รองรับการใช้งานได้อย่างครอบคลุม: ใช้คลื่นอัลตราซาวนด์กับเพลตหลายหลุมด้วย UIP400MTP

เครื่องอัลตราโซนิกสำหรับเพลตหลายหลุม UIP400MTP ได้รับการออกแบบให้รองรับการใช้งานได้อย่างครอบคลุม ช่วยให้ประมวลผลด้วยคลื่นอัลตราซาวนด์แบบไม่สัมผัสได้อย่างมีประสิทธิภาพกับไมโครเพลตรูปแบบมาตรฐานแทบทั้งหมด โดยไม่จำเป็นต้องใช้วัสดุสิ้นเปลืองเฉพาะของผู้ผลิต เครื่องรองรับและทำงานร่วมกับเพลตแบบ 6, 12, 24, 48, 96 และ 384 หลุมได้อย่างราบรื่น ไม่ว่าจะมีก้นแบน ก้นรูปตัว U ก้นรูปตัว V หรือก้นกลม และไม่ว่าจะเคลือบหรือไม่เคลือบผิว

เพิ่มประสิทธิภาพขั้นตอนการทำงานของคุณด้วยเครื่องอัลตราโซนิกสำหรับเพลตหลายหลุม UIP400MTP

• การสลายเซลล์และเนื้อเยื่อ
  ทำลายเซลล์สัตว์เลี้ยงลูกด้วยนม แบคทีเรีย ยีสต์ และพืช รวมถึงเนื้อเยื่อสดแช่แข็งหรือเนื้อเยื่อ FFPE ได้อย่างมีประสิทธิภาพ – เหมาะอย่างยิ่งสำหรับการสกัด DNA/โปรตีน (จีโนมิกส์, NGS, โปรตีโอมิกส์)
• การตัดกรดนิวคลีอิกด้วยแรงเฉือน
  ควบคุมความยาวของชิ้นส่วนได้ (เช่น สำหรับไลบรารี NGS) โดยให้ผลที่ทำซ้ำได้สูง
• การแยกเซลล์ออกจากพื้นผิว
  เหนือกว่าวิธีขูดเซลล์ซึ่งเป็นมาตรฐานสูงสุด: UIP400MTP แยกและทำให้เซลล์หลุดออกจากเพลตได้อย่างมีประสิทธิภาพ
• การสกัดโปรตีนและการทำให้เป็นเนื้อเดียวกัน
  สกัดจากเซลล์เพาะเลี้ยงหรือเนื้อเยื่อได้อย่างเชื่อถือได้; เหมาะอย่างยิ่งสำหรับงานโปรตีโอมิกส์ในขั้นตอนถัดไป
• การผสมสารสำหรับการทดสอบ การกำจัดไบโอฟิล์ม
  เพิ่มประสิทธิภาพการผสมสารรีเอเจนต์ ELISA; ทำให้ไบโอฟิล์มหลุดออกจากเพลตที่มีหลุมขนาดเล็ก
• ขั้นตอนการทำงาน PCR / qPCR
  การใช้คลื่นอัลตราซาวนด์ภายในเพลต PCR ช่วยในการสลายเซลล์ การผสมสารรีเอเจนต์ และการเตรียม DNA ของเชื้อก่อโรค

ประสิทธิภาพและปริมาณตัวอย่างที่ประมวลผลได้

การใช้คลื่นอัลตราซาวนด์กำลังสูงแบบไม่สัมผัสกับ 1 – 384 หลุมพร้อมกันอย่างสม่ำเสมอด้วย UIP400MTP ให้ข้อได้เปรียบที่ชัดเจนเหนือการใช้เม็ดบีดกระแทก ชุดน้ำยาเอนไซม์ หรืออ่างอัลตราโซนิก
การใช้คลื่นอัลตราซาวนด์แบบไม่สัมผัสหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนข้ามระหว่างเพลตหรือระหว่างหลุม; เพลตที่ปิดผนึกหรือฝาปิดฟอยล์ช่วยหลีกเลี่ยงการสูญเสียตัวอย่างและการปนเปื้อน
การตั้งค่าที่ตั้งโปรแกรมได้ช่วยประหยัดเวลาอันมีค่าและหลีกเลี่ยงข้อผิดพลาดจากมนุษย์ จึงทำให้ขั้นตอนการทำงานคล่องตัวขึ้นและรองรับการทำงานอัตโนมัติ

คำถามที่พบบ่อยเกี่ยวกับเพลตหลายหลุม

เพลตหลายหลุมมีรูปแบบใดบ้าง?

