Ekstraktion af ekstracellulær matrix med sonikatoren UIP400MTP til 96-brøndsplader
Traditionelle metoder til ekstraktion af ekstracellulær matrix (EM) omfatter ofte flere trin til at nedbryde biofilmens matrix. Disse teknikker kan dog være tidskrævende og give uensartede resultater, hvilket medfører variation i resultaterne. Med sonikatoren UIP400MTP til 96-brøndsplader lettes EM-ekstraktionen betydeligt, så biofilm kan nedbrydes yderst effektivt, præcist og ensartet i formater med høj prøvekapacitet. UIP400MTP bruger fokuseret ultralyd til at generere kontrolleret kavitation, som effektivt nedbryder biofilmens matrix, samtidig med at levedygtigheden og integriteten af celler indlejret i biofilmen bevares. Brug af UIP400MTP forbedrer reproducerbarheden og nøjagtigheden af efterfølgende analyser, såsom metabolomiske og proteomiske analyser, levedygtighedstests og undersøgelser af følsomhed over for antimikrobielle midler. Ved at effektivisere EM-ekstraktionen gør UIP400MTP det muligt for forskere at opnå ensartede resultater af høj kvalitet og få dybere indsigt i biofilmens dynamik og interaktioner med eksterne påvirkninger.
Ekstraktion af ekstracellulær matrix
Den ekstracellulære matrix (EM) er en afgørende bestanddel af biofilm dannet af mikroorganismer såsom Candida albicans. EM består af polysakkarider, proteiner, lipider og ekstracellulært DNA, sikrer strukturel integritet, formidler adhæsion til overflader og bidrager væsentligt til antimikrobiel resistens. Ekstraktion og analyse af EM er afgørende for at forstå biofilmens biologi, klarlægge mekanismerne bag lægemiddelresistens og identificere nye terapeutiske mål.
Protokol til ekstraktion af ekstracellulær matrix (EM) fra Candida albicans-biofilm med UIP400MTP
Denne protokol fokuserer på ekstraktion af den ekstracellulære matrix (EM) fra statiske Candida albicans-biofilm. Sonikatoren UIP400MTP integreres for at erstatte traditionelle skrabetrin eller enzymbaserede trin og dermed forbedre effektiviteten og reproducerbarheden.
Nødvendige materialer
Trinvise anvisninger til EM-ekstraktion
- Dannelse af statisk biofilm
For statiske biofilm inokuleres C. albicans i brøndene på en 96-brøndsplade med RPMI-1640-medium. Hver brønd bør indeholde samme volumen inokulum (f.eks. 200 µL pr. brønd).
Inkubér pladen ved 37°C under statiske betingelser i 24 timer, så der kan dannes biofilm på brøndenes overflader. - Klargøring af biofilm til ekstraktion
Efter inkubation aspireres og kasseres det brugte medium forsigtigt fra hver brønd uden at forstyrre biofilmen.
Skyl hver brønd forsigtigt med steril PBS (f.eks. 200 µL) for at fjerne løst bundne celler og planktoniske rester. Gentag dette trin to gange.
Tilsæt frisk PBS eller ekstraktionsbufferen (f.eks. 200 µL) til hver brønd som forberedelse til sonikering. - Sonikering med UIP400MTP
Anbring 96-brøndspladen med PBS eller ekstraktionsbuffer i bakken på sonikatoren UIP400MTP. Følg anvisningerne i manualen for at placere multibrøndspladen korrekt.
Sonikér i 5–6 minutter ved en skånsom indstilling (60% amplitude, pulstilstand), så biofilmens struktur nedbrydes ensartet, og EM-komponenterne frigives.
Brug temperaturstyringen på sonikatoren UIP400MTP (temperatursensor og indstillinger) for at undgå overdreven opvarmning eller beskadigelse af prøverne. - Behandling med kationbytterharpiks (CER)
Overfør den sonikerede væske fra hver brønd til en ny 96-brøndsplade.
Tilsæt et dobbelt så stort volumen CER-suspension (fremstillet i PBS eller buffer) til hver brønd (f.eks. 400 µL samlet volumen pr. brønd).
Forsegl pladen, og inkubér den på en pladeryster eller rotator ved 400 rpm i 3 timer for at muliggøre binding og isolering af EM-komponenter. - Separation og filtrering
Centrifugér pladen ved 2.000 × g i 10 minutter for at adskille harpiksen og cellerne fra supernatanten.
Overfør forsigtigt den EM-holdige supernatant fra hver brønd til en ny 96-brøndsplade.
