Protocollo di analisi MBEC con il Sonicator a 96 pozzetti UIP400MTP
Il saggio MBEC viene utilizzato per determinare la concentrazione di agenti antimicrobici necessaria per eliminare i biofilm formatisi sui coperchi dei pioli. Per valutare la vitalità del biofilm, i biofilm devono prima essere staccati dai coperchi a pioli di una piastra a 96 pozzetti. La sonicazione è il metodo più affidabile ed efficiente per questo distacco. Il sonicatore per piastre a più pozzetti UIP400MTP è stato progettato specificamente per processare le piastre di saggio con la massima efficienza e convenienza, semplificando e accelerando i saggi MBEC ad alta produttività.
Sonicazione per il distacco del biofilm
La sonicazione è un passaggio cruciale nei saggi di concentrazione minima di biofilm (MBEC), in quanto consente di staccare efficacemente le cellule del biofilm dal loro attacco superficiale. I biofilm sono comunità intrinsecamente strutturate di microrganismi racchiusi in una matrice extracellulare, che li rende significativamente più resistenti agli agenti antimicrobici rispetto alle cellule planctoniche. Durante i saggi MBEC, la sonicazione utilizza onde ultrasoniche per generare una cavitazione controllata, disgregando la matrice del biofilm e rilasciando le cellule incorporate in una sospensione. Questa fase assicura che le cellule del biofilm siano disperse in modo uniforme nel mezzo di recupero, facilitando valutazioni accurate della vitalità attraverso metodi di piastratura, diluizione o spettrofotometria. Senza un adeguato distacco del biofilm, i componenti residui della matrice potrebbero schermare le cellule, portando a una sottostima dell'efficacia antimicrobica. Pertanto, la sonicazione è indispensabile per ottenere valori MBEC affidabili e riproducibili, che riflettono il vero potenziale di eradicazione degli agenti testati. Il sonicatore per piastre a pozzetti multipli UIP400MTP consente una facile preparazione dei campioni ad alta produttività in piastre di saggio.
Il sonicatore per piastre multipozzetto UIP400MTP facilita la preparazione di campioni ad alta produttività in piastre di analisi.
Protocollo per il saggio della concentrazione minima di eradicazione del biofilm (MBEC)
Fase 1: formazione del biofilm
- Preparare la sospensione batterica:
Far crescere i batteri in terreni appropriati fino alla fase di crescita logaritmica.
Diluire la coltura batterica a una densità ottica definita (ad esempio, OD600 ~0,1). - Inoculare la piastra da 96 pozzetti:
Aggiungere la sospensione batterica (ad esempio, 150-200 µL) in ciascun pozzetto di una piastra di microtitolazione standard a 96 pozzetti. - Fissare il coperchio del piolo:
Posizionare il coperchio del piolo sulla piastra inoculata per consentire la formazione del biofilm sulle superfici del piolo. - Incubare la piastra:
Incubare il setup a una temperatura appropriata (ad esempio, 37°C) per 24-48 ore senza agitare per promuovere la crescita del biofilm.
Fase 2: trattamento con agenti antimicrobici
- Preparare soluzioni antimicrobiche:
Preparare una gamma di concentrazioni antimicrobiche in terreni freschi.
Esporre i biofilm agli agenti antimicrobici:
Rimuovere il coperchio dalla coltura batterica e sciacquarla in soluzione fisiologica sterile o PBS per rimuovere le cellule planctoniche.
Inserire il coperchio del piolo in una nuova piastra da 96 pozzetti contenente le soluzioni antimicrobiche. - Incubare la piastra:
Incubare per un periodo definito (ad esempio, 24 ore) per consentire l'esposizione agli antimicrobici.
Sonicatore per piastre multipozzetto UIP400MTP per la preparazione di campioni ad alta produttività
Fase 3: sonicazione con il sonicatore per piastre da 96 pozzetti UIP400MTP
La fase di sonicazione è fondamentale per staccare i biofilm dai coperchi dei pioli e valutare la vitalità. Seguire questi passaggi per il sonicatore UIP400MTP:
- Preparare la configurazione:
Riempire una nuova piastra da 96 pozzetti con terreno di recupero (ad esempio, brodo di neutralizzazione o terreno di crescita fresco) in ogni pozzetto. - Trasferire il coperchio del piolo:
Rimuovere il coperchio del piolo dalla piastra per il trattamento antimicrobico.
Sciacquare il coperchio del piolo in soluzione fisiologica sterile o PBS per rimuovere gli agenti antimicrobici residui. - Posizionare la piastra e il sonicatore:
Collegare il coperchio del piolo alla piastra del terreno di coltura.
Posizionare la piastra di terreno di recupero sulla piattaforma del sonicatore UIP400MTP, assicurandosi che la piastra sia centrata e stabile. - Regolare i parametri di sonicazione:
Impostare i parametri di sonicazione sull'UIP400MTP (le impostazioni possono essere adattate al biofilm):
Ampiezza: 70-100%.
Tempo di sonicazione: 1-3 minuti (da regolare in base alla robustezza del biofilm) in modalità ciclo. - Sonicato:
Avviare il processo di sonicazione. La vibrazione ad ultrasuoni dislocherà i biofilm dalle superfici dei peg nel mezzo di recupero. - Monitorare il processo:
Utilizzare il sensore di temperatura collegabile per monitorare la temperatura del campione nei pozzetti. L'UIP400MTP può essere collegato a un refrigeratore da laboratorio per il raffreddamento. - Gestione della post-sonorizzazione:
Trasferire immediatamente il terreno di recupero (ora contenente biofilm staccati) in una nuova piastra sterile per l'analisi a valle.
