วิธีปฏิบัติสำหรับการทดสอบความเข้มข้นต่ำสุดที่ยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์ (MIC)
การทดสอบความเข้มข้นต่ำสุดที่ยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์ (MIC) โดยใช้ไบโอฟิล์มเป็นวิธีสำคัญในการประเมินประสิทธิผลของสารต้านจุลชีพต่อจุลินทรีย์ที่เกี่ยวข้องกับไบโอฟิล์ม ซึ่งมีความต้านทานสูงขึ้นเนื่องจากมีเมทริกซ์นอกเซลล์ช่วยปกป้อง ขั้นตอนสำคัญในการทดสอบนี้คือการแยกโครงสร้างไบโอฟิล์มออกเพื่อปลดปล่อยเซลล์ที่ฝังอยู่ภายในสำหรับการประเมินความมีชีวิตอย่างแม่นยำ เครื่องอัลตราโซนิกสำหรับเพลตหลายหลุม UIP400MTP ช่วยให้กระบวนการนี้ดำเนินไปได้โดยใช้คลื่นอัลตราซาวนด์แบบรวมจุดเพื่อสร้างคาวิเทชันที่ควบคุมได้ ทำให้เซลล์ไบโอฟิล์มหลุดออกอย่างมีประสิทธิภาพและกระจายเป็นสารแขวนลอยที่สม่ำเสมอ การทำลายโครงสร้างไบโอฟิล์มที่แม่นยำและทำซ้ำได้เช่นนี้ช่วยเพิ่มความน่าเชื่อถือและปริมาณงานทดสอบ MIC ที่ทำได้ ทำให้ UIP400MTP เป็นเครื่องมือสำคัญในการพัฒนางานวิจัยไบโอฟิล์ม
เหตุใดจึงควรใช้คลื่นอัลตราโซนิกระหว่างการทดสอบ MIC?
- ข้อมูลที่แม่นยำและทำซ้ำได้: ได้สารแขวนลอยของเซลล์ที่สม่ำเสมอซึ่งขจัดการปกป้องจากเมทริกซ์ ทำให้จำนวนโคโลนีและค่าความหนาแน่นเชิงแสงที่วัดได้สะท้อนประสิทธิผลของสารต้านจุลชีพอย่างแท้จริง
- ประสิทธิภาพในการประมวลผลตัวอย่างปริมาณมาก: ประมวลผลเพลต 96 หลุมทั้งเพลตพร้อมกันได้ในเวลาเพียง 1–3 นาที แทนที่การขูดด้วยมือที่ช้าและไม่สม่ำเสมอด้วยขั้นตอนการทำงานที่คล่องตัว
- รักษาความมีชีวิตของเซลล์: ทำให้เซลล์ที่ฝังอยู่หลุดออกอย่างอ่อนโยนโดยไม่เกิดความเสียหายทางกายภาพจากการขูด รักษาอัตราการรอดชีวิตที่สูงกว่าเพื่อให้การคำนวณ MIC/MBEC เชื่อถือได้
- ไม่มีความเสี่ยงต่อการปนเปื้อนข้าม: ได้รับประโยชน์จากการออกแบบฮอร์นอัลตราโซนิกทรงถ้วยแบบไม่สัมผัส ซึ่งประมวลผลทุกหลุมอย่างสม่ำเสมอโดยไม่มีโพรบสัมผัสกับตัวอย่างหรือหลุมแต่ละหลุม
- พร้อมปฏิบัติตามมาตรฐาน: ปรับวิธีการของคุณให้สอดคล้องกับวิธีปฏิบัติในอุตสาหกรรมที่ผ่านการตรวจสอบความใช้ได้ เช่น ASTM E2799-22 เพื่อเพิ่มความน่าเชื่อถือของข้อมูลสำหรับการใช้ตามข้อกำหนดของหน่วยงานกำกับดูแลหรือการตีพิมพ์