เพลตหลายหลุมผลิตในรูปแบบมาตรฐาน เช่น แบบ 6, 12, 24, 48, 96, 384 และ 1536 หลุม ช่วยให้ประมวลผลแบบขนานและใช้งานร่วมกับระบบอัตโนมัติได้

ไมโครเพลตมีประเภทใดบ้าง?

ไมโครเพลตแตกต่างกันตามวัสดุ การปรับสภาพพื้นผิว และการออกแบบ โดยมีทั้งเพลตที่ผ่านการปรับสภาพพื้นผิวสำหรับเพาะเลี้ยงเซลล์ เพลตสำหรับการทดสอบที่ไม่ผ่านการปรับสภาพพื้นผิว เพลตกรอง เพลตหลุมลึก เพลต PCR และพื้นผิวเฉพาะทางที่มีการยึดเกาะต่ำหรือความสามารถในการจับสูง

เพลตหลายหลุมคืออะไร?

เพลตหลายหลุมเป็นเพลตแบนที่มีหลุมขนาดเล็กหลายหลุมจัดเรียงเป็นเมทริกซ์ ใช้เป็นภาชนะมาตรฐานสำหรับการทดสอบทางชีววิทยา เคมี หรือการวิเคราะห์ที่ประมวลผลตัวอย่างจำนวนมาก

เพลต 96 หลุมมีประเภทใดบ้าง?

เพลต 96 หลุมรูปแบบที่ใช้กันทั่วไป ได้แก่ แบบก้นแบน ก้นรูปตัว U และก้นรูปตัว V ผลิตจากพอลิเมอร์ใส สีดำ หรือสีขาว โดยมีตัวเลือกการปรับสภาพพื้นผิวสำหรับเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ การเคลือบผิวที่มีการยึดเกาะต่ำ หรือสมบัติทางแสงเฉพาะทาง

เพลตเพาะเลี้ยงเซลล์คืออะไร?

เพลตเพาะเลี้ยงเซลล์เป็นเพลตพลาสติกปลอดเชื้อที่ได้มาตรฐาน – โดยทั่วไปทำจากพอลิสไตรีน – ซึ่งมีหลายหลุมที่ออกแบบมาเพื่อรองรับการยึดเกาะ การเจริญเติบโต และการคงสภาพของเซลล์ภายใต้สภาวะห้องปฏิบัติการที่ควบคุมไว้
เพลตเหล่านี้ผลิตโดยปรับสภาพพื้นผิวอย่างเฉพาะเจาะจง (เช่น พื้นผิวที่ผ่านการปรับสภาพสำหรับเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อเพื่อส่งเสริมการยึดเกาะของเซลล์) หรือใช้สารเคลือบเฉพาะทาง เช่น โปรตีนเมทริกซ์นอกเซลล์ สารเคลือบที่มีการยึดเกาะต่ำมาก (ULA) สำหรับการเกิดสเฟียรอยด์ หรือพื้นผิวที่มีลวดลายระดับจุลภาคเพื่อกำหนดพฤติกรรมของเซลล์
เพลตเพาะเลี้ยงเซลล์มีจำหน่ายในรูปแบบหลายหลุม (เช่น 6, 12, 24, 48 และ 96 หลุม) และใช้ร่วมกับตู้อบเพาะเลี้ยง ระบบถ่ายภาพ และแพลตฟอร์มจัดการของเหลวมาตรฐานได้

การเพาะเลี้ยงเซลล์ 3 มิติคืออะไร?

การเพาะเลี้ยงเซลล์ 3 มิติเป็นระบบในหลอดทดลองที่เพาะเลี้ยงเซลล์ภายในเมทริกซ์หรือโครงเลี้ยงเซลล์สามมิติ ช่วยให้เซลล์สร้างโครงสร้างคล้ายเนื้อเยื่อและเกิดปฏิสัมพันธ์ระหว่างเซลล์กับเซลล์และระหว่างเซลล์กับเมทริกซ์นอกเซลล์ ซึ่งเลียนแบบสรีรวิทยาภายในสิ่งมีชีวิตได้อย่างใกล้เคียง

วรรณกรรม / เอกสารอ้างอิง

• FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
• Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
• Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
• Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
• Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
• De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
• Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.