Como usar os homogeneizadores ultrassônicos de tecidos Hielscher
Antes de purificar ou caracterizar macromoléculas intracelulares, como proteínas, organelas, enzimas ou compostos ativos, é essencial empregar um método eficiente para lise tecidual e desintegração celular. A ultrassonografia é uma técnica altamente eficaz para a preparação celular, liberando rapidamente materiais intracelulares em uma solução tampão. As forças de cisalhamento mecânico geradas durante a homogeneização ultrassônica do tecido podem ser ajustadas com precisão para se adequar a materiais específicos. Isso permite a preparação suave de tecidos moles ou cisalhamento de DNA/RNA com sonicação mais suave, bem como cavitação ultrassônica intensa para ruptura celular destrutiva (por exemplo, para nannocloropsia, levedura).
Abaixo está uma seleção de tecidos, células e outras matérias biológicas com protocolos de sonicação recomendados e diretrizes para preparar eficientemente suas amostras usando um homogeneizador de tecido ultrassônico ou triturador de células.
Ultra-sonicador de laboratório UP200Ht (200W, 26kHz) para tarefas de preparação de amostras
Como preparar seus lisados, homogeneizados e extratos de materiais biológicos
Em ordem alfabética:
Acetobacter suboxydans
Actinomyces
Aplicação ultrassônica:
Interrupção e extração de proteínas em 3-5 min.
Recomendação de dispositivo:
UP50H
Interrupção e extração de proteínas em 3-5 min.
Recomendação de dispositivo:
UP50H
Atividade ALP e LDH
Aplicação ultrassônica:
Determinação da atividade de ALP e LDH e teor de proteínas
As amostras de células congeladas foram descongeladas por 20 min em gelo, seguidas de lise celular com PBS contendo 1% de Triton X-100 por 50 min em gelo. Durante a lise celular, cada amostra foi sonicada por 1 min a 80 W com um processador ultrassônico UP100H (Ultrassom de Hielscher).
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Bernhardt, A. et al. (2008): O colágeno mineralizado - uma matriz óssea extracelular artificial - melhora a diferenciação osteogênica das células estromais da medula óssea.
Determinação da atividade de ALP e LDH e teor de proteínas
As amostras de células congeladas foram descongeladas por 20 min em gelo, seguidas de lise celular com PBS contendo 1% de Triton X-100 por 50 min em gelo. Durante a lise celular, cada amostra foi sonicada por 1 min a 80 W com um processador ultrassônico UP100H (Ultrassom de Hielscher).
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Bernhardt, A. et al. (2008): O colágeno mineralizado - uma matriz óssea extracelular artificial - melhora a diferenciação osteogênica das células estromais da medula óssea.
Fosfato tricálcico amorfo (ATCP)
Aplicação ultrassônica:
As nanopartículas de ATCP, que são um precursor excepcionalmente reativo para a formação de hidroxiapatita, foram dispersas em clorofórmio contendo 5% (p/p) de Tween20 referido ao PLGA usando o dispositivo ultrassônico Hielscher UP400S a 320W por 5 min. aplicando intervalos pulsados (50%) para permitir o relaxamento das partículas.
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Mohn, Dirk; Ege, Duygu; Feldman, Kirifl; Schneider, Oliver D.; Imfeld, Thomas; Boccaccini, Aldo R. (2014): Os enchimentos esféricos de nanopartículas de fosfato de cálcio permitem o processamento de polímeros de dispositivos de fixação óssea com alta bioatividade. A Biblioteca Livre 01 de maio de 2010. 21 de janeiro de 2014.
As nanopartículas de ATCP, que são um precursor excepcionalmente reativo para a formação de hidroxiapatita, foram dispersas em clorofórmio contendo 5% (p/p) de Tween20 referido ao PLGA usando o dispositivo ultrassônico Hielscher UP400S a 320W por 5 min. aplicando intervalos pulsados (50%) para permitir o relaxamento das partículas.
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Mohn, Dirk; Ege, Duygu; Feldman, Kirifl; Schneider, Oliver D.; Imfeld, Thomas; Boccaccini, Aldo R. (2014): Os enchimentos esféricos de nanopartículas de fosfato de cálcio permitem o processamento de polímeros de dispositivos de fixação óssea com alta bioatividade. A Biblioteca Livre 01 de maio de 2010. 21 de janeiro de 2014.
antocianinas
Aplicação ultrassônica:
Antocianinas: di-glicosídeos, mono-glicosídeo, monoglicosídeos acilados e di-glicosídeos acilados de peonidina, malvidina, cianidina, petunidina e delfinidina: Extração da casca da uva em 40 seg.; pH 5,0; relação material/solvente de extração de 1:6.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Antocianinas: di-glicosídeos, mono-glicosídeo, monoglicosídeos acilados e di-glicosídeos acilados de peonidina, malvidina, cianidina, petunidina e delfinidina: Extração da casca da uva em 40 seg.; pH 5,0; relação material/solvente de extração de 1:6.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Antraquinonas
Aplicação ultrassônica:
Extração de antraquinonas das raízes de Morinda citrifolia
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Extração de antraquinonas das raízes de Morinda citrifolia
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Sementes de damasco
Aplicação ultrassônica:
Pré-tratamento ultrassônico antes da extração do óleo das sementes de Jatropha curcas L. para melhorar a extração.
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Pré-tratamento ultrassônico antes da extração do óleo das sementes de Jatropha curcas L. para melhorar a extração.
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Artemisia selengensis Turcz
Aplicação ultrassônica:
Extração de Rutina (1,0g de amostra moída em 30 mL de metanol) a 25°C em 5-10 min.
Recomendação de dispositivo:
UP50H
Extração de Rutina (1,0g de amostra moída em 30 mL de metanol) a 25°C em 5-10 min.
Recomendação de dispositivo:
UP50H
Aspergillus flavus
Aplicação ultrassônica:
Inativação ultrassônica de Aspergillus flavus em meio de crescimento Sabouraud
Recomendação de dispositivo:
UP200S
Inativação ultrassônica de Aspergillus flavus em meio de crescimento Sabouraud
Recomendação de dispositivo:
UP200S
B. sphaericus / Bacillus sphaericus
Esporos de Bacillus anthracis sterne 34F2
Aplicação ultrassônica:
Remoção ultrassônica de esporos de Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 e Bacillus thuringiensis ATCC 33680. O uso de 150 ppm de hipoclorito de sódio junto com o ultrassom levou à inativação dos esporos.
Recomendação de dispositivo:
UP200S a 100% de amplitude
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Pamarthi, S.R. et al.: Eficácia do ultrassom na desoleação de esporos de Bacillus spp incorporados em matrizes alimentares complexas anexadas a várias superfícies de contato.
Remoção ultrassônica de esporos de Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 e Bacillus thuringiensis ATCC 33680. O uso de 150 ppm de hipoclorito de sódio junto com o ultrassom levou à inativação dos esporos.
Recomendação de dispositivo:
UP200S a 100% de amplitude
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Pamarthi, S.R. et al.: Eficácia do ultrassom na desoleação de esporos de Bacillus spp incorporados em matrizes alimentares complexas anexadas a várias superfícies de contato.
Esporos de Bacillus cereus ATCC 21281
Aplicação ultrassônica:
Remoção ultrassônica de esporos de Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 e Bacillus thuringiensis ATCC 33680. O uso de 150 ppm de hipoclorito de sódio junto com o ultrassom levou à inativação dos esporos.
Recomendação de dispositivo:
UP200S a 100% de amplitude
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Pamarthi, S.R. et al.: Eficácia do ultrassom na desoleação de esporos de Bacillus spp incorporados em matrizes alimentares complexas anexadas a várias superfícies de contato.
Remoção ultrassônica de esporos de Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 e Bacillus thuringiensis ATCC 33680. O uso de 150 ppm de hipoclorito de sódio junto com o ultrassom levou à inativação dos esporos.
Recomendação de dispositivo:
UP200S a 100% de amplitude
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Pamarthi, S.R. et al.: Eficácia do ultrassom na desoleação de esporos de Bacillus spp incorporados em matrizes alimentares complexas anexadas a várias superfícies de contato.
Bacillus subtilis
Aplicação ultrassônica:
O ultrassom de alta potência e baixa frequência em baixos volumes de suspensão bacteriana resulta em uma redução contínua no número de células bacterianas, ou seja, a taxa de morte predomina. Em volumes maiores, a sonicação resulta em um aumento inicial no número de células, sugerindo a aglomeração das bactérias, mas esse aumento inicial cai à medida que a concentração termina e a taxa de morte se torna mais importante.
Recomendação de dispositivo:
UP200St
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Joyce, E.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P.; Mason, T. J. (2003): O desenvolvimento e avaliação do ultrassom para o tratamento de suspensões bacterianas. Um estudo de frequência, potência e tempo de sonicação em espécies de Bacillus cultivadas. Ultrassom. Sonochem. 10/2003. pág. 315-318.
O ultrassom de alta potência e baixa frequência em baixos volumes de suspensão bacteriana resulta em uma redução contínua no número de células bacterianas, ou seja, a taxa de morte predomina. Em volumes maiores, a sonicação resulta em um aumento inicial no número de células, sugerindo a aglomeração das bactérias, mas esse aumento inicial cai à medida que a concentração termina e a taxa de morte se torna mais importante.
Recomendação de dispositivo:
UP200St
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Joyce, E.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P.; Mason, T. J. (2003): O desenvolvimento e avaliação do ultrassom para o tratamento de suspensões bacterianas. Um estudo de frequência, potência e tempo de sonicação em espécies de Bacillus cultivadas. Ultrassom. Sonochem. 10/2003. pág. 315-318.
Barley's Alpha-amylase
Aplicação ultrassônica:
Estimulando ou inibindo a atividade da Alfa-amilase de Cevada: A amostra (10 g de sementes de cevada) foi dispersa em 80 ml de água da torneira em sonicação direta na intensidade ultrassônica de 20, 60 e 100% de amplitude, ciclo de 50% e com agitação adicional. O sonotrodo foi imerso cerca de 9 mm na solução. A solução foi processada a temperatura constante de 30C° por 5, 10 e 15 min.
Recomendação de dispositivo:
UP200S, amplitudes: 20, 60 e 100%; ciclo de 50%; Sonotrodo S3, 30C°.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Yaldagard et al. (2008): Efeito da potência ultrassônica na atividade da alfa-amilase da cevada do tratamento pós-semeadura de sementes
Estimulando ou inibindo a atividade da Alfa-amilase de Cevada: A amostra (10 g de sementes de cevada) foi dispersa em 80 ml de água da torneira em sonicação direta na intensidade ultrassônica de 20, 60 e 100% de amplitude, ciclo de 50% e com agitação adicional. O sonotrodo foi imerso cerca de 9 mm na solução. A solução foi processada a temperatura constante de 30C° por 5, 10 e 15 min.
Recomendação de dispositivo:
UP200S, amplitudes: 20, 60 e 100%; ciclo de 50%; Sonotrodo S3, 30C°.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Yaldagard et al. (2008): Efeito da potência ultrassônica na atividade da alfa-amilase da cevada do tratamento pós-semeadura de sementes
Náuplios de cracas
Aplicação ultrassônica:
Ruptura/morte celular do mesozooplâncton: por sonicação sob as seguintes condições de quatro taxas de fluxo (200, 400, 520 e 800 lh-1) e quatro amplitudes (25, 50, 75 e 100 %) foi alcançada uma taxa de morte entre 61 e 97 %.
Recomendação de dispositivo:
UIP2000hd
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Viitaslo et al. (2005): Ozônio, luz ultravioleta, ultrassom e peróxido de hidrogênio como tratamentos de água de lastro – Experimentos com mesozooplâncton em água salobra com baixo nível salino.
Ruptura/morte celular do mesozooplâncton: por sonicação sob as seguintes condições de quatro taxas de fluxo (200, 400, 520 e 800 lh-1) e quatro amplitudes (25, 50, 75 e 100 %) foi alcançada uma taxa de morte entre 61 e 97 %.
Recomendação de dispositivo:
UIP2000hd
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Viitaslo et al. (2005): Ozônio, luz ultravioleta, ultrassom e peróxido de hidrogênio como tratamentos de água de lastro – Experimentos com mesozooplâncton em água salobra com baixo nível salino.
Cepas de bifidobactérias: B. breve ATCC 15700, B. animalis subsp. Lactis (BB-12), B. longum (BB-46)
Aplicação ultrassônica:
Destruição celular de bactérias e liberação de ß-galactosidase de cepas de Bifidobacteria: B. breve ATCC 15700, B. Animalis subsp. Lactis (BB-12), B. longum (BB-46): 100 mL de leite pasteurizado misturado com cultura de bactérias foi aplicado com ultrassom. A cavitação causa a destruição das células bacterianas e, ao mesmo tempo, a liberação de ß-galactosidase.
