הכנה אולטרסונית של דגימות C. Elegans

C. elegans, תולעת נימית, היא אורגניזם מודל הנמצא בשימוש נרחב בביולוגיה. הכנת דגימות לפני אנליזה דורשת ליזיס, מיצוי חלבונים וליפידים וכן פרגמנטציה של RNA, שניתן לבצע באופן אמין באמצעות סוניקציה. מכשירים אולטרסוניים לפירוק תאים הם מכשירים אמינים, מתקדמים וקלים לשימוש להכנה מהירה של דגימות C. elegans.

הכנה אולטרסונית של דגימות C. elegans

תולעי Caenorhabditis elegans הן תולעים נימיות הנמצאות בשימוש נרחב במעבדות מחקר לחקר גנומיקה, ביולוגיה התפתחותית ומחלות. לגנים רבים בגנום של C. elegans יש מקבילים תפקודיים בבני אדם. לפיכך, התולעת הנימית היא מודל שימושי ביותר למחלות אנושיות. יתרונות נוספים התורמים לשימוש הנרחב ב-C. elegans הם גידולה הקל והזול על צלחות המכילות חיידקים (למשל E. coli), שקיפותה, נוחות הטיפול בה וכן האפשרות להקפיא ולאחסן את התולעים לתקופה ממושכת יותר.
אנליזות חלבונים וליפידים הן הליכים שגרתיים במעבדות, והכנת דגימות אולטרסונית היא השיטה המקובלת לביצוע ליזיס של תולעי C. elegans בכל שלב התפתחותי (כלומר עוברים, זחלים בשלבים L1–L4 ובוגרים). מכיוון ש-C. elegans משמשת גם כמערכת לביטוי חלבונים לצורך ביטוי יתר של חלבוני מטרה, נדרשת שיטה אמינה והדירה לליזיס ולמיצוי חלבונים, המניבה תפוקות חלבון גבוהות. מערכות אולטרסוניות לפירוק תאים ולמיצוי זמינות כהומוגנייזרים מסוג גשוש וכמכשירי סוניקציה למספר דגימות. להכנת דגימות נוחה, בכל גודל ובכל מספר של דגימות, ל-Hielscher Ultrasonics יש את המכשיר האולטרסוני האידיאלי לפירוק תאים עבור ההליך המעבדתי שלכם.

פרוטוקולים אולטרסוניים לפירוק ולליזיס של C. Elegans

ניתן לבצע הומוגניזציה וליזיס אולטרסוניים של C. elegans, ואת מיצוי החלבונים והליפידים שלאחריהם, באמצעות הליכים מגוונים המשתמשים בבופרים שונים להומוגניזציה ולליזיס וכדומה. המשותף לכל פרוטוקולי הליזיס הוא שיש לשמור את הדגימות על קרח ברציפות כדי למנוע פירוק חלבונים. להלן אנו מציגים כמה פרוטוקולים אמינים ומהירים לליזיס ולמיצוי אולטרסוניים להכנת דגימות C. elegans איכותיות המכילות חלבונים או ליפידים.

יתרונות הליזיס האולטרסוני של C. elegans

• אמין
• הדיר
• בעל בקרת טמפרטורה מדויקת
• בקרת תהליך אמינה
• שיטה עדינה
• קל ליישום
• בטוח

מיצוי אולטרסוני של חלבונים מדגימות C. elegans

ניתן לבצע ליזיס אולטרסוני ומיצוי חלבונים מתולעי C. elegans באמצעות פרוטוקולים שונים. להלן אנו מציגים כמה פרוטוקולי ליזיס אמינים ומהירים לקבלת תוצאות הדירות במיצוי חלבונים.

הכנה מהירה של תמצית ציטוזולית מתולעי C. elegans באמצעות סוניקציה

באמצעות הפרוטוקול הבא תוכלו להכין ליזטים של C. elegans בתוך פחות מ-30 דקות.
איסוף C. elegans
אספו את תולעי ה-C. elegans הרצויות למבחנת 1.5ml המכילה תמיסת מלח מבופרת בפוספט (PBS), או שטפו אותן מצלחת באמצעות 1.5ml PBS. צנטריפגו במשך 1min במהירות 2000rpm לקבלת משקע. שמרו את הדגימות על קרח בכל עת.
לאחר מכן, שטפו את התולעים פעמיים ב-PBS.
לאחר מכן, שטפו את התולעים פעמיים ב-ddH₂O.
הרחיפו מחדש את התולעים בלפחות 500ul של בופר הומוגניזציה (HB). דגימות התולעים מוכנות כעת לליזיס אולטרסוני.
לקבלת תמצית חלבונים באיכות גבוהה יותר, ייתכן שתרצו להפחית זיהום חיידקי באמצעות שטיפת התולעים במשך 5min בכל אחת מהתמיסות: PBS ומים סטריליים טהורים במיוחד (ddH₂O), או לבצע הצפה בסוכרוז. שמרו את דגימות התולעים על קרח ברציפות.

