ขั้นตอนการทดสอบ MBEC โดยใช้เครื่องอัลตราซาวนด์สำหรับเพลต 96 หลุม UIP400MTP
การทดสอบ MBEC ใช้เพื่อระบุความเข้มข้นของสารต้านจุลชีพที่จำเป็นในการกำจัดไบโอฟิล์มที่เกิดบนฝาที่มีหมุด เพื่อประเมินความมีชีวิตของไบโอฟิล์ม ต้องแยกไบโอฟิล์มออกจากฝาที่มีหมุดของเพลต 96 หลุมก่อน การใช้คลื่นอัลตราซาวนด์เป็นวิธีที่เชื่อถือได้และมีประสิทธิภาพสูงสุดสำหรับการแยกนี้ เครื่องอัลตราซาวนด์สำหรับเพลตหลายหลุม UIP400MTP ได้รับการออกแบบโดยเฉพาะเพื่อใช้กับเพลตทดสอบอย่างมีประสิทธิภาพและสะดวกสูงสุด ช่วยให้การทดสอบ MBEC ที่รองรับตัวอย่างจำนวนมากมีขั้นตอนคล่องตัวและรวดเร็วยิ่งขึ้น
การใช้คลื่นอัลตราซาวนด์เพื่อแยกไบโอฟิล์ม
การใช้คลื่นอัลตราซาวนด์เป็นขั้นตอนสำคัญในการทดสอบความเข้มข้นต่ำสุดที่กำจัดไบโอฟิล์ม (MBEC) ซึ่งช่วยให้เซลล์ในไบโอฟิล์มหลุดออกจากพื้นผิวที่ยึดเกาะได้อย่างมีประสิทธิภาพ โดยธรรมชาติ ไบโอฟิล์มเป็นชุมชนจุลินทรีย์ที่มีโครงสร้างและถูกห่อหุ้มด้วยเมทริกซ์นอกเซลล์ ซึ่งทำให้ทนต่อสารต้านจุลชีพได้มากกว่าเซลล์ที่ลอยตัวอย่างอิสระอย่างมีนัยสำคัญ ระหว่างการทดสอบ MBEC การใช้คลื่นอัลตราซาวนด์ทำให้เกิดคาวิเทชันที่ควบคุมได้ ทำลายโครงสร้างเมทริกซ์ของไบโอฟิล์มและปลดปล่อยเซลล์ที่ฝังอยู่ให้กลายเป็นสารแขวนลอย ขั้นตอนนี้ทำให้เซลล์ไบโอฟิล์มกระจายตัวอย่างสม่ำเสมอในอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับการฟื้นสภาพ ช่วยให้ประเมินความมีชีวิตได้อย่างแม่นยำด้วยการเพาะบนเพลต การเจือจาง หรือวิธีสเปกโทรโฟโตเมตรี หากแยกไบโอฟิล์มออกอย่างไม่เหมาะสม องค์ประกอบของเมทริกซ์ที่เหลืออยู่อาจปกป้องเซลล์ ทำให้ประเมินประสิทธิผลของสารต้านจุลชีพต่ำกว่าความเป็นจริง ดังนั้น การใช้คลื่นอัลตราซาวนด์จึงเป็นสิ่งจำเป็นเพื่อให้ได้ค่า MBEC ที่เชื่อถือได้และทำซ้ำได้ ซึ่งสะท้อนศักยภาพที่แท้จริงในการกำจัดไบโอฟิล์มของสารที่ทดสอบ เครื่องอัลตราซาวนด์สำหรับเพลตหลายหลุม UIP400MTP ช่วยให้เตรียมตัวอย่างจำนวนมากในเพลตทดสอบได้อย่างง่ายดาย
เครื่องอัลตราซาวนด์สำหรับเพลตหลายหลุม UIP400MTP ช่วยให้เตรียมตัวอย่างจำนวนมากในเพลตทดสอบได้สะดวก
ขั้นตอนการทดสอบความเข้มข้นต่ำสุดที่กำจัดไบโอฟิล์ม (MBEC)
ขั้นตอนที่ 1: การสร้างไบโอฟิล์ม
- เตรียมสารแขวนลอยแบคทีเรีย:
เพาะเลี้ยงแบคทีเรียในอาหารเลี้ยงเชื้อที่เหมาะสมจนถึงระยะการเจริญแบบลอการิทึม
เจือจางเชื้อแบคทีเรียที่เพาะเลี้ยงให้มีค่าความหนาแน่นเชิงแสงตามที่กำหนด (เช่น OD600 ~0.1) - ใส่เชื้อลงในเพลต 96 หลุม:
เติมสารแขวนลอยแบคทีเรีย (เช่น 150–200 µL) ลงในแต่ละหลุมของเพลตไมโครไทเทอร์มาตรฐาน 96 หลุม - ติดฝาที่มีหมุด:
