Lisi delle cellule di lievito in micropiastre mediante sonificazione ad alta intensità
I microbiologi e i ricercatori nel campo delle scienze della vita che si occupano di saccharomyces cerevisiae, Pichia pastoris / Komagataella phaffii, e chi lavora con altri sistemi a base di lievito conosce bene la sfida: le cellule di lievito sono robuste, ottenere una lisi riproducibile può risultare difficile e la disgregazione manuale dei campioni diventa rapidamente un collo di bottiglia quando occorre vagliare numerosi ceppi, cloni, condizioni di coltura o costrutti di espressione.
Lisi del lievito ad alta produttività per la microbiologia, la biologia molecolare e l'analisi delle proteine
I sonicatori per micropiastre Hielscher, come l’UIP400MTP (400 W) e l’UIP550MTP (550 W), offrono una soluzione ad alta produttività per la lisi meccanica delle cellule di lievito direttamente nelle micropiastre. Anziché trattare i campioni uno per uno con una sonda, è possibile sottoporre a sonicazione intere micropiastre in condizioni uniformi. Ciò rende la lisi ultrasonica del lievito più rapida, più riproducibile e più facile da integrare nei moderni flussi di lavoro di microbiologia, espressione proteica, screening enzimatico e omica.
Che si tratti di estrarre proteine ricombinanti da P. pastoris, preparare lisati di lievito per analisi enzimatiche, disgregare S. cerevisiae per l’analisi proteica o vagliare in parallelo decine di cloni di lievito, i sonicatori per micropiastre Hielscher garantiscono una potente disgregazione cellulare basata sulla cavitazione con un controllo preciso del processo.
È necessaria una lisi riproducibile di Lievito da forno, Padre, pastore, o altri ceppi di lievito in micropiastre? Indicateci il formato delle piastre, il volume dei campioni, la densità cellulare e l’analita di interesse. Vi aiuteremo a definire i parametri di sonicazione più adatti al vostro flusso di lavoro con UIP400MTP o UIP550MTP.
Perché le cellule di lievito necessitano di una lisi meccanica efficiente
Le cellule di lievito sono più difficili da lisare rispetto a molte cellule batteriche o mammifere, poiché sono protette da una parete cellulare rigida composta principalmente da polisaccaridi, glucani, mannoproteine e chitina. Questa parete cellulare garantisce stabilità meccanica, ma limita anche il rilascio di proteine intracellulari, acidi nucleici, metaboliti ed enzimi.
I metodi convenzionali di lisi del lievito includono la frantumazione con microsfere, la digestione enzimatica, i cicli di congelamento-scongelamento, la lisi chimica e la sonicazione con sonda. Questi metodi possono essere efficaci, ma presentano anche dei limiti. La frantumazione con sfere può causare la formazione di detriti e il surriscaldamento, la digestione enzimatica può comportare costi aggiuntivi e variabilità, mentre la sonicazione con sonda su singoli campioni richiede molto tempo quando è necessario trattare un numero elevato di campioni.
La cavitazione ultrasonica focalizzata ad alta intensità supera questi limiti applicando alla sospensione di lievito intense forze di taglio meccaniche, fluttuazioni di pressione e microcorrenti. Il risultato è una rapida rottura delle pareti cellulari e delle membrane, un miglioramento del rilascio intracellulare e una preparazione dei campioni altamente riproducibile in formato piastra.
Sonificazione su micropiastra per la preparazione parallela di campioni di lievito
I modelli Hielscher UIP400MTP e UIP550MTP sono progettati per la sonicazione uniforme di micropiastre, piastre multipozzetto, piastre PCR e portacampioni compatibili. A differenza della sonicazione a sonda, non è necessario trattare i campioni singolarmente. L’intera piastra viene sottoposta a un’energia ultrasonica controllata, rendendo questo flusso di lavoro particolarmente adatto al trattamento parallelo dei campioni.
