การสลายเซลล์ E. Coli ด้วยอัลตราโซนิก
- แบคทีเรีย E. coli เป็นแบคทีเรียที่ใช้กันมากที่สุดในจุลชีววิทยาและเทคโนโลยีชีวภาพ
- เครื่องทำลายเซลล์ด้วยอัลตราโซนิกให้ผลลัพธ์ที่เชื่อถือได้และทำซ้ำได้ในการสลายเซลล์ E. coli
- คาวิเทชันและแรงเฉือนที่รุนแรงแต่ควบคุมได้อย่างแม่นยำทำให้เซลล์ถูกทำลายอย่างสมบูรณ์และให้ผลได้จากการสกัดสูง (เช่น โปรตีน, DNA)
เหตุใดการทำลายเซลล์ E. coli ด้วยอัลตราโซนิกจึงเป็นวิธีที่ได้รับความนิยม?
เครื่องโฮโมจีไนเซอร์อัลตราโซนิกหรือเครื่องอัลตราโซนิกชนิดโพรบมีข้อดีหลายประการสำหรับการสลายเซลล์ E. coli เนื่องจากอัลตราซาวนด์ความเข้มสูงทำลายผนังเซลล์และเยื่อหุ้มเซลล์ได้อย่างมีประสิทธิภาพ เครื่องอัลตราโซนิกชนิดโพรบใช้กันอย่างแพร่หลายในการสลายเซลล์ E. coli ด้วยเหตุผลต่อไปนี้:
การสกัดโปรตีนจากเซลล์ E.coli ทำได้อย่างมีประสิทธิภาพด้วย โพรบอัลตราโซนิก UP200St
เครื่องอัลตราโซนิกชนิดโพรบมีข้อดีหลายประการสำหรับการสลายเซลล์ E. coli การควบคุมพารามิเตอร์ของกระบวนการอัลตราโซนิกที่เชื่อถือได้และแม่นยำช่วยให้ปรับพารามิเตอร์การทำงาน เช่น กำลัง ระยะเวลา และการจัดการตัวอย่าง ให้เหมาะสมเพื่อให้ได้ผลลัพธ์ที่ต้องการ
การทำลายเซลล์ด้วยคาวิเทชันจากอัลตราโซนิก
เครื่องโฮโมจีไนเซอร์อัลตราโซนิกชนิดโพรบทำงานประมาณ 20,000 รอบต่อวินาที (ที่ 20kHz) และทำให้เกิดคาวิเทชันในของเหลวหรือสารแขวนลอย คาวิเทชันเชิงเสียงสร้างบริเวณขนาดจุลภาคที่มีความดันคล้ายสุญญากาศและอุณหภูมิสูง ซึ่งฉีกเซลล์ให้แตกออก แม้อุณหภูมิอาจสูงถึงหลายพันองศาเซลเซียส แต่บริเวณคาวิเทชันมีปริมาตรเล็กมากจนไม่ทำให้กระบวนการร้อนขึ้นอย่างมีนัยสำคัญ คาวิเทชันเชิงเสียงและแรงเฉือนที่เกิดจากอัลตราซาวนด์ทำให้เยื่อหุ้มเซลล์แบคทีเรีย เช่น E.coli เป็นรูหรือแตกออก เครื่องอัลตราโซนิกของ Hielscher ช่วยให้ควบคุมพารามิเตอร์ของกระบวนการ เช่น ความเข้มอัลตราโซนิก แอมพลิจูด พลังงานที่ป้อน และอุณหภูมิ ได้อย่างแม่นยำ จึงสามารถปรับกระบวนการสลายเซลล์ด้วยอัลตราโซนิกให้เหมาะสมที่สุดกับชนิดเซลล์ เซลล์เพาะเลี้ยง และเป้าหมายของกระบวนการ
- ควบคุมการสลายเซลล์ได้อย่างแม่นยำ (ความเข้ม แอมพลิจูด อุณหภูมิ)
- ผลลัพธ์ที่เชื่อถือได้และทำซ้ำได้
- ปรับให้เหมาะสมที่สุดกับตัวอย่างเฉพาะ
- ควบคุมอุณหภูมิ
- สำหรับตัวอย่างขนาดเล็กมากจนถึงขนาดใหญ่มาก (µL ถึงลิตร)
- ดำเนินการด้วยกลไกทางกลล้วน ๆ
- ใช้งานง่ายและปลอดภัย
- ขยายขนาดแบบเชิงเส้นจากห้องปฏิบัติการสู่การผลิต
