Ultraäänikäsittely solulyysissä: solujen hajotus ja uutto
Ultraäänellä tehtävä solulyysi on nykyaikaisissa biotekniikan laboratorioissa laajalti käytetty näytteiden valmistelutekniikka. Sen ensisijainen tarkoitus on hajottaa solukalvoja tai kokonaisia soluja solunsisäisten komponenttien, kuten proteiinien, nukleiinihappojen tai soluelinten, vapauttamiseksi. Päivittäisessä laboratoriotyössä tämä tarkoittaa, että ultraäänikäsittely on vakiomenetelmä solujen hallittuun hajotukseen ja biomolekyylien tehokkaaseen uuttoon. Ultraäänilaitteiden keskeinen etu on niiden kyky säätää tarkasti kriittisiä prosessiparametreja, kuten ultraäänen intensiteettiä, pulssitusta ja lämpötilan hallintaa. Tämän hallinnan ansiosta tutkijat voivat toteuttaa luotettavan lyysin ja samalla minimoida herkille biomolekyyleille aiheutuvat lämpö- tai mekaaniset vauriot, mikä tuottaa hellävaraisen mutta erittäin tehokkaan uuttoprosessin.
Solulyysi ultraäänilaitteilla
Ultraäänellä tehtävä solulyysi hyödyntää akustista kavitaatiota solukalvojen hajottamiseen ja solunsisäisten molekyylien vapauttamiseen. Hielscher Ultrasonics tarjoaa perinteisen anturityyppisen ultraäänilaitteen sekä useiden näytteiden steriiliin käsittelyyn tarkoitettuja ultraäänilaitteita: VialTweeter-laitteen useille putkille ja näytepulloille sekä 96-kuoppalevyjen ultraäänilaitteen UIP400MTP vakiomikrolevyille.
Hielscher Ultrasonics toimittaa tehokkaita kosketuksettomia ultraäänilaitteita näytteiden valmisteluun ja kliiniseen analyysiin. Monikuoppalevyjen ultraäänilaite UIP400MTP, VialTweeter, CupHorn ja virtauksessa tapahtuvaan ultraäänikäsittelyyn tarkoitettu GDmini2 käsittelevät näytteet steriileissä olosuhteissa.
Ultraäänihomogenisaattorit solulyysiin ja uuttoon
| Ultraäänilaitteen tyyppi | Keskeinen käyttötarkoitus | Näytetilavuus | Tyypillinen käyttökohde | Edut | Esimerkkimallit |
|---|---|---|---|---|---|
| Anturityyppiset ultraäänilaitteet | Yksittäisen näytteen ultraäänikäsittely | 0,1 mL – ~1000 mL | Solulyysi, proteiinien uutto, DNA:n/RNA:n fragmentointi | Tarkka energian hallinta; erilaisia sonotrodeja; optimaalinen pienille ja keskikokoisille näytteille | UP100H, UP200St, UP400St |
| VialTweeter / CupHorn | Useiden suljettujen näytepullojen rinnakkainen käsittely | 8–10 näytepulloa (~1–20 mL kussakin) | Useiden solususpensioiden standardoitu lyysi | Tasainen ultraäänikäsittely; estää ristikontaminaation; toistettavat tulokset | VialTweeter, CupHorn |
| 96-kuoppalevyjen ultraäänilaite | Monikuoppa- ja mikrotiitterilevyjen ultraäänikäsittely | Mikrolevyformaatti | Suuren näytemäärän seulonta, proteomiikka, solumääritykset | Samanaikainen, tasainen ultraäänikäsittely kaikissa kuopissa; ihanteellinen useiden näytteiden työnkulkuihin | UIP400MTP |
| Virtauskennoreaktorit | Jatkuva ultraäänikäsittely suuremmille tilavuuksille | >1 L, skaalattavissa | Teollisen mittakaavan solujen hajotus, uutteiden tuotanto | Jatkuva käsittely; skaalattavissa; täydellinen prosessin hallinta (amplitudi, paine, lämpötila) | UIP1000hdT, UIP2000hdT + virtauskenno |
| Steriilit / epäsuorat ultraäänikäsittelyjärjestelmät | Kontaminaatioton näytteiden käsittely | Riippuu näytepullosta/putkesta/mikrolevystä | Herkät näytteet, steriilit ympäristöt, viranomaisvaatimusten alaiset toimintaympäristöt | Ei anturikosketusta; estää materiaalin siirtymisen näytteestä toiseen; vähäinen puhdistustarve | VialTweeter, CupHorn, UIP400MTP |
Ultraäänikäsittelyn edut solulyysissä
Muihin solulyysi- ja uuttomenetelmiin verrattuna ultraäänellä tehtävällä solulyysillä on useita etuja:
- Nopeus: Ultraäänellä tehtävä solulyysi ja uutto on nopea menetelmä, jolla solut voidaan rikkoa muutamassa sekunnissa. Se on huomattavasti nopeampi kuin muut menetelmät, kuten homogenointi, jäädytys–sulatus tai helmijauhatus.
