PMCA pour la détection à haut débit des prions à l’aide du sonicateur UIP400MTP
Le sonicateur pour plaques multipuits UIP400MTP offre une solution puissante pour la préparation d’échantillons à haut débit dans l’amplification cyclique des protéines mal repliées (PMCA). En assurant une distribution uniforme de l’énergie sur de multiples puits et en maintenant des paramètres de sonication précis, ce système permet le traitement simultané de nombreux échantillons avec une reproductibilité exceptionnelle. Ces capacités sont essentielles pour optimiser la PMCA afin de détecter les prions à de faibles concentrations dans des échantillons biologiques complexes, tels que la salive, où les inhibiteurs de dosage peuvent masquer les résultats.
Les maladies à prions, telles que la maladie du dépérissement chronique (CWD) chez les cervidés et la maladie de Creutzfeldt-Jakob (CJD) chez l’humain, sont des troubles neurodégénératifs causés par des protéines prioniques mal repliées (PrPSc). Ces maladies impliquent souvent de faibles niveaux de prions infectieux dans les fluides corporels, tels que la salive, le sang et l’urine, ce qui complique le diagnostic et la recherche. La transmission horizontale de la CWD par des prions disséminés dans les matrices environnementales a des implications particulièrement importantes pour la gestion de la faune sauvage et la santé écologique. De même, dans des maladies comme la maladie de Creutzfeldt-Jakob, l’amplification fiable des protéines prioniques mal repliées à partir d’échantillons humains est cruciale pour faire progresser les diagnostics et comprendre la progression de la maladie.
Amplification à haute efficacité des protéines mal repliées avec le sonicateur à haut débit UIP400MTP
L’application d’un protocole PMCA modifié permet de contourner les inhibiteurs de dosage courants (p. ex. les mucines dans la salive) et d’atteindre une sensibilité élevée dans la détection de prions qui seraient autrement indétectables ou ambigus avec des techniques telles que la conversion induite par agitation en temps réel (RT-QuIC). Ces avancées améliorent la détection des prions pour diverses maladies, faisant de la PMCA un outil indispensable pour la recherche et le diagnostic des prions. Le sonicateur pour plaques multipuits UIP400MTP facilite la PMCA à haut débit en soniquant de nombreux échantillons dans des microplaques (p. ex. plaques à 6, 24 ou 96 puits) ou des flacons dans un portoir.
Protocole pour l’amplification cyclique des protéines mal repliées (PMCA) à haut débit
Le protocole suivant permet le traitement efficace d’un grand nombre d’échantillons dans des conditions exactement identiques pour des résultats de recherche robustes.
Préparation des échantillons
Matériel de départ :
Préparez les échantillons en :
- Remettant en suspension les culots d’extraction au sarkosyl dans le substrat PMCA.
- Ensemençant directement les homogénats de cerveau ou les échantillons de sang avec des germes de prions.
Substrat :
- Utilisez un homogénat de cerveau à 10 % (p/v) préparé à partir de souris transgéniques surexprimant PrPC (p. ex. souris Tg).
- Homogénéisez le tissu cérébral dans :
– 1× PBS.
– 150 mM NaCl.
– 1 % Triton X-100. - Conservez le substrat à -80 ºC jusqu’à utilisation.
Mise en place des échantillons en microplaque ou en tubes :
Tubes :
- Ajoutez 90 μL de substrat d’homogénat de cerveau et ensemencez avec 10 μL d’échantillon (p. ex. sang, homogénat de cerveau ou culot au sarkosyl).
- Placez 3 billes de Téflon (1,59 mm ou 2,38 mm de diamètre) dans chaque tube de 0,2 mL.
- Montez les tubes dans un portoir compatible avec le sonicateur UIP400MTP.
Microplaque à 6 puits :
- Ajoutez 5 mL de substrat d’homogénat de cerveau et ensemencez avec 500 μL d’échantillon par puits.
- Ajoutez 3 billes de Téflon dans chaque puits.
Procédure PMCA
Mise en place :
Placez le portoir à tubes ou la microplaque à 6 puits dans le sonicateur UIP400MTP conformément aux instructions du fabricant.
Programme de cycles :
Effectuez 144 cycles PMCA comme suit :
- Incubation : 29 minutes et 30 secondes à 37 °C.
- Sonication : 30 secondes à 60 % d’amplitude.
- Surveillez la température : utilisez la sonde de température enfichable pour surveiller la température de l’échantillon et programmez le UIP400MTP à une température maximale de 48–50 °C.
Séries suivantes :
Après avoir terminé la première série de 144 cycles, transférez une aliquote du matériel amplifié :
- Diluez 10 fois dans du substrat frais d’homogénat de cerveau de souris transgénique.
- Effectuez 96 cycles PMCA pour les séries suivantes, en conservant les mêmes paramètres de sonication.
- Poursuivez pour le nombre de séries souhaité (généralement jusqu’à 5).
Détection de PrPSc
- Digestion à la protéinase K :
– Traitez les échantillons avec de la protéinase K (50 μg/mL) à 37 °C pendant 1 heure.
