מיצוי חלבונים מרקמת גידול בעזרת אולטרסאונד – פרוטוקול
פרוטוקול זה מתאר שיטת מיצוי חלבונים בסיוע סוניקציה מרקמת גידול, המשפרת את תהליך הליזה הסטנדרטי של CPTAC באמצעות אוריאה על ידי הוספת שלב מבוקר של סוניקציה באמצעות מתמר במהלך פירוק הרקמה. בהתבסס על אסטרטגיית ההכנה המוכחת של פרוטאום ופוספופרוטאום CPTAC בקנה מידה עמוק, שינוי זה משפר את פירוק המבנה התאי והתת-תאי, מפחית את צמיגות הדגימה ומשפר את שחרור החלבונים שקשה בדרך כלל לשחזר באמצעות ליזיס אוריאה בלבד, במיוחד חלבונים הקשורים לקרום, הקשורים ל-DNA או הקשורים לגרעין. במחקר הבסיסי, תהליך העבודה המסייע בסוניקציה הגביר את זיהוי החלבונים והפוספופפטידים, תוך שמירה על תאימות עם תהליך העיכול בסגנון CPTAC בהמשך, תיוג TMT, חלוקה, העשרת פוספופפטידים וצינור ניתוח LC-MS/MS.
מיצוי חלבונים מרקמת גידול בעזרת אולטרסאונד לצורך ניתוח פרוטאומי ופוספופרוטאומי מעמיק
The following protocol is optimized for extraction of proteins from cryopulverized tumor tissue in 8 M urea lysis buffer: An added probe-type sonication step improves the recovery of difficult protein classes, especially membrane-associated and DNA-/nucleus-associated proteins, before digestion and downstream LC-MS/MS analysis. In the underlying study by Li et al. (2025), adding sonication increased detection of membrane and nucleus-associated proteins and supported deep-scale coverage of >12,000 proteins and >25,000 phosphopeptides under their workflow.
בדיקה קולית UP200St לצורך מיצוי חלבונים בפרוטאומיקה
תחום היישום של הפרוטוקול
השתמש בהליך זה עבור:
- רקמת גידול קפואה טרייה, שעברה תהליך של פיזור בקור
- משקעי תאים או דגימות ביולוגיות אחרות, שבהן כבר מקובל להשתמש בשיטת מיצוי מבוססת אוריאה
- תהליכי עבודה בתחום הפרוטאומיקה והפוספו-פרוטאומיקה הגלובליים, תוך שימוש בעיכול טריפסי וסימון TMT אופציונלי
במחקרם של Li et al. (2025) נטען כי תהליך העבודה ישים גם לסוגי דגימות אחרים, כגון קווי תאים, דם ושתן, אך ייתכן שיהיה צורך לבצע התאמות בהתאם לסוג הדגימה.
תהליך עבודה מיטבי להכנת דגימות הכולל שלב של טיפול באולטרסאונד. תהליך העבודה המיטבי ותכנון הניסוי מבוססים על פרוטוקול הכנת הדגימות של CPTAC לניתוח פרוטאומי ופוספו-פרוטאומי גלובלי.
מחקר ותרשים: ©Li et al., 2025
עקרון העבודה
במחקר המקורי שולב תהליך של טיפול בקול (sonication) בתהליך הסטנדרטי של פירוק אוריאה בשיטת CPTAC, ונמצא כי הדבר שיפר את זיהוי החלבונים הקשורים לקרומים ולגרעינים. החוקרים מציינים כי יש לכוונן את פרמטרי הטיפול בקול בהתאם לגודל הדגימה ולריכוז – על ידי בחירת גודל הסונוטרוד, עוצמת האנרגיה ותזמון הפולסים.