วางฝาที่มีหมุดบนเพลตที่ใส่เชื้อแล้ว เพื่อให้ไบโอฟิล์มเกิดขึ้นบนพื้นผิวของหมุด - บ่มเพลต:
บ่มชุดเพลตที่อุณหภูมิเหมาะสม (เช่น 37°C) เป็นเวลา 24–48 ชั่วโมงโดยไม่เขย่า เพื่อส่งเสริมการเจริญของไบโอฟิล์ม
ขั้นตอนที่ 2: การให้สารต้านจุลชีพ
- เตรียมสารละลายสารต้านจุลชีพ:
เตรียมสารต้านจุลชีพที่มีความเข้มข้นหลายระดับในอาหารเลี้ยงเชื้อใหม่
ให้ไบโอฟิล์มสัมผัสกับสารต้านจุลชีพ:
นำฝาที่มีหมุดออกจากชุดเพาะเลี้ยงแบคทีเรีย แล้วล้างด้วยน้ำเกลือปลอดเชื้อหรือ PBS เพื่อกำจัดเซลล์ที่ลอยตัวอย่างอิสระ
วางฝาที่มีหมุดลงในเพลต 96 หลุมใหม่ที่มีสารละลายสารต้านจุลชีพ - บ่มเพลต:
บ่มเป็นระยะเวลาที่กำหนด (เช่น 24 ชั่วโมง) เพื่อให้ไบโอฟิล์มสัมผัสกับสารต้านจุลชีพ
เครื่องอัลตราซาวนด์สำหรับเพลตหลายหลุม UIP400MTP สำหรับการเตรียมตัวอย่างจำนวนมาก
ขั้นตอนที่ 3: การใช้คลื่นอัลตราซาวนด์ด้วยเครื่องอัลตราซาวนด์สำหรับเพลต 96 หลุม UIP400MTP
ขั้นตอนการใช้คลื่นอัลตราซาวนด์มีความสำคัญอย่างยิ่งในการแยกไบโอฟิล์มออกจากฝาที่มีหมุดเพื่อประเมินความมีชีวิต ปฏิบัติตามขั้นตอนต่อไปนี้สำหรับเครื่องอัลตราซาวนด์ UIP400MTP:
- เตรียมชุดอุปกรณ์:
เติมอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับการฟื้นสภาพ (เช่น อาหารเลี้ยงเชื้อเหลวที่ทำให้สารต้านจุลชีพหมดฤทธิ์ หรืออาหารเลี้ยงเชื้อใหม่สำหรับการเจริญ) ลงในแต่ละหลุมของเพลต 96 หลุมใหม่ - ย้ายฝาที่มีหมุด:
นำฝาที่มีหมุดออกจากเพลตที่ใช้ให้สารต้านจุลชีพ
ล้างฝาที่มีหมุดด้วยน้ำเกลือปลอดเชื้อหรือ PBS เพื่อกำจัดสารต้านจุลชีพที่ตกค้าง - จัดวางเพลตและเครื่องอัลตราซาวนด์:
ติดฝาที่มีหมุดเข้ากับเพลตที่มีอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับการฟื้นสภาพ
วางเพลตที่มีอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับการฟื้นสภาพบนแท่นของเครื่องอัลตราซาวนด์ UIP400MTP โดยตรวจสอบให้แน่ใจว่าเพลตอยู่ตรงกลางและมั่นคง - ปรับพารามิเตอร์การใช้คลื่นอัลตราซาวนด์:
ตั้งค่าพารามิเตอร์การใช้คลื่นอัลตราซาวนด์ที่ UIP400MTP (สามารถปรับการตั้งค่าให้เหมาะกับไบโอฟิล์มได้):
แอมพลิจูด: 70–100%
ระยะเวลาการใช้คลื่นอัลตราซาวนด์: 1–3 นาที (ปรับตามความแข็งแรงของไบโอฟิล์ม) ในโหมดการทำงานแบบเป็นรอบ - ใช้คลื่นอัลตราซาวนด์:
เริ่มกระบวนการใช้คลื่นอัลตราซาวนด์ การสั่นด้วยคลื่นอัลตราซาวนด์จะทำให้ไบโอฟิล์มหลุดออกจากพื้นผิวของหมุดลงสู่อาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับการฟื้นสภาพ - ติดตามกระบวนการ:
