Produzione di chitina e chitosano dai funghi
L'ultrasonicazione è un metodo altamente efficiente per liberare chitina e chitosano da fonti fungine come i funghi. La chitina e il chitosano devono essere depolimerizzati e deacetilati nella lavorazione a valle per ottenere un biopolimero di alta qualità. La depolimerizzazione e la deacetilazione assistita da ultrasuoni è una tecnica molto efficace, semplice e rapida, che consente di ottenere chitosani di alta qualità con un peso molecolare elevato e una biodisponibilità superiore.
Chitina e chitosano derivati dai funghi tramite ultrasuoni
Funghi commestibili e medicinali come il Lentinus edodes (shiitake), il Ganoderma lucidum (Lingzhi o reishi), l'Inonotus obliquus (chaga), l'Agaricus bisporus (fungo del bottone), l'Hericium erinaceus (criniera di leone), il Cordyceps sinensis (fungo del bruco), Grifola frondosa (gallina del bosco), Trametes versicolor (Coriolus versicolor, Polyporus versicolor, coda di tacchino) e molte altre specie fungine sono ampiamente utilizzate come alimento e per l'estrazione di composti bioattivi. Questi funghi e i residui di lavorazione (scarti di funghi) possono essere utilizzati per produrre chitosano. Gli ultrasuoni non solo favoriscono il rilascio della chitina dalla struttura della parete cellulare fungina, ma guidano anche la conversione della chitina in chitosano di valore attraverso la depolimerizzazione e la deacetilazione assistita da ultrasuoni.
L'ultrasuonazione intensa con un sistema a ultrasuoni a sonda è una tecnica utilizzata per promuovere la depolimerizzazione e la deacetilazione della chitina, con conseguente formazione di chitosano. La chitina è un polisaccaride naturale presente negli esoscheletri di crostacei e insetti e nelle pareti cellulari di alcuni funghi. Il chitosano è derivato dalla chitina rimuovendo i gruppi acetilici dalla molecola di chitina.
Procedura a ultrasuoni per la conversione della chitina fungina in chitosano
Quando si applica l'ultrasuonoterapia intensa per la produzione di chitosano dalla chitina, una sospensione di chitina viene sonicata con onde ultrasonore ad alta intensità e bassa frequenza, in genere nell'intervallo tra 20 kHz e 30 kHz. Il processo genera un'intensa cavitazione acustica, che si riferisce alla formazione, alla crescita e al collasso di microscopiche bolle di vuoto nel liquido. La cavitazione genera forze di taglio estremamente elevate e localizzate, alte temperature (fino a diverse migliaia di gradi Celsius) e pressioni (fino a diverse centinaia di atmosfere) nel liquido che circonda le bolle di cavitazione. Queste condizioni estreme contribuiscono alla rottura del polimero della chitina e alla successiva deacetilazione.

Immagini SEM di chitine e chitosani di due specie di funghi: a) chitina di L. vellereus; b) chitina di P. ribis; c) chitosano di L. vellereus; d) chitosano di P. ribis.
immagine e studio: © Erdoğan et al., 2017
Depolimerizzazione a ultrasuoni della chitina
La depolimerizzazione della chitina avviene attraverso gli effetti combinati di forze meccaniche, come il microstreaming e il getto di liquido, e di reazioni chimiche innescate dagli ultrasuoni e indotte da radicali liberi e altre specie reattive che si formano durante la cavitazione. Le onde ad alta pressione generate durante la cavitazione fanno sì che le catene di chitina subiscano uno stress di taglio, con conseguente scissione del polimero in frammenti più piccoli.
Deacetilazione a ultrasuoni della chitina
Oltre alla depolimerizzazione, gli ultrasuoni intensi promuovono anche la deacetilazione della chitina. La deacetilazione comporta la rimozione dei gruppi acetilici dalla molecola di chitina, con conseguente formazione di chitosano. L'intensa energia ultrasonica, in particolare le alte temperature e le pressioni generate durante la cavitazione, accelerano la reazione di deacetilazione. Le condizioni reattive create dalla cavitazione contribuiscono a rompere i legami acetilici della chitina, con conseguente rilascio di acido acetico e conversione della chitina in chitosano.