(A) Piastra contenente TSB con il 2% di glucosio utilizzata per la formazione del biofilm, il recupero delle cellule e l'analisi dei risultati.
determinazione di MIC e MBCB; (B) Coperchio con spilli per la formazione di biofilm stafilococcici. determinazione di MIC e MBCB; (B) Coperchio con spilli per la formazione di biofilm stafilococcici.
Le cellule del biofilm formatesi sui perni sono state rimosse mediante sonicazione (Hielscher Ultrasound Technology) per 5 minuti in piastre da 96 pozzetti contenenti terreno di coltura fresco per il recupero delle cellule.
(Immagine e studio: ©de Oliveira et al., 2016)
Fase 4: Valutazione della redditività
Piastra e coltura di biofilm staccati:
- Eseguire diluizioni seriali del terreno di coltura e applicare su agar per contare le unità formanti colonie (CFU).
In alternativa, utilizzare un test di vitalità colorimetrico o a fluorescenza. - Risultati record:
Determinare la MBEC come la più bassa concentrazione di antimicrobico che ha eradicato la vitalità del biofilm rilevabile.
Progettazione, produzione e consulenza – Qualità Made in Germany
Gli ultrasuoni Hielscher sono noti per i loro elevati standard di qualità e design. La robustezza e la facilità d'uso consentono un'agevole integrazione dei nostri ultrasonori negli impianti industriali. I sonicatori Hielscher sono in grado di gestire facilmente condizioni difficili e ambienti impegnativi.
Hielscher Ultrasonics è un'azienda certificata ISO e pone particolare enfasi sugli ultrasuonatori ad alte prestazioni, caratterizzati da tecnologia all'avanguardia e facilità d'uso. Naturalmente, gli ultrasuoni Hielscher sono conformi alla normativa CE e soddisfano i requisiti UL, CSA e RoH.
Semplificare la preparazione dei campioni in piastre a 96 pozzetti e piastre di dosaggio utilizzando il sonicatore per piastre multipozzetto UIP400MTP
Letteratura / Riferimenti
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
- Microplate Sonicator Validated in Peer-Reviewed Proteomics Study
Domande frequenti
Che cos'è il test MBEC?
Il saggio della Concentrazione Minima di Eradicazione del Biofilm (MBEC) è un metodo standardizzato utilizzato per determinare la concentrazione minima di un agente antimicrobico necessaria per eradicare i batteri associati al biofilm. Consiste nel far crescere i biofilm su superfici specializzate, esporli a diverse concentrazioni di antimicrobici e valutare la vitalità delle cellule staccate dopo la rottura del biofilm, in genere mediante sonicazione, per valutare l'efficacia del trattamento.
Qual è la differenza tra MBIC e MBEC?
La Concentrazione minima di inibizione del biofilm (MBIC) è la concentrazione più bassa di un agente antimicrobico necessaria per prevenire la formazione del biofilm, mentre la Concentrazione minima di sradicamento del biofilm (MBEC) è la concentrazione più bassa necessaria per sradicare un biofilm consolidato. La MBIC si concentra sulla prevenzione dei biofilm, mentre la MBEC valuta l'efficacia del trattamento contro i biofilm maturi.
Quali piastre sono comunemente utilizzate per i test MBEC?
Le piastre per microtitolazione comunemente utilizzate per i saggi MBEC sono in genere piastre a 96 pozzetti in polistirene o polipropilene. Questi materiali forniscono una superficie adatta alla formazione del biofilm e sono chimicamente resistenti agli agenti antimicrobici testati durante il saggio. Le piastre di polistirene sono ampiamente preferite per la loro chiarezza ottica, che è vantaggiosa per le analisi a valle, come le misurazioni spettrofotometriche o basate sulla fluorescenza. Il design di queste piastre include coperchi a pioli staccabili, che sono essenziali per il saggio poiché i biofilm si formano sui pioli che sono immersi nei pozzetti contenenti il terreno di coltura. Le piastre standardizzate, come quelle conformi al protocollo di analisi MBEC, sono specificamente progettate per garantire la riproducibilità e la compatibilità con il sonicatore UIP400MTP o altre apparecchiature di elaborazione.
Cosa sono le piastre con coperchio in PEG?
Le piastre con coperchio in PEG sono sistemi specializzati di piastre a più pozzetti in cui il coperchio è dotato di piccoli pioli o perni in polietilenglicole (PEG) che si estendono in ogni pozzetto. Questi pioli forniscono una superficie per la formazione di biofilm microbici in condizioni controllate, imitando la crescita di biofilm nel mondo reale. Il design consente ai biofilm di svilupparsi sui pioli mentre i pozzetti contengono terreni di coltura o agenti antimicrobici, consentendo di effettuare test ad alta produttività sulla suscettibilità dei biofilm ai trattamenti, come nei saggi MBEC e MBIC.
Hielscher Ultrasonics produce omogeneizzatori a ultrasuoni ad alte prestazioni da laboratorio a dimensioni industriali.