- คัดกรองยาและการรักษาอย่างมั่นใจ: เชื่อมั่นในผลการทดสอบความไวต่อสารต้านจุลชีพเพื่อประกอบการตัดสินใจที่รอบคอบยิ่งขึ้นเกี่ยวกับประสิทธิผลของสารต้านจุลชีพ การจัดทำข้อมูลลักษณะการดื้อสารต้านจุลชีพ หรือการพัฒนาการรักษา
เพิ่มปริมาณงานที่ห้องปฏิบัติการของคุณทำได้พร้อมรักษาความมีชีวิตของเซลล์ แจ้งประเภทไมโครเพลตที่คุณใช้เพื่อรับคำแนะนำสำหรับการแยกไบโอฟิล์มออกและการกระจายเซลล์อย่างมีประสิทธิภาพด้วยการใช้คลื่นอัลตราโซนิกเพื่อประมวลผลตัวอย่างปริมาณมาก
เครื่องอัลตราโซนิกสำหรับไมโครเพลต UIP400MTP สำหรับการแยกไบโอฟิล์มออกในการทดสอบ MIC และ MBEC ที่ควบคุมได้อย่างแม่นยำ
การใช้คลื่นอัลตราโซนิกเพื่อแยกไบโอฟิล์มออก
โดยทั่วไป การทดสอบ MIC โดยใช้ไบโอฟิล์มวัดความมีชีวิตของแบคทีเรียหรือการยับยั้งการเจริญด้วยวิธีต่าง ๆ เช่น การเพาะเชื้อบนเพลต การนับโคโลนี หรือการวัดความหนาแน่นเชิงแสง การใช้คลื่นอัลตราโซนิกเป็นขั้นตอนสำคัญในการทดสอบ MIC โดยใช้ไบโอฟิล์ม เมื่อประเมินความไวต่อสารต้านจุลชีพของจุลินทรีย์ที่เกี่ยวข้องกับไบโอฟิล์ม หน้าที่หลักคือแยกและกระจายเซลล์ที่ฝังอยู่ในเมทริกซ์ของไบโอฟิล์มให้เป็นสารแขวนลอยที่สม่ำเสมอเพื่อการวิเคราะห์อย่างแม่นยำ
ไบโอฟิล์มมีความต้านทานต่อสารต้านจุลชีพสูงกว่าเซลล์ที่ลอยอิสระอย่างมาก การแยกออกอย่างเหมาะสมจึงมีความสำคัญต่อการวิเคราะห์อย่างแม่นยำ ระหว่างกระบวนการนี้ คลื่นอัลตราโซนิกสร้างคาวิเทชันที่ควบคุมได้ ทำให้เมทริกซ์ของไบโอฟิล์มแตกตัวและปลดปล่อยเซลล์ที่ฝังอยู่ให้เป็นสารแขวนลอยที่สม่ำเสมอในอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับฟื้นฟูเซลล์ ขั้นตอนนี้ช่วยให้ประเมินความมีชีวิตของเซลล์ที่กระจายออกจากไบโอฟิล์มได้อย่างแม่นยำด้วยวิธีต่าง ๆ เช่น การเพาะเชื้อบนเพลต การเจือจาง และการนับโคโลนี การทำลายโครงสร้างไบโอฟิล์มอย่างเหมาะสมด้วยคลื่นอัลตราโซนิกป้องกันไม่ให้องค์ประกอบเมทริกซ์ที่ตกค้างปกป้องเซลล์ ซึ่งมิฉะนั้นอาจทำให้ประเมินฤทธิ์ต้านจุลชีพต่ำกว่าความเป็นจริง เครื่องอัลตราโซนิกสำหรับเพลตหลายหลุม UIP400MTP เหมาะเป็นพิเศษสำหรับวัตถุประสงค์นี้ โดยให้สภาวะการใช้คลื่นอัลตราโซนิกที่แม่นยำและทำซ้ำได้ เพื่อให้มั่นใจว่าการเตรียมเพลตทดสอบมีความน่าเชื่อถือและรองรับตัวอย่างปริมาณมาก
เหตุใดการใช้คลื่นอัลตราโซนิกจึงจำเป็นในการทดสอบความเข้มข้นต่ำสุดที่ยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์โดยใช้ไบโอฟิล์ม
