โปรโตคอลการทดสอบความเข้มข้นยับยั้งขั้นต่ํา (MIC)
การทดสอบความเข้มข้นของการยับยั้งขั้นต่ํา (MIC) ที่ใช้ไบโอฟิล์มเป็นวิธีสําคัญในการประเมินประสิทธิภาพของสารต้านจุลชีพต่อจุลินทรีย์ที่เกี่ยวข้องกับไบโอฟิล์ม ซึ่งแสดงความต้านทานที่สูงขึ้นเนื่องจากเมทริกซ์นอกเซลล์ป้องกัน ขั้นตอนสําคัญในการทดสอบนี้คือการหยุดชะงักของโครงสร้างไบโอฟิล์มเพื่อปล่อยเซลล์ที่ฝังตัวเพื่อการประเมินความมีชีวิตที่แม่นยํา เครื่อง sonicator แบบหลายหลุม UIP400MTP ช่วยอํานวยความสะดวกในกระบวนการนี้โดยใช้อัลตราซาวนด์ที่โฟกัสเพื่อสร้างโพรงอากาศที่ควบคุมการแยกเซลล์ไบโอฟิล์มได้อย่างมีประสิทธิภาพและกระจายตัวลงในสารแขวนลอยที่สม่ําเสมอ การหยุดชะงักของไบโอฟิล์มที่แม่นยําและทําซ้ําได้นี้ช่วยเพิ่มความน่าเชื่อถือและปริมาณงานของการทดสอบ MIC ทําให้ UIP400MTP เป็นเครื่องมือสําคัญในการพัฒนาการวิจัยไบโอฟิล์ม
Sonication สําหรับการแยกฟิล์มชีวภาพ
โดยทั่วไปแล้ว Biofilm-Based MIC Assay จะวัดความมีชีวิตของแบคทีเรียหรือการยับยั้งการเจริญเติบโตโดยใช้วิธีการต่างๆ เช่น การชุบ การนับโคโลนี หรือการวัดความหนาแน่นของแสง Sonication เป็นขั้นตอนสําคัญในการทดสอบ MIC ที่ใช้ไบโอฟิล์มเมื่อประเมินความไวต่อยาต้านจุลชีพของจุลินทรีย์ที่เกี่ยวข้องกับไบโอฟิล์ม หน้าที่หลักคือการแยกและกระจายเซลล์ที่ฝังอยู่ในเมทริกซ์ไบโอฟิล์มให้เป็นสารแขวนลอยที่สม่ําเสมอเพื่อการวิเคราะห์ที่แม่นยํา
ไบโอฟิล์มมีความต้านทานต่อสารต้านจุลชีพมากกว่าอย่างมีนัยสําคัญเมื่อเทียบกับเซลล์แพลงก์ตอน ในระหว่างกระบวนการนี้คลื่นอัลตราโซนิกจะสร้างโพรงอากาศที่ควบคุมได้แยกเมทริกซ์ไบโอฟิล์มออกจากกันและปล่อยเซลล์ที่ฝังอยู่ในสารแขวนลอยที่สม่ําเสมอภายในตัวกลางการกู้คืน ขั้นตอนนี้ช่วยให้สามารถประเมินความมีชีวิตของเซลล์ที่กระจายตัวของไบโอฟิล์มได้อย่างแม่นยําผ่านวิธีการต่างๆ เช่น การชุบ การเจือจาง และการนับโคโลนี การหยุดชะงักของไบโอฟิล์มที่เหมาะสมผ่านการ sonication ช่วยป้องกันส่วนประกอบเมทริกซ์ที่ตกค้างจากการป้องกันเซลล์ซึ่งอาจนําไปสู่การประเมินกิจกรรมต้านจุลชีพต่ําเกินไป UIP400MTP sonicator แบบหลายหลุมเหมาะอย่างยิ่งสําหรับจุดประสงค์นี้โดยให้เงื่อนไข sonication ที่แม่นยําและทําซ้ําได้เพื่อให้แน่ใจว่าการเตรียมแผ่นทดสอบที่เชื่อถือได้และมีปริมาณงานสูง
เครื่องสะท้อนเสียงไมโครเพลท UIP400MTP สําหรับการแยกฟิล์มชีวภาพที่ควบคุมได้อย่างแม่นยําในการทดสอบ MIC และ MBEC
เหตุใด Sonication จึงจําเป็นในการทดสอบความเข้มข้นของสารยับยั้งขั้นต่ําที่ใช้ไบโอฟิล์ม