VialTweeter สำหรับการสลายเซลล์ด้วยอัลตราโซนิก
เครื่องโฮโมจีไนเซอร์อัลตราโซนิกเทียบกับเทคนิคการสลายเซลล์อื่น ๆ
แม้การสลายเซลล์ด้วยสารเคมีและเอนไซม์อาจมีปัญหา – เนื่องจากการสลายเซลล์ด้วยสารเคมีอาจเปลี่ยนโครงสร้างโปรตีนและก่อให้เกิดปัญหาในการทำให้บริสุทธิ์ ส่วนการสลายเซลล์ด้วยเอนไซม์ต้องใช้เวลาบ่มนานและไม่สามารถให้ผลซ้ำได้ – การทำลายเซลล์ด้วยอัลตราโซนิกเป็นวิธีการทำลายเซลล์ที่ซับซ้อนและรวดเร็ว
การสลายเซลล์ด้วยอัลตราโซนิกอาศัยแรงทางกลเท่านั้น ไม่มีการเติมสารเคมี การใช้อัลตราโซนิกทำลายผนังเซลล์ด้วยแรงเฉือน การสลายเซลล์ด้วยสารเคมีอาจเปลี่ยนโครงสร้างโปรตีนและก่อให้เกิดปัญหาในการทำให้บริสุทธิ์ การทำลายเซลล์ด้วยเอนไซม์ต้องใช้เวลาบ่มนานและไม่สามารถให้ผลซ้ำได้ การทำลายเซลล์แบคทีเรีย E.coli ด้วยอัลตราโซนิกนั้นรวดเร็ว เรียบง่าย เชื่อถือได้ และทำซ้ำได้ ด้วยเหตุนี้ เครื่องอัลตราโซนิกของ Hielscher จึงใช้ในห้องปฏิบัติการชีววิทยาและชีวเคมีทั่วโลกสำหรับการเตรียมตัวอย่าง งานก่อนการวิเคราะห์ การวินิจฉัยภายนอกร่างกาย และการทดสอบที่หลากหลาย
คำแนะนำทั่วไปสำหรับการสลายเซลล์ด้วยอัลตราโซนิก
การใช้อัลตราโซนิกเป็นเทคนิคที่ได้รับความนิยมมากที่สุดในการสลายเซลล์ในสารแขวนลอยปริมาณน้อยมาก ปานกลาง และมาก – ตั้งแต่พิโคลิตรจนถึง 100L/hr (โดยใช้โฟลว์เซลล์อัลตราโซนิก) เซลล์ถูกสลายด้วยแรงเฉือนของของเหลวและคาวิเทชัน DNA ก็ถูกเฉือนระหว่างการใช้อัลตราโซนิกด้วย จึงไม่จำเป็นต้องเติม DNase ลงในสารแขวนลอยเซลล์
การควบคุมอุณหภูมิระหว่างการสลายเซลล์ E.coli ด้วยอัลตราโซนิก
การทำให้ตัวอย่างเย็นล่วงหน้าและวางตัวอย่างบนน้ำแข็งระหว่างการใช้อัลตราโซนิกช่วยป้องกันการเสื่อมสภาพของตัวอย่างจากความร้อนได้อย่างง่ายดาย
ตามหลักแล้ว ควรรักษาตัวอย่างให้เย็นจัดระดับน้ำแข็งระหว่างการสลายเซลล์ แต่สำหรับตัวอย่างส่วนใหญ่ การรักษาอุณหภูมิไม่ให้สูงกว่าอุณหภูมิของแหล่งเพาะเลี้ยงหรือแหล่งเนื้อเยื่อก็เพียงพอ ดังนั้น จึงแนะนำให้วางสารแขวนลอยบนน้ำแข็งและใช้อัลตราโซนิกเป็นพัลส์สั้น ๆ หลายครั้ง ครั้งละ 5–10 sec โดยหยุดพัก 10–30 sec ระหว่างช่วงพัก ความร้อนสามารถระบายออกเพื่อให้อุณหภูมิกลับมาต่ำอีกครั้ง สำหรับตัวอย่างเซลล์ปริมาณมากขึ้น มีเครื่องปฏิกรณ์โฟลว์เซลล์หลายแบบที่ติดตั้งแจ็กเก็ตหล่อเย็นให้เลือกใช้
อ่านเคล็ดลับและคำแนะนำอย่างละเอียดสำหรับการสลายเซลล์ด้วยอัลตราโซนิกให้สำเร็จได้ที่นี่!
