Erstat celleskrabning med ultralydsapparatet UIP400MTP med høj prøvekapacitet
Løsrivelse og ekstraktion af adhærente cellelinjer fra multibrøndsplader til multiomik-analyse er en daglig opgave i laboratorier. Celleløsrivelse med høj prøvekapacitet ved hjælp af ultralydsapparatet UIP400MTP til multibrøndsplader erstatter manuel celleskrabning og giver højere udbytter af RNA, samlede lipider og samlede polære metabolitter. En ny metode integrerer ultralydsapparatet Hielscher UIP400MTP med arbejdsstationen Beckman Coulter i7 til væskehåndtering og muliggør reproducerbar og effektiv behandling af celler med høj prøvekapacitet til ekstraktion af RNA, metabolitter og lipider. Den præsenterede metode overgår traditionelle metoder til manuel celleskrabning ved at opnå bedre reproducerbarhed og højere udbytte på tværs af forskellige celletyper og forsøgsbetingelser.
Effektivisér celleløsrivelse med ultralydsapparatet UIP400MTP til mikroplader
Adhærente cellekultursystemer spiller en afgørende rolle i toksikologisk og biomedicinsk forskning. I denne sammenhæng tog Cruchley-Fuge et al. (2024) fat på en væsentlig udfordring i projektet PrecisionTox, som fokuserede på at udnytte omik-teknologier til vurdering af kemiske farer. Projektet sigtede mod analyse med høj prøvekapacitet af tusindvis af prøver behandlet med forskellige kemikalier. For at imødekomme dette behov udviklede forskerne en automatiseret arbejdsgang, der kombinerer ultralydsapparatet UIP400MTP med etablerede tofasede ekstraktionsprotokoller til analyse ved væskekromatografi-massespektrometri (LC-MS). Deres undersøgelse evaluerer effektiviteten af ultralydsapparatet UIP400MTP til multibrøndsplader ved løsrivelse af adhærente celler sammenlignet med manuel skrabning og andre traditionelle metoder.
Effektivisering af multiomik: Automatiseret ekstraktion af adhærente celler med UIP400MTP
Laura Cruchley-Fuges forskerhold fra University of Birmingham anvendte tre humane cellelinjer: HepG2 (leverkræftceller), HepaRG (differentierede hepatocytlignende celler) og H295R (binyrekræftceller). Disse celler blev dyrket i plader med 24 og 96 brønde og eksponeret for testkemikalier såsom aflatoksin B1 og forskolin.
Forsøgsdesign:
- Fase 1: Optimering af effektindstillingerne for ultralydsapparatet UIP400MTP og sammenligning med manuel celleskrabning og ultralydsvandbade. Celler af typen HepG2 blev anvendt til at evaluere genvindingen af RNA, metabolitter og lipider.
- Fase 2: Integration af UIP400MTP i en tofaset ekstraktionsarbejdsgang ved hjælp af Beckman Coulter i7-systemet. Valideringen blev udført med HepaRG- og H295R-celler.
Ekstraktionsarbejdsgang: Arbejdsgangen omfattede kemikalieeksponering i multibrøndsplader, celleløsrivelse ved hjælp af UIP400MTP og tofaset ekstraktion med Bligh & Dyer (B&D)-metoden. Analyse af lipofile og polære forbindelser med LC-MS blev udført med en Thermo Scientific Orbitrap Exploris 120. B&D-metoden, en guldstandard for lipidkvantificering, omfatter en ekstraktion i to trin med methanol, chloroform og vand, efterfulgt af lipidkvantificering i chloroformfasen.
Ultralydsapparatet UIP400MTP til mikroplader letter løsrivelsen af adhærente cellelinjer fra multibrøndsplader og petriskåle
Resultater:
- Fase 1: Optimale sonikeringsbetingelser blev identificeret ved 60% effekt.
UIP400MTP gav den højeste genvinding af RNA med enestående reproducerbarhed sammenlignet med manuel skrabning og ultralydsbade.
Genvindingen af polære metabolitter var ensartet på tværs af metoderne, mens genvindingen af lipider var markant bedre med UIP400MTP. - Fase 2: Validering med HepaRG- og H295R-celler viste høj reproducerbarhed i lipidomik- og metabolomikdata, hvilket fremgik af tæt grupperede PCA-scorer.
Behandlinger med aflatoksin B1 og forskolin blev effektivt skelnet fra kontrollerne, hvilket understreger metodens følsomhed og pålidelighed.
Ultralydsapparatet UIP400MTP til mikroplader til celleløsrivelse med høj prøvekapacitet
“Sonikeringsapparatet Hielscher UIP400MTP tilbyder en reproducerbar alternativ tilgang af høj kvalitet til manuel celleskrabning som “guldstandard” og giver højere udbytter af RNA, samlede lipider og samlede polære metabolitter.” (Cruchley-Fuge et al., 2024)
Cruchley-Fuge et al. fremhæver fordelene ved ultralydsapparatet UIP400MTP til behandling af adhærente celler. Ved at erstatte manuel skrabning forbedrer denne metode reproducerbarhed, prøvekapacitet og udbytte, hvilket gør den til et uvurderligt værktøj til omfattende undersøgelser som PrecisionTox. Integrationen af UIP400MTP i automatiserede arbejdsgange reducerer ikke blot variationen, men effektiviserer også arbejdskrævende processer og muliggør indsamling af multiomik-data af høj kvalitet.