Recomendação de dispositivo:
UIP1000hd: amplitude: 10%, potência: 80W, amplitude: 100%, potência: 200W; Sonotrodo BS2d34; 15-30 min.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Hung et al. (2009): Fermentação de iogurte auxiliada por ultrassom com probióticos.
Destruição celular de bactérias e liberação de ß-galactosidase de cepas de Bifidobacteria: B. breve ATCC 15700, B. Animalis subsp. Lactis (BB-12), B. longum (BB-46): 100 mL de leite pasteurizado misturado com cultura de bactérias foi aplicado com ultrassom. A cavitação causa a destruição das células bacterianas e, ao mesmo tempo, a liberação de ß-galactosidase.
Recomendação de dispositivo:
UIP1000hd: amplitude: 10%, potência: 80W, amplitude: 100%, potência: 200W; Sonotrodo BS2d34; 15-30 min.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Hung et al. (2009): Fermentação de iogurte auxiliada por ultrassom com probióticos.
Células BL21(DE3) pAtHNL (células Arabidopsis thaliana)
Aplicação ultrassônica:
Ruptura celular: 15 g de células BL21-(DE3)_pAtHNL foram lentamente suspensas em tampão fosfato de potássio 50 mM (pH 7,5) a 0 °C.
Recomendação de dispositivo:
UP200S + sonotrodo S14D: a 70 W/cm2 (4 x 5 min), resfriado em banho de gelo
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Okrob, D. et al (2009): Hidroxinitrila liase de Arabidopsis thaliana: Identificação de parâmetros de reação para síntese de cianohidrina enantiopura por catalisador puro e imobilizado. Adv. Synth. Catal. 2011, 353, 2399 – 2408.
Ruptura celular: 15 g de células BL21-(DE3)_pAtHNL foram lentamente suspensas em tampão fosfato de potássio 50 mM (pH 7,5) a 0 °C.
Recomendação de dispositivo:
UP200S + sonotrodo S14D: a 70 W/cm2 (4 x 5 min), resfriado em banho de gelo
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Okrob, D. et al (2009): Hidroxinitrila liase de Arabidopsis thaliana: Identificação de parâmetros de reação para síntese de cianohidrina enantiopura por catalisador puro e imobilizado. Adv. Synth. Catal. 2011, 353, 2399 – 2408.
Glóbulos sanguíneos (vermelhos e brancos)
Boldine de folhas de Boldo (Peumus boldus Molina)
Aplicação ultrassônica:
Um importante composto ativo no boldo é a boldina ((S)-2,9-dihidroxi-1,10-dimetoxiapofina), que além da catequina ((2S,3R)-2-(3,4-dihidroxi-fenil)-3,4-dihidro-1(2H)-benzopiran-3,5,7-triol) é o principal componente da fração alcalóide e flavonóide nas folhas de boldo. Boldine é um forte agente antioxidante que sofre danos peroxidativos mediados por radicais livres e atua como um eficiente eliminador de radicais hidroxila.
Procedimento de extração: Para um procedimento típico de extração, amostras de folhas de boldo foram extraídas com 1L de água destilada à pressão atmosférica usando o ultrassomador UIP1000hd no modo de lote e fluxo. O tempo de extração varia entre 10 e 40 min., com uma intensidade ultrassônica de 10 a 23 W/cm2e uma faixa de temperatura de 10 a 70°C. Os melhores resultados foram alcançados nas seguintes condições: intensidade ultrassônica de 23 W/cm2 por 40 min. à temperatura de 36 ° C
Resultados: Os resultados da análise mostram que a sonicação de alta potência aumenta a liberação do analito do material da matriz vegetal de Boldo em taxas significativamente melhores em comparação com o método convencional: o rendimento igual foi liberado pela sonicação em 30 min., enquanto o tempo de extração convencional foi de 2h.
Chemat (2013) e colaboradores mostraram que a extração assistida por ultrassom melhora a eficiência da extração da planta, reduzindo o tempo de extração com maior concentração dos extratos (mesma quantidade de solvente e material vegetal). A análise revelou que as condições otimizadas foram: potência de sonicação 23 W/cm2 com UIP1000hd por 40 min. e uma temperatura de 36°C. Os parâmetros otimizados da extração por ultrassom proporcionam uma extração melhor em comparação com uma maceração convencional em termos de tempo de processo (30 min. em vez de 120 min.), maior rendimento, maior eficiência energética, melhor limpeza, maior segurança e melhor qualidade do produto.
Recomendação de dispositivo:
UIP1000hd com sonotrodo BS2d34 e célula de fluxo
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Petigny, L.; Périno-Issartier, S.; Wajsman, J.; Chemat, F. (2013): Extração assistida por ultrassom em lote e contínua de folhas de boldo (Peumus boldus mol.). Revista Internacional de Ciência Molecular 14, 2013. 5750-5764.
Um importante composto ativo no boldo é a boldina ((S)-2,9-dihidroxi-1,10-dimetoxiapofina), que além da catequina ((2S,3R)-2-(3,4-dihidroxi-fenil)-3,4-dihidro-1(2H)-benzopiran-3,5,7-triol) é o principal componente da fração alcalóide e flavonóide nas folhas de boldo. Boldine é um forte agente antioxidante que sofre danos peroxidativos mediados por radicais livres e atua como um eficiente eliminador de radicais hidroxila.
Procedimento de extração: Para um procedimento típico de extração, amostras de folhas de boldo foram extraídas com 1L de água destilada à pressão atmosférica usando o ultrassomador UIP1000hd no modo de lote e fluxo. O tempo de extração varia entre 10 e 40 min., com uma intensidade ultrassônica de 10 a 23 W/cm2e uma faixa de temperatura de 10 a 70°C. Os melhores resultados foram alcançados nas seguintes condições: intensidade ultrassônica de 23 W/cm2 por 40 min. à temperatura de 36 ° C
Resultados: Os resultados da análise mostram que a sonicação de alta potência aumenta a liberação do analito do material da matriz vegetal de Boldo em taxas significativamente melhores em comparação com o método convencional: o rendimento igual foi liberado pela sonicação em 30 min., enquanto o tempo de extração convencional foi de 2h.
Chemat (2013) e colaboradores mostraram que a extração assistida por ultrassom melhora a eficiência da extração da planta, reduzindo o tempo de extração com maior concentração dos extratos (mesma quantidade de solvente e material vegetal). A análise revelou que as condições otimizadas foram: potência de sonicação 23 W/cm2 com UIP1000hd por 40 min. e uma temperatura de 36°C. Os parâmetros otimizados da extração por ultrassom proporcionam uma extração melhor em comparação com uma maceração convencional em termos de tempo de processo (30 min. em vez de 120 min.), maior rendimento, maior eficiência energética, melhor limpeza, maior segurança e melhor qualidade do produto.
Recomendação de dispositivo:
UIP1000hd com sonotrodo BS2d34 e célula de fluxo
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Petigny, L.; Périno-Issartier, S.; Wajsman, J.; Chemat, F. (2013): Extração assistida por ultrassom em lote e contínua de folhas de boldo (Peumus boldus mol.). Revista Internacional de Ciência Molecular 14, 2013. 5750-5764.
Albumina de soro bovino (BSA)
Aplicação ultrassônica:
Microencapsulação em poli(ácido lático-co-glicólico) em 40 seg.
Recomendação de dispositivo:
GDmini
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Freitas et al. (2005): Emulsificação ultrassônica de fluxo combinado com micromistura estática para produção asséptica de microesferas por extração por solvente.
Microencapsulação em poli(ácido lático-co-glicólico) em 40 seg.
Recomendação de dispositivo:
GDmini
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Freitas et al. (2005): Emulsificação ultrassônica de fluxo combinado com micromistura estática para produção asséptica de microesferas por extração por solvente.
Tronco encefálico + glândula adrenal
Aplicação ultrassônica:
Análise de dispersão e nucleotídeos; Tamanho da amostra: amostras de 10 mg em fluido de 10 ml.
Recomendação de dispositivo:
UP50H
Análise de dispersão e nucleotídeos; Tamanho da amostra: amostras de 10 mg em fluido de 10 ml.
Recomendação de dispositivo:
UP50H
Candida albicans
Carboidratos, polissacarídeos e outros compostos funcionais
Aplicação ultrassônica:
Extração de carboidratos, polissacarídeos e outros compostos funcionais
Recomendação de dispositivo:
UP200St
Extração de carboidratos, polissacarídeos e outros compostos funcionais
Recomendação de dispositivo:
UP200St
Ácido carnósico de alecrim
Aplicação ultrassônica:
Extração de ácido carnósico, um composto ativo, do alecrim.
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Extração de ácido carnósico, um composto ativo, do alecrim.
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Capsaicinóides
Aplicação ultrassônica:
Extração de capsaicinóides (capsaicina, nordihidrocapsaicina) de pimentas: Capsaicinóides de Capsicum frutescens As pimentas foram obtidas por extração ultrassônica nas seguintes condições: solvente: etanol a 95% (v/v), relação solvente/massa de 10 ml/g, tempo de extração por sonicação de 40 min., temperatura de extração de 45°C. Rendimento do extrator: 85% dos capsaicinóides
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Extração de capsaicinóides (capsaicina, nordihidrocapsaicina) de pimentas: Capsaicinóides de Capsicum frutescens As pimentas foram obtidas por extração ultrassônica nas seguintes condições: solvente: etanol a 95% (v/v), relação solvente/massa de 10 ml/g, tempo de extração por sonicação de 40 min., temperatura de extração de 45°C. Rendimento do extrator: 85% dos capsaicinóides
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Carotenóides, Beta-Carotenóides
cDNA
Aplicação ultrassônica:
O RNA poli-A foi purificado com o kit de purificação de mRNA Dynabeads (Invitrogen) seguindo as instruções do fabricante e foi tratado por 30 min a 37°C com TURBO DNase (Ambion; 0,2 unidades/1 μg de RNA). A síntese da primeira e segunda fitas seguiu o protocolo do fabricante. Cerca de 500ng de cDNA de fita dupla foram fragmentados por sonicação com Hielscher UTR200. O DNA foi parcelado em gel de agarose de alta resolução a 2% e fragmentos de 230 a 270 pb foram cortados.
Recomendação de dispositivo:
UTR200 ou TD_CupHorn
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Delft, J. van; Gaj, St.; Lienhard, M.; Albrecht, M. W.; Kirpiy, A.; Brauers, K.; Claessen, S.; Lizarraga, D.; Lehrach, H.; Herwig, R.; Kleinjans, J. (2012): O RNA-seq fornece novos insights sobre as respostas do transcriptoma induzidas pelo carcinógeno benzo[a]pireno. Ciências Toxicológicas 130/2, 2012. 427–439.
O RNA poli-A foi purificado com o kit de purificação de mRNA Dynabeads (Invitrogen) seguindo as instruções do fabricante e foi tratado por 30 min a 37°C com TURBO DNase (Ambion; 0,2 unidades/1 μg de RNA). A síntese da primeira e segunda fitas seguiu o protocolo do fabricante. Cerca de 500ng de cDNA de fita dupla foram fragmentados por sonicação com Hielscher UTR200. O DNA foi parcelado em gel de agarose de alta resolução a 2% e fragmentos de 230 a 270 pb foram cortados.
Recomendação de dispositivo:
UTR200 ou TD_CupHorn
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Delft, J. van; Gaj, St.; Lienhard, M.; Albrecht, M. W.; Kirpiy, A.; Brauers, K.; Claessen, S.; Lizarraga, D.; Lehrach, H.; Herwig, R.; Kleinjans, J. (2012): O RNA-seq fornece novos insights sobre as respostas do transcriptoma induzidas pelo carcinógeno benzo[a]pireno. Ciências Toxicológicas 130/2, 2012. 427–439.
Caryophanon latum
Aplicação ultrassônica:
Extração de glucosamina, ácido murâmico, alanina, ácido glutâmico e lisina do datum cariofano.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Extração de glucosamina, ácido murâmico, alanina, ácido glutâmico e lisina do datum cariofano.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
celulose
Aplicação ultrassônica:
Homogeneização/preparação de celulose isotopicamente homogênea.
Recomendação de dispositivo:
UP200S; em um banho de gelo
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Laumer et al. (2009): Uma nova abordagem para a homogeneização da celulose para usar microquantidades para análises de isótopos estáveis.
Homogeneização/preparação de celulose isotopicamente homogênea.
Recomendação de dispositivo:
UP200S; em um banho de gelo
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Laumer et al. (2009): Uma nova abordagem para a homogeneização da celulose para usar microquantidades para análises de isótopos estáveis.