สําหรับการวัดความมีชีวิตและการนับเซลล์จําเป็นต้องมีการแยกและกระจายเซลล์เดี่ยวที่สมบูรณ์และเชื่อถือได้ UIP400MTP ส่งเสริมการหลุดฟิล์มชีวภาพที่สม่ําเสมอและไม่ทําลายและการกระจายตัวของเซลล์เพื่อผลการทดสอบที่มีประสิทธิภาพ
- ความซับซ้อนของไบโอฟิล์ม: ไบโอฟิล์มเป็นชุมชนจุลินทรีย์ที่มีโครงสร้างซึ่งห่อหุ้มอยู่ในเมทริกซ์สารพอลิเมอร์นอกเซลล์ (EPS) ซึ่งช่วยปกป้องจุลินทรีย์และทําให้ทนต่อสารต้านจุลชีพได้มากขึ้น
- การกระจายตัวสม่ําเสมอ: ในการวัดความมีชีวิตของเซลล์ที่ฝังไบโอฟิล์มหรือความไวต่อยาต้านจุลชีพได้อย่างแม่นยําก่อนอื่นจะต้องหลุดออกจากไบโอฟิล์มและย่อยสลายเป็นสารแขวนลอยที่เป็นเนื้อเดียวกัน
โปรโตคอลการทดสอบความเข้มข้นยับยั้งขั้นต่ําที่ใช้ไบโอฟิล์ม
การทดสอบความเข้มข้นยับยั้งขั้นต่ํา (MIC) กําหนดความเข้มข้นต่ําสุดของสารต้านจุลชีพที่จําเป็นในการยับยั้งการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์ที่มองเห็นได้ โปรโตคอลนี้ออกแบบมาสําหรับจุลินทรีย์ที่เกี่ยวข้องกับไบโอฟิล์มโดยใช้เครื่อง sonicator แบบหลายหลุม UIP400MTP สําหรับการหยุดชะงักของไบโอฟิล์ม
ขั้นตอนที่ 1: การเตรียมเชื้อแบคทีเรีย
- เตรียมสารแขวนลอยของแบคทีเรีย:
ปลูกแบคทีเรียในสื่อที่เหมาะสมจนถึงระยะลอการิทึมกลาง
เจือจางการเพาะเลี้ยงเพื่อให้ได้ความหนาแน่นของเซลล์ที่ได้มาตรฐาน (เช่น มาตรฐาน 0.5 McFarland หรือ OD600 ~0.1) - เตรียมสารละลายต้านจุลชีพ:
เจือจางสารต้านจุลชีพในอาหารที่เหมาะสมเพื่อสร้างช่วงความเข้มข้น (เช่น การเจือจางแบบอนุกรมสองเท่า) - จ่ายลงในแผ่น 96well:
เติมสารละลายต้านจุลชีพลงในหลุมของแผ่นมาตรฐาน 96 หลุม โดยมีปริมาตรหลุมสุดท้าย ~150–200 μL
รวมการควบคุมการเจริญเติบโต (ไม่มียาต้านจุลชีพ) และการควบคุมความเป็นหมัน (ไม่มีการฉีดวัคซีนจากแบคทีเรีย)
ขั้นตอนที่ 2: การสร้างไบโอฟิล์มบนฝาหมุด
- ติดฝาหมุด:
วางฝาหมุดพิเศษลงบนบ่อที่ฉีดวัคซีน เพื่อให้แน่ใจว่าหมุดจมอยู่ในสารแขวนลอยของแบคทีเรียจนสุด - บ่มจาน:
ฟักไข่ที่อุณหภูมิที่เหมาะสม (เช่น 37°C) เป็นระยะเวลาที่กําหนด (เช่น 24 ชั่วโมง) ภายใต้สภาวะคงที่เพื่อให้เกิดฟิล์มชีวภาพบนหมุด - ล้างหมุด:
ถอดฝาหมุดออกจากสารแขวนลอยของแบคทีเรียและล้างเบา ๆ ด้วยน้ําเกลือปลอดเชื้อหรือ PBS เพื่อขจัดเซลล์แพลงก์ตอนที่ติดอยู่หลวม ๆ - สัมผัสกับยาต้านจุลชีพ:
ย้ายฝาหมุดลงในแผ่น 96well ใหม่ที่มีการเจือจางต้านจุลชีพที่เตรียมไว้ก่อนหน้านี้
ฟักไข่เป็นระยะเวลาที่กําหนด (เช่น 24 ชั่วโมง) ภายใต้สภาวะคงที่เพื่อให้สารต้านจุลชีพออกฤทธิ์กับไบโอฟิล์ม