לדוגמה, עבור דגמי Hielscher UP200Ht ו-UP200St, פירוש הדבר הוא:
- להשתמש במשרעת ובמצב הדופק כמשתני הבקרה העיקריים
- יש לשמור על הדגימות בקירור לאורך כל התהליך (כלומר, על קרח)
- התחל בהגדרות שמרניות
- ביצוע אופטימיזציה בהתחשב בבהירות הדגימה, הטמפרטורה, תפוקת החלבון ואיכות הפפטידים בשלבים הבאים
שני דגמי הסוניקטור של Hielscher בהספק 200 וואט, UP200Ht ו-UP200St, מיועדים לנפחי דגימה קטנים ובינוניים, עם הגדרות משרעת ודופק הניתנות לכוונון; שני ההומוגניזרים האולטראסוניים כוללים מסך מגע דיגיטלי לשליטה מדויקת בפרמטרים, רישום נתונים אוטומטי, חיישן טמפרטורה נתיק, שלט רחוק ותאורה לדגימה.
חומרים כימיים להפקת חלבונים בעזרת סוניקציה
תמיסת ליזיס של אוריאה
יש להכין טרי מיד לפני השימוש:
- 8 מ' אוריאה
- 75 מ"מ NaCl
- 50 מ"מ טריס, pH 8.0
- 1 מ"מ EDTA
- 2 מיקרוגרם/מ"ל אפרותינין
- 10 מיקרוגרם/מ"ל לופפטין
- 1 מ"מ PMSF
- 10 מ"מ NaF
- 20 מיקרומטר PUGNAc
- תערובת מעכבי פוספטאז 2, 1:100 (נפח/נפח)
- תערובת מעכבי פוספטאז 3, 1:100 (נפח/נפח)
יש להמיס את האוריאה לחלוטין לפני הוספת התוספים; יש להוסיף את המעכבים מיד לפני השימוש; יש לשמור את התמיסה על קרח; ומומלץ לערבב את התמיסה בתנועות סיבוביות עדינות ולא בערבוב נמרץ במערבל וורטקס לאחר הוספת התוספים.
חומרים נוספים:
- חומרים לניתוח חלבונים בשיטת BCA
- 50 מ"מ טריס-HCl, pH 8.0
- טלוויזיה דיגיטלית
- יודואצטאמיד
- LysC
- טריפסין
- חומצה פורמית
- חומרים כימיים ל-TMT, במקרה של שימוש בפרוטאומיקה כמותית מרובת-ערוצים
- חומרים של IMAC, אם מבצעים העשרת פוספופפטידים
מכשיר אולטראסוניק UP200Ht עם מיקרו-קצה S26d2 להכנת דגימות
ציוד להפקת חלבונים בעזרת סוניקציה
חובה
בחירת בדיקה מומלצת
לדגימות בנפח של כ-200–1000 מיקרו-ליטר, יש להשתמש בסונוטרוד בקוטר קטן המתאים לעיבוד ישיר בעוצמה גבוהה של נפחים קטנים. חברת Hielscher מציעה סונוטרודים בקטרים שונים, כאשר קוטר קצה קטן יותר מספק עוצמה גבוהה יותר בקצה.
הערה מעשית: השתמשו בחיישן הקטן ביותר שמאפשר ערבוב יעיל ללא היווצרות קצף מוגזמת או מגע עם דפנות הכלי.
אם אתם עובדים עם מספר דוגמאות בו-זמנית, כדאי לשקול הסוניקטור רב-צינורי VialTweeter או מכשיר הסוניקציה למיקרו-פלטה UIP400MTP!
הוראות שלב אחר שלב: תהליך מיצוי חלבונים בעזרת אולטרסאונד
א. קירור מוקדם והכנה
- יש לקרר את הצנטריפוגה לטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס.
- הכינו תמיסת ליזיס אוריאה טרייה ושמרו אותה בקרח.
- הציבו את ה-UP200Ht או ה-UP200St על מעמד בתוך תא אקוסטי.
- הכינו אמבט קרח שיהיה גדול מספיק כדי להכיל את מבחנות הדגימה במצב זקוף ויציב.
הכנת תמיסה טרייה וטיפול בקירור הם גורמים מכריעים.
ב. מיצוי ראשוני של אוריאה
- יש לשמור את הרקמה שעברה תהליך של פיזור בקור על קרח.