การวัดความมีชีวิตและการนับเซลล์ต้องอาศัยการแยกออกและการกระจายเป็นเซลล์เดี่ยวอย่างสมบูรณ์และเชื่อถือได้ UIP400MTP ช่วยให้แยกไบโอฟิล์มออกและกระจายเซลล์ได้อย่างสม่ำเสมอโดยไม่ก่อความเสียหาย เพื่อให้ได้ผลการทดสอบที่น่าเชื่อถือ
- ความซับซ้อนของไบโอฟิล์ม: ไบโอฟิล์มเป็นชุมชนจุลินทรีย์ที่มีโครงสร้างและถูกห่อหุ้มอยู่ในเมทริกซ์ของสารพอลิเมอร์นอกเซลล์ (EPS) ซึ่งปกป้องจุลินทรีย์และทำให้มีความต้านทานต่อสารต้านจุลชีพสูงขึ้น
- การกระจายตัวอย่างสม่ำเสมอ: เพื่อวัดความมีชีวิตของเซลล์ที่ฝังอยู่ในไบโอฟิล์มหรือความไวต่อสารต้านจุลชีพของเซลล์เหล่านี้อย่างแม่นยำ ต้องทำให้ไบโอฟิล์มหลุดออกและแตกตัวเป็นสารแขวนลอยเนื้อเดียวกันก่อน
แม้การทดสอบ MIC มาตรฐานจะวัดความต้านทานของเซลล์ที่ลอยอิสระ แต่การใช้คลื่นอัลตราโซนิกจำเป็นสำหรับการทดสอบ Biofilm-MIC และ MBEC เพื่อให้มั่นใจว่าได้เซลล์กลับคืนมาในระดับพื้นฐานที่ถูกต้อง
วิธีปฏิบัติสำหรับการทดสอบความเข้มข้นต่ำสุดที่ยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์โดยใช้ไบโอฟิล์ม
การทดสอบความเข้มข้นต่ำสุดที่ยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์ (MIC) ใช้หาความเข้มข้นต่ำสุดของสารต้านจุลชีพที่จำเป็นต่อการยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์ที่มองเห็นได้ วิธีปฏิบัตินี้ออกแบบมาสำหรับจุลินทรีย์ที่เกี่ยวข้องกับไบโอฟิล์ม โดยใช้เครื่องอัลตราโซนิกสำหรับเพลตหลายหลุม UIP400MTP เพื่อทำลายโครงสร้างไบโอฟิล์ม
ขั้นตอนที่ 1: การเตรียมเชื้อแบคทีเรียสำหรับใส่ลงในอาหารเลี้ยงเชื้อ
- เตรียมสารแขวนลอยแบคทีเรีย:
เพาะเลี้ยงแบคทีเรียในอาหารเลี้ยงเชื้อที่เหมาะสมจนถึงช่วงกลางของระยะการเจริญแบบลอการิทึม
เจือจางเชื้อที่เพาะเลี้ยงเพื่อให้ได้ความหนาแน่นของเซลล์ตามมาตรฐาน (เช่น มาตรฐาน McFarland 0.5 หรือ OD600 ~0.1) - เตรียมสารละลายต้านจุลชีพ:
เจือจางสารต้านจุลชีพในอาหารเลี้ยงเชื้อที่เหมาะสมเพื่อให้ได้ความเข้มข้นหลายระดับ (เช่น การเจือจางแบบอนุกรมครั้งละสองเท่า) - จ่ายสารละลายลงในเพลต 96 หลุม:
เติมสารละลายต้านจุลชีพลงในหลุมของเพลตมาตรฐาน 96 หลุม โดยให้ปริมาตรสุดท้ายในแต่ละหลุมเป็น ~150–200 µL
จัดให้มีชุดควบคุมการเจริญ (ไม่มีสารต้านจุลชีพ) และชุดควบคุมความปราศจากเชื้อ (ไม่มีเชื้อแบคทีเรียที่ใส่ลงไป)