פרוטוקול לליזיס אולטרסוני של C. elegans

• הקפידו להכין מראש את מכשיר הסוניקציה כדי שההומוגנייזר האולטרסוני יהיה מוכן לשימוש (הגשוש מותקן ותוכנית הסוניקציה מוגדרת מראש). 

אם מכשיר הסוניקציה שלכם מותקן על מעמד, הניחו את אמבט הקרח ובו מבחנות הדגימה מתחת לגשוש האולטרסוני והכניסו את הגשוש האולטרסוני למבחנת ה-1.5ml.

• לליזיס של C. elegans באמצעות UP200St או UP200Ht, יש לבצע סוניקציה באמצעות קצה זעיר (למשל, גשוש S26d2 בקוטר 2mm; ראו תמונה משמאל) באמפליטודה של 40% למשך 1sec עם הפסקות של 30sec בין הפולסים. 5 מחזורי סוניקציה של 1 שנייה כל אחד, עם הפסקות של 30sec, הם אידאליים לליזיס של C. elegans. אם אתם מבצעים את הליזיס בפעם הראשונה, תוכלו לבדוק את התקדמות הליזיס במנות קטנות מהדגימה לאחר כל פולס באמצעות מיקרוסקופ.
• הליזיס הושלם בהצלחה כאשר התולעים מפורקות. סוניקציה מופרזת גורמת לשבירת גרעיני התאים, וניתן להבחין בה כשהדגימה נעשית צמיגה או מקציפה. כדי למנוע את פירוק מרכיבי הדגימה, השתמשו בפולסים נוספים במידת הצורך. אל תאריכו את משך כל מחזור פולס אולטרסוני, כדי לקבל מיצויי חלבון באיכות גבוהה.
• הצלילו את ליזט התאים באמצעות צנטריפוגה של התולעים שעברו ליזיס אולטרסוני ב-14,000rpm למשך 10min ב-4ºC.
• לאחר מכן, העבירו את הנוזל העליון למבחנה חדשה והכינו אותו לאימונופרסיפיטציה או לבדיקות אחרות.

הערה לגבי בופר ההומוגניזציה: הכינו את בופר ההומוגניזציה לפרוטוקול הליזיס האולטרסוני שלעיל באופן הבא:

ליזיס בתפוקה גבוהה של C. elegans בצלחות של 96 באריות באמצעות מכשיר הסוניקציה לצלחות UIP400MTP

ליזיס של C. elegans (נמטודות בוגרות)
UIP400MTP באמפליטודה של 80%, 20 מחזורים (כל מחזור סוניקציה: 30 sec פעולה, 30 sec הפסקה)
בופר ליזיס:

• אפשרות 1) 4% SDS, 0.1 M Tris/HCl pH 8.0, 1 mM EDTA
• אפשרות 2) לאימונופרסיפיטציה משותפת (co-IP): 10 mM Tris HCl (pH 7.5), 150 mM NaCl, 0.5 mM EDTA, 0.5 % NP-40 (קוקטייל מלא של מעכבי פרוטאינאזות)

פרגמנטציה של DNA בתפוקה גבוהה
DNA של C. elegans (נמטודות בוגרות) באורך 200–300bp: מכשיר הסוניקציה לצלחות UIP400MTP – הגדירו אמפליטודה של 80%, 30 פולסים – בכל אחד 30sec פעולה, 30sec הפסקה

מכשיר הסוניקציה לצלחות UIP400MTP להכנת דגימות בתפוקה גבוהה מבצע סוניקציה אחידה של דגימות בצלחות מרובות באריות, בצלחות מיקרוטיטר ובצלחות של 96 באריות