ขั้นตอนที่ 3: การสัมผัสสารต้านจุลชีพ
เครื่อง sonicator แผ่นมัลติเวล UIP400MTP สําหรับการเตรียมตัวอย่างที่มีปริมาณงานสูง
ขั้นตอนที่ 4: Sonication ด้วย Microplate Sonicator UIP400MTP
ขั้นตอนการ sonication มีความสําคัญต่อการถอดฟิล์มชีวภาพออกจากฝาหมุดเพื่อประเมินความมีชีวิต ทําตามขั้นตอนเหล่านี้สําหรับเครื่อง UIP400MTP เสียง:
- เตรียมการตั้งค่า:
เติมจานสด 96 หลุมด้วยอาหารเพื่อการกู้คืน (เช่น น้ําซุปที่ทําให้เป็นกลางหรืออาหารเพื่อการเจริญเติบโตที่ปราศจากเชื้อ) ในแต่ละหลุม - โอนฝาหมุด:
ถอดฝาหมุดออกจากแผ่นบําบัดต้านจุลชีพ
ล้างฝาหมุดด้วยน้ําเกลือปลอดเชื้อหรือ PBS เพื่อขจัดสารต้านจุลชีพที่ตกค้าง - วางเพลตในเครื่องโซนิคเตอร์:
ติดฝาหมุดเข้ากับแผ่นสื่อการกู้คืน
วางแผ่นสื่อการกู้คืนลงในเครื่องสะท้อนเสียง UIP400MTP ตรวจสอบให้แน่ใจว่าแผ่นอยู่ตรงกลางและมั่นคงตามที่อธิบายไว้ในคู่มือ - ปรับพารามิเตอร์ sonication:
ตั้งค่าพารามิเตอร์ sonication ที่ UIP400MTP (การตั้งค่าอาจปรับให้เข้ากับไบโอฟิล์ม):
แอมพลิจูด: 70–100%
เวลาในการ Sonication: 1-3 นาที (ปรับตามโครงสร้างไบโอฟิล์ม) ที่โหมดวงจร - โซนิเคต:
เริ่มกระบวนการ sonication คลื่นอัลตราโซนิกจะขัดขวางเมทริกซ์ไบโอฟิล์มและขับเซลล์ออกสู่ตัวกลางการกู้คืน - ตรวจสอบกระบวนการ:
ใช้เซ็นเซอร์อุณหภูมิแบบเสียบได้เพื่อตรวจสอบ samp อุณหภูมิในหลุม UIP400MTP สามารถเชื่อมต่อกับเครื่องทําความเย็นในห้องปฏิบัติการเพื่อทําความเย็นได้ - การจัดการหลังการ sonication:
ถ่ายโอนสื่อการกู้คืนที่มีไบโอฟิล์มที่แยกออกลงในแผ่นปลอดเชื้อใหม่ทันทีเพื่อการวิเคราะห์ในภายหลัง
(A) แผ่นที่มี TSB ที่มีกลูโคส 2% ที่ใช้สําหรับการสร้างไบโอฟิล์ม การกู้คืนเซลล์ และการกําหนด MIC และ MBEC (B) ฝาปิดพร้อมหมุดสําหรับการสร้างฟิล์มชีวภาพ Staphylococcal
เซลล์ไบโอฟิล์มที่เกิดขึ้นบนหมุดถูกหลุดออกโดยการ sonication (Hielscher Ultrasound Technology) เป็นเวลา 5 นาทีในแผ่น 96 หลุมที่มีอาหารเลี้ยงสดเพื่อการกู้คืนเซลล์
(ภาพและการศึกษา: ©de Oliveira et al., 2016)
ขั้นตอนที่ 4: การประเมินความมีชีวิต
แผ่นและวัฒนธรรมชีวภาพที่แยกจากกัน:
- ทําการเจือจางแบบอนุกรมของอาหารที่กู้คืนและชุบลงบนวุ้นเพื่อแจกแจงหน่วยสร้างอาณานิคม (CFU)
- ประเมินไมค์:
กําหนด MIC เป็นความเข้มข้นของสารต้านจุลชีพต่ําสุดที่ยับยั้งการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์ที่มองเห็นได้ในอาหารเพื่อการกู้คืนอย่างสมบูรณ์
การออกแบบ การผลิต และการให้คําปรึกษา – คุณภาพ ผลิตในประเทศเยอรมนี