Nanocristais de celulose (CNC) preparados a partir de CNCs de celulose de eucalipto
Aplicação ultrassônica:
Nanocristais de celulose (CNC) preparados a partir de CNCs de celulose de eucalipto foram modificados pela reação com cloreto de metila adipoila, CNCm, ou com uma mistura de ácido acético e sulfúrico, CNCa. Portanto, CNCs liofilizados, CNCm e CNCa foram redispersos em solventes puros (EA, THF ou DMF) a 0,1% em peso, por agitação magnética durante a noite a (24 ± 1) C, seguido de 20 min em um banho de sonicação usando UP100H Hielscher Ultrasonics (Alemanha), equipado com um sonotrodo de 130 W / cm2, a 24 ± 1 ° C. Em seguida, o CAB foi adicionado à dispersão CNC, de modo que a concentração final do polímero foi de 0,9% em peso.
Recomendação de dispositivo:
UP100H; a 24 graus C por 20 min.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Blachechen, L. S. et al (2013): Interação da estabilidade coloidal de nanocristais de celulose e sua dispersibilidade na matriz de butirato de acetato de celulose. Celulose 2013.
Nanocristais de celulose (CNC) preparados a partir de CNCs de celulose de eucalipto foram modificados pela reação com cloreto de metila adipoila, CNCm, ou com uma mistura de ácido acético e sulfúrico, CNCa. Portanto, CNCs liofilizados, CNCm e CNCa foram redispersos em solventes puros (EA, THF ou DMF) a 0,1% em peso, por agitação magnética durante a noite a (24 ± 1) C, seguido de 20 min em um banho de sonicação usando UP100H Hielscher Ultrasonics (Alemanha), equipado com um sonotrodo de 130 W / cm2, a 24 ± 1 ° C. Em seguida, o CAB foi adicionado à dispersão CNC, de modo que a concentração final do polímero foi de 0,9% em peso.
Recomendação de dispositivo:
UP100H; a 24 graus C por 20 min.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Blachechen, L. S. et al (2013): Interação da estabilidade coloidal de nanocristais de celulose e sua dispersibilidade na matriz de butirato de acetato de celulose. Celulose 2013.
Celulose do bagaço de cana-de-açúcar
Aplicação ultrassônica:
Extração de celulose do bagaço de cana-de-açúcar
Recomendação de dispositivo:
UP200St
Extração de celulose do bagaço de cana-de-açúcar
Recomendação de dispositivo:
UP200St
Ensaio ChIP
Aplicação ultrassônica:
A ultrassonografia é usada para a lise celular para liberar a cromatina. A sonicação suave (pulsada) é usada para fragmentar a cromatina. Além disso, o ultrassom acelera a taxa de ligação do anticorpo às proteínas-alvo e, assim, reduz o tempo de imunoprecipitação.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Basselet, P. et al. (2008): Processamento de amostras para análise baseada em matriz de chips de DNA de Escherichia coli enterohemorrágica (EHEC).
Lauri, A. (2005): Análise molecular do desenvolvimento de pétalas por X-ChIP e tecnologia de dois híbridos. Dissertação Universidade de Colônia 2005.
A ultrassonografia é usada para a lise celular para liberar a cromatina. A sonicação suave (pulsada) é usada para fragmentar a cromatina. Além disso, o ultrassom acelera a taxa de ligação do anticorpo às proteínas-alvo e, assim, reduz o tempo de imunoprecipitação.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Basselet, P. et al. (2008): Processamento de amostras para análise baseada em matriz de chips de DNA de Escherichia coli enterohemorrágica (EHEC).
Lauri, A. (2005): Análise molecular do desenvolvimento de pétalas por X-ChIP e tecnologia de dois híbridos. Dissertação Universidade de Colônia 2005.
cromatina
Aplicação ultrassônica:
Cisalhamento da cromatina
Recomendação de dispositivo:
UP400S; a 30% de amplitude e 0,5 ciclo; no gelo.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Oh et al. (2003): O gene da acetil-CoA carboxilase é regulado pela proteína 1 de ligação ao elemento regulador de esteróis no fígado.
Cisalhamento da cromatina
Recomendação de dispositivo:
UP400S; a 30% de amplitude e 0,5 ciclo; no gelo.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Oh et al. (2003): O gene da acetil-CoA carboxilase é regulado pela proteína 1 de ligação ao elemento regulador de esteróis no fígado.
Extração de cromatina
Aplicação ultrassônica:
O lisado das células MEL DS19 foi sonicado com 10 rodadas de 20 s cada a 70% da saída máxima usando o processador ultrassônico Hielscher 200W UP200H
Recomendação de dispositivo:
UP200H; 70% da produção máxima; Modo de pulso: 10 ciclos de 20 seg. cada.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Kang, H. Ch. et al (2010): PIAS1 regula a localização de CP2c e a formação de complexo promotor ativo na expressão de a-globina específica de células eritróides. Ácidos nucléicos Res. 38/ 16, 2010. pág. 5456–5471.
O lisado das células MEL DS19 foi sonicado com 10 rodadas de 20 s cada a 70% da saída máxima usando o processador ultrassônico Hielscher 200W UP200H
Recomendação de dispositivo:
UP200H; 70% da produção máxima; Modo de pulso: 10 ciclos de 20 seg. cada.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Kang, H. Ch. et al (2010): PIAS1 regula a localização de CP2c e a formação de complexo promotor ativo na expressão de a-globina específica de células eritróides. Ácidos nucléicos Res. 38/ 16, 2010. pág. 5456–5471.
cromatografia
Aplicação ultrassônica:
A sonicação do adsorvente no solvente elimina os aglomerados em poucos segundos e prepara uma coluna uniforme e facilmente compactada. Relevante para a preparação de adsorventes (por exemplo, sílica-gel) antes da cromatografia em coluna.
Recomendação de dispositivo:
UP400S
A sonicação do adsorvente no solvente elimina os aglomerados em poucos segundos e prepara uma coluna uniforme e facilmente compactada. Relevante para a preparação de adsorventes (por exemplo, sílica-gel) antes da cromatografia em coluna.
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Cladóceros
Aplicação ultrassônica:
Ruptura celular do mesozooplâncton
Recomendação de dispositivo:
UP2000hd com célula de fluxo
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Viitaslo et al. (2005): Ozônio, luz ultravioleta, ultrassom e peróxido de hidrogênio como tratamentos de água de lastro – Experimentos com mesozooplâncton em água salobra com baixo nível salino.
Ruptura celular do mesozooplâncton
Recomendação de dispositivo:
UP2000hd com célula de fluxo
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Viitaslo et al. (2005): Ozônio, luz ultravioleta, ultrassom e peróxido de hidrogênio como tratamentos de água de lastro – Experimentos com mesozooplâncton em água salobra com baixo nível salino.
Copépodes adultos e copépoditos
Aplicação ultrassônica:
Ruptura celular do mesozooplâncton: por sonicação sob as seguintes condições de quatro taxas de fluxo (200, 400, 520 e 800 lh-1) e quatro amplitudes (25, 50, 75 e 100%) uma taxa de morte entre 87 e 99% foi alcançada.
Recomendação de dispositivo:
UIP2000hd com célula de fluxo
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Viitaslo et al. (2005): Ozônio, luz ultravioleta, ultrassom e peróxido de hidrogênio como tratamentos de água de lastro – Experimentos com mesozooplâncton em água salobra com baixo nível salino.
Ruptura celular do mesozooplâncton: por sonicação sob as seguintes condições de quatro taxas de fluxo (200, 400, 520 e 800 lh-1) e quatro amplitudes (25, 50, 75 e 100%) uma taxa de morte entre 87 e 99% foi alcançada.
Recomendação de dispositivo:
UIP2000hd com célula de fluxo
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Viitaslo et al. (2005): Ozônio, luz ultravioleta, ultrassom e peróxido de hidrogênio como tratamentos de água de lastro – Experimentos com mesozooplâncton em água salobra com baixo nível salino.
Náuplios de copépodos
Aplicação ultrassônica:
Ruptura celular do mesozooplâncton: por sonicação sob as seguintes condições de quatro taxas de fluxo (200, 400, 520 e 800 lh-1) e quatro amplitudes (25, 50, 75 e 100%) uma taxa de morte entre 87 e 99% foi alcançada.
Recomendação de dispositivo:
UIP2000hd com célula de fluxo
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Viitaslo et al. (2005): Ozônio, luz ultravioleta, ultrassom e peróxido de hidrogênio como tratamentos de água de lastro – Experimentos com mesozooplâncton em água salobra com baixo nível salino.
Ruptura celular do mesozooplâncton: por sonicação sob as seguintes condições de quatro taxas de fluxo (200, 400, 520 e 800 lh-1) e quatro amplitudes (25, 50, 75 e 100%) uma taxa de morte entre 87 e 99% foi alcançada.
Recomendação de dispositivo:
UIP2000hd com célula de fluxo
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Viitaslo et al. (2005): Ozônio, luz ultravioleta, ultrassom e peróxido de hidrogênio como tratamentos de água de lastro – Experimentos com mesozooplâncton em água salobra com baixo nível salino.
Células COS7
Aplicação ultrassônica:
Lise em tampão de 400 μl
Recomendação de dispositivo:
UP200S; 7 ciclos
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Zaim (2005): Analyse von Nesprin-2 Defizienten Mäusen.
Lise em tampão de 400 μl
Recomendação de dispositivo:
UP200S; 7 ciclos
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Zaim (2005): Analyse von Nesprin-2 Defizienten Mäusen.
Cryptosporidium parvaum
Aplicação ultrassônica:
Inativação ultrassônica de Cryptosporidium parvaum (protozoários) em água.
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Oliveira, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Inativação de Saccharomyces cerevisiae por irradiação ultrassônica. Ultrassonologia Sonoquímica 11/2004. pág. 61-65.
Inativação ultrassônica de Cryptosporidium parvaum (protozoários) em água.
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Oliveira, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Inativação de Saccharomyces cerevisiae por irradiação ultrassônica. Ultrassonologia Sonoquímica 11/2004. pág. 61-65.
cubossomos
Aplicação ultrassônica:
cubossomos – vazio ou dopado com moléculas de fluoróforo – foram preparados dispersando a quantidade apropriada de monooleína em uma solução de Pluronic F108 usando o ultrassônico UP100H. Para obter cubossomos fluorescentes, o fluoróforo foi disperso na monooleína derretida por sonificação suave antes da dispersão em Pluronic F108. O mesmo procedimento foi seguido quando os cubossomos fluorescentes também foram carregados com quercetina.
Amostra: tamanho da amostra: 4 mL – aprox. 96,4% em peso de água, 3,3% em peso de monooleína, 0,3% em peso de Pluronic F108. A porcentagem do fluoróforo foi de 2,5 × 10−3 e 2,8 × 10−3% em peso. Quantidade de quercetina adicionada: 6,4 × 10−6% em peso.
Sonication: UP100H, amplitude 90%, ciclo de pulso 0,9, por 10 min.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Murgia, S.; Bonacchi, S.; Falchi, A. M.; Lampis, S.; Lippolis, V.; Meli, V.; Oliveira, M.; Oliveira, L.; Schmidt, J.; Talmon, Y.; Caltagirone, C. (2013): Cubossomos fluorescentes carregados de drogas: nanopartículas versáteis para potenciais aplicações teranósticas. Langmuir 29, 2013. 6673-6679.
cubossomos – vazio ou dopado com moléculas de fluoróforo – foram preparados dispersando a quantidade apropriada de monooleína em uma solução de Pluronic F108 usando o ultrassônico UP100H. Para obter cubossomos fluorescentes, o fluoróforo foi disperso na monooleína derretida por sonificação suave antes da dispersão em Pluronic F108. O mesmo procedimento foi seguido quando os cubossomos fluorescentes também foram carregados com quercetina.
Amostra: tamanho da amostra: 4 mL – aprox. 96,4% em peso de água, 3,3% em peso de monooleína, 0,3% em peso de Pluronic F108. A porcentagem do fluoróforo foi de 2,5 × 10−3 e 2,8 × 10−3% em peso. Quantidade de quercetina adicionada: 6,4 × 10−6% em peso.
Sonication: UP100H, amplitude 90%, ciclo de pulso 0,9, por 10 min.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Murgia, S.; Bonacchi, S.; Falchi, A. M.; Lampis, S.; Lippolis, V.; Meli, V.; Oliveira, M.; Oliveira, L.; Schmidt, J.; Talmon, Y.; Caltagirone, C. (2013): Cubossomos fluorescentes carregados de drogas: nanopartículas versáteis para potenciais aplicações teranósticas. Langmuir 29, 2013. 6673-6679.
