ショットガン・プロテオミクスにおけるマイクロプレートの超音波処理 – アプリケーションノート
ショットガンプロテオミクスでは、複雑な生体試料をLC-MS/MS分析に適したペプチドに変換するために、効率的で再現性の高い試料前処理が不可欠です。UIP400MTPマイクロプレート超音波処理装置は、少量の試料に対して標準化された並列超音波処理を可能にし、マイクロプレートベースのワークフローにおける細胞破砕、抽出、再可溶化の効率向上を支援します。 本アプリケーションノートでは、PLA2G12A/Th17研究で公表された細胞外小胞のワークフローを実験室で検証した事例として用い、UIP400MTPをプロテオミクス試料調製にどのように組み込むことができるかを解説します。
再現性の高いショットガン・プロテオミクスを実現するためのマイクロプレート超音波処理
プロテオミクス研究者にとって、再現性のある試料調製は、高品質なLC-MS/MSデータを得るために不可欠です。UIP400MTPマイクロプレート超音波処理装置は、プレートベースおよび小容量・高スループットのワークフローにおいて、標準化された並列超音波処理を実現します。
特に、以下の分野を扱う研究所にとって有用です:
- 多数のウェルにわたって一貫した処理が必要な大規模なサンプルセット
- 試料の損失やばらつきを最小限に抑える必要がある、入力量が限られている材料
- 細胞外小胞などの脂質を豊富に含む試料
- 効率的な破砕、抽出、または再可溶化を必要とする複雑な生物学的調製物
- 条件や反復実験間で再現性が不可欠な、比較ショットガンプロテオミクス
消化処理の前にマイクロプレートでの超音波処理を組み込むことで、研究者は以下の用途に向けた試料の準備状態を改善することができます:
- タンパク質の抽出および再可溶化
- トリプシン/Lys-Cによる消化
- ナノLC/MS/MSのデータ取得
- 定量的下流プロテオミクス解析
マイクロプレート超音波処理が、手作業によるばらつきを低減し、試料の破砕効率を向上させ、複雑な生物学的試料を信頼性の高いLC-MS/MS分析に備えるためにどのように役立つかをご紹介します。
マイクロプレートへの超音波処理には、次のような利点があります:
- プロテオミクス・コア施設
- EV研究施設
- 免疫学および細胞生物学の実験室
- トランスレーショナル研究グループ
- 単一サンプルの前処理から高スループットのワークフローへと規模を拡大するライフサイエンスチーム
The UIP400MTP is not an ultrasonic bath. It'a a high intensity cup horn for focused sonication. This powerful non-contact sonicator delivers a uniform sonication across all wells of your standard well-plate. You have precise control over amplitude, power, and pulsing. A built-in timer and temperature probe ensures consistent results. The UIP400MTP plate sonicator cools samples with water bath (external chiller optional).
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細胞外小胞プロテオーム解析のためのハイスループット試料調製
ショットガン・プロテオミクスとは何ですか?