เครื่องอัลตราโซนิก Hielscher เป็นที่รู้จักกันดีในด้านคุณภาพและมาตรฐานการออกแบบสูงสุด ความทนทานและใช้งานง่ายช่วยให้สามารถรวมเครื่องอัลตราโซนิกของเราเข้ากับโรงงานอุตสาหกรรมได้อย่างราบรื่น สภาพที่ขรุขระและสภาพแวดล้อมที่ต้องการสามารถจัดการได้อย่างง่ายดายโดยเครื่องสะท้อนเสียง Hielscher
Hielscher Ultrasonics เป็น บริษัท ที่ได้รับการรับรองมาตรฐาน ISO และให้ความสําคัญเป็นพิเศษกับเครื่องอัลตราโซนิกประสิทธิภาพสูงที่มีเทคโนโลยีล้ําสมัยและเป็นมิตรกับผู้ใช้ แน่นอนว่าเครื่องอัลตราโซนิกของ Hielscher เป็นไปตามมาตรฐาน CE และตรงตามข้อกําหนดของ UL, CSA และ RoHs
ปรับปรุงการเตรียมตัวอย่างในเพลต 96 หลุมและเพลททดสอบ การใช้เครื่องสะท้อนเสียงแบบหลายหลุม UIP400MTP
วรรณกรรม / อ้างอิง
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
คําถามที่พบบ่อย
การทดสอบ MIC คืออะไร?
การทดสอบความเข้มข้นยับยั้งขั้นต่ํา (MIC) เป็นการทดสอบมาตรฐานที่ใช้ในการกําหนดความเข้มข้นต่ําสุดของสารต้านจุลชีพที่จําเป็นในการยับยั้งการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์ที่มองเห็นได้ โดยทั่วไปจะดําเนินการโดยใช้วิธีการเจือจางแบบไมโครน้ําซุปหรือการเจือจางวุ้น โดยที่จุลินทรีย์สัมผัสกับการเจือจางแบบต่อเนื่องของสารต้านจุลชีพ การทดสอบ MIC มีความสําคัญต่อการประเมินประสิทธิภาพการต้านจุลชีพ เป็นแนวทางในการรักษาทางคลินิก และการประเมินระดับความต้านทานในจุลินทรีย์ที่เกี่ยวข้องกับแพลงก์ตอนและไบโอฟิล์ม
อะไรคือความแตกต่างระหว่างการทดสอบความเข้มข้นยับยั้งขั้นต่ําที่ใช้ไบโอฟิล์มและการทดสอบ MBIC?
การทดสอบความเข้มข้นยับยั้งขั้นต่ํา (MIC) ที่ใช้ไบโอฟิล์มและการทดสอบความเข้มข้นยับยั้งไบโอฟิล์มขั้นต่ํา (MBIC) มีความเกี่ยวข้องกัน แต่แตกต่างกันในวัตถุประสงค์และวิธีการ
การทดสอบ MIC ที่ใช้ไบโอฟิล์มจะประเมินความเข้มข้นต่ําสุดของสารต้านจุลชีพที่จําเป็นในการยับยั้งการเจริญเติบโตหรือการมีชีวิตของไบโอฟิล์มที่มองเห็นได้ โดยมุ่งเน้นไปที่เซลล์ที่เกี่ยวข้องกับไบโอฟิล์มมากกว่าแบคทีเรียแพลงก์ตอน ในทางตรงกันข้ามการทดสอบ MBIC จะวัดความสามารถของสารต้านจุลชีพโดยเฉพาะในการป้องกันการก่อตัวของฟิล์มชีวภาพแทนที่จะรักษาฟิล์มชีวภาพที่สร้างไว้ล่วงหน้า แม้ว่าการทดสอบทั้งสองจะจัดการกับแบคทีเรียที่เกี่ยวข้องกับไบโอฟิล์ม แต่การทดสอบ MIC ที่ใช้ไบโอฟิล์มจะกล่าวถึงการรักษา และการทดสอบ MBIC เน้นการป้องกัน ทําให้เป็นเครื่องมือเสริมสําหรับการศึกษาประสิทธิภาพของยาต้านจุลชีพกับไบโอฟิล์ม
ไบโอฟิล์มใดที่ใช้ในการทดสอบ MIC?