Dekkera bruxellensis
Aplicação ultrassônica:
Inativação ultrassônica de Dekkera bruxellensis em água
Recomendação de dispositivo:
UIP1500hd
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Borthwick, K. A. J.; Coakley, W. T.; McDonnell, M. B.; Nowotny, H.; Benes, E.; Grfschl, . M (2005): Desenvolvimento de um novo sonicador compacto para ruptura celular. J. Microbio. Metanfetamina. 60/2005. pág. 207–216. / Lörincz, A. (2004): Ruptura celular ultrassônica de leveduras em suspensões à base de água. Biosys. Eng. 89/ 2004. pág. 297-308. / Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Oliveira, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Inativação de Saccharomyces cerevisiae por irradiação ultrassônica. Ultrassom. Sonochem. 11/2004. pág. 61-65.
Inativação ultrassônica de Dekkera bruxellensis em água
Recomendação de dispositivo:
UIP1500hd
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Borthwick, K. A. J.; Coakley, W. T.; McDonnell, M. B.; Nowotny, H.; Benes, E.; Grfschl, . M (2005): Desenvolvimento de um novo sonicador compacto para ruptura celular. J. Microbio. Metanfetamina. 60/2005. pág. 207–216. / Lörincz, A. (2004): Ruptura celular ultrassônica de leveduras em suspensões à base de água. Biosys. Eng. 89/ 2004. pág. 297-308. / Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Oliveira, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Inativação de Saccharomyces cerevisiae por irradiação ultrassônica. Ultrassom. Sonochem. 11/2004. pág. 61-65.
Dekkera/ Brettanomyces bruxellensis
Aplicação ultrassônica:
Inativação em 90-120 seg.
Recomendação de dispositivo:
UIP1500hd
Referência/Trabalho de Pesquisa:
veja acima
Inativação em 90-120 seg.
Recomendação de dispositivo:
UIP1500hd
Referência/Trabalho de Pesquisa:
veja acima
ADN
Aplicação ultrassônica:
Fragmentação do DNA: sonicação de 2 min. de 100μL com UP100H ou sonicação de 4 min. de 100μL com UTR200.
Recomendação de dispositivo:
UP100H, UTR200 ou VialTweeter
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Larguinho M. et al. (2010): Desenvolvimento de uma estratégia rápida e eficiente baseada em ultrassom para fragmentação de DNA.
Fragmentação do DNA: sonicação de 2 min. de 100μL com UP100H ou sonicação de 4 min. de 100μL com UTR200.
Recomendação de dispositivo:
UP100H, UTR200 ou VialTweeter
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Larguinho M. et al. (2010): Desenvolvimento de uma estratégia rápida e eficiente baseada em ultrassom para fragmentação de DNA.
Células S2 de Drosophila melanogaster
Aplicação ultrassônica:
Extração de proteínas celulares de células S2 de Drosophila melanogaster: Células S2 congeladas (1,56108) foram lisadas em tampão de homogeneização gelado de 1 mL (100 mM Tris-HCl pH 7,5, SDS a 1%) e deixadas no gelo por 10 min. A lise celular foi completada por ultrassom em gelo (6615 explosões, pulso de 0,5 s; 75% de intensidade) com um processador ultrassônico Hielscher UP200S.
Recomendação de dispositivo:
UP200S (200W), 75% de intensidademodo de pulso: 6615 rajadas, pulso de 0,5 s.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Schwientek, T. et al. (2007): Uma abordagem de lectina em série para o O-glicoproteoma do tipo mucina de células S2 de Drosophila melanogaster. Proteômica 7, 2007. pág. 3264-3277.
Extração de proteínas celulares de células S2 de Drosophila melanogaster: Células S2 congeladas (1,56108) foram lisadas em tampão de homogeneização gelado de 1 mL (100 mM Tris-HCl pH 7,5, SDS a 1%) e deixadas no gelo por 10 min. A lise celular foi completada por ultrassom em gelo (6615 explosões, pulso de 0,5 s; 75% de intensidade) com um processador ultrassônico Hielscher UP200S.
Recomendação de dispositivo:
UP200S (200W), 75% de intensidademodo de pulso: 6615 rajadas, pulso de 0,5 s.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Schwientek, T. et al. (2007): Uma abordagem de lectina em série para o O-glicoproteoma do tipo mucina de células S2 de Drosophila melanogaster. Proteômica 7, 2007. pág. 3264-3277.
Derivados de E. coli
Aplicação ultrassônica:
Ruptura celular de derivados de E. coli: Os pellets congelados correspondentes ao volume da amostra de Vculture = 4 / OD mL foram ressuspensos em tampão fosfato de potássio 580 μL 10 mM pH 7, 1 mM EDTA. Foram adicionados 20 μL de lisozima (concentração de 1 g L-1) e a suspensão das células foi incubada em gelo por cerca de 30 min. Em seguida, as células foram interrompidas por ultrassom contínuo com um ultrassônico (UP 200S Ultraschallprozessor, Dr. Hielscher GmbH, Teltow) em gelo, a uma amplitude de 50% por 20 segundos. As frações celulares solúveis e insolúveis foram separadas por centrifugação a 13000 rpm por 20 min. As proteínas insolúveis foram lavadas duas vezes com o tampão fosfato de potássio 10 mM pH 7,1 mM EDTA e armazenadas a –20°C.
Recomendação de dispositivo:
UP200S com amplitude de 50%
Referência/Trabalho de Pesquisa:
HA (2005): Otimização da produção de proteínas recombinantes ativas, explorando o impacto de pequenas proteínas de choque térmico de Escherichia coli, IbpA e IbpB, na reativação in vivo de corpos de inclusão.
Ruptura celular de derivados de E. coli: Os pellets congelados correspondentes ao volume da amostra de Vculture = 4 / OD mL foram ressuspensos em tampão fosfato de potássio 580 μL 10 mM pH 7, 1 mM EDTA. Foram adicionados 20 μL de lisozima (concentração de 1 g L-1) e a suspensão das células foi incubada em gelo por cerca de 30 min. Em seguida, as células foram interrompidas por ultrassom contínuo com um ultrassônico (UP 200S Ultraschallprozessor, Dr. Hielscher GmbH, Teltow) em gelo, a uma amplitude de 50% por 20 segundos. As frações celulares solúveis e insolúveis foram separadas por centrifugação a 13000 rpm por 20 min. As proteínas insolúveis foram lavadas duas vezes com o tampão fosfato de potássio 10 mM pH 7,1 mM EDTA e armazenadas a –20°C.
Recomendação de dispositivo:
UP200S com amplitude de 50%
Referência/Trabalho de Pesquisa:
HA (2005): Otimização da produção de proteínas recombinantes ativas, explorando o impacto de pequenas proteínas de choque térmico de Escherichia coli, IbpA e IbpB, na reativação in vivo de corpos de inclusão.
Antígeno de Echinococcus granulosus
Aplicação ultrassônica:
Lise e desintegração celular: A amostra homogeneizada de proteína solúvel de E. granulosus maduro, preparada por congelamento-descongelamento em nitrogênio líquido e 42◦C, foi sonicada a 110V, 170W por 3×15 segundos no gelo. Em seguida, a amostra foi centrifugada por 15min a 10000g. A concentaração de proteínas foi medida pelo método de Bradford e armazenada a -20◦C.
Recomendação de dispositivo:
UP200S; 170W, resfriamento no gelo; 3 x 15 seg.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Tabar et al. (2010): Sorodiagnóstico de hidatidose de ovelhas com fluido hidático, protoscólex e corpo inteiro de antígeno de Echinococcus granulosus.
Lise e desintegração celular: A amostra homogeneizada de proteína solúvel de E. granulosus maduro, preparada por congelamento-descongelamento em nitrogênio líquido e 42◦C, foi sonicada a 110V, 170W por 3×15 segundos no gelo. Em seguida, a amostra foi centrifugada por 15min a 10000g. A concentaração de proteínas foi medida pelo método de Bradford e armazenada a -20◦C.
Recomendação de dispositivo:
UP200S; 170W, resfriamento no gelo; 3 x 15 seg.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Tabar et al. (2010): Sorodiagnóstico de hidatidose de ovelhas com fluido hidático, protoscólex e corpo inteiro de antígeno de Echinococcus granulosus.
Escherchia coli Gr-
Aplicação ultrassônica:
Inativação ultrassônica de Escherchia coli Gr- em leite e sucos.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Oliveira, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Aplicação de processamento térmico assistido por ultrassom para preservação e retenção de qualidade de alimentos líquidos. J Food Prot 66/2003. págs. 1642–1649.
Inativação ultrassônica de Escherchia coli Gr- em leite e sucos.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Oliveira, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Aplicação de processamento térmico assistido por ultrassom para preservação e retenção de qualidade de alimentos líquidos. J Food Prot 66/2003. págs. 1642–1649.
Escherchia coli Gr- em solução salina
Aplicação ultrassônica:
Inativação ultrassônica de Escherchia coli Gr- em solução salina.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Casa dos Patos, H.; Pedreiro, T. J.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P. (2004): O efeito da sonicação na desinfecção microbiana usando hipoclorito. Ultrassom. Sonochem. 11/ 2004. pág. 173-176.
Inativação ultrassônica de Escherchia coli Gr- em solução salina.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Casa dos Patos, H.; Pedreiro, T. J.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P. (2004): O efeito da sonicação na desinfecção microbiana usando hipoclorito. Ultrassom. Sonochem. 11/ 2004. pág. 173-176.
Escherchia coli Gr- na água
Aplicação ultrassônica:
Inativação ultrassônica de Escherchia coli Gr- em água.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Oliveira, M.; Oliveira, M.; Tsukamoto, T.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Hasiba, K.; Maeda, Y. (2004): Inativação de Escherichia coli por irradiação ultrassônica. Ultrassom. Sonochem. 11/2004. págs. 57–60.
Inativação ultrassônica de Escherchia coli Gr- em água.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Oliveira, M.; Oliveira, M.; Tsukamoto, T.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Hasiba, K.; Maeda, Y. (2004): Inativação de Escherichia coli por irradiação ultrassônica. Ultrassom. Sonochem. 11/2004. págs. 57–60.
Glaucoma, cabeça do nervo óptico
Aplicação ultrassônica:
Fragmentação de RNA de cabeças de nervos ópticos (de olhos de rato): A cabeça do nervo óptico (ONH) foi congelada em gelo seco e armazenada a 80 ° C antes da extração. O RNA foi isolado por sonicação das cabeças nervosas congeladas no tampão de extração do kit usando uma sonda MS 0,5 (UP50H) e, em seguida, após as instruções fornecidas pelo kit Arcturus, incluindo o tratamento com DNase para remover qualquer DNA. O RNA purificado foi quantificado.
Recomendação de dispositivo:
UP50H com sonda MS0.5
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Johnson et al. (2007): Mudanças globais na expressão gênica da cabeça do nervo óptico após exposição à pressão intraocular elevada em um modelo de glaucoma de rato.
Fragmentação de RNA de cabeças de nervos ópticos (de olhos de rato): A cabeça do nervo óptico (ONH) foi congelada em gelo seco e armazenada a 80 ° C antes da extração. O RNA foi isolado por sonicação das cabeças nervosas congeladas no tampão de extração do kit usando uma sonda MS 0,5 (UP50H) e, em seguida, após as instruções fornecidas pelo kit Arcturus, incluindo o tratamento com DNase para remover qualquer DNA. O RNA purificado foi quantificado.
Recomendação de dispositivo:
UP50H com sonda MS0.5
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Johnson et al. (2007): Mudanças globais na expressão gênica da cabeça do nervo óptico após exposição à pressão intraocular elevada em um modelo de glaucoma de rato.
Sulfato de condroitina glicosaminoglicano (CS)
Aplicação ultrassônica:
Determinação de CS por ensaio de azul de dimetilmetileno
Ressuspensão de células: Pellets de CS em tubos de microcentrífuga foram ressuspensos em 0,5 ml de uma solução de papaína 0,1 mg/ml em solução salina balanceada de Hank (HBSS) usando pulsos de uma buzina de ultrassom (UP 100H, Hielscher Ultrasonics GmbH, Alemanha) no ciclo 1 e amplitude de 100% por 3 segundos. Posteriormente, a digestão ocorreu a 60 °C por 24 h.
Para o ensaio imunoenzimático (ELISA), as células foram então suspensas em água destilada e deionizada na concentração de 106 células/ml e mantidas em freezer a –70°C durante a noite para facilitar a lise celular. As células foram então homogeneizadas por ultrassom por 40 segundos, usando o homogeneizador ultrassônico de tecidos Hielscher UP100H.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Vandrovcova et al. (2011): Influência dos revestimentos de colágeno e sulfato de condroitina (CS) em poli-(lactídeo-co-glicolídeo) (PLGA) em células semelhantes a osteoblastos MG 63. Fisiol. Res. 60; 2011. 797-813.
