportent plusieurs puits conçus pour favoriser l’adhésion, la croissance et le maintien des cellules dans des conditions de laboratoire contrôlées.
Elles sont fabriquées avec des traitements de surface spécifiques (par exemple, des surfaces traitées pour la culture tissulaire qui favorisent l’adhésion cellulaire) ou des revêtements spécialisés tels que des protéines de la matrice extracellulaire, des revêtements à ultra-faible adhérence (ULA) pour la formation de sphéroïdes, ou des surfaces micro-structurées destinées à orienter le comportement cellulaire.
Les plaques de culture cellulaire sont disponibles en formats multipuits (p. ex. 6, 12, 24, 48 et 96 puits) et sont compatibles avec les incubateurs standard, les systèmes d’imagerie et les plateformes de manipulation de liquides.

Que sont les cultures cellulaires 3D ?

Les cultures cellulaires 3D sont des systèmes in vitro dans lesquels les cellules sont cultivées au sein d’une matrice ou d’un échafaudage tridimensionnel, ce qui leur permet de former des architectures de type tissulaire et des interactions cellule–cellule/matrice extracellulaire qui reproduisent fidèlement la physiologie in vivo.

Bibliographie / Références

• FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
• Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
• Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
• Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
• Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
• De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
• Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.