วิธีปฏิบัติสำหรับการเตรียมไลเสตของ E. Coli ด้วยอัลตราโซนิก
นักวิจัยใช้เครื่องโฮโมจีไนเซอร์อัลตราโซนิกของ Hielscher ในการทำลายเซลล์ E.coli ด้านล่างนี้เป็นวิธีปฏิบัติหลายแบบที่ผ่านการทดสอบและพิสูจน์แล้วสำหรับการสลายเซลล์ E.coli โดยใช้เครื่องโฮโมจีไนเซอร์อัลตราโซนิกของ Hielscher ในงานที่เกี่ยวข้องกับ E. coli หลากหลายประเภท
การเจริญของเซลล์ การเชื่อมขวาง และการเตรียมสารสกัดจากเซลล์ E. coli ด้วยอัลตราโซนิก
สำหรับ ChIP-Chip ของ SeqA และ RNA polymerase เพาะเลี้ยง E. coli MG1655 หรือ MG1655 ΔseqA ที่ 37°C จนได้ค่า OD600 ประมาณ 0.15 ในอาหารเลี้ยงเชื้อ LB ปริมาตร 50 ml (+ glucose 0.2%) ก่อนเติม formaldehyde ปริมาตร 27 μl (37%) ต่ออาหารเลี้ยงเชื้อหนึ่ง ml (ความเข้มข้นสุดท้าย 1%) ทำการเชื่อมขวางโดยเขย่าช้า ๆ (100 rpm) ที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 20 min แล้วหยุดปฏิกิริยาด้วย glycine ปริมาตร 10 ml ความเข้มข้น 2.5 M (ความเข้มข้นสุดท้าย 0.5 M) สำหรับการทดลองฮีตช็อก เพาะเลี้ยง E. coli MG1655 ในอาหารเลี้ยงเชื้อ LB ปริมาตร 65 ml ที่ 30°C จนได้ค่า OD600 ประมาณ 0.3 จากนั้นย้ายเชื้อเพาะเลี้ยงปริมาตร 30 ml ไปยังขวดที่อุ่นไว้ล่วงหน้าที่ 43°C และเก็บส่วนที่เหลือไว้ที่ 30°C ทำการเชื่อมขวางและหยุดปฏิกิริยาตามที่อธิบายข้างต้น ยกเว้นการเก็บเซลล์ไว้ที่ 30 หรือ 43°C เป็นเวลา 5 min ก่อนเขย่าช้า ๆ ต่อที่อุณหภูมิห้อง เก็บเซลล์ด้วยการปั่นเหวี่ยงและล้างสองครั้งด้วย TBS เย็น (pH7.5) หลังจากแขวนลอยเซลล์ใหม่ในบัฟเฟอร์สลายเซลล์ปริมาตร 1 ml (10 mM Tris (pH 8.0), 20% sucrose, 50 mM NaCl, 10 mM EDTA, 10 mg/ml lysozyme) และบ่มที่ 37°C เป็นเวลา 30 min แล้วเติมบัฟเฟอร์ IP ปริมาตร 4 ml ใช้อัลตราโซนิกกับเซลล์บนน้ำแข็ง 12 ครั้ง ครั้งละ 30 sec โดยหยุดพักครั้งละ 30 sec ด้วยเครื่องประมวลผลอัลตราโซนิก Hielscher UP400St ที่ตั้งค่ากำลัง 100% หลังปั่นเหวี่ยงเป็นเวลา 10 min ที่ 9000 g แบ่งส่วนใสเหนือตะกอนเป็นส่วนละ 800 μl แล้วเก็บไว้ที่ -20°C (Waldminghaus 2010)
การผลิตเอนไซม์ในปริมาณมากและการทำให้บริสุทธิ์ด้วยโพรบอัลตราโซนิก
สำหรับการผลิตโปรตีนที่ติดแท็ก decahistidine (His10) ในปริมาณมาก ทรานส์ฟอร์ม E. coli BL21(DE3) ด้วยคอนสตรักต์ pET19b เก็บเชื้อเพาะเลี้ยงเริ่มต้นที่เพาะข้ามคืนด้วยการปั่นเหวี่ยง และใช้ 1% เพื่อเริ่มเพาะเลี้ยงเชื้อสำหรับการแสดงออกของโปรตีน เพาะเลี้ยงเซลล์ที่มี pET19mgtB ที่ 22°C จนมีค่าความหนาแน่นเชิงแสงที่ 600 nm (OD600) เท่ากับ 0.7 ย้ายเชื้อเพาะเลี้ยงไปที่ 17°C และเหนี่ยวนำด้วย IPTG 100 μM หลังผ่านไป 16 h เก็บเชื้อเพาะเลี้ยงด้วยการปั่นเหวี่ยงที่ 7,500 × g ที่ 4°C แขวนลอยเซลล์ใหม่ในสารละลายน้ำเกลือบัฟเฟอร์ฟอสเฟต (PBS) 50 mM ที่มี NaCl 0.3 M ที่ pH 7.4 และทำลายเซลล์ด้วยอัลตราโซนิกโดยใช้โซโนโทรดปลายไมโคร S2 กับเครื่องอัลตราโซนิก Hielscher UP200St ที่ค่ารอบ 0.5 และแอมพลิจูด 75%