Determinação de CS por ensaio de azul de dimetilmetileno
Ressuspensão de células: Pellets de CS em tubos de microcentrífuga foram ressuspensos em 0,5 ml de uma solução de papaína 0,1 mg/ml em solução salina balanceada de Hank (HBSS) usando pulsos de uma buzina de ultrassom (UP 100H, Hielscher Ultrasonics GmbH, Alemanha) no ciclo 1 e amplitude de 100% por 3 segundos. Posteriormente, a digestão ocorreu a 60 °C por 24 h.
Para o ensaio imunoenzimático (ELISA), as células foram então suspensas em água destilada e deionizada na concentração de 106 células/ml e mantidas em freezer a –70°C durante a noite para facilitar a lise celular. As células foram então homogeneizadas por ultrassom por 40 segundos, usando o homogeneizador ultrassônico de tecidos Hielscher UP100H.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Vandrovcova et al. (2011): Influência dos revestimentos de colágeno e sulfato de condroitina (CS) em poli-(lactídeo-co-glicolídeo) (PLGA) em células semelhantes a osteoblastos MG 63. Fisiol. Res. 60; 2011. 797-813.
Células HaCaT
Aplicação ultrassônica:
Lise de células HaCaT para imunoprecipitação da cromatina (ChIP): As células HaCaT foram fixadas com formaldeído a 1% por 10 minutos a 37uC. As células fixadas foram lisadas no tampão RIPA e sonicadas em gelo com um dispositivo ultrassônico de 100W em amplitude = 1 e ciclo de trabalho = 100% em 12 pulsos de um minuto (12 x 1 min.).
Recomendação de dispositivo:
UP100H; por 12 min. no gelo,
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Zhang et al. (2007): Basonuclina regula um subconjunto de genes de RNA ribossômico em células HaCaT.
Lise de células HaCaT para imunoprecipitação da cromatina (ChIP): As células HaCaT foram fixadas com formaldeído a 1% por 10 minutos a 37uC. As células fixadas foram lisadas no tampão RIPA e sonicadas em gelo com um dispositivo ultrassônico de 100W em amplitude = 1 e ciclo de trabalho = 100% em 12 pulsos de um minuto (12 x 1 min.).
Recomendação de dispositivo:
UP100H; por 12 min. no gelo,
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Zhang et al. (2007): Basonuclina regula um subconjunto de genes de RNA ribossômico em células HaCaT.
Heparina: Despolimerização da heparina
Aplicação ultrassônica:
O método ultrassônico permite produzir uma heparina de baixo peso molecular (HBPM). Portanto, a heparina sofre uma despolimerização radical catalisada por peróxido de hidrogênio. A reação é muito rápida e leva menos de 1 hora, enquanto o processo de despolimerização físico-química depende de condições de reação suaves, não requer reagentes agressivos ou tóxicos e fornece um produto livre de artefatos químicos. Assim, o processo ultrassônico é adequado para a produção em larga escala de HBPM, mas também análogos produzidos a partir de polissacarídeos sulfatados naturais.
Procedimento ultrassônico:
Para a despolimerização físico-química da heparina não fracionada por despolimerização radical assistida por ultrassom, a heparina foi dissolvida em água até a concentração final de 25 mg/mL (5 mL). A mistura de reação foi sonicada usando um ultrassônico tipo sonda UP50H. O ultrassônico foi equipado com uma sonda (microponta MS3) com diâmetro de 3mm, que proporcionou amplitude de 180μm. O processador gerou vibrações mecânicas longitudinais com uma frequência de 30 kHz que foram produzidas por excitação elétrica. A mistura de reação foi mantida a 60 ° C em um reator Radleys e ondas ultrassônicas foram aplicadas como um pulso de® 0,5 segundos para evitar o aquecimento da mistura. Uma alíquota de tempo zero (250μl) foi removida da solução antes do lançamento da reação por adição simultânea de peróxido de hidrogênio e aplicação de ondas ultrassônicas. Peróxido de hidrogênio foi adicionado para obter uma relação peróxido de hidrogênio/heparina final (m/m) de 0,15 (3,75 mg/mL).
Recomendação de dispositivo:
UP50H com sonotrodo MS3
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Achour, Oussama; Bridiau, Nicolas; Godhbani, Azza; Le Joubioux, Florian; Bordenave Juchereau, Stephanie; Sannier, Frederico; Piot, Jean-Marie; Fruitier Arnaudin, Ingrid; Maugard, Thierry (2013): Preparação assistida por ultrassom de uma heparina de baixo peso molecular (HBPM) com atividade anticoagulante. Polímeros de carboidratos 97; 2013. 684–689.
O método ultrassônico permite produzir uma heparina de baixo peso molecular (HBPM). Portanto, a heparina sofre uma despolimerização radical catalisada por peróxido de hidrogênio. A reação é muito rápida e leva menos de 1 hora, enquanto o processo de despolimerização físico-química depende de condições de reação suaves, não requer reagentes agressivos ou tóxicos e fornece um produto livre de artefatos químicos. Assim, o processo ultrassônico é adequado para a produção em larga escala de HBPM, mas também análogos produzidos a partir de polissacarídeos sulfatados naturais.
Procedimento ultrassônico:
Para a despolimerização físico-química da heparina não fracionada por despolimerização radical assistida por ultrassom, a heparina foi dissolvida em água até a concentração final de 25 mg/mL (5 mL). A mistura de reação foi sonicada usando um ultrassônico tipo sonda UP50H. O ultrassônico foi equipado com uma sonda (microponta MS3) com diâmetro de 3mm, que proporcionou amplitude de 180μm. O processador gerou vibrações mecânicas longitudinais com uma frequência de 30 kHz que foram produzidas por excitação elétrica. A mistura de reação foi mantida a 60 ° C em um reator Radleys e ondas ultrassônicas foram aplicadas como um pulso de® 0,5 segundos para evitar o aquecimento da mistura. Uma alíquota de tempo zero (250μl) foi removida da solução antes do lançamento da reação por adição simultânea de peróxido de hidrogênio e aplicação de ondas ultrassônicas. Peróxido de hidrogênio foi adicionado para obter uma relação peróxido de hidrogênio/heparina final (m/m) de 0,15 (3,75 mg/mL).
Recomendação de dispositivo:
UP50H com sonotrodo MS3
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Achour, Oussama; Bridiau, Nicolas; Godhbani, Azza; Le Joubioux, Florian; Bordenave Juchereau, Stephanie; Sannier, Frederico; Piot, Jean-Marie; Fruitier Arnaudin, Ingrid; Maugard, Thierry (2013): Preparação assistida por ultrassom de uma heparina de baixo peso molecular (HBPM) com atividade anticoagulante. Polímeros de carboidratos 97; 2013. 684–689.
lúpulo
Aplicação ultrassônica:
Extração de compostos ativos / extratos de ervas em água e etanol.
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Extração de compostos ativos / extratos de ervas em água e etanol.
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Lactobacillus (lise/isolamento de ADN de várias estirpes de Lactobacillus)
Aplicação ultrassônica:
Cepas de Lactobacillus: L. pontis, L. sanfranciscensis, L. farciminis, L. panis, L. oris, L. vaginalis e L. reuteri, L. sp.
Procedimento: Para o isolamento do DNA de colônias únicas, foi desenvolvido um protocolo de lise ultrassônica. Uma colônia (2 a 3 mm de diâmetro) foi suspensa em tampão de lise de 100 μl (EDTA 20 mM, Tris 10 mM [pH 7,9], Triton X-100 a 1%, 500 mM de guanidina-HCl, NaCl 250 mM). As células foram lisadas por 1 min de ultrassom com um ultrassônico do tipo sonda UP50H. Após a adição de 150μl de etanol frio (-20°C), a mistura foi centrifugada sobre uma coluna de centrifugação do kit de tissue QIAamp e finalmente eluída com 60μl de tampão (Tris 10 mM [pH 7,5]).
Para ter uma ferramenta para uma identificação rápida e confiável de culturas puras únicas, o ensaio de PCR foi combinado com um procedimento rápido de isolamento de DNA. Procedimentos demorados de lise enzimática e suscetibilidade variável das bactérias à lisozima foram superados por tratamento ultrassônico das células, com subsequente purificação e concentração pela ligação do DNA a uma matriz de sílica. O material celular de uma única colônia foi considerado suficiente para a PCR.
Recomendação de dispositivo:
UP50H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Müller, M. R. A. (2000): Caracterização do Ecossistema Microbiano de Fermentações de Cereais Usando Métodos Biológicos Moleculares. Dissertação Universidade de Colônia, 2000.
Cepas de Lactobacillus: L. pontis, L. sanfranciscensis, L. farciminis, L. panis, L. oris, L. vaginalis e L. reuteri, L. sp.
Procedimento: Para o isolamento do DNA de colônias únicas, foi desenvolvido um protocolo de lise ultrassônica. Uma colônia (2 a 3 mm de diâmetro) foi suspensa em tampão de lise de 100 μl (EDTA 20 mM, Tris 10 mM [pH 7,9], Triton X-100 a 1%, 500 mM de guanidina-HCl, NaCl 250 mM). As células foram lisadas por 1 min de ultrassom com um ultrassônico do tipo sonda UP50H. Após a adição de 150μl de etanol frio (-20°C), a mistura foi centrifugada sobre uma coluna de centrifugação do kit de tissue QIAamp e finalmente eluída com 60μl de tampão (Tris 10 mM [pH 7,5]).
Para ter uma ferramenta para uma identificação rápida e confiável de culturas puras únicas, o ensaio de PCR foi combinado com um procedimento rápido de isolamento de DNA. Procedimentos demorados de lise enzimática e suscetibilidade variável das bactérias à lisozima foram superados por tratamento ultrassônico das células, com subsequente purificação e concentração pela ligação do DNA a uma matriz de sílica. O material celular de uma única colônia foi considerado suficiente para a PCR.
Recomendação de dispositivo:
UP50H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Müller, M. R. A. (2000): Caracterização do Ecossistema Microbiano de Fermentações de Cereais Usando Métodos Biológicos Moleculares. Dissertação Universidade de Colônia, 2000.
Lactobacillus acidophilus Gr+
Aplicação ultrassônica:
Inativação ultrassônica de Lactobacillus acidophilus Gr+ em leite e sucos.
Recomendação de dispositivo:
UIP500hd
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Oliveira, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Aplicação de processamento térmico assistido por ultrassom para preservação e retenção de qualidade de alimentos líquidos. J Food Prot 66/2003. págs. 1642–1649.
Inativação ultrassônica de Lactobacillus acidophilus Gr+ em leite e sucos.
Recomendação de dispositivo:
UIP500hd
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Oliveira, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Aplicação de processamento térmico assistido por ultrassom para preservação e retenção de qualidade de alimentos líquidos. J Food Prot 66/2003. págs. 1642–1649.
Legionella pneumophila Gr+ em meio diluído
Aplicação ultrassônica:
Inativação ultrassônica de Legionella pneumophila Gr+ em meio diluído.
Recomendação de dispositivo:
UIP500hd
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Dadjour, M. F.; Ogino, C.; Oliveira, S.; Oliveira, S.; Shimizu N. (2006): Desinfecção de Legionella pneumophila por tratamento ultrassônico com TiO2. Água Res 40/2006. pág. 1137-1142.
Inativação ultrassônica de Legionella pneumophila Gr+ em meio diluído.
Recomendação de dispositivo:
UIP500hd
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Dadjour, M. F.; Ogino, C.; Oliveira, S.; Oliveira, S.; Shimizu N. (2006): Desinfecção de Legionella pneumophila por tratamento ultrassônico com TiO2. Água Res 40/2006. pág. 1137-1142.
Leuconostoc mesenteroides
Aplicação ultrassônica:
Atividade da lisozma leucocitária na leucemia mielocítica: a suspensão celular foi sonicada por 15 minutos e as amostras analisadas quanto à atividade da lisozima. A concentração de lisozima das células leucócitos ug./10 foi determinada.
Recomendação de dispositivo:
UP50H
Atividade da lisozma leucocitária na leucemia mielocítica: a suspensão celular foi sonicada por 15 minutos e as amostras analisadas quanto à atividade da lisozima. A concentração de lisozima das células leucócitos ug./10 foi determinada.
Recomendação de dispositivo:
UP50H
Atividade isoenzimática leucocítica na leucemia mielocítica
Aplicação ultrassônica:
Preparo da amostra: a suspensão celular foi tratada por ultrassom e as amostras analisadas quanto à atividade da lisozima. A concentração de lisozima dos leucócitos ug/106 foi determinada.