- Tehokkuus: Ultraäänellä tehtävällä solulyysillä ja uutolla voidaan käsitellä pieniä, suuria tai useita näytteitä kerralla, mikä tekee siitä tehokkaamman kuin muut menetelmät, joissa pienet näytteet on käsiteltävä yksitellen.
- Kemikaalittomuus: Ultraäänellä tehtävä solulyysi ja uutto on ei-invasiivinen menetelmä, joka ei edellytä voimakkaiden kemikaalien tai entsyymien käyttöä. Tämä tekee siitä ihanteellisen sovelluksiin, joissa solun sisällön eheys on säilytettävä. Näytteiden ei-toivottu kontaminaatio voidaan välttää.
- Suuri saanto: Ultraäänellä tehtävällä solulyysillä ja uutolla voidaan saada suuri saanto solun sisältöä, kuten DNA:ta, RNA:ta ja proteiineja. Tämä johtuu siitä, että korkeataajuiset ääniaallot rikkovat soluseinät ja vapauttavat sisällön ympäröivään liuokseen.
- Lämpötilan hallinta: Kehittyneet ultraäänilaitteet mahdollistavat näytteen lämpötilan tarkan hallinnan. Hielscherin digitaaliset ultraäänilaitteet on varustettu liitettävällä lämpötila-anturilla ja lämpötilan seurantaohjelmistolla.
- Toistettavuus: Ultraäänellä tehtävän solulyysin protokollat voidaan helposti toistaa ja jopa sovittaa erilaisiin suurempiin tai pienempiin näytetilavuuksiin yksinkertaisella lineaarisella skaalauksella ylöspäin.
- Monipuolisuus: Ultraäänellä tehtävää solulyysiä ja uuttoa voidaan käyttää monenlaisten solutyyppien uuttamiseen, mukaan lukien bakteerit, hiivat, sienet sekä kasvi- ja nisäkässolut. Sitä voidaan käyttää myös erityyppisten molekyylien, kuten proteiinien, DNA:n, RNA:n ja lipidien, uuttamiseen.
- Lukuisten näytteiden samanaikainen valmistelu: Hielscher Ultrasonics tarjoaa useita ratkaisuja lukuisten näytteiden vaivattomaan käsittelyyn täsmälleen samoissa prosessiolosuhteissa. Tämä tekee lyysin ja uuton näytteenvalmisteluvaiheesta erittäin tehokkaan ja aikaa säästävän.
- Helppokäyttöisyys: Ultraäänellä tehtävän solulyysin ja uuton laitteet ovat helppokäyttöisiä ja vaativat vain vähän koulutusta. Laitteet ovat myös taloudellisia, sillä kyseessä on kertaluonteinen investointi, joka ei edellytä kertakäyttötarvikkeiden toistuvaa hankintaa. Tämä tekee niistä houkuttelevia monille tutkijoille ja laboratorioille.
Kaiken kaikkiaan ultraäänellä tehtävä solulyysi ja uutto on nopea, tehokas, tarkasti hallittava ja monipuolinen menetelmä solun sisällön uuttamiseen. Sen edut vaihtoehtoisiin menetelmiin nähden tekevät siitä houkuttelevan valinnan moniin tutkimus- ja teollisuussovelluksiin.