ไบโอฟิล์มจุลินทรีย์และเซลล์แพลงก์ตอนถูกนํามาใช้ในการทดสอบความเข้มข้นยับยั้งขั้นต่ํา (MIC) เพื่อศึกษาประสิทธิภาพของยาต้านจุลชีพภายใต้สภาวะที่แตกต่างกัน
- เซลล์แพลงก์ตอน:
เซลล์แพลงก์ตอนเป็นเซลล์จุลินทรีย์เดี่ยวที่ลอยตัวได้อย่างอิสระซึ่งทําหน้าที่เป็นแบบจําลองมาตรฐานสําหรับการทดสอบ MIC แบบดั้งเดิม จุลินทรีย์ทั่วไป ได้แก่ Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus และ Candida albicans การทดสอบเหล่านี้กําหนด MIC ที่จําเป็นในการยับยั้งการเจริญเติบโตของเซลล์ที่มีชีวิตอิสระ และมีความสําคัญต่อการคัดกรองยาต้านจุลชีพเบื้องต้น - เซลล์ที่เกี่ยวข้องกับไบโอฟิล์ม:
เซลล์ไบโอฟิล์มเป็นจุลินทรีย์ที่ฝังอยู่ในเมทริกซ์นอกเซลล์ ซึ่งเพิ่มความต้านทานต่อยาต้านจุลชีพได้อย่างมาก การทดสอบ MIC ไบโอฟิล์มมักประกอบด้วย:- แบคทีเรียแกรมลบ: Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa และ Klebsiella pneumoniae ซึ่งเป็นที่รู้จักกันดีสําหรับการก่อตัวของฟิล์มชีวภาพในการติดเชื้อและสภาพแวดล้อมทางอุตสาหกรรม
- แบคทีเรียแกรมบวก: Staphylococcus aureus (รวมถึง MRSA), Staphylococcus epidermidis และ Enterococcus faecalis ซึ่งมักเกี่ยวข้องกับการติดเชื้อที่เกี่ยวข้องกับอุปกรณ์
- เชื้อรา: Candida albicans และสายพันธุ์ที่เกี่ยวข้อง ซึ่งมีความสําคัญในการติดเชื้อราที่เกี่ยวข้องกับไบโอฟิล์ม
- ฟิล์มชีวภาพผสมสายพันธุ์: บางครั้งใช้เพื่อจําลองฟิล์มชีวภาพโพลีจุลินทรีย์ตามธรรมชาติ เช่น ที่พบในบาดแผลเรื้อรังหรือการเปรอะเปื้อนทางชีวภาพในอุตสาหกรรม
ด้วยการเปรียบเทียบค่า MIC สําหรับเซลล์แพลงก์ตอนและเซลล์ที่เกี่ยวข้องกับไบโอฟิล์มนักวิจัยสามารถประเมินความต้านทานที่เพิ่มขึ้นของไบโอฟิล์มและระบุสารที่มีประสิทธิภาพต่อชุมชนจุลินทรีย์ที่มีความยืดหยุ่นมากขึ้นเหล่านี้
MIC และ MBEC ต่างกันอย่างไร?
ความเข้มข้นของการยับยั้งขั้นต่ํา (MIC) คือความเข้มข้นต่ําสุดของสารต้านจุลชีพที่จําเป็นในการป้องกันการก่อตัวของไบโอฟิล์ม ในขณะที่ความเข้มข้นของการกําจัดไบโอฟิล์มขั้นต่ํา (MBEC) เป็นความเข้มข้นต่ําสุดที่จําเป็นในการกําจัดไบโอฟิล์มที่จัดตั้งขึ้น MIC มุ่งเน้นไปที่การป้องกันไบโอฟิล์ม ในขณะที่ MBEC ประเมินประสิทธิภาพการรักษากับไบโอฟิล์มที่โตเต็มที่
เพลตใดที่มักใช้สําหรับการทดสอบ MBEC?