Recomendação de dispositivo:
UP200St
Preparo da amostra: a suspensão celular foi tratada por ultrassom e as amostras analisadas quanto à atividade da lisozima. A concentração de lisozima dos leucócitos ug/106 foi determinada.
Recomendação de dispositivo:
UP200St
lipossomas
Aplicação ultrassônica:
Formação de SUVs
Clique aqui para ler mais sobre a preparação de lipossomas ultrassônicos!
Recomendação de dispositivo:
UP50H; 3 ciclos de 5 min; em um banho de gelo.
Formação de SUVs
Clique aqui para ler mais sobre a preparação de lipossomas ultrassônicos!
Recomendação de dispositivo:
UP50H; 3 ciclos de 5 min; em um banho de gelo.
Verde Malaquita
Aplicação ultrassônica:
Degradação sonofotocatalítica do verde malaquita (um bactericida forte): A degradação fotocatalítica sozinha é consideravelmente mais rápida do que a degradação sonolítica, a eficiência pode ser melhorada acoplando os dois processos. O verde malaquita, um bactericida forte, é muito ecotóxico para as bactérias marinhas, mas é convertido em orgânicos que são menos ou não tóxicos.
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Degradação sonofotocatalítica do verde malaquita (um bactericida forte): A degradação fotocatalítica sozinha é consideravelmente mais rápida do que a degradação sonolítica, a eficiência pode ser melhorada acoplando os dois processos. O verde malaquita, um bactericida forte, é muito ecotóxico para as bactérias marinhas, mas é convertido em orgânicos que são menos ou não tóxicos.
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Acilação de mangiferina
Aplicação ultrassônica:
Mangiferina (1,3,6,7-tetrahidroxi-2-[3,4,5-tri-hidroxi-6-(hidroximetil)oxan-2-il]xanteno-9-ona; fórmula: C19H18O11)é um polifenol de estrutura C-glicosilxantona que pode ser encontrado em muitas espécies de plantas. A mangiferina apresenta várias atividades farmacológicas. A acilação regiosseletiva da mangiferina pode ser catalisada de forma muito eficiente pela lipase sob ultrassom. Em comparação com os métodos convencionais, a catálise assistida por ultrassom se destaca pelas vantagens de menor tempo de reação e maiores rendimentos. As condições ótimas para a acilação ultrassônica da mangiferina foram encontradas da seguinte forma:
lipase: PCL, doador de acila: acetato de vinila; solvente de reação: DMSO, temperatura de reação: 45 °C, potência ultrassônica: 200W; Proporção de substrato: doador de acila/mangiferina 6/1, carga enzimática: 6 mg/ml
O rendimento de acilação regiosseletiva foi de até 84%.
Recomendação de dispositivo:
UP200St ou UP200Ht
Referência/Trabalho de Pesquisa:
cp.: Wang, Z.; Wang, R.; Tian, J.; Zhao, B; Wei, X.F.; Su, Y.L.; Li, C.Y.; Oliveira, S.G.; Wang, L. (2010): Efeito do ultrassom na acilação regiosseletiva de mangiferina em solventes não aquosos catalisada por lipase. J. Asian Nat Prod. Res. 12/1, 2010. 56-63.
Mangiferina (1,3,6,7-tetrahidroxi-2-[3,4,5-tri-hidroxi-6-(hidroximetil)oxan-2-il]xanteno-9-ona; fórmula: C19H18O11)é um polifenol de estrutura C-glicosilxantona que pode ser encontrado em muitas espécies de plantas. A mangiferina apresenta várias atividades farmacológicas. A acilação regiosseletiva da mangiferina pode ser catalisada de forma muito eficiente pela lipase sob ultrassom. Em comparação com os métodos convencionais, a catálise assistida por ultrassom se destaca pelas vantagens de menor tempo de reação e maiores rendimentos. As condições ótimas para a acilação ultrassônica da mangiferina foram encontradas da seguinte forma:
lipase: PCL, doador de acila: acetato de vinila; solvente de reação: DMSO, temperatura de reação: 45 °C, potência ultrassônica: 200W; Proporção de substrato: doador de acila/mangiferina 6/1, carga enzimática: 6 mg/ml
O rendimento de acilação regiosseletiva foi de até 84%.
Recomendação de dispositivo:
UP200St ou UP200Ht
Referência/Trabalho de Pesquisa:
cp.: Wang, Z.; Wang, R.; Tian, J.; Zhao, B; Wei, X.F.; Su, Y.L.; Li, C.Y.; Oliveira, S.G.; Wang, L. (2010): Efeito do ultrassom na acilação regiosseletiva de mangiferina em solventes não aquosos catalisada por lipase. J. Asian Nat Prod. Res. 12/1, 2010. 56-63.
Extração de moléculas
Aplicação ultrassônica:
Protocolo de extração para extração de gesso, reólita, basalto, freixo edfell e vidro de obsidiana:
Uma amostra de 1 g de regolito ou rocha britada é submetida a extração líquida sob irradiação ultrassônica para extrair e solubilizar moléculas-alvo. Portanto, 3ml de MeOH P80 foi adicionado à amostra analógica de 1g em um tubo de ensaio de vidro e sonicado por 20 minutos com um dispositivo do tipo sonda ultrassônica UP50H definido em 40% de amplitude. A mistura foi deixada em repouso por 10 minutos, e o sobrenadante turvo que se formou acima da amostra análoga sedimentada foi decantado em tubos de centrífuga de 1,5 ml. Para minimizar a perda de componentes extraídos por adsorção nas superfícies dos tubos de centrífuga de polímero hidrofóbico, os tubos foram primeiro bloqueados com 0,5% (p / v) de BSA em 100 mM HEPES pH 7,4. Os sobrenadantes foram clarificados por centrifugação a 17000 G por 10 minutos e armazenados a 2 – 8 ° C em frascos de vidro até serem testados no imunoensaio.
Recomendação de dispositivo:
UP50H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Rix, C. (2012): Detectando Vida em Marte e o Chip Marcador de Vida: Ensaios de anticorpos para detectar moléculas orgânicas em extratos líquidos de amostras marcianas. Dissertação: Cranfield University, 2012.
Protocolo de extração para extração de gesso, reólita, basalto, freixo edfell e vidro de obsidiana:
Uma amostra de 1 g de regolito ou rocha britada é submetida a extração líquida sob irradiação ultrassônica para extrair e solubilizar moléculas-alvo. Portanto, 3ml de MeOH P80 foi adicionado à amostra analógica de 1g em um tubo de ensaio de vidro e sonicado por 20 minutos com um dispositivo do tipo sonda ultrassônica UP50H definido em 40% de amplitude. A mistura foi deixada em repouso por 10 minutos, e o sobrenadante turvo que se formou acima da amostra análoga sedimentada foi decantado em tubos de centrífuga de 1,5 ml. Para minimizar a perda de componentes extraídos por adsorção nas superfícies dos tubos de centrífuga de polímero hidrofóbico, os tubos foram primeiro bloqueados com 0,5% (p / v) de BSA em 100 mM HEPES pH 7,4. Os sobrenadantes foram clarificados por centrifugação a 17000 G por 10 minutos e armazenados a 2 – 8 ° C em frascos de vidro até serem testados no imunoensaio.
Recomendação de dispositivo:
UP50H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Rix, C. (2012): Detectando Vida em Marte e o Chip Marcador de Vida: Ensaios de anticorpos para detectar moléculas orgânicas em extratos líquidos de amostras marcianas. Dissertação: Cranfield University, 2012.
Pellets de fígado de rato
Aplicação ultrassônica:
Os pellets foram lavados e sonicados por 5 min com mais 0,5 mL de LB2 e centrifugados a 12.000 g por mais 20 min, e as duas frações resultantes de sobrenadante foram coletadas. Finalmente, os pellets foram dissolvidos com 0,5 mL de tampão contendo 40 mM de tris base, 5 M de ureia, 2 M de tioureia, 4% de CHAPS, 100 mM de DTT, 0,5% (v/v) de biólito 3-10 (LB3), e foram sonicados e centrifugados a 12.000 g por 20 min.
Recomendação de dispositivo:
UP200S; por 5min.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Gazzana et al. (2009): Uma atualização sobre o proteoma do fígado de camundongo.
Os pellets foram lavados e sonicados por 5 min com mais 0,5 mL de LB2 e centrifugados a 12.000 g por mais 20 min, e as duas frações resultantes de sobrenadante foram coletadas. Finalmente, os pellets foram dissolvidos com 0,5 mL de tampão contendo 40 mM de tris base, 5 M de ureia, 2 M de tioureia, 4% de CHAPS, 100 mM de DTT, 0,5% (v/v) de biólito 3-10 (LB3), e foram sonicados e centrifugados a 12.000 g por 20 min.
Recomendação de dispositivo:
UP200S; por 5min.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Gazzana et al. (2009): Uma atualização sobre o proteoma do fígado de camundongo.
Suspensão de fígado de rato
Aplicação ultrassônica:
Homogeneização da amostra para produzir lisado celular.
Recomendação de dispositivo:
UP200S; por 3 x 20 seg.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Gazzana et al. (2009): Uma atualização sobre o proteoma do fígado de camundongo.
Homogeneização da amostra para produzir lisado celular.
Recomendação de dispositivo:
UP200S; por 3 x 20 seg.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Gazzana et al. (2009): Uma atualização sobre o proteoma do fígado de camundongo.
Penicillium digitatum
Aplicação ultrassônica:
Inativação ultrassônica de Penicillium digitatum (um patógeno vegetal) em meio de crescimento Sabouraud.
Recomendação de dispositivo:
UP200St
Referência/Trabalho de Pesquisa:
López-Malo, A.; Oliveira, E.; Jiménez-Fernández, M.; Oliveira, S. M.; Guerrero, S. (2005): Inativação fúngica multifatorial combinando termossonicação e antimicrobianos. J. Eng. Alimentar 67/2005. pág. 87-93.
Inativação ultrassônica de Penicillium digitatum (um patógeno vegetal) em meio de crescimento Sabouraud.
Recomendação de dispositivo:
UP200St
Referência/Trabalho de Pesquisa:
López-Malo, A.; Oliveira, E.; Jiménez-Fernández, M.; Oliveira, S. M.; Guerrero, S. (2005): Inativação fúngica multifatorial combinando termossonicação e antimicrobianos. J. Eng. Alimentar 67/2005. pág. 87-93.
Ficocianina de Spirulina platensis (Arthrospira platensis)
Aplicação ultrassônica:
Extração de ficocianina de células de Spirulina platensis (Arthrospira platensis).
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Extração de ficocianina de células de Spirulina platensis (Arthrospira platensis).
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Células vegetais e tecidos vegetais
Aplicação ultrassônica:
30% de células vegetais embaladas (W / V) e água destilada são interrompidas por sonicação por 1-15 min.; Desintegração do tecido vegetal: 1 g de tecido seco suspenso em álcool é desintegrado durante a sonicação de cerca de 5 min.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
30% de células vegetais embaladas (W / V) e água destilada são interrompidas por sonicação por 1-15 min.; Desintegração do tecido vegetal: 1 g de tecido seco suspenso em álcool é desintegrado durante a sonicação de cerca de 5 min.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Plaquetas
Aplicação ultrassônica:
Preparação do lisado de plaquetas: Interrupção em 1-5 min.
Recomendação de dispositivo:
UP200Ht
Preparação do lisado de plaquetas: Interrupção em 1-5 min.
Recomendação de dispositivo:
UP200Ht
Pleurotus tuberregium
Aplicação ultrassônica:
Extração de polissacarídeos do fungo comestível Pleurotus tuberregium
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Extração de polissacarídeos do fungo comestível Pleurotus tuberregium
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Poli(ácido lático-co-glicólico) (PLGA)
Aplicação ultrassônica:
Preparação de poli(ácido lático-co-glicólico) (PLGA) carregado com albumina de soro bovino (BSA) por sonicação em 40 seg.
Recomendação de dispositivo:
Dmini; por 40 segundos.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Freitas et al. (2005): Emulsificação ultrassônica de fluxo combinado com micromistura estática para produção asséptica de microesferas por extração por solvente.
Preparação de poli(ácido lático-co-glicólico) (PLGA) carregado com albumina de soro bovino (BSA) por sonicação em 40 seg.
Recomendação de dispositivo:
Dmini; por 40 segundos.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Freitas et al. (2005): Emulsificação ultrassônica de fluxo combinado com micromistura estática para produção asséptica de microesferas por extração por solvente.
Polifenóis de maçã
Aplicação ultrassônica:
Extração ultrassônica de polifenóis da maçã. Solvente: aquoso. Aumento do rendimento em 6%; intensidade de sonicação: 20-75Ws/ml; temp do processo.: aquecido a 80 graus C.