Ciò è particolarmente utile per:
- screening Lievito da forno mutanti o ceppi di espressione
- Lisi di Padre, pastore / K. phaffii cloni dopo l'espressione di proteine ricombinanti
- Preparazione dei lisati di lievito per i test enzimatici
- Estrazione delle proteine per SDS-PAGE, Western blot, ELISA, LC-MS/MS o analisi dell'attività
- Rilascio di metaboliti intracellulari per la metabolomica
- Preparazione dei campioni di DNA e RNA dopo un’adeguata purificazione a valle
- Ottimizzazione ad alta produttività dei tamponi di lisi, degli additivi e delle condizioni di estrazione
In che modo la cavitazione ultrasonica distrugge le cellule di lievito
Durante la sonicazione, gli ultrasuoni focalizzati ad alta potenza generano cicli alternati di compressione e rarefazione nel campione liquido. A un’intensità sufficiente, queste fluttuazioni di pressione danno origine alla cavitazione acustica. Le bolle di cavitazione si formano, oscillano e collassano, producendo forze di taglio localizzate, microgetti, turbolenze e forti gradienti di pressione.
Nelle sospensioni di lievito, questi effetti meccanici indeboliscono e rompono la parete cellulare e la membrana cellulare. Le proteine intracellulari, gli enzimi, gli acidi nucleici e i metaboliti vengono rilasciati nel tampone di lisi. Poiché il processo è di natura meccanica, può essere utilizzato con molti sistemi tampone diversi e può essere combinato con inibitori di proteasi, agenti riducenti, detergenti, sali o un pretrattamento enzimatico delicato.
Protocollo generale: lisi delle cellule di lievito in micropiastre
Il protocollo riportato di seguito costituisce un punto di partenza pratico per la lisi del lievito mediante l'uso del sonicatore per micropiastre Hielscher UIP400MTP o UIP550MTP. I parametri devono essere ottimizzati in base al ceppo di lievito, alla densità cellulare, alla molecola bersaglio, alla composizione del tampone, al tipo di piastra e al test a valle.
1. Raccolta e lavaggio delle cellule di lievito
Coltivare Saccharomyces, Pichia, Hansenula, Debaryomyces o un altro ceppo di lievito nelle condizioni di coltura desiderate. Raccogliere le cellule mediante centrifugazione e rimuovere il terreno di coltura. Lavare il pellet con acqua distillata fredda, PBS o il tampone di lisi selezionato per rimuovere i componenti residui del terreno di coltura che potrebbero interferire con le analisi successive.
Per l'estrazione delle proteine, mantenere i campioni al freddo e procedere rapidamente. Se si teme la presenza di proteasi, raffreddare preventivamente tutti i tamponi e i materiali di consumo.
2. Risospendere il pellet cellulare
Risospendere il pellet di lievito in un tampone di lisi freddo adeguato. Per un rilascio efficiente delle proteine, è spesso vantaggioso avere un’alta densità cellulare. Come punto di partenza, utilizzare circa il 10–20% p/v di pellet cellulare umido o una sospensione densa corrispondente a OD600 > 10, a seconda del test.
Un tipico tampone di lisi delle proteine del lievito può contenere:
- sistemi tampone quali Tris-HCl, tampone fosfato o HEPES
- sale, come il NaCl o il KCl
- Cocktail di inibitori delle proteasi
- agente riducente facoltativo, come il DTT o il β-mercaptoetanolo
- detergente facoltativo, come Triton X-100, NP-40, SDS o CHAPS, a seconda della compatibilità con le fasi successive del processo
- inibitori della fosfatasi facoltativi per studi sulla fosforilazione
In caso di ceppi di lievito difficili da trattare o per un’estrazione delle proteine particolarmente delicata, è possibile ricorrere a un breve pretrattamento con Zymolyase, Lyticase o un altro enzima in grado di digerire la parete cellulare prima della sonicazione. Questo pretrattamento enzimatico è facoltativo, ma può migliorare l’efficienza della lisi o ridurre l’intensità ultrasonica richiesta.
3. Trasferire i campioni in una micropiastra adeguata
Versare la sospensione di lievito in una micropiastra compatibile con la sonicazione. Spesso si preferiscono le piastre a fondo arrotondato perché migliorano la raccolta del campione e riducono le zone morte. Utilizzare volumi di campione uguali in tutti i pozzetti per migliorare la riproducibilità.