ขั้นตอนที่ 2: การสร้างไบโอฟิล์มบนฝาที่มีหมุด
- ติดฝาที่มีหมุด:
วางฝาที่มีหมุดซึ่งออกแบบมาเฉพาะบนหลุมที่ใส่เชื้อแล้ว โดยให้แน่ใจว่าหมุดจมอยู่ในสารแขวนลอยแบคทีเรียทั้งหมด - บ่มเพลต:
บ่มที่อุณหภูมิที่เหมาะสม (เช่น 37°C) เป็นระยะเวลาที่กำหนด (เช่น 24 ชั่วโมง) ภายใต้สภาวะนิ่งเพื่อให้เกิดไบโอฟิล์มบนหมุด - ล้างหมุด:
นำฝาที่มีหมุดออกจากสารแขวนลอยแบคทีเรีย แล้วล้างอย่างอ่อนโยนในน้ำเกลือปราศจากเชื้อหรือ PBS เพื่อกำจัดเซลล์ที่ลอยอิสระซึ่งเกาะติดอย่างหลวม ๆ - ให้สัมผัสสารต้านจุลชีพ:
ย้ายฝาที่มีหมุดไปยังเพลต 96 หลุมใหม่ที่มีสารต้านจุลชีพซึ่งเจือจางไว้ก่อนหน้านี้
บ่มเป็นระยะเวลาที่กำหนด (เช่น 24 ชั่วโมง) ภายใต้สภาวะนิ่งเพื่อให้สารต้านจุลชีพออกฤทธิ์ต่อไบโอฟิล์ม
ขั้นตอนที่ 3: การให้ไบโอฟิล์มสัมผัสสารต้านจุลชีพ
เครื่องอัลตราโซนิกสำหรับเพลตหลายหลุม UIP400MTP สำหรับการเตรียมตัวอย่างปริมาณมาก
ขั้นตอนที่ 4: การใช้คลื่นอัลตราโซนิกด้วยเครื่องอัลตราโซนิกสำหรับไมโครเพลต UIP400MTP
ขั้นตอนการใช้คลื่นอัลตราโซนิกมีความสำคัญต่อการแยกไบโอฟิล์มออกจากฝาที่มีหมุดเพื่อประเมินความมีชีวิต ปฏิบัติตามขั้นตอนต่อไปนี้สำหรับเครื่องอัลตราโซนิก UIP400MTP:
- เตรียมอุปกรณ์:
เติมอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับฟื้นฟูเซลล์ (เช่น อาหารเลี้ยงเชื้อเหลวที่ทำให้สารต้านจุลชีพหมดฤทธิ์ หรืออาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับการเจริญที่ปราศจากเชื้อ) ลงในแต่ละหลุมของเพลต 96 หลุมใหม่ - ย้ายฝาที่มีหมุด:
นำฝาที่มีหมุดออกจากเพลตที่ใช้ให้สารต้านจุลชีพ
ล้างฝาที่มีหมุดในน้ำเกลือปราศจากเชื้อหรือ PBS เพื่อกำจัดสารต้านจุลชีพที่ตกค้าง - จัดวางเพลตในเครื่องอัลตราโซนิก:
ติดฝาที่มีหมุดเข้ากับเพลตที่มีอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับฟื้นฟูเซลล์
วางเพลตที่มีอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับฟื้นฟูเซลล์ลงในเครื่องอัลตราโซนิก UIP400MTP โดยให้แน่ใจว่าเพลตอยู่ตรงกลางและมั่นคงตามที่อธิบายไว้ในคู่มือ - ปรับพารามิเตอร์การใช้คลื่นอัลตราโซนิก:
ตั้งพารามิเตอร์การใช้คลื่นอัลตราโซนิกที่ UIP400MTP (อาจปรับการตั้งค่าให้เหมาะกับไบโอฟิล์ม):
แอมพลิจูด: 70–100%.