ליזיס אולטרסוני של C. elegans לבדיקות כמותיות של טיהור בזיקה

עוברי C. elegans (∼2 מיליון לכל חזרה) נאספו טריים בשלוש חזרות ביולוגיות באמצעות טיפול באקונומיקה בהרמפרודיטים צעירים נושאי ביצים, ועברו סוניקציה על קרח (מחזור: 0.5 s, אמפליטודה: 40–45%, 5 פולסים/סבב, 5 סבבים, מרווח בין הסבבים: 30 s; המעבד האולטרסוני UP200S עם קצה זעיר S26d2 (Hielscher Ultrasonics GmbH)) בבופר ליזיס (נפח כולל: ∼600 μl; 50 mm Tris-HCl, pH 7.4, 100 mm KCl, 1 mm MgCl2, 1 mm EGTA, 1 mm DTT, 10% גליצרול, תערובת מעכבי פרוטאזות, 0.1% תחליף Nonidet P-40). לאחר הסוניקציה, הוסף תחליף Nonidet P-40 עד לריכוז של 1%, והליזטים הודגרו בסיבוב קצה-אל-קצה ב-4°C למשך 30 min, ולאחר מכן עברו צנטריפוגה ב-20,000 × g למשך 20 min ב-4°C. הליזט המוצלל נשאב לאחר מכן מבלי להפריע לשכבת הליפידים העליונה, וחולק לשני חצאים, שנוספו לחרוזי אגרוז נוגדי GFP או לחרוזי ביקורת שעברו חסימה (40–50 μl). לאחר סיבוב קצה-אל-קצה ב-4°C למשך 60–90 min, החרוזים נשטפו פעם אחת בבופר ליזיס המכיל 0.1% תחליף Nonidet P-40, ולאחר מכן נשטפו פעמיים בבופר I (25 mm Tris-HCl, pH 7.4, 300 mm NaCl, 1 mm MgCl2) או בבופר II (1 mm Tris-HCl, pH 7.4, 150 mm NaCl, 1 mm MgCl2), או בשניהם. עבור ניסויי לכידת GFP:MBK-2 בוצעו שני ניסויים נפרדים בתנאי שטיפה שונים. החלבונים עברו אלוציה בניעור אורביטלי בתוך 50 μl של 6 m אוריאה/2 M תיואוריאה בטמפרטורת החדר. בניסויי לכידת MBK-1::GFP, החלבונים עברו אלוציה פעמיים באמצעות ניעור בתוך 50μl של 8 m גואנידיניום כלוריד ב-90°C, ולאחר מכן שיקוע באתנול. דגימות החלבון שעברו אלוציה עברו לאחר מכן עיכול בתמיסה.
(ראו Chen et al., 2016)

הומוגניזציה וליזיס אולטרסוניים של תולעים

לצורך הליך הליזיס ומיצוי החלבונים מ-C.elegans, נאספו לכל דגימה 30,000 נמטודות בשלב ההתפתחות הרלוונטי, נשטפו ב-S-basal קר כקרח, רוכזו בצנטריפוגה במהירות 1500 rpm למשך 2 min., נשטפו שש פעמים ב-S-basal קר כקרח להסרת שאריות חיידקים, ולאחר מכן נשמרו על קרח עד לשימוש. לצורך מיצוי חלבונים, הונח לתולעים בוגרות נושאות ביצים ליצור משקע דחוס לאחר השטיפה האחרונה ב-S-basal. לאחר מכן הורחפו משקעי התולעים מחדש ב-1 ml של בופר מיצוי קר כקרח [20 mM אשלגן פוספט, pH 7.4, 2mM EDTA, 1% Triton-X-100, מעכבי פרוטאזות (Sigma P2714)] ועובדו מיד.
∼30,000 תולעים בוגרות נושאות ביצים (המקבילות למשקל רטוב של ∼100 mg) עברו סוניקציה על קרח באמצעות מכשיר אולטרסוני עם גשושית (למשל UP50H עם מיקרוטיפ MS2), באמפליטודה של 40%, במשך 10 מחזורים של 3 sec הפעלה ו-30 sec הפסקה, ב-1 ml של בופר מיצוי קר כקרח. (ראו Baskharan et al. 2012)