Sigillare la piastra con un tappetino o una pellicola sigillante adeguata per impedire l'evaporazione, la formazione di aerosol e la contaminazione incrociata. Assicurarsi che il sigillo sia compatibile con la temperatura e le condizioni di sonicazione selezionate.
I volumi di lavoro tipici dipendono dal formato della piastra e dall'applicazione. Tra i formati più comuni figurano le piastre a 96 pozzetti, le piastre a pozzetti profondi, le piastre per PCR o i portaprovette adeguati.
4. Configurazione del raffreddamento
La lisi dei lieviti richiede un'elevata intensità ultrasonica e la disgregazione meccanica genera calore. Il controllo della temperatura è quindi fondamentale, soprattutto per l'analisi di proteine, enzimi, RNA o fosforilazione.
Adottare una strategia di raffreddamento adeguata, ad esempio:
- tampone di lisi pre-raffreddato
- micropiastre preraffreddate
- pause di raffreddamento tra un intervallo di sonicazione e l'altro
- raffreddamento esterno della piattaforma di sonicazione, se del caso
L'obiettivo è mantenere il campione sufficientemente freddo da impedire la denaturazione delle proteine, l'inattivazione degli enzimi, la degradazione dell'RNA e la variabilità del campione indotta dal calore.
5. Trattare con ultrasuoni la sospensione di lievito
Inserire la piastra sigillata nel sonicatore per micropiastre Hielscher UIP400MTP o UIP550MTP e selezionare un programma di sonicazione a impulsi. Si raccomanda l'uso della modalità a impulsi poiché consente la disgregazione meccanica durante le fasi di accensione (ON) e la dissipazione del calore durante le fasi di spegnimento (OFF).
Come punto di partenza per la lisi delle cellule di lievito:
| Parametro | Intervallo iniziale consigliato | Scopo |
|---|---|---|
| Ampiezza | 60–100% | Elevata intensità di cavitazione per cellule di lievito robuste |
| modalità a impulsi | 10–30 sec ON / 30–60 sec OFF | Lisi efficiente con accumulo di calore controllato |
| Tempo di funzionamento cumulativo | Da cinque a quindici minuti | Regolare in base alla tensione, alla densità e alla molecola bersaglio |
| Temperatura | Conservare i campioni al freddo | Proteggere proteine, enzimi, RNA e metaboliti |
| Sigillatura delle piastre | Consigliato | Impedisce l'evaporazione, la formazione di aerosol e la contaminazione incrociata |
In caso di sospensioni di lieviti altamente resistenti, biomassa densa di P. pastoris o estrazione difficile di proteine ricombinanti, aumentare gradualmente il tempo cumulativo di attivazione (ON-time). Per proteine termosensibili o saggi enzimatici, utilizzare impulsi più brevi, pause di raffreddamento più lunghe e un’ampiezza iniziale inferiore.
6. Chiarificare il lisato
Dopo la sonicazione, centrifugare la micropiastra oppure trasferire i campioni in provette per la centrifugazione. Rimuovere i detriti cellulari mediante centrifugazione a velocità e temperatura adeguate. Raccogliere il surnatante per le analisi successive.
A seconda dell'applicazione, il lisato può essere utilizzato per:
- Quantificazione delle proteine
- test di attività enzimatica
- SDS-PAGE e Western blot
- ELISA e test immunologici
- Proteomica LC-MS/MS
- analisi dei metaboliti
- Purificazione del DNA o dell'RNA
7. Ottimizzare e documentare il metodo
Per garantire una lisi del lievito riproducibile, documentare tutti i parametri rilevanti, tra cui il ceppo, le condizioni di coltura e la densità ottica (OD)600, massa della cella umida, composizione del tampone, tipo di piastra, volume del campione, ampiezza, ciclo di impulso, tempo di accensione cumulativo, metodo di raffreddamento e temperatura finale del campione.
Se il sonicatore Hielscher è dotato di registrazione automatica dei dati, i dati di processo possono essere utilizzati per la documentazione, lo sviluppo di metodi, lo scale-up e il controllo qualità.
Suggerimenti per l'ottimizzazione della lisi del lievito
Per ottenere il massimo rilascio proteico, utilizzare sospensioni di lieviti dense, un’elevata intensità ultrasonica e un tempo di funzionamento cumulativo sufficiente. Per le proteine sensibili, ridurre l’ampiezza, prolungare le pause di raffreddamento e mantenere la piastra fredda per tutta la durata del ciclo.
Se la lisi è incompleta, aumentare gradualmente il tempo di sonicazione, provare un pretrattamento enzimatico, ridurre la viscosità del campione oppure ottimizzare il tampone. Se le proteine si degradano o perdono attività, migliorare il raffreddamento, ridurre gli intervalli di accensione (ON), aggiungere inibitori e verificare che il sistema detergente sia compatibile con la proteina bersaglio.
Poiché i ceppi di lievito presentano differenze sostanziali in termini di struttura della parete cellulare, fase di crescita, sistema di espressione e densità della biomassa, si raccomanda di utilizzare una matrice di ottimizzazione sintetica. Ad esempio, si possono testare tre ampiezze, due cicli di impulso e due tempi totali di attivazione, per poi valutare l’efficienza di lisi e l’integrità delle proteine.
Che si tratti di analizzare poche piastre di saggio o di eseguire uno screening di lieviti ad alta produttività, Hielscher può aiutarvi a scegliere il sonicatore per micropiastre più adatto e a sviluppare un protocollo di lisi affidabile. Contattateci indicando il ceppo di lievito, il flusso di lavoro e i requisiti di produttività!
Vantaggi dei sonicatori per micropiastre Hielscher nella lisi del lievito
I sonicatori per micropiastre Hielscher sono ideali per i laboratori che necessitano di una lisi riproducibile su un ampio numero di campioni. Eliminano la lentezza derivante dalla gestione “un campione alla volta” tipica della sonicazione con sonda e riducono la variabilità causata dal posizionamento manuale della sonda, dalla profondità di immersione e dalle differenze nella gestione dei singoli campioni.
I vantaggi principali includono:
- Elaborazione ad alto rendimento: Trattare con ultrasuoni più campioni di lievito in parallelo in micropiastre o portacampioni compatibili.
- Condizioni riproducibili: Condizioni di sonicazione identiche in tutti i pozzetti per ottenere risultati di lisi uniformi e comparabili.
- Nessuna contaminazione incrociata della sonda: I campioni rimangono sigillati durante la sonicazione, riducendo così il rischio di contaminazione incrociata e le operazioni di pulizia.
- Adatto a cellule robuste: Gli ultrasuoni ad alta intensità favoriscono la rottura delle pareti cellulari dei lieviti.
- Flusso di lavoro efficiente: Ideale per lo screening di ceppi, cloni, condizioni di espressione e tamponi di lisi.
- Flusso di lavoro efficiente: Impostazioni programmabili, registrazione automatica dei dati e compatibilità con l'automazione di laboratorio.
Applicazioni nella biotecnologia del lievito e nella ricerca nel campo delle scienze della vita
La lisi ultrasonica del lievito nelle micropiastre supporta numerosi flussi di lavoro di ricerca e screening. Nell’espressione di proteine ricombinanti, i cloni di P. pastoris e S. cerevisiae possono essere lisati in parallelo per confrontare i livelli di espressione o l’attività enzimatica. Nella biologia dei sistemi e nelle scienze omiche, la lisi standardizzata migliora la comparabilità tra le diverse condizioni. In microbiologia, la sonicazione consente la preparazione rapida di lisati provenienti da più ceppi, condizioni di coltura o trattamenti di stress.
Tra i settori di applicazione tipici figurano:
- estrazione delle proteine del lievito
- screening delle proteine ricombinanti
- screening dell'attività enzimatica
- selezione dei cloni dopo la trasformazione
- ottimizzazione della fermentazione
- preparazione dei campioni per la proteomica
- preparazione dei campioni per la metabolomica
- studi sulla distruzione della parete cellulare
- test microbiologici ad alta produttività
Una lisi affidabile del lievito inizia con una sonicazione controllata
La lisi dei lieviti può risultare complessa quando il numero di campioni aumenta, ma i sonicatori per micropiastre Hielscher rendono il processo più veloce, più pulito e più riproducibile. I modelli UIP400MTP e UIP550MTP consentono ai ricercatori di trattare piastre intere in condizioni ultrasoniche definite, migliorando la produttività e riducendo al contempo la manipolazione manuale.