แผ่นไมโครไทเตอร์ที่ใช้กันทั่วไปสําหรับการทดสอบ MBEC มักเป็นแผ่น 96 หลุมที่ทําจากโพลีสไตรีนหรือโพลีโพรพีลีน วัสดุเหล่านี้ให้พื้นผิวที่เหมาะสมสําหรับการสร้างไบโอฟิล์มและทนต่อสารเคมีต่อสารต้านจุลชีพที่ทดสอบระหว่างการทดสอบ เพลทโพลีสไตรีนเป็นที่ต้องการอย่างกว้างขวางเนื่องจากความคมชัดทางแสง ซึ่งเป็นประโยชน์สําหรับการวิเคราะห์ปลายน้ํา เช่น การวัดแบบสเปกโตรโฟโตเมตริกหรือการเรืองแสง การออกแบบแผ่นเหล่านี้รวมถึงฝาปิดหมุดที่ถอดออกได้ ซึ่งจําเป็นสําหรับการทดสอบ เนื่องจากไบโอฟิล์มก่อตัวขึ้นบนหมุดที่แช่อยู่ในบ่อน้ําที่มีตัวกลางการเจริญเติบโต เพลตที่ได้มาตรฐาน เช่น แผ่นที่สอดคล้องกับโปรโตคอลการทดสอบ MBEC ได้รับการออกแบบทางวิศวกรรมโดยเฉพาะเพื่อให้แน่ใจว่าสามารถทําซ้ําได้และเข้ากันได้กับเครื่องสะท้อนเสียง UIP400MTP หรืออุปกรณ์การประมวลผลอื่นๆ
แผ่นปิด PEG คืออะไร?
แผ่นฝา PEG เป็นระบบแผ่นหลายหลุมเฉพาะที่ฝาปิดมีหมุดหรือหมุดโพลีเอทิลีนไกลคอล (PEG) ขนาดเล็กที่ยื่นเข้าไปในแต่ละหลุม หมุดเหล่านี้เป็นพื้นผิวสําหรับการสร้างฟิล์มชีวภาพของจุลินทรีย์ภายใต้สภาวะที่มีการควบคุม โดยเลียนแบบการเจริญเติบโตของฟิล์มชีวภาพในโลกแห่งความเป็นจริง การออกแบบช่วยให้ไบโอฟิล์มสามารถพัฒนาบนหมุดได้ในขณะที่หลุมมีอาหารกลางการเจริญเติบโตหรือสารต้านจุลชีพทําให้สามารถทดสอบความอ่อนไหวต่อการรักษาของไบโอฟิล์มได้ปริมาณงานสูงเช่นในการทดสอบ MBEC, MBIC และ MIC
ข้อดีของการหลุดฟิล์มชีวภาพอัลตราโซนิกเมื่อเทียบกับการขูดเซลล์คืออะไร?
การหลุดฟิล์มชีวภาพอัลตราโซนิกมีข้อได้เปรียบที่สําคัญเหนือการขูดเซลล์โดยให้วิธีการที่ไม่รุกรานสม่ําเสมอและมีประสิทธิภาพสูงในการลบฟิล์มชีวภาพออกจากพื้นผิว ซึ่งแตกต่างจากการขูดซึ่งอาจไม่สอดคล้องกันและทําให้พื้นผิวหรือเซลล์ด้านล่างเสียหายคลื่นอัลตราโซนิกจะทะลุเมทริกซ์ไบโอฟิล์มทําลายออกจากกันโดยไม่กระทบต่อความสมบูรณ์ของโครงสร้างที่อยู่ติดกัน วิธีนี้ช่วยให้มั่นใจได้ถึงความสามารถในการทําซ้ํา ลดความเสี่ยงในการปนเปื้อน และมีประสิทธิภาพโดยเฉพาะอย่างยิ่งสําหรับการใช้งานที่ต้องการการกําจัดฟิล์มชีวภาพที่แม่นยํา เช่น ในการศึกษาทางจุลชีววิทยาหรือการทดสอบอุปกรณ์ทางการแพทย์ อ่านเพิ่มเติมว่า UIP400MTP Sonicator เก่งในการขูดเซลล์ได้อย่างไร!
Hielscher Ultrasonics ผลิตโฮโมจีไนเซอร์อัลตราโซนิกประสิทธิภาพสูงจาก ห้องทดลอง ถึง ขนาดอุตสาหกรรม


