Jak sonikacja może zwiększyć skuteczność lizozymu w lizie komórek bakteryjnych
, Kathrin Hielscher, opublikowano w dziale Aktualności Hielscher
Rozbijanie komórek bakteryjnych jest kluczowym etapem w biotechnologii, badaniach farmaceutycznych i produkcji białek. Jednym z najczęściej stosowanych narzędzi do tego celu jest lizozym, enzym osłabiający ściany komórkowe bakterii. Choć lizozym jest skuteczny, sam często nie działa wystarczająco szybko ani silnie – zwłaszcza w przypadku gęstych hodowli lub bakterii zmodyfikowanych w celu nadekspresji białek.
Właśnie tutaj przydaje się sonikacja. Badacze coraz częściej wykorzystują obróbkę ultradźwiękową, aby znacząco usprawnić lizę komórek z użyciem lizozymu. Stosowane razem lizozym i sonikacja tworzą wysoce wydajny, wzajemnie uzupełniający się system, który zapewnia szybsze, pełniejsze i bardziej powtarzalne wyniki.
Dlaczego sam lizozym często nie wystarcza
Lizozym działa poprzez rozkład peptydoglikanu, kluczowego składnika strukturalnego ścian komórkowych bakterii. Ta metoda enzymatyczna jest łagodna i szeroko stosowana, szczególnie w przypadku E. coli. Jednak w rzeczywistych warunkach laboratoryjnych zastosowanie samego lizozymu może wiązać się z ograniczeniami.
Typowe trudności obejmują:
- Niepełne rozbijanie komórek w hodowlach o dużej gęstości lub tworzących agregaty
- Długi czas inkubacji
- Zmniejszona skuteczność wobec bakterii wykazujących nadekspresję lub przystosowanych do stresu
- Zmienność między partiami
Ograniczenia te mogą negatywnie wpływać na dalsze procesy, takie jak ekstrakcja białek, klarowanie i oczyszczanie – ostatecznie zmniejszając uzysk i powtarzalność.
Naukowe podstawy synergii lizozymu i sonikacji
Sonikacja wprowadza do ciekłej próbki fale ultradźwiękowe o wysokiej intensywności. Fale te wytwarzają mikroskopijne pęcherzyki, które gwałtownie się zapadają w procesie zwanym kawitacją. Powstające siły ścinania, zmiany ciśnienia i mikrostrumienie fizycznie rozbijają struktury komórkowe.
Gdy sonikację stosuje się po działaniu lizozymu lub równocześnie z nim, obie metody wzajemnie wzmacniają swoje działanie na kilka istotnych sposobów:
- Łatwiejszy dostęp do ściany komórkowej
Lizozym osłabia ścianę komórkową bakterii, czyniąc ją znacznie bardziej podatną na siły mechaniczne wytwarzane przez ultradźwięki. - Szybsza liza komórek
Energia ultradźwiękowa znacząco skraca czas potrzebny do uzyskania całkowitego rozbicia komórek w porównaniu z samą obróbką enzymatyczną. - Bardziej równomierna obróbka
Sonikacja poprawia mieszanie, zapewniając wszystkim komórkom równomierną ekspozycję zarówno na lizozym, jak i naprężenia mechaniczne. - Wyższy uzysk białek
Pełniejsza liza oznacza większe uwalnianie białek wewnątrzkomórkowych, enzymów i metabolitów – co zwiększa całkowity odzysk.
Typowy przebieg sonikacji wspomaganej lizozymem
W laboratoriach pracujących ze szczepami bakterii wykazującymi nadekspresję stosuje się sprawdzoną procedurę łączącą lizę enzymatyczną i ultradźwiękową:
- Ponowne zawieszanie komórek
Zebrane osady bakterii ponownie zawiesza się w odpowiednim buforze do lizy zawierającym lizozym, zazwyczaj w stężeniu 0,1–1 mg/mL. Łagodna sonikacja sprzyja szybkiemu i równomiernemu ponownemu zawieszaniu komórek. - Wstępna obróbka enzymatyczna
Zawiesinę inkubuje się przez 10–30 minut w kontrolowanej temperaturze (zwykle między 4 °C a 25 °C), umożliwiając lizozymowi osłabienie ściany komórkowej. - Rozbijanie ultradźwiękowe
Wstępnie obrobioną zawiesinę poddaje się sonikacji za pomocą procesora ultradźwiękowego Hielscher, przy zoptymalizowanych ustawieniach amplitudy, trybu impulsowego i chłodzenia. - Klarowanie
Resztki komórkowe usuwa się przez wirowanie lub filtrację, uzyskując sklarowany lizat bogaty w białka docelowe.
Dlaczego badacze wybierają sonikatory Hielscher
Sonikatory Hielscher szczególnie dobrze nadają się do lizy komórek wspomaganej lizozymem dzięki swojej precyzji i elastyczności. Kluczowe zalety obejmują:
- Regulowaną amplitudę i ilość dostarczanej energii zapewniające powtarzalną obróbkę
- Pracę w trybie impulsowym ograniczającą nagrzewanie
- Wydajną kawitację w szerokim zakresie objętości i lepkości
- Łatwe skalowanie od mikrolitrowych próbek laboratoryjnych po produkcję przemysłową
To połączenie sprawia, że systemy Hielscher są cennymi narzędziami zarówno w laboratoriach badawczych, jak i w zakładach produkcyjnych działających na dużą skalę.
