Production par ultrasons d’acides gras oméga-3 liposomaux
Les nanoliposomes sont des vecteurs de médicaments très efficaces, utilisés pour améliorer la biodisponibilité de composés bioactifs tels que les acides gras oméga-2, les vitamines et d’autres substances. L’encapsulation par ultrasons de composés bioactifs est une technique rapide et simple permettant de préparer des nanoliposomes à forte charge médicamenteuse. L’encapsulation par ultrasons dans des liposomes améliore la stabilité et la biodisponibilité des composés.
Acides gras oméga-3 liposomaux
Les acides gras oméga-3, tels que l’acide eicosapentaénoïque (EPA) et l’acide docosahexaénoïque (DHA), jouent un rôle essentiel dans le bon déroulement de nombreuses réactions biochimiques vitales dans le corps humain. L’EPA et le DHA se trouvent principalement dans les poissons d’eau froide, le foie de morue et les coquillages et crustacés. Comme tout le monde ne consomme pas les deux portions de poisson par semaine recommandées, l’huile de poisson est souvent utilisée sous forme de compléments alimentaires. En outre, les acides gras oméga-3 tels que l’EPA et le DHA sont utilisés comme agents thérapeutiques pour traiter les maladies cardiovasculaires et cérébrales, ainsi que dans le traitement du cancer. Pour améliorer la biodisponibilité et le taux d’absorption, l’encapsulation par ultrasons dans des liposomes est une technique largement utilisée avec succès.
Encapsulation par ultrasons des acides gras oméga-3 dans des liposomes
L’encapsulation par ultrasons est une technique de préparation fiable permettant de former des liposomes à forte charge en substances actives. La nanoémulsification par ultrasons perturbe les bicouches phospholipidiques et apporte de l’énergie pour favoriser l’assemblage de vésicules amphiphiles de forme sphérique, appelées liposomes.
La sonication permet de contrôler la taille des liposomes pendant le processus de préparation par ultrasons : la taille des liposomes diminue à mesure que l’énergie ultrasonore augmente. Les liposomes plus petits offrent une meilleure bioaccessibilité et peuvent transporter les molécules d’acides gras vers les sites cibles avec un taux de réussite plus élevé, car leur taille réduite facilite leur passage à travers les membranes cellulaires.
Les liposomes sont connus comme des vecteurs de médicaments efficaces, qui peuvent être chargés de substances lipophiles aussi bien qu’hydrophiles grâce à la structure amphiphile de leurs bicouches. Un autre avantage des liposomes est la possibilité de les modifier chimiquement en incorporant des polymères liés à des lipides dans la formulation, de manière à améliorer l’absorption des molécules encapsulées par le tissu ciblé et à prolonger la libération du médicament et, par conséquent, sa demi-vie. L’encapsulation liposomale protège également les composés bioactifs contre la dégradation oxydative, ce qui constitue un facteur important pour les acides gras polyinsaturés tels que l’EPA et le DHA, qui sont sujets à l’oxydation.
Hadia et al. (2014) ont constaté que l’encapsulation par ultrasons du DHA et de l’EPA à l’aide du sonicateur à sonde UP200S permettait d’obtenir une efficacité d’encapsulation (%EE) supérieure, avec 56,9 ± 5,2% pour le DHA et 38,6 ± 1,8% pour l’EPA. La %EE du DHA et de l’EPA dans les liposomes augmentait significativement avec la sonication (p inférieur à 0,05 ; valeurs statistiquement significatives).
Liposomes préparés par ultrasons et chargés en acides gras DHA et EPA.
Étude et image : Hadian et al. 2014
Comparaison de l’efficacité : encapsulation par ultrasons et extrusion de liposomes
La comparaison de l’encapsulation par ultrasons à sonde avec la sonication en bain et la technique d’extrusion montre que la sonication à sonde permet une meilleure formation des liposomes.
Hadia et al. (2014) ont comparé la sonication à sonde (UP200S), la sonication en bain et l’extrusion comme techniques de préparation de liposomes d’huile de poisson riche en oméga-3. Les liposomes préparés par sonication à sonde étaient de forme sphérique et conservaient une grande intégrité structurelle. L’étude a conclu que la sonication à sonde de liposomes préformés facilite la préparation de liposomes fortement chargés en DHA et en EPA. La sonication à sonde a permis d’encapsuler les acides gras oméga-3 DHA et EPA dans la membrane nanoliposomale. L’encapsulation rend les acides gras oméga-3 hautement biodisponibles et les protège contre la dégradation oxydative.
Facteurs importants pour des liposomes de haute qualité
Après la préparation des liposomes, la stabilisation et le stockage des formulations liposomales jouent un rôle crucial pour obtenir une formulation de vecteur stable à long terme et hautement efficace.