Per i microbiologi, i biologi molecolari, gli studiosi delle proteine e i laboratori biotecnologici, la sonicazione su micropiastra rappresenta uno strumento potente per liberare i componenti intracellulari del lievito in modo efficiente e riproducibile.
Domande frequenti sulla lisi delle cellule di lievito mediante sonicazione su micropiastra
Le cellule di lievito possono essere lisate mediante sonicazione?
Sì. Le cellule di lievito, come il Saccharomyces cerevisiae e la Pichia pastoris, possono essere lisate mediante sonicazione ad alta intensità. La cavitazione ultrasonica genera forti forze di taglio meccaniche che rompono la parete cellulare e la membrana del lievito, liberando proteine, enzimi, acidi nucleici e metaboliti.
Perché le cellule di lievito sono più difficili da lisare rispetto alle cellule batteriche?
Le cellule di lievito presentano una parete cellulare spessa e meccanicamente resistente, composta principalmente da glucani, mannoproteine e chitina. Questa struttura rigida rende il lievito più difficile da lisi rispetto a molte cellule batteriche o mammifere. Pertanto, la lisi del lievito richiede solitamente un’intensità maggiore, un trattamento più lungo o un pretrattamento enzimatico facoltativo.
Quali sonicatori Hielscher sono adatti alla lisi del lievito nelle micropiastre?
I modelli Hielscher UIP400MTP e UIP550MTP sono adatti alla lisi del lievito ad alta produttività in micropiastre. Il modello UIP400MTP è ideale per la preparazione di campioni in parallelo di routine, mentre il modello UIP550MTP offre una potenza ultrasonica maggiore per operazioni di lisi complesse, sospensioni dense e ceppi di lievito resistenti.
È possibile lisare la Pichia pastoris in un sonicatore per micropiastre?
Sì. La Pichia pastoris, nota anche come Komagataella phaffii, può essere lisata mediante sonicazione ad alta intensità su micropiastra. Poiché la P. pastoris è in grado di formare una biomassa densa e presenta una parete cellulare robusta, si raccomanda di ottimizzare l’ampiezza, il ciclo degli impulsi, il raffreddamento e il tempo totale di sonicazione.
Quali sono i parametri tipici di sonicazione per la lisi del lievito?
Un intervallo iniziale utile è un’ampiezza compresa tra il 50 e l’80%, un funzionamento a impulsi (ad esempio 10–30 secondi di accensione e 30–60 secondi di spegnimento) e un tempo di accensione cumulativo compreso tra 5 e 15 minuti. I parametri esatti dipendono dal ceppo di lievito, dalla densità cellulare, dal volume del campione, dal tipo di piastra, dal tampone e dalla molecola bersaglio.
Perché la lisi del lievito dovrebbe essere eseguita in modalità a impulsi?
La modalità a impulsi riduce l'accumulo di calore durante la sonicazione. Durante la fase ON, la cavitazione ultrasonica distrugge le cellule. Durante la fase OFF, il campione può raffreddarsi. Ciò è importante perché un calore eccessivo può denaturare le proteine, ridurre l'attività enzimatica, degradare l'RNA e compromettere la riproducibilità.
È necessario un pretrattamento enzimatico prima di sottoporre le cellule di lievito a sonicazione?
Il pretrattamento enzimatico non è sempre necessario, ma può migliorare l'efficienza della lisi. Enzimi come Zymolyase o Lyticase digeriscono parzialmente la parete cellulare del lievito e possono ridurre l'intensità ultrasonica o il tempo necessario per una lisi completa. Ciò può risultare utile nel caso di proteine sensibili o ceppi difficili da trattare.
Come si può evitare il surriscaldamento durante la sonicazione del lievito?