– Arrêtez la digestion en ajoutant du tampon d’échantillon SDS et en faisant bouillir pendant 10 minutes. - Analyse par Western blot :
– Analysez les échantillons digérés à l’aide de :
– anticorps anti-PrP 6H4 ou PRC1.
– Réalisez une SDS-PAGE et transférez sur des membranes PVDF pour la détection.
Traitez plus d’échantillons pour des résultats plus robustes
Le sonicateur pour plaques multipuits UIP400MTP améliore considérablement l’efficacité et l’évolutivité de l’amplification cyclique des protéines mal repliées (PMCA), répondant à la nature traditionnellement chronophage de la procédure. En permettant le traitement simultané de jusqu’à 96 échantillons dans une plaque à 96 puits, le système rationalise les flux de travail PMCA tout en maintenant des conditions de sonication précises et uniformes sur l’ensemble des puits. Cette capacité à haut débit minimise la manipulation manuelle, réduit les étapes laborieuses et garantit la reproductibilité, ce qui en fait un outil indispensable pour la recherche sur les prions. Qu’il s’agisse d’étudier la maladie du dépérissement chronique ou la maladie de Creutzfeldt-Jakob, le UIP400MTP facilite les études à grande échelle avec une plus grande efficacité, permettant aux chercheurs de répondre aux exigences des applications diagnostiques et scientifiques modernes.
Bibliographie / Références
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
Sonicateur pour microplaques UIP400MTP pour la PMCA à haut débit
Foire aux questions
Que sont les prions ?
Les prions sont des protéines mal repliées capables d’induire un repliement anormal de protéines cellulaires normales, en particulier dans le cerveau. Contrairement aux bactéries ou aux virus, les prions sont dépourvus d’acides nucléiques et se propagent par un mécanisme d’auto-matriçage, entraînant des maladies neurodégénératives progressives telles que la maladie de Creutzfeldt-Jakob, l’encéphalopathie spongiforme bovine (maladie de la vache folle) et la tremblante chez le mouton. Leur résistance aux procédés de stérilisation standard souligne leur pathogénicité unique et pose des défis importants en milieu médical et de recherche.
Qu’est-ce que la technique PMCA ?
L’amplification cyclique des protéines mal repliées (PMCA) est une technique de laboratoire utilisée pour amplifier les protéines prioniques mal repliées (PrP^Sc) in vitro. Elle imite la conversion de la protéine prionique cellulaire normale (PrP^C) en sa forme infectieuse mal repliée (PrP^Sc), une caractéristique des maladies à prions. Le procédé comprend des cycles d’incubation et de sonication pour accélérer l’agrégation de PrP^Sc, ce qui en fait un outil puissant pour détecter de faibles niveaux de prions.
Quel mauvais repliement de protéine cause la maladie de Creutzfeldt-Jakob ?
La maladie de Creutzfeldt-Jakob (CJD) est causée par le mauvais repliement de la protéine prionique (PrP). L’isoforme normale (PrPC) adopte une conformation anormale, riche en feuillets β (PrPSc) qui devient infectieuse, formant des agrégats amyloïdes dans le cerveau, entraînant une neurodégénérescence.
Qu’est-ce que l’amplification cyclique des protéines mal repliées des prions infectieux ?
L’amplification cyclique des protéines mal repliées (PMCA) est une méthode pour amplifier la forme infectieuse des prions (PrPSc) en incubant de façon répétée la PrPC normale avec de petites quantités de PrPSc. À chaque cycle, PrPSc catalyse le mauvais repliement de PrPC, et la sonication fragmente les agrégats, créant davantage de sites d’ensemencement. Cela imite la réplication des prions in vivo et permet une détection sensible des prions dans les échantillons biologiques.
Qu’est-ce qui provoque le mauvais repliement de la PrP ?
Le mauvais repliement de la PrP en sa forme pathogène PrPSc peut être déclenché par :
- Mauvais repliement spontané dans les maladies à prions sporadiques.
- Mutations génétiques du gène PRNP (p. ex. maladies à prions familiales).
- Exposition à la PrPSc infectieuse via des aliments contaminés, des procédures médicales ou d’autres moyens.
- Facteurs environnementaux ou structuraux comme le pH, les ions métalliques ou les cofacteurs qui déstabilisent la PrPC.
Qu’est-ce que le test RT-QuIC ?
La conversion induite par agitation en temps réel (RT-QuIC) est un test diagnostique très sensible pour les maladies à prions. Elle détecte la PrPSc en amplifiant sa capacité à convertir la PrPC recombinante en agrégats mal repliés. Le test utilise une détection basée sur la fluorescence de la formation de fibrilles amyloïdes, ce qui le rend utile pour diagnostiquer des maladies comme la CJD dans le liquide céphalo-rachidien (LCR) ou d’autres tissus.
Hielscher Ultrasonics fabrique des homogénéisateurs à ultrasons haute performance, du format laboratoire à la taille industrielle.