Recomendação de dispositivo:
UIP2000hd
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Vilkhu, K.; Manassés, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Recuperação Ultrassônica e Modificação de Ingredientes Alimentares. In: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Tecnologias de Ultrassom para Alimentos e Bioprocessamento. Nova Iorque: Springer, 2011. pág. 345-368.
Extração ultrassônica de polifenóis da maçã. Solvente: aquoso. Aumento do rendimento em 6%; intensidade de sonicação: 20-75Ws/ml; temp do processo.: aquecido a 80 graus C.
Recomendação de dispositivo:
UIP2000hd
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Vilkhu, K.; Manassés, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Recuperação Ultrassônica e Modificação de Ingredientes Alimentares. In: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Tecnologias de Ultrassom para Alimentos e Bioprocessamento. Nova Iorque: Springer, 2011. pág. 345-368.
Polifenóis do chá preto
Aplicação ultrassônica:
Extração ultrassônica de polifenóis do chá preto. Solvente: aquoso. Aumento do rendimento em 6-18%; intensidade de sonicação: 8-10Ws / ml; pressão ambiente, temperatura do processo: aquecido a 90 °C.
Recomendação de dispositivo:
UIP2000hd
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Vilkhu, K.; Manassés, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Recuperação Ultrassônica e Modificação de Ingredientes Alimentares. In: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Tecnologias de Ultrassom para Alimentos e Bioprocessamento. Nova Iorque: Springer, 2011. pág. 345-368.
Extração ultrassônica de polifenóis do chá preto. Solvente: aquoso. Aumento do rendimento em 6-18%; intensidade de sonicação: 8-10Ws / ml; pressão ambiente, temperatura do processo: aquecido a 90 °C.
Recomendação de dispositivo:
UIP2000hd
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Vilkhu, K.; Manassés, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Recuperação Ultrassônica e Modificação de Ingredientes Alimentares. In: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Tecnologias de Ultrassom para Alimentos e Bioprocessamento. Nova Iorque: Springer, 2011. pág. 345-368.
Polifenóis de bagaço de uva vermelha
Aplicação ultrassônica:
Extração ultrassônica de polifenóis de bagaço de uva vermelha. Solvente: aquoso. Aumento do rendimento em 11-35%; intensidade de sonicação: 20-75Ws/ml; pressão ambiente.
Recomendação de dispositivo:
UIP2000hd
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Vilkhu, K.; Manassés, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Recuperação Ultrassônica e Modificação de Ingredientes Alimentares. In: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Tecnologias de Ultrassom para Alimentos e Bioprocessamento. Nova Iorque: Springer, 2011. pág. 345-368.
Extração ultrassônica de polifenóis de bagaço de uva vermelha. Solvente: aquoso. Aumento do rendimento em 11-35%; intensidade de sonicação: 20-75Ws/ml; pressão ambiente.
Recomendação de dispositivo:
UIP2000hd
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Vilkhu, K.; Manassés, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Recuperação Ultrassônica e Modificação de Ingredientes Alimentares. In: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Tecnologias de Ultrassom para Alimentos e Bioprocessamento. Nova Iorque: Springer, 2011. pág. 345-368.
Polifenóis, aminoácidos e cafeína do chá verde
Aplicação ultrassônica:
Extração de compostos ativos do chá verde em água
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Extração de compostos ativos do chá verde em água
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Carne de porco: Salmoura de lombos de porco
Aplicação ultrassônica:
Para salmoura assistida por ultrassom, lombos de porco (Longissimus dorsi) foram imersos em salmoura de cloreto de sódio (40 g L−1) e tratados a 5°C com ultrassom de baixa frequência (20 kHz) em baixa intensidade (2–4 W/cm−2). O efeito da cura assistida por ultrassom na microestrutura do tecido suíno, desnaturação de proteínas, capacidade de ligação à água (WBC), capacidade de retenção de água (WHC), coeficiente de difusão de cloreto de sódio (D) e no perfil textural da carne (TPA) foi investigado. Os resultados mostraram que o tratamento ultrassônico causou alterações microestruturais favoráveis no tecido da carne. A capacidade de retenção de água e as propriedades texturais foram melhoradas pelo tratamento ultrassônico em comparação com amostras caídas e salgadas estáticas. No entanto, esses efeitos positivos foram altamente dependentes da intensidade ultrassônica. Intensidades mais altas e/ou tempos de tratamento mais longos causaram desnaturação das proteínas. O modelo de coeficiente de difusão constante foi capaz de descrever com precisão a cinética de difusão de NaCl durante a salmoura. O tratamento ultrassônico aumentou significativamente a difusão do sal em comparação com as amostras salgadas em condições estáticas e o coeficiente de difusão aumentou exponencialmente com o aumento da intensidade ultrassônica.
Recomendação de dispositivo:
UP200Ht com sonotrodo S26d40
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Siro, I.; Ven, Cs.; Balla, Cs.; Oliveira, G.; Zeke, I.; Friedrich, L. (2009): Aplicação de uma técnica de cura assistida por ultrassom para melhorar a difusão do cloreto de sódio em carne suína. Jornal de Engenharia de Alimentos 91/2, 2009. 353–362.
Para salmoura assistida por ultrassom, lombos de porco (Longissimus dorsi) foram imersos em salmoura de cloreto de sódio (40 g L−1) e tratados a 5°C com ultrassom de baixa frequência (20 kHz) em baixa intensidade (2–4 W/cm−2). O efeito da cura assistida por ultrassom na microestrutura do tecido suíno, desnaturação de proteínas, capacidade de ligação à água (WBC), capacidade de retenção de água (WHC), coeficiente de difusão de cloreto de sódio (D) e no perfil textural da carne (TPA) foi investigado. Os resultados mostraram que o tratamento ultrassônico causou alterações microestruturais favoráveis no tecido da carne. A capacidade de retenção de água e as propriedades texturais foram melhoradas pelo tratamento ultrassônico em comparação com amostras caídas e salgadas estáticas. No entanto, esses efeitos positivos foram altamente dependentes da intensidade ultrassônica. Intensidades mais altas e/ou tempos de tratamento mais longos causaram desnaturação das proteínas. O modelo de coeficiente de difusão constante foi capaz de descrever com precisão a cinética de difusão de NaCl durante a salmoura. O tratamento ultrassônico aumentou significativamente a difusão do sal em comparação com as amostras salgadas em condições estáticas e o coeficiente de difusão aumentou exponencialmente com o aumento da intensidade ultrassônica.
Recomendação de dispositivo:
UP200Ht com sonotrodo S26d40
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Siro, I.; Ven, Cs.; Balla, Cs.; Oliveira, G.; Zeke, I.; Friedrich, L. (2009): Aplicação de uma técnica de cura assistida por ultrassom para melhorar a difusão do cloreto de sódio em carne suína. Jornal de Engenharia de Alimentos 91/2, 2009. 353–362.
Porphyra yezoensis
Aplicação ultrassônica:
Degradação ultrassônica de polissacarídeos de Porphyra yezoensis: 50mL de solução de polissacarídeos de porphyra yezoensis 1,0 g/100mL (peso seco) foram sonicados por 4 horas com um UP400S.
Recomendação de dispositivo:
UP400S; ultrassom pulsado (ciclos: 2 segundos ligado/2 segundos desligado) a 20°C.
Degradação ultrassônica de polissacarídeos de Porphyra yezoensis: 50mL de solução de polissacarídeos de porphyra yezoensis 1,0 g/100mL (peso seco) foram sonicados por 4 horas com um UP400S.
Recomendação de dispositivo:
UP400S; ultrassom pulsado (ciclos: 2 segundos ligado/2 segundos desligado) a 20°C.
Pós
Aplicação ultrassônica:
Moagem, desaglomeração e dispersão em tamanho de partícula pequeno e relativamente uniforme.
Recomendação de dispositivo:
UP200St
Moagem, desaglomeração e dispersão em tamanho de partícula pequeno e relativamente uniforme.
Recomendação de dispositivo:
UP200St
Ossos de rato
Fígado de rato
Aplicação ultrassônica:
Ruptura e homogeneização de tecidos com um UP400S.
Recomendação de dispositivo:
UP400S; 3 vezes por 30 seg.; no gelo.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Oh et al. (2003): O gene da acetil-CoA carboxilase é regulado pela proteína 1 de ligação ao elemento regulador de esterol no fígado. Jornal de Química Biológica 2003.
Ruptura e homogeneização de tecidos com um UP400S.
Recomendação de dispositivo:
UP400S; 3 vezes por 30 seg.; no gelo.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Oh et al. (2003): O gene da acetil-CoA carboxilase é regulado pela proteína 1 de ligação ao elemento regulador de esterol no fígado. Jornal de Química Biológica 2003.
Pele de rato
Rawolfia Serpentina
Rebaudiosídeo A
Aplicação ultrassônica:
Amostras de 10g de folhas secas e moídas de estévia foram extraídas em 100mL de água sob agitação contínua (com agitador magnético). O valor do pH foi controlado com fosfato de sódio 0,01 M pH 7. A amostra foi colocada em um copo de vidro de 150 mL e sonicada com um ultrassônico tipo sonda (UIP500hd, 20kHz, 500W). A ponta do sonotrodo foi imersa cerca de 1,5 cm na pasta de folhas de estévia. O dispositivo ultrassônico foi configurado para uma potência de 350W. Um tratamento de sonicação suave de 350 W por 5-10 min. a uma temperatura de processo constante de 30 ° C deu um rendimento de rebaudiosídeo A de 30-34g por amostra de 100g. Após a sonicação, a solução do extrato foi centrifugada e filtrada através de membrana microporosa de 0,45 μm; o filtrado foi tomado para análise do conteúdo total de rebaudiosídeo A. O rendimento de extração do conteúdo total de rebaudiosídeo A foi analisado por HPLC.
Pela extração assistida por ultrassom sem solvente, obteve-se um alto rendimento de rebaudiosídeo A em comparação com os métodos tradicionais de extração, como extração por calor ou maceração.
Recomendação de dispositivo:
UIP500hd
Amostras de 10g de folhas secas e moídas de estévia foram extraídas em 100mL de água sob agitação contínua (com agitador magnético). O valor do pH foi controlado com fosfato de sódio 0,01 M pH 7. A amostra foi colocada em um copo de vidro de 150 mL e sonicada com um ultrassônico tipo sonda (UIP500hd, 20kHz, 500W). A ponta do sonotrodo foi imersa cerca de 1,5 cm na pasta de folhas de estévia. O dispositivo ultrassônico foi configurado para uma potência de 350W. Um tratamento de sonicação suave de 350 W por 5-10 min. a uma temperatura de processo constante de 30 ° C deu um rendimento de rebaudiosídeo A de 30-34g por amostra de 100g. Após a sonicação, a solução do extrato foi centrifugada e filtrada através de membrana microporosa de 0,45 μm; o filtrado foi tomado para análise do conteúdo total de rebaudiosídeo A. O rendimento de extração do conteúdo total de rebaudiosídeo A foi analisado por HPLC.
Pela extração assistida por ultrassom sem solvente, obteve-se um alto rendimento de rebaudiosídeo A em comparação com os métodos tradicionais de extração, como extração por calor ou maceração.
Recomendação de dispositivo:
UIP500hd
Amido de arroz
Aplicação ultrassônica:
Interrupção, isolamento de amido e quebra de ligações não covalentes entre proteína e amido em uma pasta de farinha de arroz (33%) em 20 – 40 min.
Recomendação de dispositivo:
UP500hd; 20 – 40 min.
Interrupção, isolamento de amido e quebra de ligações não covalentes entre proteína e amido em uma pasta de farinha de arroz (33%) em 20 – 40 min.
Recomendação de dispositivo:
UP500hd; 20 – 40 min.
Rotíferos
Aplicação ultrassônica:
Ruptura celular do mesozooplâncton: por sonicação sob as seguintes condições de quatro taxas de fluxo (200, 400, 520 e 800lh-1) e quatro amplitudes (25, 50, 75 e 100%) uma taxa de morte entre 58 e 85% foi alcançada.
Recomendação de dispositivo:
UP2000 com célula de fluxo
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Viitaslo et al. (2005): Ozônio, luz ultravioleta, ultrassom e peróxido de hidrogênio como tratamentos de água de lastro – Experimentos com mesozooplâncton em água salobra com baixo teor salino. Jornal de Engenharia Ambiental Marinha, 8(1), 35-55.
Ruptura celular do mesozooplâncton: por sonicação sob as seguintes condições de quatro taxas de fluxo (200, 400, 520 e 800lh-1) e quatro amplitudes (25, 50, 75 e 100%) uma taxa de morte entre 58 e 85% foi alcançada.