ระยะเวลาการใช้คลื่นอัลตราโซนิก: 1–3 นาที (ปรับตามโครงสร้างไบโอฟิล์ม) ในโหมดทำงานเป็นรอบ - ใช้คลื่นอัลตราโซนิก:
เริ่มกระบวนการใช้คลื่นอัลตราโซนิก คลื่นอัลตราโซนิกจะทำลายเมทริกซ์ของไบโอฟิล์มและทำให้เซลล์หลุดออกสู่อาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับฟื้นฟูเซลล์ - ติดตามกระบวนการ:
ใช้เซนเซอร์อุณหภูมิแบบเสียบต่อเพื่อติดตามอุณหภูมิตัวอย่างในหลุม สามารถเชื่อมต่อ UIP400MTP กับเครื่องทำความเย็นสำหรับห้องปฏิบัติการเพื่อระบายความร้อนได้ - การจัดการหลังใช้คลื่นอัลตราโซนิก:
ย้ายอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับฟื้นฟูเซลล์ที่มีไบโอฟิล์มซึ่งหลุดออกแล้วไปยังเพลตปราศจากเชื้อใหม่ทันทีเพื่อการวิเคราะห์ต่อไป
(A) เพลตที่มี TSB ผสมกลูโคส 2% ใช้สำหรับการสร้างไบโอฟิล์ม การเก็บเซลล์กลับคืน และการหาค่า MIC และ MBEC; (B) ฝาที่มีหมุดสำหรับการสร้างไบโอฟิล์มของแบคทีเรียสแตฟิโลค็อกคัส
เซลล์ไบโอฟิล์มที่ก่อตัวบนหมุดถูกทำให้หลุดออกด้วยคลื่นอัลตราโซนิก (Hielscher Ultrasound Technology) เป็นเวลา 5 min ในเพลต 96 หลุมที่มีอาหารเลี้ยงเชื้อใหม่เพื่อเก็บเซลล์กลับคืน
(ภาพและการศึกษา: ©de Oliveira et al., 2016)
ขั้นตอนที่ 4: การประเมินความมีชีวิต
นำไบโอฟิล์มที่แยกออกแล้วลงเพลตและเพาะเลี้ยง:
- เจือจางอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับฟื้นฟูเซลล์แบบอนุกรมและเพาะบนอาหารวุ้นเพื่อนับหน่วยก่อโคโลนี (CFU)
- ประเมิน MIC:
กำหนดค่า MIC เป็นความเข้มข้นต่ำสุดของสารต้านจุลชีพที่ยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์ที่มองเห็นได้ในอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับฟื้นฟูเซลล์อย่างสมบูรณ์
เปลี่ยนมาใช้คลื่นอัลตราโซนิกแบบไม่สัมผัสที่แม่นยำ เพื่อให้มั่นใจว่าสารแขวนลอยของเซลล์สม่ำเสมอและผล MIC เชื่อถือได้!
ใครได้รับประโยชน์จากการใช้คลื่นอัลตราโซนิกระหว่างการทดสอบ MIC?
- ผู้ผลิตเครื่องมือแพทย์: เพื่อทดสอบประสิทธิผลของสารเคลือบผิวและตรวจสอบความใช้ได้ของวิธีปฏิบัติในการทำความสะอาดอุปกรณ์ที่มีแนวโน้มเกิดไบโอฟิล์ม
- นักจุลชีววิทยาคลินิก: เพื่อวินิจฉัยการติดเชื้อที่เกี่ยวข้องกับอุปกรณ์ฝังในร่างกาย (เช่น PJI) อย่างแม่นยำ โดยเก็บแบคทีเรียกลับคืนจากอุปกรณ์ทางการแพทย์
- ผู้พัฒนายา: เพื่อประเมินประสิทธิผลของสารต้านจุลชีพชนิดใหม่ต่อเชื้อก่อโรคที่ทนทานและฝังอยู่ในไบโอฟิล์ม
- นักวิจัยในสถาบันการศึกษา: เพื่อดำเนินการศึกษาชีววิทยาของไบโอฟิล์มและกลไกการดื้อสารต้านจุลชีพที่รองรับตัวอย่างปริมาณมากและทำซ้ำได้
- ทีมควบคุมคุณภาพในอุตสาหกรรม: เพื่อประเมินการเกาะสะสมทางชีวภาพและประสิทธิผลของสารฆ่าเชื้อในสภาพแวดล้อมอุตสาหกรรม (เช่น โดยใช้มาตรฐาน ASTM E2799-22)