ショットガンプロテオミクスは、全細胞溶解液や組織抽出物から、精製されたオルガネラ、細胞外小胞、さらには少量の臨床検体に至るまで、複雑な生物学的試料を解析するための中心的な手法となっています。 その最大の強みは、タンパク質の消化、高分解能液体クロマトグラフィー-タンデム質量分析、および計算機によるペプチドからタンパク質への推論を組み合わせた点にあります。しかし、最終的なプロテオームデータセットの品質は、サンプルが質量分析計に到達するはるか以前に決定づけられます。 効率的な試料の破砕、タンパク質の可溶化、干渉物質の除去、再現性のある酵素消化、そして確実なペプチドの回収は、すべてカバレッジの深さと定量的な信頼性にとって決定的な要素となります。
限られた、あるいは貴重なサンプルを扱うプロテオミクス研究者やライフサイエンス研究所にとって、サンプル前処理はしばしばボトルネックとなります。
プロテオミクスにおける細胞外小胞の課題
例えば、細胞外小胞(EV)は、特に取り扱いが難しいサンプルの一種です。これらは膜で囲まれた脂質が豊富なナノスケールの粒子であり、タンパク質の回収率が比較的低く、脂質、塩類、界面活性剤、血清タンパク質、その他のマトリックス成分が混入しやすいという特徴があります。 これらの特性は、消化効率、クロマトグラフィー性能、エレクトロスプレー安定性、およびペプチド同定に悪影響を及ぼす可能性があります。したがって、EVプロテオミクス向けの調製ワークフローは、小胞構造を破壊し、タンパク質荷物を可溶化できる十分な強度を備えつつ、下流工程である酵素消化およびLC-MS/MS分析との互換性を維持できるものでなければなりません。
このような状況において、マイクロプレート対応の超音波処理は、再現性が高く並列化されたサンプル処理を実現する実用的な手法となります。 Hielscher社のマイクロプレート用超音波処理装置モデル「UIP400MTP(400 W)」および「UIP550MTP(550 W)」は、マルチウェルプレートや小容量の容器内の試料を超音波処理するために設計されており、従来のシングルプローブ型超音波処理装置よりも高スループットのワークフローに対応しています。 プロテオミクス研究所にとって、この形式は、手作業によるばらつきを低減し、複数のサンプルの並列処理を改善し、プレートベースのサンプル前処理パイプラインに、より自然に統合できるという点で魅力的です。
模範的なワークフロー
PLA2G12Aが関与するTh17細胞生物学における最近の細胞外小胞プロテオミクス・ワークフローは、マイクロプレート用超音波処理装置UIP400MTPをショットガン・プロテオミクスの試料調製に組み込む方法について、実験室で実証された有用な事例を示しています。 その一連の研究では、メタノール処理、UIP400MTPによる超音波処理、遠心分離、乾燥、トリプシン/Lys-C消化、およびナノフローLC-高分解能タンデムMSを用いて、EVサンプルをプロテオーム解析のために処理した。 この生物学的研究は、最初に bioRxiv のプレプリントとして報告され、その後『Cell Reports』誌に掲載されました。そこでは、プロテオミクス解析により、病原性 T 細胞応答の文脈において、PLA2G12A が EV の貨物タンパク質をどのように変化させるかを解明するのに役立ちました。
ソニケーター: UIP400MTP マイクロプレートソニケーター
入力: 5 µgのEVタンパク質相当量
消化: トリプシン/リソプロテアーゼ
読み取り結果: ナノLC-MS/MS/DIAプロテオミクス
ステップバイステップの手順:ショットガンプロテオミクスに向けたUIP400MTPを用いたEVサンプル調製
このワークフローでは、UIP400MTPマイクロプレート超音波処理装置を用いた、低入力の細胞外小胞(EV)ショットガンプロテオミクス用試料調製法について説明します。 これは、既発表のEVプロテオミクスワークフローに基づいており、そのワークフローでは、EVサンプルを正規化、乾燥、メタノール処理、超音波処理、トリプシン/Lys-Cによる消化、酸性化を行った後、ナノLC-MS/MSにより分析しています。