- יש להוסיף 200 מיקרוליטר של תמיסת ליזיס אוריאה מקוררת לכל 50 מ"ג רקמה רטובה.
- לערבב במערבל במהירות גבוהה במשך 5–10 שניות.
- להשרייה במשך 15 דקות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס.
- חזור על שלב ה"וורטקס" וה"דגירה" פעם נוספת.
- לסובב בצנטריפוגה ב-20,000 g למשך 10 דקות בטמפרטורה של 4°C.
- העבר את התמיסה/הנוזל העליון למבחנה נקייה בעלת קישור נמוך.
ג. טיפול באולטרסאונד באמצעות UP200Ht או UP200St
תנאי התחלה לביצוע סוניקציה
- משרעת: התחל ב-20–30%
- אורך הדופק: 5 שניות במצב ON
- קירור: 2 דקות על קרח בין פולסים
- מספר מחזורים: 4 מחזורים
- משך הזמן הכולל של הטיפול באולטרסאונד: 20 שניות
- משך התהליך הכולל, כולל קירור: כ-8–10 דקות
שלבי הטיפול באולטרסאונד
- העבר את התמיסה למבחנה המתאימה לטיפול באולטרסאונד. השתמש במבחנה צרה ודקה-דופן, המאפשרת חילופי חום טובים וטבילה בטוחה של המתמר.
- הכניסו את הצינור לאמבט קרח. במאמר מצוין כי קירור במהלך הטיפול באולטרסאונד הוא חיוני למניעת נזק מחום.
- טבלו את קצה הבדיקה בדגימה. השאירו את הקצה שקוע מספיק זמן כדי ליצור קוויטציה יציבה, אך הימנעו ממגע עם דפנות הצינור או קרקעיתו.
- הפעל פולס אחד בן 5 שניות בעוצמה ההתחלתית.
- יש להחזיר את הדגימה מיד לקרח למשך 2 דקות.
- יש לחזור על הפעולה עד להשלמת 4 מחזורים.
- בדקו את התוצר לאחר המחזור.
- המשך רק במידת הצורך, תוך שימוש בפולס נוסף של 5 שניות בכל פעם, שתמיד ילווה בקירור מלא.
- יש להפסיק ברגע שהתמיסה הופכת לאחידה יותר ופחות סיבית/צמיגה.
התוצר הסופי הוא תמיסת תאים שקופה יותר, היוצרת טיפות במקום זרם צמיג ורציף. - יש לסובב בצנטריפוגה במהירות של כ-16,000 g למשך 15 דקות בטמפרטורה של 4°C.
- העבר את הנוזל העליון המטוהר למבחנה נקייה ומדוד את ריכוז החלבון.
השוואה בין פרוטאומיקה ופוספו-פרוטאומיקה כוללת של דגימות שעברו טיפול באולטרסאונד לדגימות שלא עברו טיפול כזה.
א. מספר החלבונים שזוהו (פרוטאומיקה גלובלית) בכל רקמות הגידול מסוג PDX, עם או בלי טיפול באולטרסאונד. ב. מספר הפוספופפטידים שזוהו (העשרה באמצעות IMAC) בכל רקמות הגידול מסוג PDX, עם או בלי טיפול באולטרסאונד. נכללו בספירה רק חלבונים ופוספופפטידים שיחס השכיחות שלהם היה גדול או שווה לאחוזון ה-25. יחס השכיחות חושב בין דגימות מאותו הסוג.
מחקר וגרפים: ©Li et al., 2025
עיבוד וניתוח במורד הזרם
לאחר הטיפול באולטרסאונד וההבהרה, יש להמשיך כפי שתואר בתהליך העבודה המקורי בסגנון CPTAC:
- יש לדלל את התוצר המפורק ביחס של 1:3 (נפח/נפח) ב-50 מ"מ טריס-HCl ב-pH 8.0 כדי להפחית את רמת האוריאה ל- <2 M.
- יש להוסיף LysC בריכוז של 1 mAU לכל 50 µg חלבון ולהניח לתערובת להתפתח במשך שעתיים בטמפרטורה של 25°C.