การออกแบบ การผลิต และการให้คำปรึกษา – คุณภาพที่ผลิตในเยอรมนี
เครื่องอัลตราโซนิกของ Hielscher เป็นที่รู้จักอย่างดีในด้านคุณภาพและมาตรฐานการออกแบบที่สูงที่สุด ความทนทานและการใช้งานที่ง่ายช่วยให้ผสานเครื่องอัลตราโซนิกของเราเข้ากับโรงงานอุตสาหกรรมได้อย่างราบรื่น เครื่องอัลตราโซนิกของ Hielscher รับมือกับสภาวะที่รุนแรงและสภาพแวดล้อมที่มีข้อเรียกร้องสูงได้อย่างง่ายดาย
Hielscher Ultrasonics เป็นบริษัทที่ได้รับการรับรอง ISO และให้ความสำคัญเป็นพิเศษกับเครื่องอัลตราโซนิกสมรรถนะสูงที่ใช้เทคโนโลยีล้ำสมัยและใช้งานง่าย แน่นอนว่าเครื่องอัลตราโซนิกของ Hielscher เป็นไปตามข้อกำหนด CE และตรงตามข้อกำหนดของ UL, CSA และ RoHs
ทำให้การเตรียมตัวอย่างในเพลต 96 หลุมและเพลตทดสอบคล่องตัวขึ้น โดยใช้เครื่องอัลตราโซนิกสำหรับเพลตหลายหลุม UIP400MTP
วรรณกรรม / เอกสารอ้างอิง
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
คำถามที่พบบ่อย
การทดสอบ MIC คืออะไร?
การทดสอบความเข้มข้นต่ำสุดที่ยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์ (MIC) เป็นการทดสอบมาตรฐานที่ใช้หาความเข้มข้นต่ำสุดของสารต้านจุลชีพที่จำเป็นต่อการยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์ที่มองเห็นได้ โดยทั่วไปดำเนินการด้วยวิธีเจือจางระดับไมโครในอาหารเลี้ยงเชื้อเหลวหรือวิธีเจือจางในอาหารวุ้น ซึ่งให้จุลินทรีย์สัมผัสกับสารต้านจุลชีพที่เจือจางแบบอนุกรม การทดสอบ MIC มีความสำคัญต่อการประเมินประสิทธิผลของสารต้านจุลชีพ การให้แนวทางการรักษาทางคลินิก และการประเมินระดับการดื้อสารต้านจุลชีพของทั้งจุลินทรีย์ที่ลอยอิสระและจุลินทรีย์ที่เกี่ยวข้องกับไบโอฟิล์ม
การทดสอบความเข้มข้นต่ำสุดที่ยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์โดยใช้ไบโอฟิล์มแตกต่างจากการทดสอบ MBIC อย่างไร?
การทดสอบความเข้มข้นต่ำสุดที่ยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์ (MIC) โดยใช้ไบโอฟิล์มและการทดสอบความเข้มข้นต่ำสุดที่ยับยั้งการสร้างไบโอฟิล์ม (MBIC) มีความเกี่ยวข้องกัน แต่แตกต่างกันในด้านวัตถุประสงค์และวิธีการ
การทดสอบ MIC โดยใช้ไบโอฟิล์มประเมินความเข้มข้นต่ำสุดของสารต้านจุลชีพที่จำเป็นต่อการยับยั้งการเจริญของไบโอฟิล์มที่มองเห็นได้หรือความมีชีวิต โดยเน้นเซลล์ที่เกี่ยวข้องกับไบโอฟิล์มแทนแบคทีเรียที่ลอยอิสระ ในทางตรงกันข้าม การทดสอบ MBIC วัดความสามารถของสารต้านจุลชีพในการป้องกันการสร้างไบโอฟิล์มโดยเฉพาะ แทนการจัดการกับไบโอฟิล์มที่ก่อตัวแล้ว แม้การทดสอบทั้งสองเกี่ยวข้องกับแบคทีเรียที่สัมพันธ์กับไบโอฟิล์ม แต่การทดสอบ MIC โดยใช้ไบโอฟิล์มมุ่งที่การรักษา ส่วนการทดสอบ MBIC เน้นการป้องกัน จึงเป็นเครื่องมือที่เสริมกันในการศึกษาประสิทธิผลของสารต้านจุลชีพต่อไบโอฟิล์ม
ใช้ไบโอฟิล์มชนิดใดในการทดสอบ MIC?