本プロトコルは、ボトムアップ・ショットガン・プロテオミクスに向けて、EVやその他の少量で脂質を多く含む生物試料を調製するプロテオミクス研究者やライフサイエンス研究所を対象としています。
ワークフローの概要
| ステージ | 目的 | 主な成果 |
|---|---|---|
| EVの準備 | EVサンプルの分離、洗浄、および定量を行う | 正規化されたEV入力 |
| 試料の乾燥 | 溶剤を用いた処理を行う前に、液体を除去してください | 乾燥したEV材料 |
| メタノール処理 | 脂質を豊富に含むEV成分の分解を促進する | メタノールで湿潤させた試料 |
| UIP400MTPによる超音波処理 | 破壊、抽出、均質化を促進する | 処理済みのEVサンプル |
| 消化 | EVタンパク質からペプチドを生成する | トリプシン/リシンCによるペプチド消化 |
| LC-MS/MS分析 | ペプチドの分離、検出、および定量 | プロテオミクスデータセット |
| データ分析 | ペプチドおよびタンパク質の同定と定量 | タンパク質レベルの結果 |
段階別手順書
| ステップ | 説明 | 重要なパラメータ |
|---|---|---|
| 1 | 当研究室で確立された分離ワークフローに従って、精製されたEVサンプルを調製する。 | プロテオミクス試料調製を行う前に、細胞、残渣、および主要な不純物を取り除いてください。 |
| 2 | BCAアッセイなどを用いて、EVのタンパク質含有量を定量する。 | すべてのサンプルを、タンパク質換算で同量の入力となるよう正規化する。 |
| 3 | 5 µg分のEVタンパク質相当量を、清潔なPCRチューブまたは対応する低容量チューブに移し替えます。 | 試料の損失が懸念される場合は、低結合性のチューブを使用してください。 |
| 4 | EVサンプルを完全に乾燥させてください。 | 過熱を避け、目に見える液体が残っていないことを確認してください。 |
| 5 | 乾燥させた各EVサンプルに、25 µLのメタノールを加える。 | 乾燥した材料が完全に濡れていることを確認してください。 |
| 6 | UIP400MTPマイクロプレート用超音波処理装置を用いて、試料を3分間超音波処理してください。 | すべてのサンプルについて、超音波処理の設定および配置のロジックを統一してください。 |
| 7 | 超音波処理した試料を、4°Cで19,000 × g、20分間遠心分離する。 | 遠心分離後は、ペレットや不溶性物質を撹拌しないようにしてください。 |
| 8 | 上清を20 µL、慎重に取り出します。 | すべてのサンプルについて、一貫したピペッティング手法を用いること。 |
| 9 | 残りの試料を完全に乾燥させてください。 | 直ちに消化工程に進むか、検証済みの条件下でのみ保管すること。 |
| 10 | 50 mM 炭酸水素アンモニウム溶液中に、100 ng/µL の濃度で調製したトリプシン/Lys-C 溶液を 4 µL 加える。 | 酵素溶液は使用直前に調製するか、適切に保存された分注液を使用してください。 |
| 11 | 消化液中の乾燥タンパク質試料を溶解させるため、短時間超音波処理を行います。 | 超音波処理後、試験管の底に溜まった液体をすべて回収してください。 |
| 12 | 37°Cで、300 rpmで振とうしながら2時間消化する。 | 蒸発を防ぐため、キャップはしっかりと閉めておいてください。 |
| 13 | 1 µLの1.25% TFAを加えて、消化液を酸性化します。 | 酸処理により消化が停止し、ペプチドがLC-MS/MS分析の準備が整います。 |
| 14 | ダイジェストをLC-MS対応のバイアルまたはプレートに移し替える。 | 不溶性の異物を移送しないようにしてください。 |
| 15 | ナノLC-MS/MSを用いて分析する。 | 注入量、LCグラジエント、およびMS測定設定は、一貫して同じ値を使用してください。 |
| 16 | 必要に応じて、DIA、DDA、またはターゲットプロテオミクス用ソフトウェアを用いて生データを処理する。 | 適切なデータベース、酵素の特異性、修正設定、およびFDRの閾値を適用してください。 |
なぜマイクロプレート超音波処理なのか?