מיצוי אולטרסוני של ליפידים מ-C. elegans

בליפידומיקה, ענף של מטבולומיקה, מאפיינים ומנתחים את מכלול הליפידים של מערכות ביולוגיות. ב-C. elegans נעשה שימוש נרחב בליפידומיקה לחקר האינטראקציה בין ליפידים מטבוליים והשפעותיהם על הבריאות ועל תוחלת החיים.
ליזיס ומיצוי אולטרסוניים משמשים לשחרור ליפידים כגון ספינגוליפידים מעוברים, מזחלים ומתולעים בוגרות של C. elegans. סוניקציה משמשת להכנת הומוגנטים של תולעים ובהמשך למיצוי הליפידים מהדגימה.
פרוטוקול למיצוי אולטרסוני של ליפידים מ-C. elegans
הפשירו את משקע ה-C. elegans על קרח והרחיפו אותו מחדש ב-0.5 ml של ultrawater. 
בצעו סוניקציה של דגימות ה-C. elegans במבחנות של 1.5mL, תוך שמירה רציפה של הדגימות על קרח.
ניתן לבצע סוניקציה באמצעות מכשיר אולטרסוני עם גשושית כגון UP200Ht, יחידת הכנת הדגימות האולטרסונית VialTweeter (סוניקציה בו-זמנית של 10 דגימות) או UIP400MTP (לביצוע סוניקציה של פלטות מרובות באריות, כגון פלטות של 96 באריות).
לליזיס אולטרסוני באמצעות UP200Ht השתמשו במיקרוטיפ S26d2. הגדירו מראש את מצב המחזורים האולטרסוניים בתפריט הדיגיטלי. הגדירו את האמפליטודה ל־10% ואת מצב מחזורי הסוניקציה ל־20 מחזורים של פולסים בני 2 sec, עם הפסקה של 30 sec. בין פרצי הפולסים האולטרסוניים.
העבירו את נוזלי העל למבחנות זכוכית עם פקק הברגה. 
בצעו מיצוי בשיטת Folch באמצעות הוספת 1 ml של ultrawater לכל מבחנת זכוכית, ולאחר מכן הוספת 6 ml של תערובת כלורופורם/מתנול (יחס = 2:1) לכל מבחנת זכוכית.
ערבלו כל מבחנת זכוכית בוורטקס למשך 30 sec, חזרו על הפעולה 4 פעמים. 
סרכזו את המבחנות ב־1,258 x g למשך 15 min (Eppendorf, 5810 R) כדי לשפר עוד יותר את הפרדת הפאזות. 
העבירו את המקטע ההידרופובי התחתון למבחנת זכוכית נקייה באמצעות פיפטת פסטר מזכוכית. 
יבשו את המקטע ההידרופובי התחתון תחת זרימת חנקן במאייד חנקן. 
אחסנו את המשקע המיובש במקפיא בטמפרטורה של -80 °C עד לשימוש. 


הכנה אולטרסונית של ליזטים מתולעים

ליזט מתולעים: תולעים בשלב L4 נאספו ונשטפו שלוש פעמים בבופר M9 ‏(42.26 mM Na₂HPO₄, 22.04 mM KH₂PO₄, 85.56 mM NaCl ו-0.87 mM MgSO₄) כדי להסיר את כל החיידקים. לאחר הסרת כמות גדולה ככל האפשר מבופר M9, התולעים הורחפו מחדש בבופר ליזיס: 50 mM HEPES, 50 mM KCl, 1mM EDTA, 1mM EGTA, 5 mM פוספט β-גליצרול, 0.1% (v/v) Triton X-100, 50 mM נתרן פלואוריד, 1 mM נתרן אורתוונאדאט, 5 mM נתרן פירופוספט, 0.2 mM פנילמתאנסולפוניל פלואוריד ומעכב פרוטאזות. התולעים הוקפאו בחנקן נוזלי והופשרו בטמפרטורה של 37°C שלוש פעמים, ולאחר מכן עברו סוניקציה על קרח יבש באמצעות יחידת VialTweeter אולטרסונית להכנה בו־זמנית של 10 מבחנות דגימה. הסוניקציה בוצעה באמפליטודה של 50% ב־10 מחזורים של 2 sec. עם הפסקה של 30 sec בין פרצי הסוניקציה. לאחר מכן, הדגימות עברו צנטריפוגה במהירות של 12,000 rpm ובטמפרטורה של 4°C למשך 15 min. הנוזל העליון נאסף ואוחסן בטמפרטורה של -70°C. מנה מהדגימה שימשה לכימות חלבונים באמצעות מבחן ברדפורד.
קביעת רמות הגלוטתיון הכולל, GSH ו־GSSG: לצורך כימות גלוטתיון, הכנת הליזטים והמדידה בוצעו באותו יום. זחלי L4 שהוזנו בגלוקוז וזחלים מקבוצת הביקורת נאספו ונשטפו בבופר M9 שלוש פעמים. לאחר הסרת כמות גדולה ככל האפשר מבופר M9, התולעים הורחפו מחדש בחומצה מטאפוספורית קרה כקרח (5% w/v), ולאחר מכן עברו סוניקציה בקרח באמצעות VialTweeter אולטרסוני באמפליטודה של 50% בעשרה מחזורי סוניקציה של 2 sec. עם הפסקה של 30 sec. בין כל מחזור למחזור. לאחר מכן, בוצעה צנטריפוגה במהירות של 12,000 rpm ובטמפרטורה של 4 ̊C למשך 15 min.
(ראו Alcántar-Fernández et al., 2018)