เหนี่ยวนำการผลิต GtfC ที่ติดแท็ก decahistidine ในปริมาณมากที่ 37°C เมื่อค่า OD600 เท่ากับ 0.6 ด้วย 100 μM IPTG จากนั้นบ่มเซลล์เป็นเวลา 4 h เก็บเซลล์ และสลายเซลล์ตามวิธีที่ระบุข้างต้นสำหรับ MgtB
ปั่นเหวี่ยงสารสกัดเซลล์ดิบที่ 15,000 × g และ 4°C เพื่อให้เศษเซลล์ตกตะกอน นำสารสกัดที่แยกตะกอนออกแล้วขึ้นคอลัมน์ HisTrap FF Crude ขนาด 1-ml โดยใช้ระบบ ÄKTAprime Plus ทำให้เอนไซม์บริสุทธิ์ตามวิธีปฏิบัติของผู้ผลิตสำหรับการชะโปรตีนที่ติดแท็ก His แบบเกรเดียนต์ ไดอะไลซ์สารละลายโปรตีนที่ชะออกมาสองครั้งกับสารละลายปริมาตร 1,000 เท่า ซึ่งประกอบด้วย 50 mM PBS ที่ pH 7.4 และมี 0.3 M NaCl ที่ 4°C วิเคราะห์การทำให้บริสุทธิ์ด้วย 12% SDS-PAGE หาความเข้มข้นของโปรตีนด้วยวิธี Bradford โดยใช้ Roti-Quant (Rabausch et al. 2013)
การสกัดโปรตีนจากแบคทีเรีย E. coli ด้วยอัลตราโซนิก
เชื่อมโปรตีนเหยื่อที่สนใจ (ในกรณีนี้คือ MTV1 ของ Arabidopsis thaliana) เข้ากับแท็ก GST และให้แสดงออกในเซลล์ Escherichia coli (E. coli) BL21
- นำตะกอน GST-MTV1 และ GST อย่างละหนึ่งก้อน (เทียบเท่าเชื้อแบคทีเรียเพาะเลี้ยงปริมาตร 50 ml) และแขวนลอยแต่ละก้อนใหม่ในบัฟเฟอร์สกัดที่เย็นจัดระดับน้ำแข็งปริมาตร 2.5 mL
- ใช้เครื่องอัลตราโซนิก UP100H (ติดตั้งโซโนโทรดปลายไมโคร MS3 สำหรับปริมาตรน้อยประมาณ 2–5mL) ทำลายเซลล์แบคทีเรียจนเซลล์สลาย ซึ่งสังเกตได้จากความขุ่นทึบที่ลดลงและความหนืดที่เพิ่มขึ้น ต้องดำเนินการบนน้ำแข็ง และแนะนำให้ใช้อัลตราโซนิกเป็นช่วง ๆ (เช่น ใช้อัลตราโซนิก 10 sec แล้วหยุดพักบนน้ำแข็ง 10 sec และทำเช่นนี้ต่อไป) ต้องระมัดระวังไม่ใช้อัลตราโซนิกที่ความเข้มสูงเกินไป หากตรวจพบฟองหรือการเกิดตะกอนสีขาว ต้องลดความเข้มลง
- ย้ายสารละลายแบคทีเรียที่สลายแล้วไปยังหลอดไมโครเซนทริฟิวจ์ 1.5 mL และปั่นเหวี่ยงที่ 4°C, 16,000 x g เป็นเวลา 20 min
เครื่องอัลตราโซนิกชนิดโพรบ เช่น UP400St ใช้หลักการทำงานของคาวิเทชันเชิงเสียงในการสลายเซลล์ E.coli อย่างมีประสิทธิภาพ
การวิเคราะห์การแสดงออกและการทำให้โปรตีนรีคอมบิแนนท์บริสุทธิ์ด้วยอัลตราโซนิก
ใช้อัลตราโซนิกกับตะกอน E. coli ด้วยเครื่องอัลตราโซนิก Hielscher UP100H โดยแขวนลอยตะกอนเซลล์ใหม่ในบัฟเฟอร์สลายเซลล์ที่แช่เย็น (Tris-HCl 50 mM pH=7.5, NaCl 100 mM, DTT 5 mM, PMSF 1 mM) และทำให้เย็นบนน้ำแข็งเป็นเวลา 10 min จากนั้นใช้อัลตราโซนิกกับสารแขวนลอยเซลล์เป็นช่วงสั้น ๆ 10 ครั้ง ครั้งละ 10 s ตามด้วยช่วงพัก 30 s เพื่อระบายความร้อน สุดท้ายกำจัดเศษเซลล์ด้วยการปั่นเหวี่ยงความเร็วสูงพิเศษที่ 4°C เป็นเวลา 15 min ที่ 14,000 rpm เพื่อยืนยันการแสดงออกของ rPR นำส่วนใสเหนือตะกอนไปแยกบนเจลพอลิอะคริลาไมด์ 12% และวิเคราะห์ด้วย SDS-PAGE และ Western blotting ทำให้ rPR บริสุทธิ์โดยใช้เรซิน Ni2+-NTA (Invitrogen, สหรัฐอเมริกา) ตามคู่มือของผู้ผลิต ในขั้นตอนนี้ใช้วิธีทำให้บริสุทธิ์ภายใต้สภาวะคงสภาพธรรมชาติ ประเมินความบริสุทธิ์ของโปรตีนที่ทำให้บริสุทธิ์แล้วด้วยอิเล็กโทรโฟรีซิสบนเจลพอลิอะคริลาไมด์ 12% ตามด้วยการย้อม Coomassie blue วัดความเข้มข้นของโปรตีนที่ทำให้บริสุทธิ์แล้วด้วยชุดทดสอบโปรตีน Micro BCA (PIERCE, สหรัฐอเมริกา) (Azarnezhad et al. 2016)
เครื่องโฮโมจีไนเซอร์อัลตราโซนิกสำหรับการสลายเซลล์ E. coli
Hielscher Ultrasonics ออกแบบ ผลิต และจัดหาเครื่องโฮโมจีไนเซอร์อัลตราโซนิกสมรรถนะสูงสำหรับการสลายเซลล์แบคทีเรีย E. coli รวมถึงเซลล์ชนิดอื่น เนื้อเยื่อ และเซลล์เพาะเลี้ยงอย่างเชื่อถือได้และมีประสิทธิภาพ
โพรบอัลตราโซนิกและระบบอัลตราโซนิกแบบอ้อมที่มีให้เลือกอย่างหลากหลายช่วยให้เรานำเสนอเครื่องโฮโมจีไนเซอร์เนื้อเยื่อด้วยอัลตราโซนิกที่เหมาะสมที่สุดสำหรับงานทำลายเซลล์และงานสกัดของคุณ
การออกแบบ การผลิต และการให้คำปรึกษา – คุณภาพที่ผลิตในเยอรมนี
เครื่องอัลตราโซนิกของ Hielscher มีชื่อเสียงในด้านมาตรฐานคุณภาพและการออกแบบสูงสุด ซอฟต์แวร์อัจฉริยะ เมนูที่ใช้งานได้อย่างเป็นธรรมชาติ การตั้งค่าที่ตั้งโปรแกรมได้ และการบันทึกข้อมูลโดยอัตโนมัติเป็นเพียงคุณสมบัติบางส่วนของเครื่องอัลตราโซนิก Hielscher ความทนทานและการใช้งานง่ายช่วยให้ผสานเครื่องอัลตราโซนิกของเราเข้ากับสถานที่วิจัยและเทคโนโลยีชีวภาพได้อย่างราบรื่น แม้ในสภาวะรุนแรงและสภาพแวดล้อมที่มีความต้องการสูง เครื่องอัลตราโซนิกของ Hielscher ก็สามารถทำงานได้อย่างง่ายดาย
Hielscher Ultrasonics เป็นบริษัทที่ได้รับการรับรอง ISO และให้ความสำคัญเป็นพิเศษกับเครื่องอัลตราโซนิกสมรรถนะสูงที่ใช้เทคโนโลยีล้ำสมัยและใช้งานง่าย แน่นอนว่าเครื่องอัลตราโซนิกของ Hielscher เป็นไปตามข้อกำหนด CE และตรงตามข้อกำหนดของ UL, CSA และ RoHs
ตารางด้านล่างแสดงขีดความสามารถในการประมวลผลโดยประมาณของเครื่องอัลตราโซนิกของเรา:
| ปริมาตรต่อชุด | อัตราการไหล | อุปกรณ์ที่แนะนำ |
|---|---|---|
| เพลตหลายหลุม / เพลตไมโครไทเทอร์ | ไม่เกี่ยวข้อง | UIP400MTP |
| CupHorn สำหรับขวดไวแอลหรือบีกเกอร์ | ไม่เกี่ยวข้อง | CupHorn อัลตราโซนิก |
| เครื่องปฏิกรณ์อัลตราโซนิกแบบไหลระดับไมโคร | ไม่เกี่ยวข้อง | GDmini2 |
| ขวดไวแอลสูงสุด 10 ขวด ปริมาตร 0.5 ถึง 1.5mL | ไม่เกี่ยวข้อง | VialTweeter |
| 0.5 ถึง 1.5mL | ไม่เกี่ยวข้อง | VialTweeter |
| 1 ถึง 500mL | 10 ถึง 200mL/min | UP100H |
| 10 ถึง 2000mL | 20 ถึง 400mL/min | UP200Ht, UP400St |
| 0.1 ถึง 20L | 0.2 ถึง 4L/min | UIP2000hdT |
| 10 ถึง 100L | 2 ถึง 10L/min | UIP4000 |
| ไม่เกี่ยวข้อง | 10 ถึง 100L/min | UIP16000 |
| ไม่เกี่ยวข้อง | สูงกว่า | กลุ่มเครื่อง UIP16000 |
ติดต่อเรา! / สอบถามเรา!
