Hielscher Ultrasonics
Vi drøfter gerne din proces.
Ring til os: +49 3328 437-420
Skriv til os: [email protected]

Prøveforberedelse med ultralyd til ELISA-analyser

Analyser som ELISA anvendes i vid udstrækning til in vitro-diagnostik, påvisning af sygdomsrelaterede proteiner og kvalitetskontrol (f.eks. overvågning af fødevareallergener). Prøveforberedelse med ultralyd er en hurtig, pålidelig og reproducerbar teknik til at lysere celler og isolere intracellulære proteiner, DNA, RNA og organeller. Hielscher Ultrasonics tilbyder forskellige ultralydsløsninger til nem forberedelse af enkeltprøver, flere prøveglas samt mikrotiterplader og plader med 96 brønde.

ELISA – enzymkoblet immunosorbentassay

ELISA står for enzymkoblet immunosorbentassay og er en udbredt biokemisk analyseteknik inden for kategorien af ligandbindingsanalyser. Ved ELISA tilsættes en væskeprøve til en stationær fast fase med særlige bindingsegenskaber. Normalt påføres den stationære faste fase som en belægning på en brøndplade eller ELISA-plade. Derefter tilsættes forskellige flydende reagenser sekventielt, inkuberes og vaskes, så der til sidst sker en optisk ændring (f.eks. farveudvikling som følge af produktet fra en enzymatisk reaktion) i den endelige væske i brønden. Den optiske ændring gør det muligt at måle mængden af analytten ved en såkaldt kvantitativ ”aflæsning”. Til den kvantitative aflæsning anvendes et spektrofotometer, fluorometer eller luminometer til at registrere og måle intensiteten af det transmitterede lys. Detektionens følsomhed påvirkes af signalets forstærkning under de analytiske reaktioner. Da enzymreaktioner er velundersøgte og pålidelige forstærkningsprocesser, anvendes enzymer til at generere signalet. Enzymerne er koblet til detektionsreagenserne i faste forhold for at muliggøre præcis kvantificering, hvilket også forklarer betegnelsen ”enzymkoblet” immunosorbentassay.
Da ELISA-analyser udføres i mikrotiterplader / plader med 96 brønde, er teknikken kendt som en pladebaseret analyseteknik og anvendes f.eks. inden for klinisk in vitro-diagnostik, forskning, lægemiddeludvikling osv. til at påvise og kvantificere antistoffer, peptider, proteiner og hormoner.
ELISA-teknikken anvendes ofte som et diagnostisk værktøj inden for medicin, bioteknologi og plantepatologi og er også en vigtig kvalitetskontrolmåling i flere industrier.

Komplet opstilling med VialTweeter: sonotrode til VialTweeter på ultralydsprocessoren UP200St

Ultralydsenheden VialTweeter til prøveforberedelse anvendes til cellelyse og proteinekstraktion før ELISA-analyser

Forespørgsel om information



Prøveforberedelse med ultralyd før ELISA

Før ELISA-analysen kan udføres, skal prøverne gennemgå forberedelsestrin såsom cellelyse og ekstraktion af intracellulære proteiner, DNA, RNA osv. Fordelen ved cellelyse og proteinisolering med ultralyd er den høje effektivitet, pålidelighed og reproducerbarhed. Alle disse faktorer er vigtige for at opnå diagnostik og forskningsresultater af høj kvalitet

Fordele ved ultralydslyse før ELISA

  • Ensartet prøvebehandling
  • Fuldstændig lyse
  • Fuldstændig proteinekstraktion (f.eks. antistoffer, DNA)
  • Optimal tilpasning til celletypen
  • Til enhver prøvestørrelse
  • Reproducerbar
  • Temperaturkontrolleret
  • Automatisk datalogning på SD-kort

 

Sådan findes den ideelle ultralydshomogenisator til celledisruption og proteinekstraktion inden for videnskab og analyseDenne vejledning forklarer, hvilken type ultralydshomogenisator der er bedst egnet til prøveforberedelsesopgaver som lyse, celledisruption, proteinisolering samt DNA- og RNA-fragmentering i laboratorier, analyse og forskning. Vælg den ideelle type ultralydshomogenisator til Deres anvendelse, prøvevolumen, prøveantal og kapacitet. Hielscher Ultrasonics har den ideelle ultralydshomogenisator til Dem!
Denne vejledning forklarer, hvilken type ultralydshomogenisator der er bedst egnet til prøveforberedelsesopgaver som lyse, celledisruption, proteinisolering samt DNA- og RNA-fragmentering i laboratorier, analyse og forskning. Vælg den ideelle type ultralydshomogenisator til Deres anvendelse, prøvevolumen, prøveantal og kapacitet. Hielscher Ultrasonics har den ideelle ultralydshomogenisator til Dem!