ทั้งไบโอฟิล์มของจุลินทรีย์และเซลล์ที่ลอยอิสระใช้ในการทดสอบความเข้มข้นต่ำสุดที่ยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์ (MIC) เพื่อศึกษาประสิทธิผลของสารต้านจุลชีพภายใต้สภาวะที่แตกต่างกัน
- เซลล์ที่ลอยอิสระ:
เซลล์ที่ลอยอิสระเป็นเซลล์จุลินทรีย์เดี่ยวที่ลอยอย่างอิสระและใช้เป็นแบบจำลองมาตรฐานสำหรับการทดสอบ MIC แบบดั้งเดิม จุลินทรีย์ที่ใช้กันทั่วไป ได้แก่ Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus และ Candida albicans การทดสอบเหล่านี้หาค่า MIC ที่จำเป็นต่อการยับยั้งการเจริญของเซลล์ที่ดำรงชีวิตอย่างอิสระ และมีความสำคัญต่อการคัดกรองสารต้านจุลชีพเบื้องต้น - เซลล์ที่เกี่ยวข้องกับไบโอฟิล์ม:
เซลล์ไบโอฟิล์มเป็นจุลินทรีย์ที่ฝังอยู่ในเมทริกซ์นอกเซลล์ ซึ่งเพิ่มความต้านทานต่อสารต้านจุลชีพอย่างมาก การทดสอบ MIC ของไบโอฟิล์มมักใช้จุลินทรีย์ต่อไปนี้:- แบคทีเรียแกรมลบ: Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa และ Klebsiella pneumoniae ซึ่งเป็นที่รู้จักในด้านการสร้างไบโอฟิล์มในการติดเชื้อและในสภาพแวดล้อมอุตสาหกรรม
- แบคทีเรียแกรมบวก: Staphylococcus aureus (รวมถึง MRSA), Staphylococcus epidermidis และ Enterococcus faecalis ซึ่งมักเกี่ยวข้องกับการติดเชื้อที่สัมพันธ์กับอุปกรณ์
- เชื้อรา: Candida albicans และชนิดที่เกี่ยวข้อง ซึ่งมีความสำคัญในการติดเชื้อราที่เกี่ยวข้องกับไบโอฟิล์ม
- ไบโอฟิล์มหลายชนิดผสมกัน: บางครั้งใช้ไบโอฟิล์มเหล่านี้เพื่อจำลองไบโอฟิล์มที่มีจุลินทรีย์หลายชนิดตามธรรมชาติ เช่น ที่พบในแผลเรื้อรังหรือการเกาะสะสมทางชีวภาพในอุตสาหกรรม
การเปรียบเทียบค่า MIC ของเซลล์ที่ลอยอิสระกับเซลล์ที่เกี่ยวข้องกับไบโอฟิล์มช่วยให้นักวิจัยประเมินความต้านทานที่เพิ่มขึ้นของไบโอฟิล์มและระบุสารที่มีประสิทธิผลต่อชุมชนจุลินทรีย์ที่ทนทานมากขึ้นเหล่านี้ได้
MIC และ MBEC แตกต่างกันอย่างไร?
ความเข้มข้นต่ำสุดที่ยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์ (MIC) คือความเข้มข้นต่ำสุดของสารต้านจุลชีพที่จำเป็นต่อการป้องกันการสร้างไบโอฟิล์ม ส่วนความเข้มข้นต่ำสุดที่กำจัดไบโอฟิล์ม (MBEC) คือความเข้มข้นต่ำสุดที่จำเป็นต่อการกำจัดไบโอฟิล์มที่ก่อตัวแล้ว MIC เน้นการป้องกันไบโอฟิล์ม ส่วน MBEC ประเมินประสิทธิผลของการรักษาต่อไบโอฟิล์มที่เจริญเต็มที่
เพลตชนิดใดที่ใช้กันทั่วไปในการทดสอบ MBEC?