Ultraäänellä tehtävän solulyysin toimintaperiaate
Ultraäänellä tehtävä solulyysi ja uutto käyttää korkeataajuisia ääniaaltoja solujen hajottamiseen ja niiden sisällön uuttamiseen. Ääniaallot aiheuttavat paineen muutoksia ympäröivässä nesteessä, jolloin pieniä kuplia muodostuu ja luhistuu kavitaatioksi kutsutussa prosessissa. Nämä kuplat synnyttävät paikallisia, erittäin voimakkaita mekaanisia voimia, jotka voivat rikkoa soluja ja vapauttaa niiden sisällön ympäröivään liuokseen.
Solulyysi ultraäänilaitteella sisältää tavallisesti seuraavat vaiheet:
- Näyte asetetaan putkeen tai astiaan nestemäisen puskuriliuoksen kanssa.
- Ultraäänianturi viedään näytteeseen, ja näytteeseen kohdistetaan korkeataajuisia ääniaaltoja, joiden taajuus on noin 20–30 kHz.
- Ultraääniaallot aiheuttavat ympäröivässä nesteessä värähtelyä ja kavitaatiota, jolloin syntyy paikallisia voimia, jotka rikkovat soluja ja vapauttavat niiden sisällön.
- Näyte sentrifugoidaan tai suodatetaan solujäänteiden poistamiseksi, ja uutettu sisältö kerätään myöhempää analyysia varten.
Yleisten lyysimenetelmien haitat
Laboratoriotyössäsi olet saattanut jo kokea, kuinka hankalaa solulyysi voi olla perinteisillä mekaanisilla tai kemiallisilla lyysiprotokollilla.
- Mekaaninen lyysi: Mekaanisista lyysimenetelmistä, kuten huhmareella ja survimella jauhamisesta tai French press -laitteella, helmimyllyllä tai roottori–staattorijärjestelmällä homogenoinnista, puuttuvat usein tarkat hallinta- ja säätömahdollisuudet. Tämä tarkoittaa, että jauhaminen ja hienontaminen voivat nopeasti tuottaa lämpöä ja leikkausvoimia, jotka voivat vaurioittaa näytettä ja denaturoida proteiineja. Ne voivat myös olla aikaa vieviä ja vaatia suuria määriä lähtömateriaalia.
- Kemiallinen lyysi: Kemialliset lyysimenetelmät, kuten detergenttipohjainen lyysi, voivat vaurioittaa näytettä hajottamalla lipidikaksoiskerroksen ja denaturoimalla proteiineja. Ne voivat myös vaatia useita vaiheita ja jättää kontaminanttijäämiä, jotka häiritsevät myöhempiä sovelluksia. Detergentin optimaalisen annostuksen löytäminen on lisähaaste.
- Jäädytys–sulatussyklit: Jäädytys–sulatussyklit voivat saada solukalvot rikkoutumaan, mutta toistuvat syklit voivat myös aiheuttaa proteiinien denaturoitumista ja hajoamista. Tämä menetelmä voi myös vaatia useita syklejä, mikä voi viedä aikaa ja johtaa usein pienempiin saantoihin.
- Entsymaattinen lyysi: Entsymaattiset lyysimenetelmät voivat olla spesifisiä tietyille solutyypeille ja vaatia useita vaiheita, mikä tekee niistä aikaa vieviä. Ne myös tuottavat jätettä ja vaativat huolellista optimointia näytteen hajoamisen välttämiseksi. Entsymaattiset lyysipakkaukset ovat usein kalliita. Jos nykyinen entsymaattinen lyysimenetelmäsi tuottaa riittämättömiä tuloksia, ultraäänikäsittelyä voidaan käyttää synergistisenä menetelmänä solujen hajotuksen tehostamiseen.
Perinteisiin mekaanisiin ja kemiallisiin solulyysimenetelmiin verrattuna ultraäänikäsittely on erittäin tehokas ja luotettava solujen hajotusmenetelmä, joka mahdollistaa ultraäänikäsittelyn parametrien täydellisen hallinnan. Tämä varmistaa materiaalien vapautumisen suuren selektiivisyyden ja tuotteen puhtauden. [vrt. Balasundaram et al., 2009]
Se soveltuu kaikille solutyypeille ja on helposti käytettävissä pienessä ja suuressa mittakaavassa – aina hallituissa olosuhteissa. Ultraäänilaitteet on helppo puhdistaa. Ultraäänihomogenisaattorissa on aina paikallaan tapahtuvan puhdistuksen (CIP) ja paikallaan tapahtuvan steriloinnin (SIP) toiminto. Sonotrodi koostuu massiivisesta titaanisesta värähtelykappaleesta, joka voidaan pyyhkiä tai huuhdella vedellä tai liuottimella (käytettävän väliaineen mukaan). Ultraäänilaitteiden huoltotarve on niiden kestävyyden ansiosta lähes olematon.