 

Protokol for cellelyse med ultralyd før ELISA

  • For cellekulturer: Før cellelysen med ultralyd centrifugeres cellerne i 5 min ved 270 x g i en mikrocentrifuge. Fjern supernatanten ved aspiration, og resuspender cellerne i 30 – 100 μL RIPA-buffer. Inkuber derefter cellepelleten på is i 30 min.
  • Nu er celleprøven klar til ultralydslyse:
    Brug en ultralydsenhed med sonde (f.eks. UP200Ht med S26d2-sonde) eller en ultralydsenhed til flere prøver (f.eks. VialTweeter til samtidig sonikering af op til 10 prøveglas eller UIP400MPT til mikrotiterplader / plader med 96 brønde), afhængigt af hvor mange prøver du skal forberede.
    Til sonikering af en enkelt prøve med sonde placeres cellerne i 1,5 mL mikrocentrifugerør.
  • Indstil på forhånd varigheden af ultralydsbehandlingen, den samlede energitilførsel, cyklustilstanden og/eller temperaturgrænserne i ultralydsenhedens digitale menu. Dette sikrer yderst pålidelig sonikering og repeterbarhed.
  • Indfør sonotroden, og tænd ultralydsenheden. Bevæg forsigtigt ultralydssondens mikrospids gennem prøven for at sonikere prøven ensartet.
    For de fleste celler vil ultralydslysen være afsluttet efter 2–4 cyklusser med 10 sekunders sonikering.
  • Fjern sonotroden fra prøven efter sonikering. Prøverne bør inkuberes på is i 5 min. Centrifuger derefter ved 10.000 x g i 20 min for at danne en pellet af cellefragmenterne. Overfør supernatanterne til et nyt mikrocentrifugerør. Mærk analytterne, og opbevar dem ved -20°C.
  • Ultralydssonotroden kan rengøres ved at tørre den grundigt af med alkohol eller ved at sonikere den i et bægerglas fyldt med alkohol, f.eks. 70% ethanol. Alle ultralydssonder fremstillet af titanium kan autoklaveres.
Ultralydsenheder med sonde såsom UP200St er pålidelige vævshomogenisatorer og anvendes i vid udstrækning til prøveforberedelse inden for genetik, f.eks. til lyse af E.coli

Proteinekstraktion fra E.coli-celler med ultralydssonden UP200St

For vævshomogenater:

  • Skyl vævet med iskold PBS (0,01M, pH=7,4) for grundigt at fjerne overskydende hæmolyseret blod.
  • Vej vævet (nyre, hjerte, lunge, milt osv.), og findel det i små stykker, som homogeniseres i PBS. Det nødvendige volumen PBS afhænger af vævets vægt. Som tommelfingerregel kræver 1g væv ca. 9mL PBS. Det anbefales at tilsætte en proteasehæmmer til PBS. (Alternativt kan der anvendes RIPA eller hypoton lysebuffer med en blanding af protease- og fosfatasehæmmere.)
  • Afhængigt af vævets størrelse kan en kort vortexbehandling (ca. 1–2 min. i pulser på 15 sekunder) være nyttig til forbehandling af vævet.
  • Monter en mikrospids, f.eks. S26d2, på din ultralydsenhed. Placer prøverøret med vævet i et isbad.
  • Soniker prøven med din ultralydsenhed, f.eks. UP200St (80% amplitude), i 1 min. i pulstilstand (15 sekunder aktiv, 15 sekunders pause). Hold prøven i isbadet.
  • Homogenaterne centrifugeres derefter for at opnå specifikke fraktioner (cytosoliske, nukleære, mitokondrielle eller lysosomale) med henblik på at opkoncentrere proteinet til analyse. Ved at centrifugere prøven i 5 minutter ved 5000×g udvindes supernatanten.
Sonotroden MTP-24-8-96 har otte ultralydssonder til sonikering af brøndene i mikrotiterplader.

Sonotroden MTP-24-8-96 har otte ultralydssonder til sonikering af brøndene i mikrotiterplader.

Pålidelig temperaturkontrol under sonikering

Temperaturen er en afgørende faktor, der påvirker processen, og som er særligt vigtig ved behandling af biologiske prøver, f.eks. for at forhindre termisk nedbrydning af proteiner. Som alle mekaniske teknikker til prøveforberedelse genererer sonikering varme. Prøvernes temperatur kan dog kontrolleres godt ved brug af enhederne fra Hielscher Ultrasonics. Vi præsenterer forskellige muligheder for at overvåge og kontrollere dine prøvers temperatur, mens du forbereder dem præanalytisk med en ultralydsenhed med sonde eller VialTweeter.

  1. Overvågning af prøvetemperaturen: Alle digitale ultralydsprocessorer fra Hielscher er udstyret med intelligent software og en temperaturføler, der kan tilsluttes. Tilslut temperaturføleren til ultralydsenheden (f.eks. UP200Ht, UP200St, VialTweeter, sonikeringsenheden UIP400MTP til plader med flere brønde), og indfør temperaturfølerens spids i et af prøverørene. Via den digitale berøringsskærm i farver kan du i ultralydsprocessorens menu indstille et specifikt temperaturinterval for sonikeringen af dine prøver. Ultralydsenheden stopper automatisk, når den maksimale temperatur nås, og holder pause, indtil prøvetemperaturen er faldet til den nedre værdi af den indstillede temperatur ∆. Derefter starter sonikeringen automatisk igen. Denne intelligente funktion forhindrer varmeinduceret nedbrydning.
  2. På ultralydsenheden VialTweeter til flere prøver kan titaniumblokken, som holder prøverørene, forkøles. Placer blokken til VialTweeter (kun sonotroden uden transducer!) i køleskabet eller fryseren for at forkøle titaniumblokken og dermed forsinke temperaturstigningen i prøven. Hvis det er muligt, kan selve prøven også forkøles.
  3. Brug et isbad eller tøris til afkøling under sonikering. Placer dine prøverør i et isbad under sonikeringen. Til VialTweeter bruges en lav bakke fyldt med tøris, og VialTweeter placeres på tørisen, så varmen hurtigt kan bortledes.

Kunder verden over anvender ultralydsenheder med sonde fra Hielscher samt sonikeringsenhederne VialTweeter og UIP400MTP til flere prøver til deres daglige prøveforberedelse i biologiske, biokemiske, medicinske og kliniske laboratorier. Med den intelligente software og temperaturkontrol i processorerne fra Hielscher styres temperaturen pålideligt, og varmeinduceret nedbrydning af prøverne undgås. Prøveforberedelse med ultralyd ved hjælp af ultralydsløsninger fra Hielscher giver yderst pålidelige og reproducerbare resultater!
Læs mere om sonikering med høj prøvekapacitet ved hjælp af sonikeringsenheden UIP400MTP til plader med flere brønde til analyser!

Kontakt os! / Spørg os!

Bed om mere information

Brug venligst formularen nedenfor til at anmode om yderligere oplysninger om ultralydsprocessorer, anvendelser og pris. Vi drøfter gerne Deres proces med Dem og tilbyder Dem et ultralydssystem, der opfylder Deres krav!





Ultralydshomogenisatorer med høj forskydningskraft anvendes til behandling i laboratorier, på laboratorieborde, i pilotanlæg og i industrien.

Hielscher Ultrasonics fremstiller højtydende ultralydshomogenisatorer til blanding, dispergering, emulgering og ekstraktion i laboratorie-, pilot- og industriskala.



Litteratur / Referencer

Værd at vide

Hvilke typer ELISA findes der?

Der findes flere typer ELISA, som adskiller sig ved deres funktionsprincip. De er kendt som direkte ELISA, indirekte ELISA, sandwich-ELISA, kompetitiv ELISA og omvendt ELISA. Nedenfor præsenterer vi en oversigt over de forskellige ELISA-typer og deres vigtigste egenskaber og forskelle.
ELISA kan udføres i et kvalitativt eller kvantitativt format. Kvalitative resultater giver et enkelt positivt eller negativt resultat, mens prøvens optiske densitet (OD) ved kvantitativ ELISA sammenlignes med en standardkurve, som typisk er en seriefortynding af en opløsning af målmolekylet med kendt koncentration.

Direkte ELISA

Direkte ELISA er den enkleste analyseform af ELISA, hvor der kun anvendes et enzymmærket primært antistof, og sekundære antistoffer ikke er nødvendige. Det enzymmærkede primære antistof binder direkte til målet, dvs. antigenet. Den bufferede antigenopløsning tilsættes hver brønd i en mikrotiterplade (normalt plader med 96 brønde, ELISA-plader), hvor den binder til plastoverfladen gennem ladningsinteraktioner. Når enzymet, der er koblet til det primære antistof, reagerer med sit substrat, genererer det et synligt signal, som kan måles med et spektrofotometer, fluorometer eller luminometer.