เพลตไมโครไทเทอร์ที่ใช้กันทั่วไปในการทดสอบ MBEC มักเป็นเพลต 96 หลุมที่ทำจากพอลิสไตรีนหรือพอลิโพรพิลีน วัสดุเหล่านี้ให้พื้นผิวที่เหมาะสมสำหรับการสร้างไบโอฟิล์มและทนต่อสารเคมีที่เป็นสารต้านจุลชีพซึ่งใช้ทดสอบระหว่างการทดสอบ เพลตพอลิสไตรีนเป็นที่นิยมอย่างแพร่หลายเนื่องจากมีความใสเชิงแสง ซึ่งเป็นประโยชน์ต่อการวิเคราะห์ในขั้นตอนถัดไป เช่น การวัดด้วยสเปกโทรโฟโตเมตรีหรือการวัดโดยอาศัยการเรืองแสง การออกแบบเพลตเหล่านี้มีฝาที่มีหมุดแบบถอดได้ ซึ่งจำเป็นต่อการทดสอบเนื่องจากไบโอฟิล์มก่อตัวบนหมุดที่จุ่มอยู่ในหลุมซึ่งมีอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับการเจริญ เพลตมาตรฐาน เช่น เพลตที่เป็นไปตามวิธีปฏิบัติสำหรับการทดสอบ MBEC ได้รับการออกแบบทางวิศวกรรมโดยเฉพาะเพื่อให้มั่นใจว่าทำซ้ำได้และใช้ร่วมกับเครื่องอัลตราโซนิก UIP400MTP หรืออุปกรณ์ประมวลผลอื่น ๆ ได้
เพลตที่มีฝา PEG คืออะไร?
เพลตที่มีฝา PEG เป็นระบบเพลตหลายหลุมที่ออกแบบมาเฉพาะ โดยฝามีหมุดหรือเข็มขนาดเล็กที่ทำจากพอลิเอทิลีนไกลคอล (PEG) ยื่นลงไปในแต่ละหลุม หมุดเหล่านี้ให้พื้นผิวสำหรับการสร้างไบโอฟิล์มของจุลินทรีย์ภายใต้สภาวะที่ควบคุมได้ โดยจำลองการเจริญของไบโอฟิล์มในสภาพจริง การออกแบบนี้ช่วยให้ไบโอฟิล์มเจริญบนหมุดขณะที่ในหลุมมีอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับการเจริญหรือสารต้านจุลชีพ ทำให้ทดสอบความไวของไบโอฟิล์มต่อการรักษากับตัวอย่างปริมาณมากได้ เช่น ในการทดสอบ MBEC, MBIC และ MIC
การทำให้ไบโอฟิล์มหลุดออกด้วยคลื่นอัลตราโซนิกมีข้อได้เปรียบอย่างไรเมื่อเทียบกับการขูดเซลล์?
การทำให้ไบโอฟิล์มหลุดออกด้วยคลื่นอัลตราโซนิกมีข้อได้เปรียบอย่างมากเหนือการขูดเซลล์ โดยเป็นวิธีที่ไม่รุกล้ำ สม่ำเสมอ และมีประสิทธิภาพสูงในการกำจัดไบโอฟิล์มออกจากพื้นผิว ต่างจากการขูดซึ่งอาจไม่สม่ำเสมอและทำให้พื้นผิวด้านล่างหรือเซลล์เสียหาย คลื่นอัลตราโซนิกแทรกผ่านเมทริกซ์ของไบโอฟิล์มและทำให้แตกตัวโดยไม่กระทบต่อความสมบูรณ์ของโครงสร้างข้างเคียง วิธีนี้ช่วยให้มั่นใจว่าทำซ้ำได้ ลดความเสี่ยงต่อการปนเปื้อนให้เหลือน้อยที่สุด และมีประสิทธิผลเป็นพิเศษสำหรับการใช้งานที่ต้องกำจัดไบโอฟิล์มอย่างแม่นยำ เช่น การศึกษาทางจุลชีววิทยาหรือการทดสอบเครื่องมือแพทย์ อ่านเพิ่มเติมว่าเครื่องอัลตราโซนิก UIP400MTP เหนือกว่าการขูดเซลล์อย่างไร!
Hielscher Ultrasonics ผลิตเครื่องโฮโมจีไนเซอร์อัลตราโซนิกสมรรถนะสูง ตั้งแต่ ขนาดสำหรับห้องปฏิบัติการ ไปจนถึง ขนาดอุตสาหกรรม