Ultraäänilyysi ja solujen hajotus
Laboratorionäytteiden lyysi kestää yleensä 15 sekunnista 2 minuuttiin. Koska ultraäänikäsittelyn intensiteettiä on erittäin helppo säätää amplitudiasetuksella ja ultraäänikäsittelyn kestolla sekä valitsemalla oikeat laitteet, solukalvot voidaan hajottaa hyvin hellävaraisesti tai hyvin äkillisesti solurakenteen ja lyysin tarkoituksen mukaan (esimerkiksi DNA:n uutto vaatii hellävaraisempaa ultraäänikäsittelyä, kun taas bakteerien proteiinien täydellinen uutto vaatii voimakkaampaa ultraäänikäsittelyä). Prosessin aikaista lämpötilaa voidaan seurata integroidulla lämpötila-anturilla ja hallita helposti jäähdyttämällä (jäähauteella tai jäähdytysvaipallisilla virtauskennoilla) tai käyttämällä ultraäänikäsittelyä pulssitilassa. Pulssitilassa tehtävässä ultraäänikäsittelyssä lyhyet, 1–15 sekuntia kestävät ultraäänipulssijaksot mahdollistavat lämmön poistumisen ja jäähtymisen pidempien välitaukojen aikana.
Kaikki ultraäänellä toteutettavat prosessit ovat täysin toistettavissa ja lineaarisesti skaalattavissa.
VialTweeter on ultraäänihomogenisaattori lukuisten näytteiden samanaikaiseen, tasaiseen ja nopeaan steriiliin valmisteluun.
- Solususpension valmistelu: Solupelletit on suspendoitava kokonaan puskuriliuokseen homogenoinnilla (valitse puskuriliuos, joka sopii myöhempään analyysiin, esimerkiksi tiettyyn kromatografiamenetelmään). Lisää tarvittaessa lysotsyymejä ja/tai muita lisäaineita (myös niiden on sovittava erotus-/puhdistusmenetelmiin). Sekoita/homogenoi liuosta varovasti hellävaraisella ultraäänikäsittelyllä, kunnes täydellinen suspensio on saavutettu.
Lue lisää lysotsyymien ja ultraäänikäsittelyn yhteisvaikutuksista! - Ultraäänilyysi: Aseta näyte jäähauteeseen. Hajota solut käsittelemällä suspensiota ultraäänellä 60–90 sekunnin jaksoissa (käyttäen ultraäänilaitteesi pulssitilaa).
- Erotus: Sentrifugoi lysaatti (esimerkiksi 10 min. voimalla 10 000 x g; lämpötilassa 4degC). Erota supernatantti solupelletistä huolellisesti. Supernatantti on solujen kokonaislysaatti. Supernatantin suodatuksen jälkeen saat kirkastetun nesteen, joka sisältää liukoista soluproteiinia.
Ultraäänilaitteiden yleisimmät käyttökohteet biologiassa ja biotekniikassa ovat:
- Soluuutteiden valmistus
- Hiivojen, bakteerien, kasvisolujen, pehmeän tai kovan solukudoksen ja nukleiinimateriaalin hajotus
- Proteiinien uutto
- Entsyymien valmistus ja eristäminen
- Antigeenien tuotanto
- DNA:n uutto ja/tai kohdennettu fragmentointi
- Liposomien valmistus
Ultraäänen moninaiset käyttökohteet ulottuvat biotekniikan, bioteknisen insinööritieteen, mikrobiologian, molekyylibiologian, biokemian, immunologian, bakteriologian, virologian, proteomiikan, genetiikan, fysiologian, solubiologian, hematologian ja kasvitieteen aloille.