Filtrér supernatanten gennem et 0,22 µm filter ved hjælp af et vakuummanifoldsystem til plader eller et tilsvarende system for at opnå et rent EM-ekstrakt. - Analyse af EM
Brug teknikker såsom UPLC-Q-TOF-MS til ikke-målrettet metabolitprofilering, eller anvend specifikke analyser (f.eks. BCA til proteiner samt kits til kvantificering af triglycerider og kulhydrater) til at karakterisere EM-komponenter.
Ekstraktion af ekstracellulær matrix med høj prøvekapacitet
Den høje effektivitet ved ekstraktion af ekstracellulær matrix (EM) med sonikatoren UIP400MTP har revolutioneret prøveforberedelsen til analyser, der kræver nøjagtig undersøgelse af biofilmens egenskaber. UIP400MTP bruger ultralydsbølger til præcist og ensartet at nedbryde biofilmens matrix, så EM-komponenterne frigives effektivt, samtidig med at cellernes levedygtighed og integritet bevares. Denne fremgangsmåde forbedrer betydeligt pålideligheden af analyser såsom tests af biofilmens levedygtighed, proteomiske og metabolomiske undersøgelser samt vurderinger af følsomhed over for antimikrobielle midler.
Ved analyser af genvinding af biofilmceller, såsom optælling af kolonidannende enheder (CFU), sikrer EM-ekstraktion med UIP400MTP, at reagenser får uhindret adgang til celler indlejret i biofilmen. Tilsvarende drager proteomiske og metabolomiske analyser, såsom UPLC-Q-TOF-MS, fordel af isolering af proteiner, lipider og metabolitter med højt udbytte. UIP400MTP understøtter også præcis testning af følsomhed over for antimikrobielle midler, hvilket muliggør nøjagtig bestemmelse af biofilmens MIC- og MBEC-værdier. Desuden understøtter den effektive ekstraktion med UIP400MTP analyser af enzymaktivitet, kvantificering af komponenter og strukturelle undersøgelser og giver værdifuld indsigt i ekstracellulære matricers rolle i biofilmens arkitektur, adhæsion og resistensmekanismer.
Denne reproducerbare ekstraktionsmetode med høj prøvekapacitet optimerer EM-præparationen og sikrer overlegne resultater i en række biofilmrelaterede analyser.
EM-ekstraktion med høj prøvekapacitet med sonikatoren UIP400MTP til 96-brøndsplader
Litteratur / referencer
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
Ofte stillede spørgsmål
Hvad er formålet med den ekstracellulære matrix?
Den ekstracellulære matrix (EM eller ECM) giver strukturel støtte til celler, regulerer intercellulær kommunikation og påvirker cellernes adfærd.
Hvilken funktion har den ekstracellulære matrix i væv?
I væv fungerer EM som et stillads, der opretholder strukturel integritet, fremmer mekanisk modstandsdygtighed og formidler biokemisk signalering for at regulere processer såsom vækst, differentiering og reparation.
Hvad er adhæsion til den ekstracellulære matrix?
Adhæsion til den ekstracellulære matrix betegner interaktionen mellem celler og EM, som primært formidles af adhæsionsmolekyler på celleoverfladen såsom integriner og muliggør celleforankring, signaltransduktion og migration.
Hvorfor ekstraheres den ekstracellulære matrix til analyser?
EM ekstraheres til analyser for at undersøge dens sammensætning, forstå dens rolle i cellulære processer og undersøge dens indflydelse på sygdomsudvikling, herunder biofilmdannelse og antimikrobiel resistens.
Hvilke almindelige ekstraktionsprocedurer bruges til ekstracellulær matrix?
Almindelige ekstraktionsprocedurer omfatter fysiske metoder såsom sonikering, kemiske behandlinger med detergenter eller salte og enzymatisk nedbrydning for at isolere EM-komponenter, samtidig med at deres integritet bevares.
Hvad er decellulariseret ekstracellulær matrix (dECM)?
Decellulariseret ekstracellulær matrix (dECM) opnås ved at fjerne cellulært materiale fra væv, samtidig med at EM’s strukturelle og biokemiske egenskaber bevares. Den bruges inden for regenerativ medicin som et stillads til vævsteknologi og cellekultur.
Læs mere om ultralydsassisteret decellularisering af ekstracellulær matrix!
Hielscher Ultrasonics fremstiller højtydende ultralydshomogenisatorer fra laboratoriestørrelse til industriel størrelse.