ใช้เซนเซอร์วัดอุณหภูมิแบบเสียบต่อเพื่อติดตามอุณหภูมิตัวอย่างในหลุม สามารถเชื่อมต่อ UIP400MTP กับเครื่องทำความเย็นสำหรับห้องปฏิบัติการเพื่อระบายความร้อนได้ - การจัดการหลังใช้คลื่นอัลตราซาวนด์:
ย้ายอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับการฟื้นสภาพ (ซึ่งขณะนี้มีไบโอฟิล์มที่แยกออกมาแล้ว) ลงในเพลตปลอดเชื้อใหม่ทันทีเพื่อวิเคราะห์ในขั้นตอนถัดไป
(A) เพลตที่มี TSB พร้อมกลูโคส 2% ใช้สำหรับการสร้างไบโอฟิล์ม การฟื้นสภาพเซลล์ และ
การหาค่า MIC และ MBCB; (B) ฝาที่มีหมุดสำหรับการสร้างไบโอฟิล์มของแบคทีเรียกลุ่มสแตฟิโลค็อกคัส การหาค่า MIC และ MBCB; (B) ฝาที่มีหมุดสำหรับการสร้างไบโอฟิล์มของแบคทีเรียกลุ่มสแตฟิโลค็อกคัส
เซลล์ไบโอฟิล์มที่เกิดบนหมุดถูกแยกออกด้วยคลื่นอัลตราซาวนด์ (Hielscher Ultrasound Technology) เป็นเวลา 5 min ในเพลต 96 หลุมที่มีอาหารเลี้ยงเชื้อใหม่สำหรับการฟื้นสภาพเซลล์
(ภาพและการศึกษา: ©de Oliveira et al., 2016)
ขั้นตอนที่ 4: การประเมินความมีชีวิต
เพาะไบโอฟิล์มที่แยกออกมาบนเพลตและเลี้ยงเชื้อ:
- เจือจางอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับการฟื้นสภาพแบบลำดับส่วน แล้วเพาะบนอาหารวุ้นเพื่อนับจำนวนหน่วยก่อโคโลนี (CFU)
อีกทางเลือกหนึ่งคือใช้การทดสอบความมีชีวิตด้วยวิธีวัดสีหรือวิธีที่อาศัยการเรืองแสง - บันทึกผล:
ระบุค่า MBEC เป็นความเข้มข้นต่ำสุดของสารต้านจุลชีพที่กำจัดความมีชีวิตของไบโอฟิล์มที่ตรวจพบได้
การออกแบบ การผลิต และการให้คำปรึกษา – คุณภาพที่ผลิตในเยอรมนี
เครื่องอัลตราซาวนด์ Hielscher เป็นที่รู้จักในด้านคุณภาพและมาตรฐานการออกแบบระดับสูงสุด ความทนทานและการใช้งานที่ง่ายช่วยให้ผนวกเครื่องอัลตราซาวนด์ของเราเข้ากับโรงงานอุตสาหกรรมได้อย่างราบรื่น เครื่องอัลตราซาวนด์ Hielscher สามารถรับมือกับสภาวะที่สมบุกสมบันและสภาพแวดล้อมที่มีข้อกำหนดการใช้งานสูงได้อย่างง่ายดาย
Hielscher Ultrasonics เป็นบริษัทที่ได้รับการรับรอง ISO และให้ความสำคัญเป็นพิเศษกับเครื่องอัลตราซาวนด์สมรรถนะสูงที่ใช้เทคโนโลยีล้ำสมัยและใช้งานง่าย แน่นอนว่าเครื่องอัลตราซาวนด์ Hielscher สอดคล้องกับ CE และเป็นไปตามข้อกำหนดของ UL, CSA และ RoHs
ทำให้การเตรียมตัวอย่างในเพลต 96 หลุมและเพลตทดสอบคล่องตัวขึ้น โดยใช้เครื่องอัลตราซาวนด์สำหรับเพลตหลายหลุม UIP400MTP
เอกสารวิชาการ / เอกสารอ้างอิง
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
- Microplate Sonicator Validated in Peer-Reviewed Proteomics Study
คำถามที่พบบ่อย
การทดสอบ MBEC คืออะไร?