Nel complesso, l'ultrasuonazione intensa migliora sia il processo di depolimerizzazione che quello di deacetilazione, fornendo l'energia meccanica e chimica necessaria per rompere il polimero della chitina e facilitare la conversione in chitosano. Questa tecnica offre un metodo rapido ed efficiente per la produzione di chitosano dalla chitina, con numerose applicazioni in vari settori, tra cui quello farmaceutico, agricolo e dell'ingegneria biomedica.
Produzione industriale di chitosano da funghi con ultrasuoni di potenza
La produzione commerciale di chitina e chitosano si basa principalmente sugli scarti delle industrie marine (pesca, raccolta di molluschi, ecc.). Le diverse fonti di materie prime danno luogo a qualità diverse di chitina e chitosano, con conseguenti fluttuazioni di produzione e qualità dovute alle variazioni stagionali della pesca. Inoltre, il chitosano derivato da fonti fungine offre proprietà superiori, come una lunghezza omogenea del polimero e una maggiore solubilità, rispetto al chitosano di origine marina. (cfr. Ghormade et al., 2017) Per fornire chitosano uniforme, l'estrazione di chitina da specie fungine è diventata una produzione alternativa stabile. La produzione di chitina e citiosan dai funghi può essere ottenuta in modo semplice e affidabile utilizzando la tecnologia di estrazione e deacetilazione a ultrasuoni. L'intensa sonicazione interrompe le strutture cellulari per liberare la chitina e promuove il trasferimento di massa nei solventi acquosi per ottenere rese superiori di chitina ed efficienza di estrazione. La successiva deacetilazione a ultrasuoni converte la chitina nel prezioso chitosano. Sia l'estrazione della chitina a ultrasuoni che la deacetilazione in chitosano possono essere scalate linearmente a qualsiasi livello di produzione commerciale.

ultrasuonatore UP400St per l'estrazione dei funghi: La sonicazione fornisce elevate rese di composti bioattivi come i polisaccaridi chitina e chitosano.
Risultati della ricerca sulla deacetilazione a ultrasuoni di chitina e chitosano
Zhu et al. (2018) concludono nel loro studio che la deacetilazione a ultrasuoni si è dimostrata una svolta cruciale, convertendo la β-chitina in chitosano con una deacetilazione dell'83-94% a temperature di reazione ridotte. L'immagine a sinistra mostra un'immagine SEM del chitosano deacetilato a ultrasuoni (90 W, 15 min, 20 w/v% NaOH, 1:15 (g: mL) (immagine e studio: © Zhu et al., 2018)
Nel loro protocollo, la soluzione di NaOH (20 p/v %) è stata preparata sciogliendo scaglie di NaOH in acqua DI. La soluzione alcalina è stata poi aggiunta al sedimento GLSP (0,5 g) in un rapporto solido-liquido di 1:20 (g: mL) in una provetta da centrifuga. Il chitosano è stato aggiunto a NaCl (40 mL, 0,2 M) e acido acetico (0,1 M) in un rapporto di volume 1:1. La sospensione è stata quindi sottoposta a ultrasuoni a una temperatura moderata di 25°C per 60 minuti utilizzando un ultrasuonatore a sonda (250W, 20kHz). (cfr. Zhu et al., 2018)
Pandit et al. (2021) hanno riscontrato che il tasso di degradazione delle soluzioni di chitosano è raramente influenzato dalle concentrazioni di acido utilizzate per solubilizzare il polimero e dipende in larga misura dalla temperatura, dall'intensità delle onde ultrasonore e dalla forza ionica dei mezzi utilizzati per sciogliere il polimero. (cfr. Pandit et al., 2021)
In un altro studio, Zhu et al. (2019) hanno utilizzato polveri di spore di Ganoderma lucidum come materia prima fungina e hanno studiato la deacetilazione assistita da ultrasuoni e gli effetti dei parametri di lavorazione, come il tempo di sonicazione, il rapporto solido/liquido, la concentrazione di NaOH e la potenza di irradiazione sul grado di deacetilazione (DD) del chitosano. Il valore più alto di DD è stato ottenuto con i seguenti parametri ultrasonici: 20 minuti di sonicazione a 80 W, 10% (g:ml) di NaOH, 1:25 (g:ml). La morfologia superficiale, i gruppi chimici, la stabilità termica e la cristallinità del chitosano ottenuto con gli ultrasuoni sono stati esaminati con SEM, FTIR, TG e XRD. Il team di ricerca riferisce di un significativo aumento del grado di deacetilazione (DD), della viscosità dinamica ([η]) e del peso molecolare (Mv¯) del chitosano prodotto con gli ultrasuoni. I risultati hanno evidenziato come la tecnica di deacetilazione ad ultrasuoni dei funghi sia un metodo di produzione altamente potente per il chitosano, adatto ad applicazioni biomediche. (cfr. Zhu et al., 2019)
Qualità superiore del chitosano con la depolimerizzazione e la deacetilazione a ultrasuoni
I processi di estrazione e depolimerizzazione della chitina e del chitosano condotti a ultrasuoni sono controllabili con precisione e i parametri del processo a ultrasuoni possono essere adattati alle materie prime e alla qualità del prodotto finale desiderato (ad esempio, peso molecolare, grado di deacetilazione). Ciò consente di adattare il processo a ultrasuoni a fattori esterni e di impostare parametri ottimali per ottenere risultati ed efficienza superiori.