Sonikator do płytek wielodołkowych UIP400MTP do przygotowywania próbek z wysoką wydajnością
Kluczowe czynniki optymalizacji wyników
Aby w pełni wykorzystać sonikację wspomaganą lizozymem, badacze starannie dostosowują kilka parametrów:
- Stężenie lizozymu: Stosuj najniższą skuteczną dawkę, aby kontrolować koszty i minimalizować zakłócenia na dalszych etapach.
- Energia ultradźwiękowa: Zastosuj wystarczającą moc, aby zapewnić całkowitą lizę bez uszkadzania wrażliwych białek.
- Kontrola temperatury: Systemy chłodzenia lub kąpiele lodowe pomagają chronić składniki docelowe wrażliwe na ciepło.
- Ustawienia impulsów: Sonikacja z przerwami poprawia wydajność kawitacji i stabilność próbki.
Zwiększ skuteczność lizozymów dzięki sonikacji!
Połączenie lizozymu z rozbijaniem ultradźwiękowym zapewnia niezawodne, wysoce wydajne rozwiązanie do lizy komórek bakteryjnych. Sonikacja zwiększa skuteczność obróbki enzymatycznej, zapewniając szybsze przetwarzanie, pełniejsze rozbijanie komórek i wyższy uzysk produktów wewnątrzkomórkowych.
Dzięki precyzyjnie sterowanym i skalowalnym systemom ultradźwiękowym, takim jak systemy Hielscher, badacze mogą dokładnie dostosowywać swoje procedury do wymagań współczesnej biotechnologii – zarówno w małym laboratorium, jak i na przemysłowej linii produkcyjnej.
Liza bakterii z wysoką wydajnością za pomocą sonikatora do mikropłytek UIP400MTP
Literatura / Źródła
- Ghosh, A., Bhar, K. & Siddhanta, A. (2019): Oxygen sequestration by Leghemoglobin is positively regulated via its interaction with another late nodulin, Nlj16 of Lotus japonicus. Journal of Plant Biochemistry and Biotechnology 28, 2019. 414–423.
- Hannah K. Lembke; Adeline Espinasse; Mckenna G. Hanson; Christian J. Grimme;Zhe Tan; Theresa M. Reineke; Erin E. Carlson (2023): Cationic Polymers Enable Internalization of Negatively Charged Chemical Probes into Bacteria. ACS Chem Biol . 2023 September 15; 18(9): 2063–2072.
- Müller MRA, Ehrmann MA, Vogel RF (2000): Multiplex PCR for the Detection ofLactobacillus pontis and Two Related Species in a Sourdough Fermentation. Applied Environmental Microbiology 66, 2000.
- Di Giosia, Matteo; Bomans, Paul; Bottoni, Andrea; Cantelli, Andrea; Falini, Giuseppe; Franchi, Paola; Guarracino, Giuseppe; Friedrich, Heiner; Lucarini, Marco; Paolucci, Francesco; Rapino, Stefania; Sommerdijk, Nico; Soldà, Alice; valle, Francesco ; Zerbetto, Francesco; Calvaresi, Matteo (2018): Proteins as Supramolecular Hosts for C60: A True Solution of C60 in Water. Nanoscale 10(21); 2018.
Najczęściej zadawane pytania
Czym są lizozymy?
Lizozymy są enzymami o działaniu przeciwdrobnoustrojowym, które katalizują hydrolizę wiązań glikozydowych β(1→4) w peptydoglikanie, kluczowym składniku strukturalnym ścian komórkowych bakterii, prowadząc do osłabienia ściany komórkowej i lizy, szczególnie u bakterii Gram-dodatnich oraz komórek bakterii Gram-ujemnych poddanych permeabilizacji.
Jakie są zalety i ograniczenia lizy komórek z użyciem lizosomów?
Liza komórek z użyciem lizozymów oferuje takie zalety jak łagodne warunki reakcji, zachowanie funkcjonalności białek i niewielkie naprężenia mechaniczne, lecz jej ograniczenia obejmują powolną kinetykę, niepełną lizę w gęstych hodowlach bakterii lub hodowlach bakterii opornych, zmniejszoną skuteczność wobec nienaruszonych błon zewnętrznych bakterii Gram-ujemnych oraz zmienność zależną od fizjologii komórek i warunków wzrostu.
Jak sonikacja wzmacnia działanie lizozymów?
Sonikacja wzmacnia aktywność lizozymu poprzez mechaniczne rozbijanie ścian komórkowych bakterii i zwiększanie ich przepuszczalności za sprawą sił ścinania wywołanych kawitacją, co zwiększa dostęp enzymu do peptydoglikanu, przyspiesza kinetykę lizy i prowadzi do pełniejszego i bardziej równomiernego rozbijania komórek.