הכנת דגימות C. elegans לפני אימונופרסיפיטציה ותספיג מערבי

בקצרה, לצורך הכנת מיצויים עובריים, זחלי C. elegans בשלב L1 גודלו עד לבגרות בתרביות נוזליות בהיקף גדול במצע S. עוברים נאספו בשיטת ההלבנה המקובלת והורחפו בבופר ליזיס (50 mM Tris, pH 7.5, 100 mM KCl, 1 mM EDTA, 1 mM MgCl2, 8.7% גליצרול, 0.05% NP-40, קוקטייל מעכבי פרוטאזות בריכוז 1􏰅 וקוקטייל מעכבי פוספטאזות I ו-II בריכוז 1􏰅), הוקפאו במהירות בחנקן נוזלי ועברו ליזיס באמצעות פירוק תאים אולטרסוני, תוך שימוש במכשיר אולטרסוני בעל קצה זעיר כגון UP200Ht עם S26d2, ב-10 פולסים לאורך 10 s באמפליטודה של 30%. אם יש להכין מספר גדול יותר של דגימות, מומלץ להשתמש במכשיר האולטרסוני VialTweeter או במכשיר האולטרסוני הרב-דגימתי UIP400MTP לפלטות באריות. לאחר הסוניקציה, המיצויים עברו הצללה מקדימה בצנטריפוגה ב-30,000g למשך 20 min ב-4°C. המיצוי שעבר הצללה מקדימה (300µg של חלבון כולל) הודגר עם 40µ􏰂g של נוגדן anti-CDC-25.1 שטוהר בזיקה (מחקר זה) וקושר בקשרים צולבים לחלבון A-אגארוז; לחלופין, כביקורת, נעשה שימוש בכמות דומה של אימונוגלובולין (Ig)G מארנב שקושר בקשרים צולבים לחלבון A-אגארוז, בנפח כולל של 200µl של בופר ליזיס המכיל 1% NP-40, שהכללתו הפחיתה קישור לא ספציפי של חלבונים למטריצה. הדגימות סובבו במשך 1 h ב-4°C, החרוזים נשטפו שלוש פעמים בבופר ליזיס, ובוצעה אלוציה באמצעות 30µl של גליצין/HCl ו-200 mM NaCl, pH 2.2. לאחר האימונופרסיפיטציה, האלואטים דוללו ב-30µ􏰂l של בופר דגימות SDS וחוממו ל-95°C למשך 4 min; בדרך כלל, 3% מהכמות הכוללת שימשו כדגימת קלט ו-30% מהאלואטים הוטענו ל-SDS-PAGE, ולאחר מכן בוצע תספיג מערבי עם הנוגדנים anti-CDC-25.1 (1:400), anti-LIN-23 (1:750), anti-ubiquitin (1:1000), anti-GSK3􏰁 (1:500) או anti-􏰁β-actin (1:2000). כאשר המיצויים לא עברו אימונופרסיפיטציה, כמות זהה של חלבון כולל שהופק מאותם מיצויים הורחפה מחדש בבופר דגימות SDS, חוממה ל-95°C ולאחר מכן הוטענה ישירות ל-SDS-PAGE ונותחה באמצעות תספיג מערבי. (ראו Segref et al. 2020)

ליזיס אולטרסוני תחת בקרת טמפרטורה מדויקת

בקרת טמפרטורה מדויקת ואמינה חיונית בעת טיפול בדגימות ביולוגיות. טמפרטורות גבוהות גורמות לתחילת פירוק חלבונים בדגימות בהשפעת חום.
כמו כל טכניקות הכנת הדגימות המכניות, סוניקציה מייצרת חום. עם זאת, בעת שימוש ב-VialTweeter ניתן לשלוט היטב בטמפרטורת הדגימות. אנו מציגים מגוון אפשרויות לניטור ולבקרה של טמפרטורת הדגימות בעת הכנתן לאנליזה באמצעות VialTweeter ו-VialPress.