การทดสอบความเข้มข้นต่ำสุดที่กำจัดไบโอฟิล์ม (MBEC) เป็นวิธีมาตรฐานที่ใช้ระบุความเข้มข้นต่ำสุดของสารต้านจุลชีพที่จำเป็นในการกำจัดแบคทีเรียที่อยู่ในไบโอฟิล์ม วิธีนี้ประกอบด้วยการเพาะไบโอฟิล์มบนพื้นผิวที่ออกแบบเฉพาะ การให้ไบโอฟิล์มสัมผัสกับสารต้านจุลชีพที่มีความเข้มข้นต่างกัน และการประเมินความมีชีวิตของเซลล์ที่แยกออกมาหลังจากทำลายโครงสร้างไบโอฟิล์ม ซึ่งโดยทั่วไปใช้คลื่นอัลตราซาวนด์ เพื่อประเมินประสิทธิผลของการจัดการด้วยสารต้านจุลชีพ
MBIC และ MBEC แตกต่างกันอย่างไร?
ความเข้มข้นต่ำสุดที่ยับยั้งไบโอฟิล์ม (MBIC) คือความเข้มข้นต่ำสุดของสารต้านจุลชีพที่จำเป็นในการป้องกันการเกิดไบโอฟิล์ม ส่วนความเข้มข้นต่ำสุดที่กำจัดไบโอฟิล์ม (MBEC) คือความเข้มข้นต่ำสุดที่จำเป็นในการกำจัดไบโอฟิล์มที่ก่อตัวแล้ว MBIC มุ่งเน้นการป้องกันไบโอฟิล์ม ส่วน MBEC ประเมินประสิทธิผลของการจัดการด้วยสารต้านจุลชีพต่อไบโอฟิล์มที่เจริญเต็มที่
โดยทั่วไปใช้เพลตชนิดใดสำหรับการทดสอบ MBEC?
เพลตไมโครไทเทอร์ที่นิยมใช้สำหรับการทดสอบ MBEC โดยทั่วไปเป็นเพลต 96 หลุมที่ทำจากพอลิสไตรีนหรือพอลิโพรพิลีน วัสดุเหล่านี้ให้พื้นผิวที่เหมาะสมสำหรับการสร้างไบโอฟิล์มและมีความทนทานทางเคมีต่อสารต้านจุลชีพที่ใช้ทดสอบ นิยมเลือกใช้เพลตพอลิสไตรีนอย่างแพร่หลายเนื่องจากมีความใสทางแสง ซึ่งเป็นประโยชน์ต่อการวิเคราะห์ในขั้นตอนถัดไป เช่น การวัดด้วยสเปกโทรโฟโตเมตรีหรือการวัดที่อาศัยการเรืองแสง เพลตเหล่านี้ออกแบบให้มีฝาที่มีหมุดแบบถอดได้ ซึ่งจำเป็นสำหรับการทดสอบ เนื่องจากไบโอฟิล์มเกิดบนหมุดที่จุ่มอยู่ในหลุมที่มีอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับการเจริญ เพลตมาตรฐาน เช่น เพลตที่เป็นไปตามขั้นตอนการทดสอบ MBEC ได้รับการออกแบบทางวิศวกรรมโดยเฉพาะเพื่อให้ผลทำซ้ำได้และใช้งานร่วมกับเครื่องอัลตราซาวนด์ UIP400MTP หรืออุปกรณ์ดำเนินกระบวนการอื่น ๆ ได้
เพลตที่มีฝา PEG คืออะไร?
เพลตที่มีฝา PEG เป็นระบบเพลตหลายหลุมเฉพาะทาง โดยฝามีหมุดหรือเดือยขนาดเล็กที่ทำจากพอลิเอทิลีนไกลคอล (PEG) ยื่นลงไปในแต่ละหลุม หมุดเหล่านี้ให้พื้นผิวสำหรับการสร้างไบโอฟิล์มของจุลินทรีย์ภายใต้สภาวะที่ควบคุม โดยเลียนแบบการเจริญของไบโอฟิล์มในสภาพจริง การออกแบบนี้ช่วยให้ไบโอฟิล์มเจริญบนหมุดในขณะที่หลุมมีอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับการเจริญหรือสารต้านจุลชีพ ทำให้ทดสอบความไวของไบโอฟิล์มต่อการจัดการด้วยวิธีต่าง ๆ กับตัวอย่างจำนวนมากได้ เช่น ในการทดสอบ MBEC และ MBIC
Hielscher Ultrasonics ผลิตเครื่องโฮโมจีไนเซอร์อัลตราซาวนด์สมรรถนะสูงตั้งแต่ ขนาดห้องปฏิบัติการ ไปจนถึง ขนาดอุตสาหกรรม