Lyysi: solurakenteiden rikkominen
Soluja suojaa puoliläpäisevä solukalvo, joka koostuu fosfolipidikaksoiskerroksesta (myös proteiini–lipidikaksoiskerros; muodostuu hydrofobisista lipideistä ja hydrofiilisistä fosforimolekyyleistä, joiden joukkoon on upotettu proteiinimolekyylejä) ja muodostaa esteen solun sisätilan (soluliman) ja solunulkoisen ympäristön välille. Kasvisoluja ja prokaryoottisia soluja ympäröi soluseinä. Useita kerroksia paksun selluloosasta koostuvan soluseinän vuoksi kasvisolujen lyysi on vaikeampaa kuin eläinsolujen. Solun sisäisiä rakenteita, kuten soluelimiä, tumaa ja mitokondriota, vakauttaa solun tukiranka.
Solujen lyysillä pyritään uuttamaan ja erottamaan soluelimet, proteiinit, DNA, mRNA tai muut biomolekyylit.
Perinteiset solulyysimenetelmät ja niiden haitat
Solujen lyysiin on useita menetelmiä, jotka voidaan jakaa mekaanisiin ja kemiallisiin menetelmiin. Niihin kuuluvat detergentin tai liuottimien käyttö, korkean paineen käyttö tai helmimyllyn tai French press -laitteen käyttö. Näiden menetelmien ongelmallisin haitta on prosessiparametrien ja siten vaikutuksen vaikea hallinta ja säätö.
Alla olevassa taulukossa esitetään yleisten lyysimenetelmien tärkeimmät haitat:
Lyysin toteutus
Lyysi on herkkä prosessi. Lyysin aikana solukalvon antama suoja tuhoutuu, mutta epäfysiologisen ympäristön (poikkeama pH-arvosta) aiheuttama uutettujen proteiinien inaktivoituminen, denaturoituminen ja hajoaminen on estettävä. Siksi lyysi tehdään yleensä puskuriliuoksessa. Useimmat vaikeudet johtuvat hallitsemattomasta solujen hajotuksesta, jonka seurauksena kaikki solunsisäinen materiaali vapautuu kohdentamattomasti ja/tai kohdetuote denaturoituu.
Usein kysytyt kysymykset ultraäänikäsittelystä ja solulyysistä
- Voiko solujen lyysin tehdä ultraäänikäsittelyllä? Kyllä, ultraäänikäsittely hajottaa soluja tehokkaasti korkeataajuisilla ultraääniaalloilla, jotka aiheuttavat kavitaatiota. Kavitaatio on ilmiö, jossa pieniä höyrykuplia muodostuu ja luhistuu voimakkaasti solususpensiossa. Syntyvät mekaaniset voimat hajottavat solukalvoja ja edistävät solunsisäisten komponenttien vapautumista nesteeseen.
- Miten ultraäänilaitetta käytetään solulyysiin? Ultraäänilaitteen käyttö solulyysiin sisältää laitteen anturin upottamisen solususpensioon ja parametrien, kuten amplitudin ja pulssin keston, säätämisen. Prosessia on seurattava tarkasti solujen hajotuksen optimoimiseksi ja samalla proteiinien denaturoitumisen ja entsyymien inaktivoitumisen minimoimiseksi.
- Mikä on ultraäänikäsittelyn periaate solulyysissä? Ultraäänikäsittely toimii akustisen kavitaation periaatteella. Ultraäänienergia siirtyy nestemäiseen väliaineeseen ja aiheuttaa nopeita painevaihteluja, jotka johtavat mikrokuplien muodostumiseen ja luhistumiseen. Nämä luhistumiset synnyttävät voimakkaita leikkausvoimia ja paikallisesti korkeita lämpötiloja, jotka hajottavat solurakenteita ja parantavat lysaatin homogeenisuutta.
- Kuinka kauan solulyysin ultraäänikäsittely kestää? Solulyysin ultraäänikäsittelyn kesto voi vaihdella huomattavasti esimerkiksi solutyypin, solutiheyden, ultraäänilaitteen tehon ja käytettävän protokollan mukaan. Tyypilliset menettelyt voivat kestää useista sekunneista muutamaan minuuttiin, ja ne toteutetaan usein jaksoittain lämmöntuoton hallitsemiseksi ja solujen tasaisen hajotuksen varmistamiseksi.
