Ultrazvuková lyze pro western blotting
- Western blot je analytický postup pro detekci specifických proteinů ve vzorku tkáňového homogenátu nebo buněčného extraktu.
- Pro provedení western blotu nebo měření enzymové aktivity vyžaduje mnoho testů přístup k materiálům (např. proteinům, DNA, subcelulárním fragmentům) uzavřeným v buňce.
- Sonikace je spolehlivá a snadno ovladatelná metoda pro řízenou dezintegraci buněk a lyzi.
Ultrazvuková dezintegrace buněk
Extrakce proteinů z tkání a kultivovaných buněk je prvním krokem mnoha biologických, biochemických a analytických technik (PAGE, western blotting, ELISA, hmotnostní spektrometrie atd.) nebo purifikace proteinů. Pro dosažení vysokého výtěžku proteinů musí být buněčný materiál a tkáň účinně dezintegrovány/ lyzovány. Ať jde o rostlinné buňky, nebo živočišnou tkáň, sonikace je metodou, jak snadno a rychle připravit váš buněčný lyzát.
Výhody sonikace
- rychlá a účinná
- snadná obsluha
- vysoký výtěžek proteinů
- reprodukovatelná/ opakovatelná
- přesně řízená
- škálovatelná
Sonikátor VialTweeter pro ultrazvukovou přípravu vzorků, jako je dezintegrace buněk a izolace proteinů
Protokol imunoprecipitace pro western imunoblotting
A. Reagencie
K přípravě roztoků použijte purifikovanou vodu, např. Milli-Q.
- 1X fosfátem pufrovaný fyziologický roztok (PBS)
- 1X lyzační pufr pro buňky: 20 mM Tris (pH 7,5), 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, 1 mM EGTA, 1% Triton X-100, 2,5 mM pyrofosforečnan sodný, 1 mM β-glycerofosfát, 1 mM Na3VO4, 1 μg/ml leupeptin
Důležité: Bezprostředně před použitím přidejte 1 mM PMSF. - 15 μl proteinu A+15 μl proteinu G je pro IP dostačující, ale může to záviset na vaší primární protilátce a objemu vzorku. Můžete také použít předem smíchanou agarózu s proteinem A/ G (např. protein A pro pull-down králičího IgG a protein G pro pull-down myšího IgG)
- 3X SDS vzorkový pufr: 187,5 mM Tris-HCl (pH 6,8 při 25°C), 6% w/v SDS, 30% glycerol, 150 mM DTT, 0,03% w/v bromfenolová modř
B. Příprava buněčných lyzátů
- Proveďte sklizeň buněk. Pro sklizeň buněk za nedenaturujících podmínek odstraňte médium a buňky jednou opláchněte ledově studeným PBS.
- Odstraňte PBS, na každou misku (10 cm) přidejte 0,5 ml ledově studeného 1X lyzačního pufru pro buňky a misky inkubujte 5 minut na ledu.
- Seškrábněte buňky z misek a přeneste je do mikrocentrifugačních zkumavek. Uchovávejte na ledu.
- Sonikujte dvakrát po 10 sekundách v ledově studeném imunoprecipitačním pufru (IP pufr: 50 mM Tris-HCl [pH 7,4], 150 mM NaCl, 5 mM EDTA, 0,1% NP-40 a směs inhibitorů proteáz). Pro sonikaci jsou VialTweeter nebo sondový ultrasonikátor, jako je UP100H nebo UP200Ht, nejvhodnější.
- Lyzáty centrifugujte při 15 000 g po dobu 10 minut při 4°C.
- Supernatant přeneste do nové zkumavky. (V případě potřeby lze lyzát uchovávat při –80°C.)
- Do supernatantu přidejte primární protilátku. Supernatant s primární protilátkou se inkubuje 1 h při 4°C za mírného míchání. Primární protilátka se obvykle přidává v množství 10x koncentrovanějším, než jaké se používá pro western blotting. (Můžete začít s 1μg na 100μL.)
- Supernatant se poté dále inkubuje se směsí stejných množství agarózy s proteinem A (Invitrogen) a agarózy s proteinem G po dobu další 1 h.
- Agarózové pelety třikrát promyjte IP pufrem. Poté vázané proteiny extrahujte nanášecím pufrem pro SDS-PAGE zahřátím na 95°C po dobu 5 minut.
C. Imunoprecipitace
- Odeberte 200 μl buněčného lyzátu a přidejte primární protilátku. Inkubujte za mírného kývání přes noc při 4°C.
- Přidejte agarózové kuličky s proteinem A nebo G (20 μl 50% suspenze kuliček). Inkubujte za mírného kývání 1–3 hodiny při 4°C.
- Mikrocentrifugujte 30 sekund při 4°C. Peletu pětkrát promyjte 500 µl 1X lyzačního pufru pro buňky. Během promývání uchovávejte na ledu.
- Peletu resuspendujte ve 20 μl 3X SDS vzorkového pufru. Promíchejte na vortexu a poté 30 sekund mikrocentrifugujte.
- Vzorek zahřejte na 95–100°C po dobu 2–5 minut a 1 minutu mikrocentrifugujte při 14 000 X g.
- Naneste vzorek (15–30 μl) na gel pro SDS-PAGE (12–15%).
- Vzorek analyzujte western blottingem.