Utilizzare tamponi pre-raffreddati, la modalità a impulsi, pause di raffreddamento e una piastra raffreddata. Tenere la micropiastra sigillata e monitorare la temperatura, ove possibile. Per le proteine sensibili, utilizzare intervalli di attivazione più brevi, intervalli di disattivazione più lunghi ed elaborare i campioni in condizioni di freddo.
La sonicazione su micropiastra può sostituire la frantumazione con microsfere per la lisi del lievito?
In molti flussi di lavoro, sì. La sonicazione su micropiastra può sostituire la disgregazione con microsfere quando è richiesta una lisi pulita, riproducibile e in parallelo. Evita la manipolazione delle microsfere, riduce la complessità dei materiali di consumo e semplifica l’automazione. Tuttavia, ogni applicazione dovrebbe essere convalidata confrontando la resa della lisi, l’integrità delle proteine e le prestazioni del test.
La sonicazione su micropiastra è adatta all'estrazione di proteine dal lievito?
Sì. La sonicazione su micropiastra è particolarmente indicata per l'estrazione di proteine dal lievito, soprattutto quando è necessario confrontare numerosi cloni o condizioni di coltura. Gli inibitori delle proteasi, i tamponi a bassa temperatura e le impostazioni controllate degli impulsi contribuiscono a preservare la qualità delle proteine.
È possibile utilizzare lo stesso metodo per l'estrazione di DNA, RNA e proteine?
È possibile utilizzare lo stesso principio di base della sonicazione, ma il tampone e le condizioni di processo devono essere adattati alla molecola di destinazione. I flussi di lavoro relativi alle proteine richiedono l’inibizione delle proteasi e il controllo della temperatura. I flussi di lavoro relativi all’RNA richiedono una manipolazione priva di RNasi e un forte raffreddamento. I flussi di lavoro relativi al DNA possono richiedere condizioni di lisi e purificazione diverse a seconda che si desideri ottenere DNA genomico intatto o DNA frammentato.
Quale tipo di piastra si dovrebbe utilizzare per la lisi del lievito?
Utilizzare una micropiastra o una piastra a pozzetti profondi compatibile con la sonicazione e dotata di una chiusura adeguata. Le piastre a fondo arrotondato sono spesso utili per la manipolazione delle sospensioni. La piastra deve resistere alle condizioni di sonicazione selezionate, alla temperatura del campione e alle fasi di centrifugazione.
Come faccio a sapere se la lisi del lievito è completa?
L'efficienza della lisi può essere verificata mediante microscopia, resa proteica, attività enzimatica, riduzione della viscosità, analisi SDS-PAGE, resa di DNA/RNA o confronto con un metodo di lisi noto. Ai fini dello sviluppo del metodo, valutare sia la resa che la qualità della molecola bersaglio rilasciata.
UIP400MTP o UIP550MTP: quale sonicatore per micropiastre scegliere?
L'UIP400MTP è un potente sonicatore per micropiastre destinato alla preparazione di campioni ad alta produttività di routine, tra cui la lisi del lievito, l'estrazione proteica, la frammentazione del DNA, il distacco dei biofilm e la preparazione di saggi. È indicato per i laboratori che necessitano di una sonicazione riproducibile in formati di piastra standard.
L'UIP550MTP offre una potenza ultrasonica maggiore ed è consigliato quando applicazioni più impegnative richiedono un'intensità acustica più elevata, tempi di lavorazione più brevi, carichi di campione più elevati o condizioni di disgregazione più intense. Per la lisi del lievito, l'UIP550MTP è particolarmente utile in caso di biomassa densa, ceppi difficili, volumi di lavoro più grandi e screening di espressione ad alta produttività.
È possibile automatizzare la lisi del lievito mediante sonicazione su micropiastra?
Sì. La sonicazione su micropiastra è particolarmente adatta ai flussi di lavoro automatizzati di laboratorio, poiché i campioni rimangono nel formato a piastra. Ciò consente l'integrazione con i sistemi di pipettatura, la movimentazione delle piastre, la centrifugazione, la preparazione dei test e i flussi di lavoro di screening ad alta produttività.
Letteratura / Riferimenti
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- FactSheet UIP550MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics 2024.