- Mikä on ultraäänikäsittelyn tarkoitus proteiinien uutossa? Proteiinien uutossa ultraäänikäsittelyn tehtävänä on rikkoa solukalvoja tehokkaasti ja liuottaa proteiineja. Menetelmä on erityisen hyödyllinen proteiinien vapauttamiseen solun sisäisistä osastoista, mikä tekee siitä olennaisen valmistettaessa lysaatteja, joista proteiineja on tarkoitus puhdistaa tai analysoida.
- Miksi ultraäänikäsittelyä käytetään uuttoon? Ultraäänikäsittelyä suositaan uutossa sen nopean vaikutuksen ja kohdennetun energiansyötön ansiosta. Se hajottaa solurakenteita bioaktiivisten molekyylien vapauttamiseksi ilman voimakkaita kemiallisia käsittelyjä ja säilyttää siten uutettujen yhdisteiden toiminnallisen eheyden.
- Häiritseekö ultraäänikäsittely proteiinien välisiä vuorovaikutuksia? Vaikka ultraäänikäsittely voi hajottaa solukalvoja tehokkaasti, se saattaa myös häiritä proteiinien välisiä vuorovaikutuksia. Häiriön voimakkuus riippuu ultraäänikäsittelyn intensiteetistä ja altistuksen kestosta, ja se voi johtaa proteiinikompleksien denaturoitumiseen tai dissosiaatioon, mikä saattaa vaikuttaa myöhempiin analyyttisiin tai toiminnallisiin tutkimuksiin.
- Voiko ultraäänikäsittelyä käyttää E. colin lyysiin? Hielscherin ultraäänilaitteet ovat erityisen tehokkaita sellaisten bakteerisolujen lyysissä kuin E. coli, joilla on kestävät soluseinät. Tekniikka tarjoaa fysikaalisen menetelmän soluseinän ja solukalvon rikkomiseen leikkausvoimilla, minkä vuoksi se on suosittu menetelmä bakteerilysaattien valmistamiseen molekyylibiologian ja biokemian laboratorioissa.
- Mitä prosesseja seuraa ultraäänikäsittelyvaiheen jälkeen?
Ultraäänilyysin jälkeisiin vaiheisiin kuuluvat tyypillisesti lysaatin fraktiointi, soluelinten kohdennettu eristäminen sekä proteiinien jatkouutto tai puhdistus.
Käsitelty lysaatti erotetaan tämän jälkeen ja valmistellaan analyyttisiin tai toiminnallisiin sovelluksiin, kuten korkean erotuskyvyn proteomiikkaan, transkriptomiikkaan tai reseptorisitoutumistutkimuksiin.
Kirjallisuus/viitteet
- Balasundaram, B.; Harrison, S.; Bracewell, D. G. (2009): Advances in product release strategies and impact on bioprocess design. Trends in Biotechnology 27/8, 2009. pp. 477-485.
- Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ultrasonic Recovery and Modification of Food ingredients. In: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ultrasound Technologies for Food and Bioprocessing. New York: Springer, 2011. pp. 345-368.
- Nico Böhmer, Andreas Dautel, Thomas Eisele, Lutz Fischer (2012): Recombinant expression, purification and characterisation of the native glutamate racemase from Lactobacillus plantarum NC8. Protein Expr Purif. 2013 Mar;88(1):54-60.
- Brandy Verhalen, Stefan Ernst, Michael Börsch, Stephan Wilkens (2012): Dynamic Ligand-induced Conformational Rearrangements in P-glycoprotein as Probed by Fluorescence Resonance Energy Transfer Spectroscopy. J Biol Chem. 2012 Jan 6;287(2): 1112-27.
- Claudia Lindemann, Nataliya Lupilova, Alexandra Müller, Bettina Warscheid, Helmut E. Meyer, Katja Kuhlmann, Martin Eisenacher, Lars I. Leichert (2013): Redox Proteomics Uncovers Peroxynitrite-Sensitive Proteins that Help Escherichia coli to Overcome Nitrosative Stress. J Biol Chem. 2013 Jul 5; 288(27): 19698–19714.
- Elahe Motevaseli, Mahdieh Shirzad, Seyed Mohammad Akrami, Azam-Sadat Mousavi, Akbar Mirsalehian, Mohammad Hossein Modarressi (2013): Normal and tumour cervical cells respond differently to vaginal lactobacilli, independent of pH and lactate. ed Microbiol. 2013 Jul; 62(Pt 7):1065-1072.