Il chitosano deacetilato a ultrasuoni mostra un'eccellente biodisponibilità e biocompatibilità. Quando i biopolimeri di chitosano preparati a ultrasuoni vengono confrontati con quelli derivati termicamente per quanto riguarda le proprietà biomediche, il chitosano prodotto a ultrasuoni mostra una vitalità dei fibroblasti (cellule L929) significativamente migliore e una maggiore attività antibatterica sia per Escherichia coli (E. coli) che per Staphylococcus aureus (S. aureus).
(cfr. Zhu et al., 2018)

Immagini al microscopio elettronico a scansione (SEM) con un ingrandimento di 100× di a) gladio, b) gladio trattato con ultrasuoni, c) β-chitina, d) β-chitina trattata con ultrasuoni ed e) chitosano (fonte: Preto et al. 2017)
Apparecchiature a ultrasuoni ad alte prestazioni per la lavorazione di chitina e chitosano
La frammentazione della chitina e la decetilazione della chitina in chitosano richiedono apparecchiature a ultrasuoni potenti e affidabili, in grado di fornire ampiezze elevate, di offrire un controllo preciso dei parametri di processo e di funzionare 24 ore su 24, 7 giorni su 7, in condizioni di carico elevato e in ambienti difficili. La gamma di prodotti Hielscher Ultrasonics soddisfa questi requisiti in modo affidabile. Oltre alle eccezionali prestazioni degli ultrasuoni, gli ultrasonori Hielscher vantano un'elevata efficienza energetica, che rappresenta un notevole vantaggio economico. – soprattutto se impiegate in produzioni commerciali su larga scala.
Gli ultrasuonatori Hielscher sono sistemi ad alte prestazioni che possono essere equipaggiati con accessori quali sonotrodi, booster, reattori o celle di flusso per soddisfare in modo ottimale le esigenze di processo.Grazie al display digitale a colori, alla possibilità di preimpostare i cicli di sonicazione, alla registrazione automatica dei dati su una scheda SD integrata, al controllo remoto via browser e a molte altre caratteristiche, gli ultrasonori Hielscher assicurano il massimo controllo del processo e la facilità d'uso. Grazie alla robustezza e alla grande capacità di carico, i sistemi a ultrasuoni Hielscher sono il vostro cavallo di battaglia affidabile in produzione. La frammentazione e la deacetilazione della chitina richiedono ultrasuoni potenti per ottenere una conversione mirata e un prodotto finale di chitosano di alta qualità. Soprattutto per la frammentazione dei fiocchi di chitina e le fasi di depolimerizzazione/deacetilazione, sono fondamentali ampiezze elevate e pressioni elevate. I processori industriali a ultrasuoni di Hielscher Ultrasonics forniscono facilmente ampiezze molto elevate. Ampiezze fino a 200µm possono essere gestite in modo continuo, 24 ore su 24, 7 giorni su 7. Per ampiezze ancora maggiori, sono disponibili sonotrodi a ultrasuoni personalizzati. La capacità di potenza dei sistemi a ultrasuoni Hielscher consente una depolimerizzazione e una deacetilazione efficienti e rapide in un processo sicuro e facile da usare.