วิธีปฏิบัติเพิ่มเติมสำหรับการสลายเซลล์ E. coli ด้วยอัลตราโซนิก
โปรตีนที่ดัดแปลงด้วย allicin ใน E. coli โดยใช้ VialTweeter อัลตราโซนิก
การหาปริมาณหมู่ซัลฟ์ไฮดริลด้วยการทดสอบ 5,5′-Dithiobis(2-nitrobenzoic acid) (DTNB)
ใช้เชื้อ E. coli MG1655 ที่เพาะเลี้ยงข้ามคืนเพื่อเริ่มเพาะเลี้ยงในอาหารเลี้ยงเชื้อขั้นต่ำ MOPS (1:100) เพาะเลี้ยงเชื้อในสภาวะที่มีออกซิเจนจนได้ค่า A600 เท่ากับ 0.4 แบ่งเชื้อเพาะเลี้ยงเป็นสามส่วน ส่วนละ 15-ml สำหรับการให้สภาวะเครียด ใช้เชื้อเพาะเลี้ยงที่ไม่ได้รับการให้สภาวะเครียดเป็นชุดควบคุมเชิงลบ เติม 0.79 mM allicin (128 μg ml-1) หรือ 1 mM diamide ลงในเชื้อเพาะเลี้ยงอีกสองส่วนที่เหลือ โดยเติมสารแต่ละชนิดลงในเชื้อเพาะเลี้ยงคนละส่วน บ่มเชื้อเพาะเลี้ยงเป็นเวลา 15 min เก็บเชื้อเพาะเลี้ยงแต่ละส่วนปริมาตร 5 ml ด้วยการปั่นเหวี่ยง (8,525 × g, 4°C, 10 min) ล้างเซลล์สองครั้งด้วย PBS ปริมาตร 1 ml (137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 10 mM Na2HPO4, 2 mM KH2PO4, pH 7.4, เก็บในสภาวะไร้ออกซิเจนก่อนใช้) และปั่นเหวี่ยง (13,000 × g, 4°C, 10 min) แขวนลอยเซลล์ใหม่ในบัฟเฟอร์สลายเซลล์ (PBS ที่มี 6 mM guanidinium HCl, pH 7.4) ก่อนทำลายเซลล์ที่ 4°C ด้วยอัลตราโซนิก (VialTweeter ซึ่งเป็นเครื่องอัลตราโซนิกจาก Hielscher GmbH, เยอรมนี) (3 × 1 min) ทำให้เศษเซลล์ตกตะกอนด้วยการปั่นเหวี่ยง (13,000 × g, 4 °C, 15 min) ย้ายส่วนใสเหนือตะกอนไปยังคิวเวต QS-macro ขนาด 3.5-ml (10 mm) ที่มีแท่งกวนแม่เหล็ก และผสมกับบัฟเฟอร์สลายเซลล์ 1 ml ติดตามค่าการดูดกลืนแสงของตัวอย่างที่ 412 nm ด้วยเครื่องสเปกโทรโฟโตมิเตอร์ Jasco V-650 ที่ติดตั้งแท่นยึดเซลล์วัดแบบควบคุมอุณหภูมิ PSC-718 ที่อุณหภูมิห้อง เติมสารละลาย dithiobis(2-nitrobenzoic acid) 3 mM ปริมาตร 100μl ติดตามค่าการดูดกลืนแสงจนถึงระดับอิ่มตัว คำนวณความเข้มข้นของไทออลโดยใช้สัมประสิทธิ์การดูดกลืนแสง ϵ412 = 13,700 M-1 cm-1 สำหรับ thio-2-nitrobenzoic acid (TNB) คำนวณความเข้มข้นของไทออลภายในเซลล์โดยอิงปริมาตรเซลล์ E. coli เท่ากับ 6.7 × 10-15 ลิตร และความหนาแน่นของเซลล์ A600 = 0.5 (เทียบเท่า 1 × 108 เซลล์ต่อ ml-1 ของเชื้อเพาะเลี้ยง) (Müller et al. 2016)
การหาปริมาณกลูตาไธโอนในสิ่งมีชีวิตโดยใช้เครื่องทำลายเซลล์ด้วยอัลตราโซนิก
เพาะเลี้ยง E.coli MG1655 ในอาหารเลี้ยงเชื้อขั้นต่ำ MOPS ปริมาตรรวม 200ml จนได้ค่า A600 เท่ากับ 0.5 แบ่งเชื้อเพาะเลี้ยงเป็นส่วนละ 50-ml สำหรับการให้สภาวะเครียด หลังบ่มเป็นเวลา 15 min กับ 0.79 mM allicin, 1 mM diamide หรือ dimethyl sulfoxide (ชุดควบคุม) เก็บเซลล์ด้วยการปั่นเหวี่ยงที่ 4,000g ที่ 4°C เป็นเวลา 10 min ล้างเซลล์สองครั้งด้วยบัฟเฟอร์ KPE ก่อนแขวนลอยตะกอนใหม่ในบัฟเฟอร์ KPE ปริมาตร 700µl สำหรับการกำจัดโปรตีน เติม sulfosalicylic acid ปริมาตร 300l ความเข้มข้น 10% (w/v) ก่อนทำลายเซลล์ด้วยอัลตราโซนิก (3 x 1 min; VialTweeter ซึ่งเป็นเครื่องอัลตราโซนิก) เก็บส่วนใสเหนือตะกอนหลังปั่นเหวี่ยง (30 min, 13,000g, 4°C) ลดความเข้มข้นของ sulfosalicylic acid เหลือ 1% โดยเติมบัฟเฟอร์ KPE ปริมาตร 3 เท่า วัดกลูตาไธโอนทั้งหมดและ GSSG ตามที่อธิบายไว้ข้างต้น คำนวณความเข้มข้นของกลูตาไธโอนภายในเซลล์โดยอิงปริมาตรเซลล์ E. coli เท่ากับ 6.7×10-15 ลิตร และความหนาแน่นของเซลล์ A600 0.5 (เทียบเท่า 1×108 เซลล์ต่อ ml-1 ของเชื้อเพาะเลี้ยง) คำนวณความเข้มข้นของ GSH โดยหัก 2[GSSG] ออกจากกลูตาไธโอนทั้งหมด (Müller et al. 2016)