Les facteurs critiques qui influencent la stabilité des liposomes comprennent le pH, la température de stockage et les matériaux des récipients de stockage.
Pour une formulation finie, un pH d’environ 6,5 est considéré comme idéal, car à pH 6,5, la vitesse d’hydrolyse des lipides est réduite à son minimum.
Comme les liposomes peuvent s’oxyder et perdre leur charge en substances encapsulées, une température de stockage d’environ 2–8 °C est recommandée. Les liposomes chargés ne doivent pas être soumis à des conditions de congélation et de décongélation, car le stress de congélation–décongélation favorise la fuite des composés bioactifs encapsulés.
Les récipients de stockage et leurs systèmes de fermeture doivent être soigneusement sélectionnés, car les liposomes ne sont pas compatibles avec certains matériaux plastiques. Pour prévenir la dégradation des liposomes, les suspensions liposomales injectables doivent être conservées dans des ampoules en verre plutôt que dans des flacons d’injection munis de bouchons. La compatibilité avec les bouchons en élastomère des flacons d’injection doit être testée. Pour éviter la photooxydation des composants lipidiques, il est très important de les conserver à l’abri de la lumière, par exemple dans une bouteille en verre foncé placée dans un endroit sombre. Pour les formulations liposomales destinées à la perfusion, la compatibilité des suspensions liposomales avec les tubulures intraveineuses, fabriquées en plastique synthétique, doit être assurée. Les conditions de stockage et la compatibilité des matériaux doivent être précisées sur l’étiquette de la formulation liposomale. [cf. Kulkarni and Shaw, 2016]
Après la formation d’un film lipidique et sa réhydratation ultérieure, la sonication est utilisée pour favoriser l’encapsulation des principes actifs dans le liposome. De plus, la sonication permet d’obtenir la taille de liposome souhaitée.
Sonicateurs haute performance pour les formulations liposomales
Les sonicateurs Hielscher sont des appareils fiables utilisés dans la production pharmaceutique et la fabrication de compléments alimentaires pour formuler des liposomes de haute qualité chargés en acides gras, vitamines, antioxydants, peptides, polyphénols et autres composés bioactifs. Pour répondre aux besoins de ses clients, Hielscher propose des sonicateurs allant de l’homogénéisateur de laboratoire compact à ultrasons, tenu à la main, et des sonicateurs de paillasse jusqu’aux systèmes à ultrasons entièrement industriels destinés à la production de grands volumes de formulations liposomales. La formulation de liposomes par ultrasons peut être réalisée par lots ou selon un procédé continu en ligne. Une large gamme de sonotrodes ultrasonores (sondes) et de cuves de réacteur est disponible pour assurer une configuration optimale de votre production de liposomes. La robustesse des sonicateurs Hielscher permet un fonctionnement 24/7 en service intensif et dans des environnements exigeants.
Le tableau ci-dessous vous donne une indication de la capacité de traitement approximative de nos sonicateurs :
| Volume du lot | Débit | Appareils recommandés |
|---|---|---|
| 1 à 500mL | 10 à 200mL/min | UP100H |
| 10 à 2000mL | 20 à 400mL/min | UP200Ht, UP400St |
| 0,1 à 20L | 0,2 à 4L/min | UIP2000hdT |
| 10 à 100L | 2 à 10L/min | UIP4000hdT |
| n.a. | 10 à 100L/min | UIP16000 |
| n.a. | supérieur | ensemble de UIP16000 |
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Bibliographie / Références
- Zahra Hadian, Mohammad Ali Sahari, Hamid Reza Moghimi; Mohsen Barzegar (2014): Formulation, Characterization and Optimization of Liposomes Containing Eicosapentaenoic and Docosahexaenoic Acids; A Methodology Approach. Iranian Journal of Pharmaceutical Research (2014), 13 (2): 393-404.
- Zahra Hadian (2016): A Review of Nanoliposomal Delivery System for Stabilization of Bioactive Omega-3 Fatty Acids. Electron Physician. 2016 Jan; 8(1): 1776–1785.
- Joanna Kopecka, Giuseppina Salzano, PharmDa, Ivana Campia, Sara Lusa, Dario Ghigo, Giuseppe De Rosa, Chiara Riganti (2013): Insights in the chemical components of liposomes responsible for P-glycoprotein inhibition. Nanomedicine: Nanotechnology, Biology, and Medicine 2013.
- Vitthal S. Kulkarni., Charles Shaw (2016): Formulating Creams, Gels, Lotions, and Suspensions. In: Essential Chemistry for Formulators of Semisolid and Liquid Dosages, 2016. 29-41.
Informations utiles
Que sont les liposomes ?
Un liposome est une vésicule sphérique possédant au moins une bicouche lipidique. Les liposomes sont connus comme d’excellents vecteurs de médicaments et sont utilisés pour administrer des nutriments, des compléments et des médicaments pharmaceutiques dans le tissu ciblé.