UIP400MTPは、少量の試料に対する標準化された並列超音波処理を可能にします。これは、再現性、少量の試料投入、および多試料処理能力が重要となる場合に有用です。
参照されたEVプロテオミクス・ワークフローでは、タンパク質換算で5 µgのEVを原料とし、25 µLのメタノールを加え、UIP400MTPによる3分間の超音波処理、トリプシン/Lys-Cによる消化、TFAによる酸性化、およびナノLC-MS/MS分析を行った。
推奨されるLC-MS/MSおよびデータ解析の手順
消化および酸処理の後、試料は、高分解能タンデム質量分析計と連結したナノフロー逆相LCを用いて分析することができる。公表されているワークフローでは、ペプチドはナノLCシステムで分離され、Orbitrap質量分析計によるデータ非依存型取得(DIA)によって分析された。
| ステージ | 推奨事項 | 目的 |
|---|---|---|
| サンプルの装填 | C18トラップ、または同等のペプチドロード装置を使用してください。 | ペプチドを濃縮し、極性の高い不純物を除去します。 |
| ペプチドの分離 | ナノフロー逆相LCを使用する。 | ペプチドの分離能とMSの感度を向上させます。 |
| MSの買収 | 研究デザインに応じて、DIA、DDA、またはターゲットMSのいずれかを使用する。 | ペプチドレベルのスペクトルデータを生成します。 |
| データベース検索 | その種に適した参照データベースを使用してください。 | ペプチドおよびタンパク質の同定に対応しています。 |
| FDR制御 | ペプチドおよびタンパク質に対する偽発見率(FDR)の閾値を適用する。 | 識別精度を制御する。 |
| 定量化 | ペプチド、前駆体、およびタンパク質の存在量テーブルをエクスポートします。 | グループ間の統計的な比較が可能になります。 |
品質管理チェックリスト
- すべてのサンプルにおいて、EVタンパク質相当量の投入量が等しいことを確認してください。
- 無作為化または均衡化されたサンプル処理レイアウトを使用してください。
- メタノールの体積、超音波処理時間、乾燥時間、および消化液の体積を一定に保つこと。
- ペプチドの収量および同定された全タンパク質の量をモニタリングする。
- 未切断率とペプチド長分布を確認してください。
- クロマトグラフィーのピーク形状と保持時間の再現性を確認する。
- キャリーオーバーを監視するために、空白行を含めてください。
- 大規模な研究では、プールされたQCサンプルを使用してください。
- 反復実験の変動係数を評価する。
- PCA または関連する手法を用いて、バッチ効果や外れ値のサンプルを特定する。
議事録作成に関する推奨事項
このワークフローを公開または文書化する際は、EVの投入量、プレート形式、メタノールの体積、UIP400MTPの振幅および超音波処理時間、遠心分離条件、乾燥方法、消化バッファー、酵素濃度、消化時間、酸性化条件、 LC-MS/MSプラットフォーム、取得モード、ソフトウェアバージョン、データベース、FDR閾値、正規化方法、および統計的ワークフローを報告してください。
Hielscher社のすべてのマイクロプレート用超音波処理装置は、振幅、超音波処理時間、温度などの重要なプロセスパラメータを、日付と時刻のスタンプ付きで、内蔵SDカードにCSVファイルとして自動的に記録します。再現性と品質管理のためのデータ記録が、これほど簡単になったことはありません!
DIAプロテオミクスを行う際は、すべてのサンプルで一貫した取得設定を使用し、可能な限りプールされたQCサンプルを含めること。プレカーサーカウント、保持時間の安定性、および反復測定間のばらつきを監視すること。
このワークフローは、EVプロテオミクスに関する実験室で検証済みの例です。他のサンプル種については、本格的な研究に拡大する前に、投入量、溶媒条件、超音波処理時間、消化液の体積、およびLC-MS/MSの注入戦略を最適化してください。
研究の詳細:PLA2G12Aに関するEVショットガン・プロテオミクス研究
PLA2G12Aに関する本研究は、ショットガン・プロテオミクス・ワークフローにおけるUIP400MTPの利用例を具体的に示している。本研究の生物学的課題は、分泌型ホスホリパーゼPLA2G12Aが、Th17細胞由来の細胞外小胞をどのように修飾し、それによって病原性T細胞の分化にどのような影響を与えるかという点であった。 著者らは、PLA2G12AがEV膜に作用して1-オレオイル-リゾホスファチジルエタノールアミンを含むリゾホスホリピドを生成すること、およびLPA2を介した下流のリゾホスファチジン酸シグナル伝達がTh17分化に寄与することを明らかにした。 脂質シグナル伝達に加え、これらの研究ではRNAやタンパク質含有量を含むEVの積載物についても検討が行われ、ショットガンプロテオミクスが特性解析戦略の重要な要素となった。
