Liposomes par la méthode d’évaporation en phase inverse à l’aide de la sonication
Les liposomes sont des nanovecteurs polyvalents utilisés pour l’administration de médicaments en raison de leur biocompatibilité et de leur capacité à encapsuler des médicaments aussi bien hydrophiles qu’hydrophobes. La méthode d’évaporation en phase inverse (également appelée méthode d’émulsification ou méthode d’évaporation de solvant) est une technique de premier plan pour la préparation de liposomes, offrant une efficacité d’encapsulation élevée. Cet article porte sur la préparation de liposomes par la méthode d’évaporation en phase inverse améliorée par la sonication à sonde, en mettant en évidence les étapes de la procédure, les avantages et les applications potentielles dans les systèmes d’administration de médicaments.
Les liposomes sont des structures vésiculaires constituées d’une ou plusieurs bicouches lipidiques, capables d’encapsuler des composés hydrophiles et hydrophobes. Leur structure unique les rend idéaux pour l’administration ciblée de médicaments. La méthode d’évaporation en phase inverse (aussi appelée méthode d’émulsification ou méthode d’évaporation de solvant) est une technique bien établie pour la préparation de liposomes. Dans les paragraphes suivants, nous vous présentons les avantages de la méthode d’évaporation en phase inverse utilisant la sonication à sonde, connue pour améliorer l’émulsification, l’efficacité d’encapsulation et la réduction de la taille des liposomes.
Sonicateur à sonde UP400St pour la préparation de liposomes
Méthodologie de préparation des liposomes par la méthode d’évaporation en phase inverse
La formation de liposomes par la méthode d’évaporation inverse à l’aide de la sonication consiste à dissoudre des lipides dans un mélange de solvants organiques composé de chloroforme et de méthanol (2:1 v/v), qui favorise la formation de micelles inversées. Un tampon aqueux est ensuite ajouté à ce mélange. La solution combinée est soniquée, par exemple à l’aide d’un sonicateur à sonde tel que l’UP400ST, afin de créer une microémulsion eau-dans-huile. Le solvant organique est ensuite évaporé à l’aide d’un évaporateur rotatif, ce qui donne un gel visqueux qui finit par s’effondrer pour former des liposomes. Le grand cœur aqueux des bulles de la microémulsion favorise le piégeage des molécules hydrophiles, conduisant à des gels liposomaux qui présentent une libération contrôlée et un bon profil de perméation. Enfin, les liposomes sont réduits à une taille uniforme à l’aide du sonicateur.
Protocole / instructions étape par étape :
- Peser et dissoudre les lipides :
Peser avec précision un total de 40 mg de L-α-phosphatidylcholine et de cholestérol selon un rapport massique de 4:1 ou de 7:3.
Dissoudre les lipides pesés dans 10 mL d’un mélange chloroforme/méthanol (4:1 v/v) dans un ballon à fond rond. - Former le film lipidique :
Fixer le ballon à fond rond à un évaporateur rotatif.
Faire tourner le ballon à 8 x g à 40°C sous vide jusqu’à ce qu’un film lipidique mince se forme sur les parois du ballon. - Éliminer les vapeurs de solvant :
Évacuer les vapeurs restantes du mélange de solvants en balayant le ballon avec de l’azote gazeux. - Redissoudre le film lipidique :
Redissoudre le film lipidique dans 10 mL d’éther diéthylique pour former des vésicules en phase inverse. - Préparer la phase aqueuse :
Mélanger 5 mL de tampon PBS (0,1 M, pH 7,4) contenant le principe actif à encapsuler et 20 mg de Tween 80 avec la phase organique (éther diéthylique contenant les lipides dissous). - Soniquer l’émulsion :
Placer l’émulsion e/h dans un bain de glace.
Soniquer l’émulsion à l’aide d’un sonicateur à sonde UP200Ht à 26 kHz en mode pulsé à 50% (0,5 cycle = 30 sec ON / 30 sec OFF) et à 50% d’amplitude pendant 1 minute. - Évaporer pour former un gel :
Remettre l’émulsion soniquée sur l’évaporateur rotatif.
Évaporer sous pression atmosphérique à 40°C jusqu’à obtention d’un gel. - Former les liposomes :
Poursuivre l’évaporation du gel jusqu’à ce qu’il se transforme en un liquide semi-transparent, signe de la formation de liposomes. - Suspension finale de liposomes :
Ajouter 5 mL supplémentaires de tampon PBS (0,1 M, pH 7,4) à la suspension de liposomes.
Agiter doucement le mélange au vortex.
Évacuer les vapeurs restantes d’éther diéthylique à l’aide d’azote gazeux. - Conservation :
Conserver la suspension finale de liposomes à 4°C au réfrigérateur jusqu’à utilisation.