- יש להוסיף טריפסין ביחס של 1:49 בין האנזים למצע (משקל למשקל) ולבצע עיכול במשך לילה בטמפרטורה של 25°C.
- יש לבצע מרווה בחומצה פורמית עד לריכוז סופי של 1%.
- המשך בתהליך הפחתת המליחות, תיוג TMT, הפרדה, העשרת פוספופפטידים ו-LC-MS/MS לפי הצורך.
ביטוי דיפרנציאלי של פוספופפטידים באמצעות MS עם תיוג TMT.
א. תת-הסוג הבסיסי, המדגיש מספר פוספופפטידים אנושיים (התחלת וסיום רצף החלבון) שהביטוי שלהם עלה בדגימות שעברו סוניקציה בהשוואה לדגימות שלא עברו סוניקציה. ב. תת-הסוג הלומנלי, המדגיש כמה פוספופפטידים אנושיים (התחלת וסיום רצף החלבון) שעברו עלייה ברגולציה בדגימות שעברו סוניקציה בהשוואה לדגימות שלא עברו סוניקציה. ג. מסלולי KEGG מועשרים המבוססים על החלבונים של פוספופפטידים שעברו עלייה ברגולציה בתת-הסוג הבסיסי של גידולים שעברו סוניקציה. ד. מסלולי KEGG מועשרים המבוססים על החלבונים של פוספופפטידים שעברו עלייה ברגולציה בתת-הסוג הלומנלי של גידולים שעברו סוניקציה.
מחקר וגרפים: ©Li et al., 2025
תכנון, ייצור וייעוץ – איכות תוצרת גרמניה
Hielscher ultrasonicators ידועים באיכות הגבוהה ביותר שלהם סטנדרטים עיצוב. חוסן ותפעול קל מאפשרים שילוב חלק של האולטרסאונד שלנו במתקנים תעשייתיים. תנאים קשים וסביבות תובעניות מטופלים בקלות על ידי אולטרסוניקטורים Hielscher.
Hielscher Ultrasonics היא חברה מוסמכת ISO לשים דגש מיוחד על ultrasonicators ביצועים גבוהים שמציעות טכנולוגיה חדישה וידידותיות למשתמש. כמובן, Hielscher ultrasonicators הם תואמי CE ולעמוד בדרישות של UL, CSA ו RoHs.
סוניק צלחת רב באר UIP400MTP למיצוי חלבונים בתפוקה גבוהה מדגימות
ספרות / מקורות
- Li Q.K.; Lih T.M.; Clark D.J.; Chen L.; Schnaubelt M.; Zhang H. (2025): Sonication-assisted protein extraction improves proteomic detection of membrane-bound and DNA-binding proteins from tumor tissues. Nature Protocols 2025 Aug;20(8):2083-2099.
- Stadlmann, J., Taubenschmid, J., Wenzel, D. et al. (2017): Comparative glycoproteomics of stem cells identifies new players in ricin toxicity. Nature 549, 2017. 538–542
- Jakob, S., Steinchen, W., Hanßmann, J. et al. (2024): The virulence regulator VirB from Shigella flexneri uses a CTP-dependent switch mechanism to activate gene expression. Nature Communications 15, 318 (2024).
- Jorge S., Capelo J.L., LaFramboise W., Dhir R., Lodeiro C., Santos H.M. (2019): Development of a Robust Ultrasonic-Based Sample Treatment To Unravel the Proteome of OCT-Embedded Solid Tumor Biopsies. Journal of Proteome Research 2019 Jul 5;18(7):2979-2986.
- Mertins P, Tang LC, Krug K, et al. (2018): Reproducible workflow for multiplexed deep-scale proteome and phosphoproteome analysis of tumor tissues by liquid chromatography-mass spectrometry. (Initial CPTAC protocol). Nature Protocols 7, 2018. 1632-1661.
שאלות נפוצות
מה ההבדל בין מיצוי חלבונים מרקמת צמחים לבין מיצוי חלבונים מרקמת יונקים?