Arbejdet udført af Cruchley-Fuge et al. (2024) letter og effektiviserer behandlingen af adhærente cellekulturer til multiomik-analyse. Integrationen af ultralydsapparatet UIP400MTP i automatiserede arbejdsgange sikrer ensartet og effektiv prøveforberedelse, hvilket gør det ideelt egnet til toksikologisk forskning med høj prøvekapacitet.
Design, fremstilling og rådgivning – kvalitet fremstillet i Tyskland
Hielschers ultralydsapparater er velkendte for deres højeste kvalitets- og designstandarder. Robusthed og nem betjening gør det muligt at integrere vores ultralydsapparater problemfrit i industrianlæg. Hielschers ultralydsapparater håndterer uden problemer barske forhold og krævende miljøer.
Hielscher Ultrasonics er en ISO-certificeret virksomhed og lægger særlig vægt på højtydende ultralydsapparater med den nyeste teknologi og brugervenlighed. Hielschers ultralydsapparater er naturligvis CE-kompatible og opfylder kravene i UL, CSA og RoHs.
Litteratur / referencer
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
Ofte stillede spørgsmål
Hvad er celleløsrivelse?
Celleløsrivelse i forskning betegner processen med at adskille adhærente celler fra overfladen af en dyrkningsbeholder eller et substrat. Dette gøres typisk for at høste celler til efterfølgende anvendelser såsom analyse, subkultivering eller kryopræservering. Løsrivelse kan opnås ved hjælp af enzymatiske metoder (f.eks. trypsin), kemiske midler (f.eks. EDTA), mekaniske metoder (f.eks. skrabning) eller fysiske teknikker som sonikering, afhængigt af celletypen og forskningskravene.
Hvordan løsriver man adhærente celler?
Løsrivelse af adhærente celler ved hjælp af sonikering indebærer anvendelse af fokuserede ultralydsbølger til at bryde adhæsionen mellem cellerne og overfladen i et kontrolleret miljø. Ultralydsapparatet UIP400MTP til mikroplader opnår specifikt dette ved at generere lokaliserede mekaniske vibrationer, som bryder bindingerne mellem cellerne og dyrkningsoverfladen. De vigtigste trin omfatter:
- Forberedelse: Celler dyrkes i multibrøndsplader og kan eksponeres for specifikke kemikalier som en del af forsøgsdesignet.
- Sonikering: Ultralydsapparatet UIP400MTP programmeres med optimerede indstillinger (f.eks. 60% effekt) for at sikre effektiv løsrivelse uden at beskadige cellerne eller kompromittere biomolekylernes integritet.
- Temperaturstyring: Apparatet opretholder en stabil temperatur for at forhindre varmeinduceret nedbrydning af celler eller molekyler under processen.
- Efter løsrivelsen: Løsrevne celler behandles efter efterfølgende ekstraktionsprotokoller, såsom den tofasede Bligh & Dyer-metode, til genvinding af RNA, lipider og metabolitter.
Denne metode er bedre end manuel skrabning på grund af dens automatisering, reproducerbarhed og evne til effektivt at behandle prøver med høj prøvekapacitet.
Hvad er celleløsrivelse uden beskadigelse?
Celleløsrivelse uden beskadigelse betegner processen med at adskille adhærente celler fra deres substrat uden at kompromittere cellernes levedygtighed, integritet eller funktionalitet. Dette opnås ved hjælp af skånsomme metoder såsom kontrolleret sonikering eller enzymfrie opløsninger.
Det er afgørende at undgå ødelæggelse af cellerne for at bevare deres strukturelle og molekylære egenskaber, som er væsentlige for nøjagtige efterfølgende anvendelser såsom multiomik-analyse, funktionelle assays eller terapeutisk brug. Beskadigede celler kan frigive intracellulært indhold, hvilket potentielt kan forstyrre forsøgsresultaterne eller kompromittere prøvekvaliteten.
Hvad er fordelen ved enzymfri celleløsrivelse?
Enzymfri celleløsrivelse giver flere fordele, herunder bevarelse af celleoverfladeproteiner og receptorer, opretholdelse af cellernes levedygtighed og undgåelse af potentiel enzymatisk beskadigelse af biomolekyler. Denne tilgang er særlig fordelagtig til følsomme efterfølgende anvendelser såsom flowcytometri, proteomik eller funktionelle assays, hvor enzymatiske ændringer kan kompromittere datakvaliteten eller forsøgsresultaterne. Desuden er enzymfrie metoder ofte mere reproducerbare og kan tilpasses arbejdsgange med høj prøvekapacitet.
Hielscher Ultrasonics fremstiller højtydende ultralydshomogenisatorer fra laboratoriestørrelse til industristørrelse.