Les liposomes sont généralement constitués de phospholipides, en particulier de phosphatidylcholine, mais ils peuvent également contenir d’autres lipides, tels que la phosphatidyléthanolamine d’œuf, à condition que ceux-ci soient compatibles avec la structure de la bicouche lipidique.
Un liposome se compose d’un cœur aqueux entouré d’une membrane hydrophobe sous forme de bicouche lipidique ; les solutés hydrophiles dissous dans le cœur sont emprisonnés et ne peuvent pas traverser facilement la bicouche. Les molécules hydrophobes peuvent être incorporées dans la bicouche. Un liposome peut donc être chargé de molécules hydrophobes et/ou hydrophiles. Pour acheminer les molécules vers un site cible, la bicouche lipidique peut fusionner avec d’autres bicouches, telles que la membrane cellulaire, délivrant ainsi dans les cellules les substances encapsulées dans le liposome.
Comme le sang des mammifères est un milieu aqueux, les liposomes transportent efficacement les substances hydrophobes à travers l’organisme jusqu’aux cellules ciblées. Les liposomes sont donc utilisés pour augmenter la biodisponibilité des molécules insolubles dans l’eau, telles que le CBD, la curcumine et les molécules médicamenteuses.
Les liposomes sont préparés avec succès par nanoémulsification et encapsulation par ultrasons.
Structure d’un liposome : cœur aqueux et bicouche phospholipidique avec des têtes hydrophiles et des queues hydrophobes/lipophiles.
Acides gras oméga-3
Les acides gras oméga-3 (ω-3) et oméga-6 (ω-6) sont tous deux des acides gras polyinsaturés (PUFAs) et contribuent à de nombreuses fonctions du corps humain. Les acides gras oméga-3 sont particulièrement connus pour leurs propriétés anti-inflammatoires et bénéfiques pour la santé.
L’acide eicosapentaénoïque, ou EPA (20:5n-3), agit comme précurseur de la prostaglandine-3, qui inhibe l’agrégation plaquettaire, du thromboxane-3 et des eicosanoïdes de type leucotriène-5, et joue un rôle crucial dans la santé cardiovasculaire et cérébrale.
L’acide docosahexaénoïque, ou DHA (22:6n-3), est un composant structurel majeur du système nerveux central des mammifères. Le DHA est l’acide gras oméga-3 le plus abondant dans le cerveau et la rétine, et ces deux organes dépendent de l’apport alimentaire en DHA pour fonctionner correctement. Le DHA contribue à un large éventail de propriétés des membranes cellulaires et de la signalisation cellulaire, particulièrement dans la substance grise du cerveau ainsi que dans les segments externes des cellules photoréceptrices de la rétine, qui sont riches en membranes.
Sources alimentaires d’acides gras oméga-3
Parmi les sources alimentaires de ω-3 figurent les poissons, notamment les poissons d’eau froide tels que le saumon, les sardines et le maquereau, l’huile de foie de morue, les coquillages et crustacés, le caviar, les algues marines, l’huile d’algues, les graines de lin, les graines de chanvre, les graines de chia et les noix.
L’alimentation occidentale standard comprend généralement de grandes quantités d’acides gras oméga-6 (ω-6), car des aliments comme les céréales, les huiles de graines végétales, la volaille et les œufs sont riches en lipides oméga-6. En revanche, les acides gras oméga-3 (ω-3), que l’on trouve principalement dans les poissons d’eau froide, sont consommés en quantités nettement plus faibles, de sorte que le rapport oméga-3:oméga-6 est souvent complètement déséquilibré.
Par conséquent, la prise de compléments alimentaires à base d’oméga-3 est souvent recommandée par les médecins et les professionnels de santé.
Acides gras essentiels
Les acides gras essentiels (EFAs) sont des acides gras que les humains et les animaux doivent ingérer par l’alimentation, car l’organisme en a besoin pour assurer correctement ses fonctions vitales, mais ne peut pas les synthétiser. En général, les acides gras essentiels et leurs dérivés sont indispensables au cerveau et au système nerveux, et représentent 15%–30% du poids sec du cerveau. Les acides gras essentiels se répartissent en acides gras saturés, insaturés et polyinsaturés. Pour les humains, seuls deux acides gras sont reconnus comme essentiels, à savoir l’acide alpha-linolénique, qui est un acide gras oméga-3, et l’acide linoléique, qui est un acide gras oméga-6. Certains autres acides gras peuvent être classés comme « conditionnellement essentiels », ce qui signifie qu’ils peuvent devenir essentiels dans certaines conditions de développement ou de maladie ; il s’agit notamment de l’acide docosahexaénoïque, un acide gras oméga-3, et de l’acide gamma-linolénique, un acide gras oméga-6.