Indirekte ELISA

Til den indirekte ELISA-test kræves både et primært antistof og et sekundært antistof. I modsætning til direkte ELISA er det dog det sekundære antistof og ikke det primære antistof, der er mærket med et enzym. Antigenet immobiliseres på brøndpladen og bindes af det primære antistof. Derefter binder det enzymmærkede sekundære antistof til det primære antistof. Til sidst reagerer enzymet, der er koblet til det sekundære antistof, med sit substrat og genererer et synligt signal, som kan detekteres.

Sandwich-ELISA

Mens antigenet ved direkte og indirekte ELISA-tests immobiliseres og påføres som belægning på brøndpladens overflade, immobiliseres antistoffet ved sandwich-ELISA på ELISA-pladens plastoverflade. De immobiliserede antistoffer i sandwich-ELISA kaldes indfangningsantistoffer. Ud over indfangningsantistofferne kræves der ved sandwich-ELISA også såkaldte detektionsantistoffer. Detektionsantistoffer omfatter et umærket primært detektionsantistof og et enzymmærket sekundært detektionsantistof.
Trinvis binder det pågældende antigen til indfangningsantistoffet, der er immobiliseret på pladen. Derefter binder det primære detektionsantistof til antigenet. Herefter binder det sekundære detektionsantistof til det primære detektionsantistof. I det sidste reaktionstrin reagerer enzymet med sit substrat og genererer et synligt signal, som kan detekteres optisk.

Kompetitiv ELISA

Kompetitiv ELISA, også kendt som inhibitions-ELISA, er den mest komplekse ELISA-type, fordi den indebærer brug af et hæmmende antigen. Hvert af de tre formater, direkte, indirekte og sandwich-ELISA, kan tilpasses det kompetitive ELISA-format. Ved kompetitiv ELISA konkurrerer det hæmmende antigen og det pågældende antigen om at binde til det primære antistof.
Ved kompetitiv ELISA inkuberes et umærket antistof i nærvær af dets antigen, dvs. prøven. Disse bundne antistof/antigen-komplekser tilsættes derefter en antigenbelagt brønd.
Pladen vaskes, så ubundne antistoffer fjernes. Kompetitiv ELISA har sit navn, fordi der dannes flere antigen-antistof-komplekser, jo mere antigen der er i prøven. Det betyder, at der er færre ubundne antistoffer til rådighed til at binde til antigenet i brønden, og at antigenerne skal konkurrere om et tilgængeligt antistof. Et sekundært antistof, der passer til det primære antistof, tilsættes. Dette andet antistof er koblet til enzymet. Når substratet tilsættes, genererer de resterende enzymer et kromogent eller fluorescerende signal.
På dette tidspunkt stoppes reaktionen for at undgå, at signalet til sidst mættes.
Nogle kompetitive ELISA-kits indeholder et enzymkoblet antigen i stedet for et enzymkoblet antistof. Det mærkede antigen konkurrerer med prøveantigenet (umærket) om bindingsstederne på det primære antistof. Jo mindre antigen der er i prøven, desto mere mærket antigen tilbageholdes i brønden, og desto stærkere er signalet.

Omvendt ELISA

Omvendt ELISA anvender ikke brøndplader, men lader antigenerne forblive suspenderet i testvæsken. Den omvendte ELISA-test måler mængden af bundet antistof via antigen. Den blev udviklet specifikt til at påvise og undersøge West Nile-virussets kappeprotein, og hvordan det er i stand til at finde virusspecifikke antistoffer.

Hvilke enzymatiske markører anvendes til ELISA?

Listen nedenfor angiver de mest almindelige enzymatiske markører, der anvendes i ELISA-analyser, og som gør det muligt at måle analysens resultater, når den er afsluttet.

  • OPD (o-phenylendiamindihydrochlorid) bliver ravfarvet ved detektion af HRP (peberrodsperoxidase), som ofte anvendes som et konjugeret protein.
  • TMB (3,3′,5,5′-tetramethylbenzidin) bliver blåt ved detektion af HRP og bliver gult efter tilsætning af svovlsyre eller fosforsyre.
  • ABTS (2,2′-azinobis[3-ethylbenzothiazolin-6-sulfonsyre]-diammoniumsalt) bliver grønt ved detektion af HRP.
  • PNPP (p-nitrophenylfosfat, dinatriumsalt) bliver gult ved detektion af alkalisk fosfatase.

Vi drøfter gerne din proces.

✕