Reattore a ultrasuoni con Sonda a ultrasuoni 2000W UIP2000hdT per l'estrazione della chitina dai funghi e la successiva depolimerizzazione? deacetilazione
Volume di batch | Portata | Dispositivi raccomandati |
---|---|---|
1 - 500mL | 10 - 200mL/min | UP100H |
10 - 2000mL | 20 - 400mL/min | UP200Ht, UP400St |
0,1 - 20L | 0,2 - 4L/min | UIP2000hdT |
10 - 100L | 2 - 10L/min | UIP4000hdt |
n.a. | 10 - 100L/min | UIP16000 |
n.a. | più grande | cluster di UIP16000 |
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Il trattamento sinergico della chitina migliorato dagli ultrasuoni
Per superare gli inconvenienti (bassa efficienza, alto costo energetico, lunghi tempi di lavorazione, solventi tossici) della tradizionale deacetilazione chimica ed enzimatica della chitina, gli ultrasuoni ad alta intensità sono stati integrati nella lavorazione della chitina e del chitosano. La sonicazione ad alta intensità e i conseguenti effetti di cavitazione acustica portano a una rapida scissione delle catene polimeriche e riducono la polidispersità, favorendo così la sintesi del chitosano. Inoltre, le forze di taglio ultrasoniche intensificano il trasferimento di massa nella soluzione in modo da potenziare le reazioni chimiche, idrolitiche o enzimatiche. Il trattamento ultrasonico della chitina può essere combinato con le tecniche di trattamento della chitina già esistenti, come i metodi chimici, l'idrolisi o le procedure enzimatiche.
Deacetilazione e depolimerizzazione chimica assistita da ultrasuoni
Poiché la chitina è un biopolimero non reattivo e insolubile, deve essere sottoposta alle fasi di demineralizzazione, deproteinizzazione e depolimerizzazione/deacetilazione per ottenere chitosano solubile e bioaccessibile. Queste fasi del processo comportano trattamenti con acidi forti come l'HCl e basi forti come NaOH e KOH. Poiché queste fasi del processo convenzionale sono inefficienti, lente e richiedono elevate energie, l'intensificazione del processo mediante sonicazione migliora notevolmente la produzione di chitosano. L'applicazione di ultrasuoni di potenza aumenta la resa e la qualità del chitosano, riduce il processo da giorni a poche ore, consente di utilizzare solventi più blandi e rende l'intero processo più efficiente dal punto di vista energetico.
Deproteinizzazione della chitina migliorata con gli ultrasuoni
Vallejo-Dominguez et al. (2021) hanno riscontrato nella loro indagine sulla deproteinizzazione della chitina che la “L'applicazione degli ultrasuoni per la produzione di biopolimeri ha ridotto il contenuto proteico e la dimensione delle particelle della chitina. Il chitosano ad alto grado di deacetilazione e a medio peso molecolare è stato prodotto con l'assistenza degli ultrasuoni.”
Idrolisi a ultrasuoni per la depolimerizzazione della chitina
Per l'idrolisi chimica si utilizzano acidi o alcali per deacetilare la chitina, ma è più diffusa la deacetilazione con alcali (ad esempio, idrossido di sodio NaOH). L'idrolisi acida è un metodo alternativo alla tradizionale deacetilazione chimica, in cui si utilizzano soluzioni di acidi organici per depolimerizzare la chitina e il chitosano. Il metodo dell'idrolisi acida viene utilizzato soprattutto quando il peso molecolare di chitina e chitosano deve essere omogeneo. Questo processo di idrolisi convenzionale è noto per la sua lentezza e per l'elevato consumo di energia e di costi. La necessità di acidi forti, di temperature e pressioni elevate sono fattori che rendono il processo di idrolisi del chitosano una procedura molto costosa e dispendiosa in termini di tempo. Gli acidi utilizzati richiedono processi a valle come la neutralizzazione e la desalinizzazione.
Con l'integrazione degli ultrasuoni ad alta potenza nel processo di idrolisi, i requisiti di temperatura e pressione per la scissione idrolitica di chitina e chitosano possono essere notevolmente ridotti. Inoltre, la sonicazione consente di ridurre le concentrazioni di acido o di utilizzare acidi più blandi. Ciò rende il processo più sostenibile, efficiente, economico e rispettoso dell'ambiente.