Recomendação de dispositivo:
UP2000 com célula de fluxo
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Viitaslo et al. (2005): Ozônio, luz ultravioleta, ultrassom e peróxido de hidrogênio como tratamentos de água de lastro – Experimentos com mesozooplâncton em água salobra com baixo teor salino. Jornal de Engenharia Ambiental Marinha, 8(1), 35-55.
S. fragilis
Saccharomyces cerevisiae
Aplicação ultrassônica:
Ruptura
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Guerrero, S,; López-Malo, A.; Alzamora, S. M. (2001): Efeito do ultrassom na sobrevivência de Saccharomyces cerevisiae: influência da temperatura, pH e amplitude. Innov. Ciência dos Alimentos Emerg Technol. 2/2001. pág. 31-39.
Ruptura
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Guerrero, S,; López-Malo, A.; Alzamora, S. M. (2001): Efeito do ultrassom na sobrevivência de Saccharomyces cerevisiae: influência da temperatura, pH e amplitude. Innov. Ciência dos Alimentos Emerg Technol. 2/2001. pág. 31-39.
Saccharomyces cerevisiae
Aplicação ultrassônica:
Inativação ultrassônica de Saccharomyces cerevisiae em meio de crescimento Sabouraud e em solução salina.
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Yap, A.; Jiranek, V.; Oliveira, P.; Barnes, M.; Bates, D. (2007): Estudos sobre a aplicação de ultrassom de alta potência para limpeza e desinfecção de barris e pranchas. Austr. Vinho da Nova Zelândia Indust. J. 22(3)/ 2007. pág. 96-104.
Inativação ultrassônica de Saccharomyces cerevisiae em meio de crescimento Sabouraud e em solução salina.
Recomendação de dispositivo:
UP400S
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Yap, A.; Jiranek, V.; Oliveira, P.; Barnes, M.; Bates, D. (2007): Estudos sobre a aplicação de ultrassom de alta potência para limpeza e desinfecção de barris e pranchas. Austr. Vinho da Nova Zelândia Indust. J. 22(3)/ 2007. pág. 96-104.
Açafrão, açafrão sativus
Aplicação ultrassônica:
Extração de compostos ativos (aromatizantes e corantes).
Clique aqui para ler mais sobre a extração do açafrão!
Recomendação de dispositivo:
UP50H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Kadkhodaee et al. (2007): Extração ultrassônica de compostos ativos do açafrão. Acta Hortic. 739, 2007. 417-425.
Extração de compostos ativos (aromatizantes e corantes).
Clique aqui para ler mais sobre a extração do açafrão!
Recomendação de dispositivo:
UP50H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Kadkhodaee et al. (2007): Extração ultrassônica de compostos ativos do açafrão. Acta Hortic. 739, 2007. 417-425.
Salmonella Senftenberg 775W Gr-
Aplicação ultrassônica:
Inativação ultrassônica de Salmonella Senftenberg 775W Gr- em tampão citrato-fosfato McIlvaine ou caldo nutritivo.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Álvarez, I.; Oliveira, P.; Oliveira, R.; Condón, S. (2006): Inativação de Salmonella Senftenberg 775W por ondas ultrassônicas sob pressão em diferentes atividades hídricas. Int. J. Microbiol Alimentar. 108/2006. pág. 218-225.
Inativação ultrassônica de Salmonella Senftenberg 775W Gr- em tampão citrato-fosfato McIlvaine ou caldo nutritivo.
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Álvarez, I.; Oliveira, P.; Oliveira, R.; Condón, S. (2006): Inativação de Salmonella Senftenberg 775W por ondas ultrassônicas sob pressão em diferentes atividades hídricas. Int. J. Microbiol Alimentar. 108/2006. pág. 218-225.
Salvia miltiorrhiza bunge
Aplicação ultrassônica:
Extração de compostos biológicos ativos: Danshensu sódico e quatro tanshinonas (dihidrotanshione I, tanshinone I, cryptotanshinone e tanshinone IIA).
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Extração de compostos biológicos ativos: Danshensu sódico e quatro tanshinonas (dihidrotanshione I, tanshinone I, cryptotanshinone e tanshinone IIA).
Recomendação de dispositivo:
UP100H
Salvia Officinalis
Aplicação ultrassônica:
Extração de compostos ativos da Salvia Officinalis (sálvia) em menos de 2 horas.
Recomendação de dispositivo:
UP50H
Extração de compostos ativos da Salvia Officinalis (sálvia) em menos de 2 horas.
Recomendação de dispositivo:
UP50H
soro
Fígados císticos de ovelhas, pulmões e sangue positivo (antígenos de Echinococcus granulosus)
Aplicação ultrassônica:
Fígados císticos de ovelhas, pulmões e sangue positivo (antígenos de Echinococcus granulosus em cordeiros): A amostra foi então sonicada por 2 × 15 segundos em gelo até que nenhum protoscólice intacto fosse visível.
Recomendação de dispositivo:
UP200S; 2 x 15 seg.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Tabar et al. (2009): Resposta de anticorpos contra fluido hidático, protoscólex e corpo inteiro de antígenos de Echinococcus granulosus em cordeiros. Jornal de Pesquisa Veterinária, Volume 10, Edição 3; 2009. 283-288.
Fígados císticos de ovelhas, pulmões e sangue positivo (antígenos de Echinococcus granulosus em cordeiros): A amostra foi então sonicada por 2 × 15 segundos em gelo até que nenhum protoscólice intacto fosse visível.
Recomendação de dispositivo:
UP200S; 2 x 15 seg.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Tabar et al. (2009): Resposta de anticorpos contra fluido hidático, protoscólex e corpo inteiro de antígenos de Echinococcus granulosus em cordeiros. Jornal de Pesquisa Veterinária, Volume 10, Edição 3; 2009. 283-288.
Trioleato de sorbitante, etanol (como solvente) e pó de Bi-2212
Aplicação ultrassônica:
Desaglomerar uma pasta contendo o dispersante Trioleato de Sorbitante, etanol (como solvente) e pó de Bi-2212.
Recomendação de dispositivo:
UP200S; por 3 min.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Mora et al. (2009): Fabricação de Revestimentos Supercondutores em Ladrilhos Cerâmicos Estruturais.
Desaglomerar uma pasta contendo o dispersante Trioleato de Sorbitante, etanol (como solvente) e pó de Bi-2212.
Recomendação de dispositivo:
UP200S; por 3 min.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Mora et al. (2009): Fabricação de Revestimentos Supercondutores em Ladrilhos Cerâmicos Estruturais.
Isoflavonas de soja
Aplicação ultrassônica:
Extração ultrassônica de isoflavonas de soja em água e solvente. Aumento do rendimento de até 15% na eficiência de extração.
Recomendação de dispositivo:
UP200St
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Rostagno et al. (2003), referenciado por Vilkhu, K.; Manassés, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Recuperação e modificação ultrassônica de ingredientes alimentícios. In: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Tecnologias de Ultrassom para Alimentos e Bioprocessamento. Nova Iorque: Springer, 2011. pág. 345-368.
Extração ultrassônica de isoflavonas de soja em água e solvente. Aumento do rendimento de até 15% na eficiência de extração.
Recomendação de dispositivo:
UP200St
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Rostagno et al. (2003), referenciado por Vilkhu, K.; Manassés, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Recuperação e modificação ultrassônica de ingredientes alimentícios. In: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Tecnologias de Ultrassom para Alimentos e Bioprocessamento. Nova Iorque: Springer, 2011. pág. 345-368.
Proteína de soja
Aplicação ultrassônica:
Extração ultrassônica de proteína de soja em água e álcali (hidróxido de sódio). Aumento do rendimento em 53%. A sonicação em linha foi considerada mais eficiente como extração em lote (a sonicação em linha deu um rendimento 23% maior do que a sonicação em lote).
Recomendação de dispositivo:
UIP1000hd para batelada/béquer e com reator de célula de fluxo para sonicação em linha.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Moulton e Wang (1982), referenciado por Vilkhu, K.; Manassés, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Recuperação e modificação ultrassônica de ingredientes alimentícios. In: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Tecnologias de Ultrassom para Alimentos e Bioprocessamento. Nova Iorque: Springer, 2011. pág. 345-368.
Extração ultrassônica de proteína de soja em água e álcali (hidróxido de sódio). Aumento do rendimento em 53%. A sonicação em linha foi considerada mais eficiente como extração em lote (a sonicação em linha deu um rendimento 23% maior do que a sonicação em lote).
Recomendação de dispositivo:
UIP1000hd para batelada/béquer e com reator de célula de fluxo para sonicação em linha.
Referência/Trabalho de Pesquisa:
Moulton e Wang (1982), referenciado por Vilkhu, K.; Manassés, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Recuperação e modificação ultrassônica de ingredientes alimentícios. In: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Tecnologias de Ultrassom para Alimentos e Bioprocessamento. Nova Iorque: Springer, 2011. pág. 345-368.
Cabeças de esperma (humanas)
Caudas de esperma (humanas)
Stevia rebaudiana Bert.
Aplicação ultrassônica:
A extração ultrassônica de glicosídeo de esteviosídeo de amostras de 10 g de folhas secas de Stevia rebaudiana com quatro tamanhos de partículas (0,315 mm, 2 mm, 6,3 mm e folhas secas trituradas) foi misturada com diferentes solventes: água destilada e misturas água/etanol (55% e 70%) com diferentes pesos de amostra para relações de volume de solvente: 1/10, 1/8, 1/5 (p/v) e depois expostas ao ultrassom à temperatura ambiente. Tempo de sonicação: < 5 min. Recomendação de dispositivo:
UP200St
A extração ultrassônica de glicosídeo de esteviosídeo de amostras de 10 g de folhas secas de Stevia rebaudiana com quatro tamanhos de partículas (0,315 mm, 2 mm, 6,3 mm e folhas secas trituradas) foi misturada com diferentes solventes: água destilada e misturas água/etanol (55% e 70%) com diferentes pesos de amostra para relações de volume de solvente: 1/10, 1/8, 1/5 (p/v) e depois expostas ao ultrassom à temperatura ambiente. Tempo de sonicação: < 5 min. Recomendação de dispositivo:
UP200St
Entre em contato conosco! / Pergunte-nos!
Este tutorial explica que tipo de sonicador é melhor para suas tarefas de preparação de amostras, como lise, ruptura celular, isolamento de proteínas, fragmentação de DNA e RNA em laboratórios, análise e pesquisa. Escolha o tipo de sonicador ideal para sua aplicação, volume de amostra, número de amostra e rendimento. A Hielscher Ultrasonics tem o homogeneizador ultrassônico ideal para você!
Como encontrar o sonicador perfeito para ruptura celular e extração de proteínas em ciência e análise
Ultrassonicadores de alto desempenho para qualquer tamanho
Os disruptores celulares Hielscher Ultrasonics e os homogeneizadores de tecidos estão disponíveis em qualquer tamanho para qualquer volume. Se você tem que sonicar pequenos tamanhos de amostra, amostras de massa, como placas de 96 poços, volumes de tamanho médio ou caminhões por hora, nosso portfólio oferece o ultrassônico ideal para sua aplicação. Os homogeneizadores ultrassônicos compactos e portáteis são ideais para laboratório e pesquisa, enquanto nossa série industrial cobre tudo entre 0,5kW a 16kW por processador ultrassônico. Com a capacidade de serem instalados como clusters, com os ultrassônicos Hielscher você pode processar praticamente qualquer volume. A robustez do equipamento ultrassônico da Hielscher permite operação 24 horas por dia, 7 dias por semana, em ambientes pesados e exigentes.
O software sofisticado e inteligente permite o mais alto controle do processo e a conveniência do operador. Todos os dados de sonicação são gravados automaticamente em um cartão SD integrado. Outros recursos inteligentes incluem pré-configuração e salvamento de parâmetros de sonicação, conexão LAN e controle remoto do navegador.
A tabela abaixo fornece uma indicação da capacidade aproximada de processamento de nossos sonicadores de tamanho de laboratório para homogeneização de tecidos e outras tarefas de preparação de amostras:
| Dispositivos recomendados | Volume do lote | Vazão |
|---|---|---|
| UIP400MTP Soniador de Placas de 96 Poços | placas de microtitulação / multipoços | n.a. |
| CupHorn ultrassônico | CupHorn para frascos ou copo | n.a. |
| GDmini2 | reator ultrassônico de microfluxo | n.a. |
| VialTweeter | 0.5 a 1,5mL | n.a. |
| UP100H | 1 a 500mL | 10 a 200mL/min |
| UP200Ht, UP200St | 10 a 1000mL | 20 a 200mL/min |
| UP400St | 10 a 2000mL | 20 a 400mL/min |
| Agitador de peneira ultrassônico | n.a. | n.a. |
ultrassonicador UP200Ht com microponta S26d2 de 2 mm para a sonicação de pequenas amostras