Analýza western blot se sonikátorem UP50H
Následující protokol se sondovým sonikátorem UP50H byl použit ve studii Kriebisch et al. (2011):
Celkový protein byl izolován z buněk MC3T3-E1 ošetřených 1,25(OH)2D3 (10−8 M) nebo vehikulem. Buňky byly lyzovány pufrem obsahujícím 50 mM Tris HCl, pH 8 (Sigma-Aldrich); 150 mM NaCl (Fisher Scientific); 0,1% dodecylsulfát sodný (SDS) (Fisher Scientific); 1% IGEPAL CA-630 (Sigma-Aldrich) a 0,5% deoxycholát sodný (Merck). Buněčný lyzát byl sonikován 2 × 10 s při cyklu 1 a amplitudě 80 pomocí ultrazvukového procesoru UP50H (Hielscher, Ultrasound Technology, Teltow, Německo). Poté byl materiál centrifugován 10 min při 14 000 rpm a supernatant byl použit pro western blotting. Dvacet pět μg proteinu bylo povařeno ve vzorkovém pufru a redukčním činidle (Invitrogen), následně rozděleno pomocí SDS-PAGE na 4–12% polyakrylamidových gelech (Invitrogen) a přeneseno na nitrocelulózovou membránu (GE health care). Membrána byla blokována 1 h v TBS (10 mM Tris-HCl; pH 7,6; 150 mM NaCl) obsahujícím 1% kasein (Sigma-Aldrich) a 1% Tris (1 M). Po blokování byla membrána inkubována za mírného míchání přes noc při 4°C s primární protilátkou (králičí anti-lidská CBS 1/500, vyvinutá v laboratoři Prof. R. Banerjee, Ann Arbor, MI, USA). Inkubace se sekundární protilátkou konjugovanou s křenovou peroxidázou (HPR) (Dako) probíhala 1 h při pokojové teplotě. Všechny bloty byly vyvolány pomocí zesílené chemiluminiscence (Perkin Elmer).
Následující tabulka vám poskytne orientační představu o přibližné zpracovatelské kapacitě našich laboratorních ultrasonikátorů:
| Doporučená zařízení | Objem vsádky | Průtok |
|---|---|---|
| Sonikátor pro 96jamkové destičky UIP400MTP | vícejamkové / mikrotitrační destičky | n.a. |
| Ultrazvukový CupHorn | CupHorn pro vialky nebo kádinku | n.a. |
| GDmini2 | ultrazvukový mikroprůtokový reaktor | n.a. |
| VialTweeter | 0,5 až 1,5mL | n.a. |
| UP100H | 1 až 500mL | 10 až 200mL/min |
| UP200Ht, UP200St | 10 až 1000mL | 20 až 200mL/min |
| UP400St | 10 až 2000mL | 20 až 400mL/min |
| Ultrazvukový sítový třasač | n.a. | n.a. |
Kontaktujte nás! / Zeptejte se nás!
Destičkový sonikátor UIP400MTP pro vysokokapacitní sonikaci 96jamkových destiček
O western blottingu
Bloty jsou analytické postupy, při nichž jsou DNA, RNA a proteiny přeneseny na nosič, aby mohly být rozděleny.
Southern blot se používá k detekci DNA, Northern blot k detekci RNA a Western blot k detekci proteinů.
Western blotting se také nazývá proteinový imunoblotting, protože se ke specifické detekci antigenu používá jeho protilátka. Western blotting je jednou z nejdůležitějších analytických metod pro detekci specifických proteinů ve vzorku. Při Western blotu jsou proteiny imobilizovány na membránách, aby mohly být detekovány pomocí monoklonálních nebo polyklonálních protilátek.
Pomocí elektroforézy v SDS-polyakrylamidovém gelu (SDS-PAGE) se nativní proteiny rozdělují podle 3-D struktury nebo denaturované proteiny podle délky polypeptidu. Proteiny jsou poté přeneseny na membránu (typicky nitrocelulózovou nebo PVDF), kde jsou barveny protilátkami specifickými pro cílový protein. Krok gelové elektroforézy je do analýzy western blot zařazen k vyřešení problému zkřížené reaktivity protilátek.
Poté jsou rozdělené proteiny blotovány na matrici (většinou na nitrocelulózovou nebo PVDF membránu), kde jsou barveny protilátkami. Protilátky fungují jako sonda a jsou vybírány specificky pro cílový protein. Analýza umístění a intenzity specifické reakce odhaluje podrobnosti exprese cílových proteinů v daném vzorku. Western blotting dokáže detekovat cílový protein v množství pouhých 1ng díky vysokému rozlišení gelové elektroforézy a silné specifičnosti a vysoké citlivosti imunoanalýzy. Metoda Western blot se používá v molekulární biologii, biochemii, imunogenetice a dalších oblastech molekulárního výzkumu.
Mezi další příbuzné techniky patří dot blot analýza, imunohistochemie a imunocytochemie, při nichž se protilátky používají k detekci proteinů v tkáních a buňkách imunobarvením, a enzymově vázaný imunosorbentní test (ELISA).
Literatura / Reference
- Koch RJ, Barrette AM, Stern AD, et al. Validating Antibodies for Quantitative Western Blot Measurements with Microwestern Array. Sci Rep. 2018;8(1):11329. Published 2018 Jul 27. doi:10.1038/s41598-018-29436-0
- Carsten Kriebitzsch, Lieve Verlinden, Guy Eelen, Natasja M. van Schoor, Karin Swart, Paul Lips, Mark B. Meyer, J Wesley Pike, Steven Boonen, Carsten Carlberg, Victor Vitvitsky, Roger Bouillon, Ruma Banerjee, and Annemieke Verstuyf (2011): 1,25-dihydroxyvitamin D3 influences cellular homocysteine levels in murine pre-osteoblastic MC3T3-E1 cells by direct regulation of cystathionine β-synthase. J Bone Miner Res. 26(12), 2011. 2991–3000.
- Tahrin Mahmood, Ping-Chang Yang (2012): Western Blot: Technique, Theory, and Trouble Shooting. North American Journal of Medical Sciences. 4(9), 2012. 429-434.
Sonikátor VialTweeter pro simultánní přípravu vzorků ve více vialkách