הפקת חלבונים מרקמת צמחים קשה בדרך כלל יותר מאשר מרקמת יונקים, מכיוון שתאי הצמחים בעלי דופן תא קשיחה ועשירה בתאית, וכן מכילים כמויות גדולות של פוליסכרידים, תרכובות פנוליות, פיגמנטים ואנזימים אנדוגניים פעילים, העלולים להפריע להמסת החלבונים, לזהם את התמציות או להאיץ את פירוק החלבונים. לעומת זאת, ברקמת יונקים אין דופן תאית והיא בדרך כלל קלה יותר לפירוק כימי, אף שלעתים קרובות היא מכילה יותר שומנים, מטריצה חוץ-תאית ופרוטאזות שעדיין עלולות לסבך את המיצוי. כתוצאה מכך, פרוטוקולים לצמחים דורשים בדרך כלל פירוק מכני חזק יותר, טחינה בטמפרטורה נמוכה ותוספים כגון PVPP, חומרים מחזרים או ניקוי מבוסס פנול, בעוד שרקמות יונקים מטופלות לרוב בהצלחה באמצעות תמיסות חיץ מבוססות דטרגנטים כגון RIPA או מערכות ליזיס מבוססות אוריאה. ניתן לבצע ליזיס יעיל של רקמות צמחים ורקמות יונקים באמצעות סוניקציה!
כיצד לשפר את מיצוי החלבון מרקמה באמצעות תמיסת RIPA?
ניתן לשפר את מיצוי החלבונים מרקמה באמצעות תמיסת RIPA על ידי ייעול תהליכי פירוק הרקמה והגנה עליה. הצעדים החשובים ביותר הם שמירה על טמפרטורה נמוכה של הרקמה והתמיסה, שימוש במעכבי פרוטאז ופוספטאז שהוכנו זה עתה, קיצוץ או טחינה יסודית של הרקמה לפני הפירוק, שמירה על יחס מתאים בין התמיסה לרקמה, והוספת שלב של פירוק מכני כגון הומוגניזציה או טיפול קצר באולטרסאונד כדי לפרק רקמה צפופה ולהפחית את הצמיגות. יעילות המיצוי משתפרת גם כאשר תוצרי הפירוק מושרים על קרח תוך ערבוב לסירוגין, ולאחר מכן עוברים צנטריפוגה בקירור במהירות גבוהה כדי להסיר פסולת בלתי מסיסה. עבור רקמות סיביות, עשירות בשומנים או בעלות מבנה מורכב, חזרה על תהליך המיצוי פעם אחת או הארכת זמן החשיפה לדטרגנט יכולה לשפר את התפוקה, אך יש להימנע משימוש מופרז באולטרסאונד או מטיפול ממושך בטמפרטורת החדר, מכיוון שהדבר עלול לגרום לדנטורציה של חלבונים או להגביר את הפירוק החלבוני.
אילו דרישות בטיחות יש להקפיד עליהן במהלך מיצוי חלבונים באמצעות אולטרסאונד?
יש לבצע את הטיפול באולטרסאונד בתוך תא אטום לרעש או תוך שימוש באמצעי הגנה מתאימים לאוזניים. בפרוטוקול המקורי מופיעה אזהרה מפורשת מפני רעש מזיק הנשמע באוזן הנוצר במהלך הטיפול באולטרסאונד.
יש ללבוש משקפי מגן, חלוק מעבדה וכפפות.
יש להרחיק את המתמר מהעור, ואין לבצע טיפול באולטרסאונד בכלי דם פתוח ללא הגנה מפני התזות.
יש לטפל ב-PMSF ובמעכבים אחרים בהתאם לכללי הבטיחות הכימית המקומיים.
יש לשמור את הדגימות בקרח כדי להפחית נזק לחלבונים הנגרם מחום; המאמר מדגיש שוב ושוב כי בקרת הטמפרטורה היא גורם מכריע.
הסוניקטור VialTweeter מאיץ ומשפר את מיצוי החלבונים בפרוטאומיקה
Hielscher Ultrasonics מייצרת הומוגנייזרים קוליים בעלי ביצועים גבוהים מ המעבדה ל גודל תעשייתי.