1. ניטור טמפרטורת הדגימה: המעבד האולטרסוני UP200St, המפעיל את VialTweeter, מצויד בתוכנה חכמה ובחיישן טמפרטורה הניתן לחיבור. חברו את חיישן הטמפרטורה ל-UP200St והכניסו את קצה החיישן לאחת ממבחנות הדגימה. באמצעות מסך המגע הדיגיטלי הצבעוני ניתן להגדיר בתפריט של UP200St טווח טמפרטורות מסוים לסוניקציה של הדגימות. המכשיר האולטרסוני ייעצר אוטומטית כאשר תושג הטמפרטורה המרבית, וישהה את פעולתו עד שטמפרטורת הדגימה תרד לערך התחתון של טווח הטמפרטורות שהוגדר ∆. לאחר מכן הסוניקציה תתחיל שוב אוטומטית. תכונה חכמה זו מונעת פירוק הנגרם מחום.
2. ניתן לקרר מראש את בלוק ה-VialTweeter. הכניסו את בלוק ה-VialTweeter (רק את הסונוטרודה ללא המתמר!) למקרר או למקפיא כדי לקרר מראש את בלוק הטיטניום ולסייע בדחיית עליית הטמפרטורה בדגימה. במידת האפשר, ניתן לקרר מראש גם את הדגימה עצמה.
3. השתמשו בקרח יבש לקירור במהלך הסוניקציה. השתמשו במגש רדוד מלא בקרח יבש והניחו את VialTweeter על הקרח היבש כדי לאפשר פיזור מהיר של החום.

מצאו את המכשיר האולטרסוני האופטימלי לפירוק תאים עבור יישום הליזיס שלכם

Hielscher Ultrasonics היא יצרנית בעלת ניסיון רב שנים של מכשירים אולטרסוניים לפירוק תאים והומוגנייזרים אולטרסוניים בעלי ביצועים גבוהים למעבדות, למערכות שולחניות ולמערכות בקנה מידה תעשייתי. גודל תרבית תאי החיידקים שלכם, מטרת המחקר או הייצור שלכם ונפח התאים לעיבוד בשעה או ביום הם גורמים חיוניים לבחירת המכשיר האולטרסוני המתאים לפירוק תאים עבור היישום שלכם.
Hielscher Ultrasonics מציעה מגוון פתרונות לסוניקציה בו-זמנית של דגימות מרובות (עד 10 בקבוקונים) וכן לעיבוד דגימות בכמויות גדולות (כלומר, פלטות מיקרוטיטר / פלטות בעלות 96 באריות), החל במכשיר האולטרסוני המעבדתי הקלאסי בעל הגשושית, ברמות הספק שונות מ-50 עד 400 ואט, ועד למעבדים אולטרסוניים תעשייתיים לחלוטין בהספק של עד 16,000 ואט ליחידה לפירוק תאים מסחרי ולמיצוי חלבונים בייצור בהיקף גדול. כל המכשירים האולטרסוניים של Hielscher בנויים לפעולה 24/7/365 בעומס מלא. עמידות ואמינות הן תכונות יסוד של המכשירים האולטרסוניים שלנו.
כל ההומוגנייזרים האולטרסוניים הדיגיטליים מצוידים בתוכנה חכמה, במסך מגע צבעוני ובתיעוד נתונים אוטומטי, ההופכים את המכשיר האולטרסוני לכלי עבודה נוח במעבדה ובמתקני ייצור.
ספרו לנו אילו סוגי תאים, באיזה נפח, באיזו תדירות ולאיזו מטרה עליכם לעבד את הדגימות הביולוגיות שלכם. נמליץ לכם על המכשיר האולטרסוני לפירוק תאים המתאים ביותר לדרישות התהליך שלכם.

הטבלה שלהלן מספקת אומדן של כושר העיבוד המשוער של המערכות האולטרסוניות שלנו, מהומוגנייזרים קומפקטיים המוחזקים ביד ומכשירים אולטרסוניים לדגימות מרובות ועד למעבדים אולטרסוניים תעשייתיים ליישומים מסחריים: