Remplacer le grattage cellulaire par le sonicateur à haute cadence UIP400MTP
Le détachement et l’extraction de lignées cellulaires adhérentes à partir de plaques multipuits en vue d’analyses multi-omiques constituent une tâche quotidienne en laboratoire. Le détachement cellulaire à haute cadence au moyen du sonicateur pour plaques multipuits UIP400MTP remplace le grattage cellulaire manuel et permet d’obtenir des rendements plus élevés en ARN, en lipides totaux et en métabolites polaires totaux. Une nouvelle méthode intègre le sonicateur UIP400MTP de Hielscher à la station de manipulation de liquides Beckman Coulter i7, permettant un traitement des cellules à haute cadence, reproductible et efficace pour l’extraction de l’ARN, des métabolites et des lipides. La méthode présentée surpasse les méthodes traditionnelles de grattage cellulaire manuel en offrant une reproductibilité et un rendement supérieurs pour divers types cellulaires et conditions expérimentales.
Simplifier le détachement cellulaire avec le sonicateur pour microplaques UIP400MTP
Les systèmes de culture de cellules adhérentes jouent un rôle essentiel dans la recherche toxicologique et biomédicale. Dans ce contexte, Cruchley-Fuge et al. (2024) ont relevé un défi important du projet PrecisionTox, consacré à l’exploitation des technologies omiques pour l’évaluation des dangers chimiques. Le projet visait une analyse à haute cadence de milliers d’échantillons traités avec diverses substances chimiques. Pour répondre à cette exigence, les chercheurs ont développé un flux de travail automatisé combinant le sonicateur UIP400MTP avec des protocoles éprouvés d’extraction biphasique pour l’analyse par chromatographie liquide couplée à la spectrométrie de masse (LC-MS). Leur étude évalue l’efficacité du sonicateur pour plaques multipuits UIP400MTP dans le détachement des cellules adhérentes par rapport au grattage manuel et à d’autres méthodes traditionnelles.
Simplifier la multi-omique : extraction automatisée de cellules adhérentes avec l’UIP400MTP
L’équipe de recherche de Laura Cruchley-Fuge de l’Université de Birmingham a utilisé trois lignées cellulaires humaines : HepG2 (cellules de cancer du foie), HepaRG (cellules différenciées de type hépatocytaire) et H295R (cellules de cancer surrénalien). Ces cellules ont été cultivées dans des plaques de 24 puits et de 96 puits et exposées à des substances chimiques d’essai telles que l’aflatoxine B1 et la forskoline.
Plan expérimental :
- Phase 1 : Optimisation des réglages de puissance du sonicateur UIP400MTP et comparaison avec le grattage cellulaire manuel et les bains d’eau soniques. Des cellules HepG2 ont été utilisées pour évaluer la récupération de l’ARN, des métabolites et des lipides.
- Phase 2 : Intégration de l’UIP400MTP dans un flux de travail d’extraction biphasique utilisant le système Beckman Coulter i7. La validation a été réalisée avec des cellules HepaRG et H295R.
Flux de travail d’extraction : Le flux de travail comprenait les expositions chimiques en plaques multipuits, le détachement cellulaire au moyen de l’UIP400MTP et l’extraction biphasique selon la méthode de Bligh & Dyer (B&D). L’analyse LC-MS a été réalisée avec un Thermo Scientific Orbitrap Exploris 120 pour les composés lipophiles et polaires. La méthode B&D, une référence absolue pour la quantification des lipides, comporte une extraction en deux étapes avec du méthanol, du chloroforme et de l’eau, suivie de la quantification des lipides dans la phase chloroformique.
Le sonicateur pour microplaques UIP400MTP facilite le détachement de lignées cellulaires adhérentes des plaques multipuits et des boîtes de Petri
Résultats :
- Phase 1 : Les conditions de sonication optimales ont été identifiées à 60% de puissance.
L’UIP400MTP a permis la récupération d’ARN la plus élevée, avec une reproductibilité exceptionnelle par rapport au grattage manuel et aux bains soniques.
La récupération des métabolites polaires était homogène d’une méthode à l’autre, tandis que la récupération des lipides était nettement supérieure avec l’UIP400MTP. - Phase 2 : La validation sur des cellules HepaRG et H295R a démontré une reproductibilité élevée des données lipidomiques et métabolomiques, comme l’indiquent les scores ACP étroitement regroupés.
Les traitements à l’aflatoxine B1 et à la forskoline ont été efficacement distingués des témoins, ce qui souligne la sensibilité et la fiabilité de la méthode.
Sonicateur pour microplaques UIP400MTP pour le détachement cellulaire à haute cadence
« L’appareil de sonication UIP400MTP de Hielscher offre une approche alternative de haute qualité et reproductible à la “référence absolue” qu’est le grattage cellulaire manuel, permettant d’obtenir des rendements plus élevés en ARN, en lipides totaux et en métabolites polaires totaux. » (Cruchley-Fuge et al., 2024)
Cruchley-Fuge et al. soulignent les avantages du sonicateur UIP400MTP pour le traitement des cellules adhérentes. En remplaçant le grattage manuel, cette méthode améliore la reproductibilité, la cadence de traitement et le rendement, ce qui en fait un outil précieux pour des études à grande échelle telles que PrecisionTox. L’intégration de l’UIP400MTP dans des flux de travail automatisés réduit non seulement la variabilité, mais simplifie également des processus exigeants en main-d’œuvre, permettant l’acquisition de données multi-omiques de haute qualité.
Les travaux de Cruchley-Fuge et al. (2024) facilitent et simplifient le traitement des cultures de cellules adhérentes pour l’analyse multi-omique. L’intégration du sonicateur UIP400MTP dans des flux de travail automatisés garantit une préparation des échantillons homogène et efficace, ce qui le rend idéalement adapté à la recherche toxicologique à haute cadence.
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Les ultrasonicateurs Hielscher sont réputés pour leurs normes de qualité et de conception les plus élevées. Leur robustesse et leur facilité d’utilisation permettent une intégration aisée de nos ultrasonicateurs dans des installations industrielles. Les conditions difficiles et les environnements exigeants sont facilement maîtrisés par les ultrasonicateurs Hielscher.
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Bibliographie / Références
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
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Foire aux questions
Qu’est-ce que le détachement cellulaire ?
En recherche, le détachement cellulaire désigne le processus consistant à séparer des cellules adhérentes de la surface d’un récipient de culture ou d’un substrat. Il est généralement réalisé pour récolter des cellules en vue d’applications en aval telles que l’analyse, la sous-culture ou la cryoconservation. Le détachement peut être obtenu par des méthodes enzymatiques (p. ex. la trypsine), des agents chimiques (p. ex. l’EDTA), des méthodes mécaniques (p. ex. le grattage) ou des techniques physiques comme la sonication, selon le type cellulaire et les exigences de la recherche.
Comment détacher des cellules adhérentes ?
Le détachement de cellules adhérentes par sonication consiste à appliquer des ondes ultrasonores focalisées pour rompre l’adhésion entre les cellules et la surface dans un environnement contrôlé. Plus précisément, le sonicateur pour microplaques UIP400MTP y parvient en générant des vibrations mécaniques localisées qui rompent les liaisons entre les cellules et la surface de culture. Les principales étapes sont les suivantes :
- Préparation : Les cellules sont cultivées dans des plaques multipuits et peuvent être exposées à des substances chimiques spécifiques dans le cadre du plan expérimental.
- Sonication : Le sonicateur UIP400MTP est programmé avec des réglages optimisés (p. ex. 60% de puissance) afin de garantir un détachement efficace sans endommager les cellules ni compromettre l’intégrité des biomolécules.
- Contrôle de la température : L’appareil maintient une température stable afin d’éviter toute dégradation cellulaire ou moléculaire induite par la chaleur au cours du processus.
- Après le détachement : Les cellules détachées sont soumises à des protocoles d’extraction en aval, tels que la méthode biphasique de Bligh & Dyer, pour la récupération de l’ARN, des lipides et des métabolites.
Cette méthode est supérieure au grattage manuel grâce à son automatisation, à sa reproductibilité et à sa capacité à traiter efficacement des échantillons à haute cadence.
Qu’est-ce que le détachement cellulaire non dommageable ?
Le détachement cellulaire non dommageable désigne le processus consistant à séparer des cellules adhérentes de leur substrat sans compromettre leur viabilité, leur intégrité ou leur fonctionnalité. Il est obtenu à l’aide de méthodes douces telles que la sonication contrôlée ou des solutions sans enzyme.
Éviter la destruction des cellules est essentiel pour préserver leurs caractéristiques structurelles et moléculaires, indispensables à des applications en aval précises comme l’analyse multi-omique, les essais fonctionnels ou l’usage thérapeutique. Les cellules endommagées peuvent libérer leur contenu intracellulaire, ce qui risque de fausser les résultats expérimentaux ou de compromettre la qualité des échantillons.
Quel est l’avantage du détachement cellulaire sans enzyme ?
Le détachement cellulaire sans enzyme offre plusieurs avantages, notamment la préservation des protéines et des récepteurs de surface cellulaire, le maintien de la viabilité cellulaire et l’absence de dommages enzymatiques potentiels aux biomolécules. Cette approche est particulièrement intéressante pour les applications en aval sensibles, telles que la cytométrie en flux, la protéomique ou les essais fonctionnels, où des altérations enzymatiques pourraient compromettre la qualité des données ou les résultats expérimentaux. En outre, les méthodes sans enzyme sont souvent plus reproductibles et peuvent être adaptées à des flux de travail à haute cadence.
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