EV調製ワークフローにおいて、Th17細胞は、エクソソームが除去された胎児牛血清を含む培地で培養された。 培養上清をまず遠心分離して細胞を除去し、0.22 µm のフィルターでろ過した後、限外ろ過/超遠心分離によって濃縮し、洗浄して PBS に再懸濁し、BCA タンパク質アッセイにより定量した。 この上流の EV 調製工程により、プロテオミクスワークフローに、定義されたタンパク質相当量の EV 物質を確実に取り込むことができました。
ショットガン・プロテオミクス解析のために、著者らはタンパク質換算で5 µgに相当するEVサンプルを用いた。これらのサンプルはPCRチューブ内で乾燥させ、25 µLのメタノールを加えた。その後、UIP400MTPマイクロプレート超音波処理装置を用いて、3分間超音波処理を行った。 超音波処理後、サンプルを4°C、19,000 × gで20分間遠心分離した。上清20 µLを除去した後、サンプルを乾燥するまで遠心分離した。 その後、50 mM 炭酸水素アンモニウム溶液中に100 ng/µLの濃度で調製したトリプシン/Lys-C溶液4 µL中で、超音波処理によりタンパク質を溶解させた。 37°C、300 rpm で振とうしながら 2 時間消化を行った。消化液を 1 µL の 1.25% トリフルオロ酢酸で酸性化し、ナノフロー LC-高分解能タンデム質量分析にかけた。
このワークフローは、低入力EVプロテオミクスにおけるいくつかの有用な原則を浮き彫りにしている。第一に、入力量はタンパク質相当量で正規化されており、これは異なる遺伝子型や処理条件からのEVを比較する際に重要である。第二に、超音波処理の前にメタノールが使用されており、これは細胞小胞の破壊と抽出を促進すると同時に、LC-MS/MSを複雑にする可能性のある界面活性剤系を回避している。 第三に、超音波処理のステップは短時間で標準化されており、サンプルの並行処理に適しています。第四に、トリプシン/Lys-Cによる消化はごく少量の試料で行われ、希釈を低減し、低入力サンプルからのペプチド回収を促進しました。最後に、消化から酸処理、そしてLC-MS/MSへの直接移行により、不要な操作ステップを最小限に抑えました。
下流工程のLC-MS/MS法では、ナノフロー逆相分離とQ-Exactive HF Orbitrap質量分析計を組み合わせた。 試料はC18プレカラムでトラップされた後、内径50 µmの分析カラムで、流速200 nL/min、40°Cの条件下で分離された。 グラジエントは、低有機溶媒から 35% の溶媒 B まで 60 分かけて行われ、その後、高有機溶媒による洗浄と再平衡が行われました。MS 取得は、高エネルギー衝突解離を伴うデータ非依存型取得(DIA)を用いて、正イオンモードで実行されました。 DIAの生データファイルは、DIA-NN 1.8 および in silico で予測されたスペクトルライブラリを用いて解析した。
高スループットタンパク質抽出 96ウェルプレートソニケーターUIP400MTP付き
よくある質問
ショットガン・プロテオミクスにおけるマイクロプレート超音波処理から、最も恩恵を受けるのは誰か?
マイクロプレート超音波処理は、コア施設、プロテオーム研究グループ、免疫学研究室、トランスレーショナルリサーチチーム、および高スループットなLC-MS/MSワークフローへの移行を進めるライフサイエンス研究所など、複数のサンプルを並行して処理するプロテオミクス研究室において特に有用です。これは、サンプル間の再現性が極めて重要となる場合に特に適しています。
なぜ従来のプローブ式超音波処理装置ではなく、UIP400MTPを使用するのでしょうか?
従来のプローブ式超音波処理装置は、通常、試料を1つずつ処理するため、キャリーオーバーを低減するために試料間の入念な洗浄が必要となります。 マイクロプレート用超音波処理装置のモデル「UIP400MTP」および「UIP550MTP」は、プレート形式または小容量形式での並列超音波処理に対応しており、手作業の削減、一貫性の向上、および複数サンプルの前処理の効率化に貢献します。また、自動化されたワークフローへの容易な統合も可能です。
超音波処理は、ショットガン・プロテオミクスのワークフローにおいてどのような位置づけにあるのでしょうか?
超音波処理は通常、前消化の試料調製段階で用いられます。これは、トリプシン、Lys-C、あるいはトリプシンとLys-Cの混合物を用いた酵素消化に先立ち、細胞の破砕、抽出、均質化、および再可溶化を促進する役割を果たします。
さらに、消化の過程で超音波処理を行うことで、酵素によるタンパク質の消化を大幅に促進することも可能です。 超音波処理を用いたハイスループットタンパク質消化の可能性を探り、迅速なプロテオミクスワークフローを実現しましょう!