การแสดงออกของ mAspAT ของมนุษย์ใน E. coli โดยใช้เครื่องโฮโมจีไนเซอร์อัลตราโซนิก
นำโคโลนีเดี่ยวของ E. coli BL21 (DE3) ที่มีเวกเตอร์สำหรับการแสดงออกใส่ในอาหารเลี้ยงเชื้อ Luria-Bertani (LB) 30 mL ที่มี ampicillin 100μg/mL แล้วเพาะเลี้ยงที่ 37ºC จนค่าความหนาแน่นเชิงแสง (OD600) ถึง 0.6 เก็บเซลล์ด้วยการปั่นเหวี่ยงที่ 4,000 × g เป็นเวลา 10 min และแขวนลอยใหม่ในอาหารเลี้ยงเชื้อ LB ใหม่ 3L ที่มี ampicillin 100μg/mL
จากนั้นเหนี่ยวนำการแสดงออกของโปรตีนด้วย isopropyl β-ᴅ-1-thiogalactopyranoside (IPTG) 1 mM เป็นเวลา 20 h ที่ 16ºC เก็บเซลล์ด้วยการปั่นเหวี่ยงที่ 8,000 × g เป็นเวลา 15 min และล้างด้วยบัฟเฟอร์ A (NaH2PO4 20 mM, NaCl 0.5 M, pH 7.4) ได้เซลล์ประมาณ 45g (น้ำหนักเปียก) จากเชื้อเพาะเลี้ยง 3 L หลังปั่นเหวี่ยง แขวนลอยตะกอนเซลล์ใหม่ในบัฟเฟอร์สกัด A ที่เย็นจัดระดับน้ำแข็ง 40 mL (สำหรับเชื้อเพาะเลี้ยง 1 L) และสลายเซลล์ด้วยอัลตราโซนิกที่อุณหภูมิเย็นจัดระดับน้ำแข็งโดยใช้เครื่องทำลายเซลล์ด้วยอัลตราโซนิก Hielscher UP400St ปั่นเหวี่ยงไลเสตของเซลล์ที่ 12,000 rpm เป็นเวลา 15 min เพื่อแยกส่วนที่ละลายได้ (ส่วนใสเหนือตะกอน) และส่วนที่ตกตะกอน (ตะกอน) (Jiang et al. 2015)
ข้อเท็จจริงที่ควรรู้
E.coli
Escherichia coli (E. coli) เป็นแบคทีเรียโคลิฟอร์มแกรมลบ รูปแท่ง ที่ดำรงชีวิตได้ทั้งในสภาวะมีและไม่มีออกซิเจน อยู่ในสกุล Escherichia และพบได้ทั่วไปในลำไส้ส่วนล่างของสิ่งมีชีวิตเลือดอุ่น (สิ่งมีชีวิตที่สร้างความร้อนภายในร่างกาย) E. coli มีสายพันธุ์ (หรือชนิดย่อย) จำนวนมากที่มีลักษณะหลากหลาย สายพันธุ์ E. coli ส่วนใหญ่ไม่เป็นอันตรายต่อมนุษย์ เช่น สายพันธุ์ B และ K-12 ซึ่งใช้กันทั่วไปในงานวิจัยในห้องปฏิบัติการ อย่างไรก็ตาม บางสายพันธุ์เป็นอันตรายและอาจทำให้เกิดการเจ็บป่วยรุนแรง
E. coli มีบทบาทสำคัญในวิศวกรรมชีวภาพสมัยใหม่และจุลชีววิทยาอุตสาหกรรม เนื่องจากจัดการแบคทีเรียชนิดนี้ได้ง่าย งานทั่วไปในห้องปฏิบัติการที่มักใช้ E. coli ได้แก่ การสร้างกรดดีออกซีไรโบนิวคลีอิก (DNA) รีคอมบิแนนท์ หรือการใช้เป็นสิ่งมีชีวิตต้นแบบ
E. coli เป็นเซลล์เจ้าบ้านที่รองรับการผลิตโปรตีนต่างชนิดได้หลากหลาย และมีระบบการแสดงออกของโปรตีนหลายแบบสำหรับผลิตโปรตีนรีคอมบิแนนท์ใน E. coli การใช้พลาสมิดที่ทำให้โปรตีนแสดงออกในระดับสูงช่วยให้นำยีนเข้าสู่แบคทีเรียได้ และทำให้ผลิตโปรตีนดังกล่าวได้ในปริมาณมากในกระบวนการหมักระดับอุตสาหกรรม
ใช้ E.coli เป็นโรงงานเซลล์เพื่อผลิตอินซูลิน การใช้งานอื่น ๆ ได้แก่ การใช้เซลล์ E. coli ที่ดัดแปลงแล้วเพื่อพัฒนาและผลิตวัคซีนและเอนไซม์ตรึงรูป เพื่อผลิตเชื้อเพลิงชีวภาพ รวมถึงเพื่อการบำบัดทางชีวภาพ