Deacetilazione chimica assistita da ultrasuoni
La disintegrazione chimica e la deacteilazione della chitina e del chitosano si ottengono principalmente trattando la chitina o il chitosano con acidi minerali (ad esempio, acido cloridrico HCl), nitrito di sodio (NaNO2), o il perossido di idrogeno (H2O2). Gli ultrasuoni migliorano la velocità di deacetilazione, riducendo così il tempo di reazione necessario per ottenere il grado di deacetilazione desiderato. Ciò significa che la sonicazione riduce il tempo di lavorazione richiesto di 12-24 ore a poche ore. Inoltre, la sonicazione consente concentrazioni chimiche significativamente inferiori, ad esempio il 40% (peso/peso) di idrossido di sodio utilizzando la sonicazione, mentre è necessario il 65% (peso/peso) senza l'uso degli ultrasuoni.
Deacetilazione ultrasonica-enzimatica
Sebbene la deacetilazione enzimatica sia una forma di lavorazione delicata e rispettosa dell'ambiente, la sua efficienza e i suoi costi sono antieconomici. A causa della complessa, laboriosa e costosa separazione e purificazione degli enzimi dal prodotto finale, la deacetilazione enzimatica della chitina non viene utilizzata nella produzione commerciale, ma solo nei laboratori di ricerca scientifica.
Il pretrattamento a ultrasuoni prima della deacetilazione enzimatica frammenta le molecole di chitina, ampliando l'area superficiale e rendendo disponibile più superficie per gli enzimi. La sonicazione ad alte prestazioni aiuta a migliorare la deacetilazione enzimatica e rende il processo più economico.
Letteratura? Riferimenti
- Ospina Álvarez S.P., Ramírez Cadavid D.A., Escobar Sierra D.M., Ossa Orozco C.P., Rojas Vahos D.F., Zapata Ocampo P., Atehortúa L. (2014): Comparison of extraction methods of chitin from Ganoderma lucidum mushroom obtained in submerged culture. Biomed Research International 2014.
- Valu M.V., Soare L.C., Sutan N.A., Ducu C., Moga S., Hritcu L., Boiangiu R.S., Carradori S. (2020): Optimization of Ultrasonic Extraction to Obtain Erinacine A and Polyphenols with Antioxidant Activity from the Fungal Biomass of Hericium erinaceus. Foods, Dec 18;9(12), 2020.
- Erdoğan, Sevil & Kaya, Murat & Akata, Ilgaz (2017): Chitin extraction and chitosan production from cell wall of two mushroom species (Lactarius vellereus and Phyllophora ribis). AIP Conference Proceedings 2017.
- Zhu, L., Chen, X., Wu, Z., Wang, G., Ahmad, Z., & Chang, M. (2019): Optimization conversion of chitosan from Ganoderma lucidum spore powder using ultrasound‐assisted deacetylation: Influence of processing parameters. Journal of Food Processing and Preservation 2019.
- Li-Fang Zhu, Jing-Song Li, John Mai, Ming-Wei Chang (2019): Ultrasound-assisted synthesis of chitosan from fungal precursors for biomedical applications. Chemical Engineering Journal, Volume 357, 2019. 498-507.
- Zhu, Lifang; Yao, Zhi-Cheng; Ahmad, Zeeshan; Li, Jing-Song; Chang, Ming-Wei (2018): Synthesis and Evaluation of Herbal Chitosan from Ganoderma Lucidum Spore Powder for Biomedical Applications. Scientific Reports 8, 2018.
- G.J. Price, P.J. West, P.F. Smith (1994): Control of polymer structure using power ultrasound. Ultrasonics Sonochemistry, Volume 1, Issue 1, 1994. S51-S57.
Particolarità? Cose da sapere
Come funziona l'estrazione a ultrasuoni e la deacetilazione della chitina?
Quando le onde ultrasoniche di potenza vengono accoppiate a un liquido o a un impasto (ad esempio, una sospensione composta da chitina in un solvente), le onde ultrasoniche viaggiano attraverso il liquido provocando cicli alternati di alta e bassa pressione. Durante i cicli di bassa pressione, si creano minuscole bolle di vuoto (le cosiddette bolle di cavitazione), che crescono nel corso di diversi cicli di pressione. A una certa dimensione, quando le bolle non possono più assorbire energia, implodono violentemente durante un ciclo di alta pressione. L'implosione delle bolle è caratterizzata da intense forze cavitazionali (cosiddette sonomeccaniche). Queste condizioni sonomeccaniche si verificano localmente nel punto caldo cavitazionale e sono caratterizzate da temperature e pressioni molto elevate, rispettivamente fino a 4000K e 1000atm, nonché da corrispondenti differenziali di temperatura e pressione elevati. Inoltre, si generano microturbolenze e flussi di liquido con velocità fino a 100 m/s. L'estrazione a ultrasuoni di chitina e chitosano da funghi e crostacei, così come la depolimerizzazione e la deacetilazione della chitina, sono causate principalmente da effetti sonomeccanici: l'agitazione e le turbolenze disgregano le cellule e promuovono il trasferimento di massa e possono anche tagliare le catene polimeriche in combinazione con solventi acidi o alcalini.