マイクロプレートを用いた超音波処理は、細胞外小胞のプロテオミクス研究に有用か?
はい。細胞外小胞は脂質を豊富に含む膜で囲まれた粒子であり、再現性のある処理を行うのは難しい場合があります。 引用されたPLA2G12Aに関する研究では、EVサンプルをメタノールで処理し、UIP400MTPを用いて超音波処理した後、乾燥させ、トリプシン/Lys-Cで消化し、ナノLC/MS/MSによって分析しました。
マイクロプレート超音波処理は、どのような種類の試料に有効ですか?
マイクロプレートを用いた超音波処理は、細胞溶解液、オルガネラ画分、免疫沈降物、タンパク質凝集体、膜を多く含む試料、細胞外小胞、およびその他の少量の生物学的試料の処理に有用です。各試料の種類に応じて、超音波処理の強度と時間、溶媒条件、投入量、および消化法を最適化する必要があります。
超音波処理は酵素消化に取って代わるのでしょうか?
いいえ。超音波処理は、細胞の破砕、抽出、または再可溶化を促進することで、消化のための試料調製に役立ちます。ボトムアップ・ショットガン・プロテオミクスでペプチドを生成するには、依然としてタンパク質消化が必要です。
プロテオミクス・ワークフローにおける超音波によるタンパク質消化について、詳しくはこちらをご覧ください!
UIP400MTPは、低入力プロテオミクスに対応していますか?
はい、マイクロプレート形式は、サンプルの保存や一貫した処理が重要な少量のワークフローに非常に適しています。公表されているEVワークフローでは、プロテオミクス用の前処理は、5 µgのタンパク質相当量のEVを投入して行われました。
マイクロプレートへの超音波処理は再現性を向上させることができるか?
Hielscherの超音波処理装置は、複数のサンプルに対して標準化された超音波処理条件を適用することで、再現性を高めます。しかし、細胞やEVの単離、入力データの正規化、消化効率、LC-MS/MSの安定性、データ処理、統計解析といった他の要因も、プロテオミクス全体の再現性に影響を与えます。
マイクロプレートでの超音波処理は、タンパク質の同定精度を高めるのでしょうか?
試料の破砕や再可溶化が制限要因となる場合、この手法は同定深度の向上に寄与する可能性があります。その効果は、試料の種類、タンパク質の化学的性質、精製方法、消化条件、およびLC-MS/MS法の性能によって異なります。
ワークフローを日常的に使用する前に、どのような点を最適化すべきでしょうか?
主なパラメータには、試料の投入量、バッファーまたは溶媒の組成、プレートの形式、超音波の振幅と照射時間、乾燥条件、消化体積、酵素濃度、インキュベーション時間、およびLC-MS/MSの注入量などが含まれます。このワークフローを本格的な実験に適用する前に、予備試験を行うことをお勧めします。
このワークフローは、DIAプロテオミクスでも使用できますか?
はい。言及されているEVワークフローでは、データ非依存型取得(DIA)を行い、その後DIA-NN解析を実施しました。マイクロプレートの超音波処理は、上流の試料調製プロセスの一部であり、DIA、DDA、あるいはターゲット型プロテオミクス手法と統合することが可能です。
どのような品質管理指標を監視すべきでしょうか?
推奨される品質管理指標には、ペプチド収率、同定されたペプチドおよびタンパク質グループの数、切断漏れ率、ペプチド長分布、クロマトグラフィーピーク形状、保持時間の安定性、反復実験の変動係数、キャリーオーバー、およびPCAや関連手法による生物学的グループの分離などが含まれる。
プロテオミクスにおける試料調製に、マイクロプレート用超音波処理装置「UIP400MTP」または「UIP550MTP」を導入する主な利点は何ですか?
主な利点は、少量の試料に対する標準化された並列処理です。これにより、検査室では手作業によるばらつきを低減し、複雑な生物学的試料を、消化処理、LC-MS/MS測定、および定量プロテオミクス分析に向けて、より一貫性を持って前処理できるようになります。
Hielscher社のマイクロプレート用超音波処理装置は、自動化されたワークフローにシームレスに組み込むことができます。
文献・参考文献
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