สายพันธุ์ K-12 เป็นรูปแบบกลายพันธุ์ของ E. coli ที่แสดงออกเอนไซม์อัลคาไลน์ฟอสฟาเทส (ALP) มากเกินระดับปกติ การกลายพันธุ์นี้เกิดจากความบกพร่องของยีนที่กำหนดรหัสสำหรับเอนไซม์อย่างต่อเนื่อง หากยีนผลิตผลิตภัณฑ์โดยไม่มีการยับยั้งใด ๆ จะเรียกว่าการทำงานแบบต่อเนื่อง รูปแบบกลายพันธุ์เฉพาะนี้ใช้ในการแยกและทำให้เอนไซม์ ALP บริสุทธิ์
แบคทีเรีย E. coli ยังใช้กันอย่างแพร่หลายเป็นโรงงานเซลล์ จุลินทรีย์ที่ผ่านการดัดแปลงทางวิศวกรรม (เช่น แบคทีเรีย) และเซลล์พืชสามารถใช้เป็นสิ่งที่เรียกว่าโรงงานเซลล์ได้ เซลล์ที่ดัดแปลงพันธุกรรมเหล่านี้ผลิตโมเลกุล สารเคมี พอลิเมอร์ โปรตีน และสารอื่น ๆ ซึ่งใช้ในอุตสาหกรรมต่าง ๆ เช่น อุตสาหกรรมยา อาหาร และเคมี เพื่อปลดปล่อยโมเลกุลที่ผลิตขึ้นภายในเซลล์ที่ผ่านวิศวกรรมชีวภาพเหล่านี้ การสลายเซลล์ด้วยอัลตราโซนิกเป็นวิธีที่ใช้กันทั่วไปในการทำลายผนังเซลล์และถ่ายโอนสารเป้าหมายเข้าสู่ของเหลวโดยรอบ อ่านเพิ่มเติมเกี่ยวกับการสลายเซลล์ที่ผ่านวิศวกรรมชีวภาพ!
การเฉือน DNA ด้วยอัลตราโซนิก
แรงเฉือนจากอัลตราโซนิกเป็นวิธีที่ใช้กันทั่วไปในการปลดปล่อยโมเลกุล ออร์แกเนลล์ และโปรตีนจากภายในเซลล์ รวมถึงการตัดสาย DNA ให้เป็นชิ้นส่วน คาวิเทชันเชิงเสียงทำลายผนังเซลล์และเยื่อหุ้มเซลล์เพื่อสกัด DNA จากเซลล์และสร้างชิ้นส่วนที่มีความยาวประมาณ 600 – 800 bp ซึ่งเหมาะสมที่สุดสำหรับการวิเคราะห์
คลิกที่นี่เพื่อเรียนรู้เพิ่มเติมเกี่ยวกับเครื่องโฮโมจีไนเซอร์อัลตราโซนิกสำหรับการตัด DNA เป็นชิ้นส่วน!
วรรณกรรม / เอกสารอ้างอิง
- Azarnezhad A., Sharifi Z., Seyedabadi R., Hosseini A., Johari B., Sobhani Fard M. (2016): Cloning and Expression of Soluble Recombinant HIV-1 CRF35 Protease-HP Thioredoxin Fusion Protein. Avicenna J Med Biotechnol. 8(4), 2016. 175–181.
- Jiang X., Wang J., Chang H.; Zhou Y. (2016): Recombinant expression, purification and crystallographic studies of the mature form of human mitochondrial aspartate aminotransferase. BioScience Trends 2016.
- Müller A., Eller J., Albrecht F., Prochnow P., Kuhlmann K., Bandow J.E., Slusarenko A.J., Leichert L.I.O. (2016): Allicin Induces Thiol Stress in Bacteria through S-Allylmercapto Modification of Protein Cysteines. Journal of Biological Chemistry Vol. 291, No. 22, 2016. 11477–11490.
- Rabausch U., Juergensen J., Ilmberger N., Böhnke S., Fischer S., Schubach B., Schulte M., Streit W. R. (2013): Functional Screening of Metagenome and Genome Libraries for Detection of Novel Flavonoid-Modifying Enzymes. Applied and Environmental Microbiology 79(15), 2013. 4551–4563.
- Sauer M. (2014): MTV1 Pull-down Assay in Arabidopsis. bio-protocol Vol 4, Iss 12, Jun 20, 2014.
- Waldminghaus T., Skarstad K. (2010): ChIP on Chip: surprising results are often artifacts. BMC Genomics 11, 2010. 414.
Hielscher Ultrasonics ผลิตเครื่องโฮโมจีไนเซอร์อัลตราโซนิกสมรรถนะสูงตั้งแต่ ขนาดห้องปฏิบัติการ ไปจนถึง ขนาดอุตสาหกรรม