Principio di funzionamento dell'estrazione di chitina mediante ultrasuoni
L'estrazione a ultrasuoni rompe efficacemente la struttura cellulare dei funghi e rilascia nel solvente i composti intracellulari della parete cellulare e dell'interno della cellula (cioè polisaccaridi come chitina e chitosano e altre sostanze fitochimiche bioattive). L'estrazione a ultrasuoni si basa sul principio di funzionamento della cavitazione acustica. Gli effetti della cavitazione ultrasonica/acustica sono forze di taglio elevate, turbolenze e intensi differenziali di pressione. Queste forze sonomeccaniche rompono le strutture cellulari come le pareti chitinose dei funghi, favoriscono il trasferimento di massa tra il biomateriale fungino e il solvente e consentono di ottenere rese di estrazione molto elevate in un processo rapido. Inoltre, la sonicazione favorisce la sterilizzazione degli estratti uccidendo batteri e microbi. L'inattivazione microbica mediante sonicazione è il risultato delle forze cavitazionali distruttive della membrana cellulare, della produzione di radicali liberi e del riscaldamento localizzato.
Principio di funzionamento della depolimerizzazione e della deacetilazione mediante ultrasuoni
Le catene polimeriche vengono catturate dal campo di taglio generato dagli ultrasuoni attorno a una bolla di cavitazione e i segmenti di catena della bobina polimerica vicini a una cavità che collassa si muoveranno a una velocità maggiore rispetto a quelli più lontani. La catena polimerica viene quindi sottoposta a tensioni dovute al movimento relativo dei segmenti di polimero e dei solventi, sufficienti a provocare la scissione. Il processo è quindi simile ad altri effetti di taglio in soluzioni polimeriche ~2° e dà risultati molto simili. (cfr. Price et al., 1994)
Chitina
La chitina è un polimero di N-acetilglucosammina (poli-(β-(1-4)-N-acetil-D-glucosammina), un polisaccaride naturale ampiamente presente nell'esoscheletro di invertebrati come crostacei e insetti, nello scheletro interno di calamari e seppie e nelle pareti cellulari dei funghi. Incorporata nella struttura delle pareti cellulari dei funghi, la chitina è responsabile della forma e della rigidità della parete cellulare dei funghi. Per molte applicazioni, la chitina viene convertita nel suo derivato deacetilato, noto come chitosano, attraverso un processo di depolimerizzazione.
chitosano è il derivato più comune e più prezioso della chitina. È un polisaccaride ad alto peso molecolare legato da un glicoside b-1,4, composto da N-acetil-glucosamina e glucosamina.
Il chitosano può essere derivato per via chimica o enzimatica. N-deacetilazione. Nel processo di deacetilazione guidata chimicamente, il gruppo acetile (R-NHCOCH3) viene scisso da forti alcali ad alte temperature. In alternativa, il chitosano può essere sintetizzato mediante deacetilazione enzimatica. Tuttavia, su scala di produzione industriale la deacetilazione chimica è la tecnica preferita, poiché la deacetilazione enzimatica è significativamente meno efficiente a causa dell'elevato costo degli enzimi deacetilasi e delle basse rese di chitosano ottenute. Gli ultrasuoni vengono utilizzati per intensificare la degradazione chimica del legame (1→4)-/β (depolimerizzazione) ed effettuare la deacetilazione della chitina per ottenere chitosano di alta qualità.
Quando si applica la sonicazione come pretrattamento per la deacetilazione enzimatica, si migliora anche la resa e la qualità del chitosano.

Hielscher Ultrasonics produce omogeneizzatori a ultrasuoni ad alte prestazioni da laboratorio a dimensioni industriali.