Ces instructions décrivent étape par étape le procédé de préparation de liposomes par la méthode d’évaporation en phase inverse avec homogénéisation par ultrasons, garantissant une charge aqueuse interne élevée et une encapsulation efficace du principe actif.
La méthode d’évaporation en phase inverse, en particulier avec sonication à sonde, est une technique largement adoptée pour la préparation de liposomes, notamment lorsqu’on vise une charge aqueuse interne élevée. Cette méthode présente un avantage par rapport à la méthode traditionnelle d’hydratation de film mince en raison de sa capacité à incorporer une plus grande quantité de phase aqueuse dans les liposomes.
Sonicateur industriel UIP2000hdT pour la production de liposomes à grande échelle
Avantages de la sonication à sonde pour la formation de liposomes
- Homogénéité accrue : La sonication à sonde fournit un apport d’énergie constant, ce qui se traduit par une distribution granulométrique plus uniforme des liposomes.
- Encapsulation améliorée : Les forces mécaniques exercées pendant la sonication améliorent l’encapsulation des médicaments, en particulier pour les composés hydrophiles.
- Mise à l’échelle : Les méthodes sont facilement transposables à plus grande échelle, ce qui les rend adaptées à la production de liposomes à grande échelle.
Applications des liposomes dans l’administration de médicaments
Les liposomes préparés par les méthodes d’émulsification et d’évaporation de solvant avec sonication à sonde conviennent à diverses applications d’administration de médicaments, notamment :
- Administration ciblée de médicaments : La fonctionnalisation des liposomes avec des ligands spécifiques permet une administration ciblée vers des tissus ou des cellules particuliers.
- Libération contrôlée : La structure en bicouche lipidique permet une libération contrôlée du médicament, ce qui améliore l’efficacité thérapeutique.
- Polyvalence : Ces méthodes conviennent à un large éventail d’agents thérapeutiques, des petites molécules aux biomolécules plus grosses telles que les protéines et les acides nucléiques.
La méthode d’évaporation en phase inverse se distingue particulièrement par sa charge aqueuse interne plus élevée par rapport à la méthode d’hydratation de film mince. Cette caractéristique est avantageuse pour les applications nécessitant une encapsulation importante de médicaments hydrophiles ou d’autres agents thérapeutiques.
La méthode d’évaporation en phase inverse utilisant la sonication à sonde est une technique robuste et efficace pour la préparation de liposomes. Sa capacité à atteindre une charge aqueuse interne plus élevée en fait une méthode privilégiée dans les applications pharmaceutiques où il est crucial de maximiser l’encapsulation de substances hydrophiles. Le contrôle minutieux de l’évaporation du solvant et l’utilisation de la sonication sont essentiels au succès de cette méthode, permettant la production de liposomes de haute qualité adaptés à diverses fins thérapeutiques.
Trouvez le sonicateur adapté à votre production de liposomes
Hielscher Ultrasonics propose une large gamme de sonicateurs à sonde pour une production efficace de liposomes, offrant une efficacité de piégeage élevée et une capacité de charge élevée en molécules bioactives.
Vous pouvez utiliser les sonicateurs Hielscher pour différentes voies de préparation de liposomes, telles que la technique d’évaporation en phase inverse décrite ici, la méthode d’émulsification et la méthode du film mince.
En savoir plus sur la préparation de liposomes par ultrasons via la méthode du film mince !
En savoir plus sur les liposomes préparés par ultrasons encapsulant
- de la vitamine C
- du DHA et de l’EPA (huile de poisson)
- de l’allicine
- des peptides GLP-1 (p. ex. sémaglutide)
- haute efficacité
- technologie de pointe
- fiabilité et robustesse
- contrôle de processus précis et réglable
- en batch et en ligne
- pour tout volume
- logiciel intelligent
- fonctions intelligentes (p. ex. programmables, enregistrement des données, commande à distance)
- utilisation simple et sûre
- faible entretien
- CIP (nettoyage en place)
Conception, fabrication et conseil – Qualité Made in Germany
Les ultrasonicateurs Hielscher sont réputés pour leurs normes de qualité et de conception les plus élevées. Leur robustesse et leur facilité d’utilisation permettent une intégration fluide de nos ultrasonicateurs dans les installations industrielles. Les conditions difficiles et les environnements exigeants sont facilement maîtrisés par les ultrasonicateurs Hielscher.
Hielscher Ultrasonics est une entreprise certifiée ISO qui accorde une importance particulière aux ultrasonicateurs haute performance dotés d’une technologie de pointe et d’une grande convivialité. Bien entendu, les ultrasonicateurs Hielscher sont conformes CE et satisfont aux exigences UL, CSA et RoHs.
Le tableau ci-dessous vous donne une indication de la capacité de traitement approximative de nos ultrasonicateurs :
| Volume du lot | Débit | Appareils recommandés |
|---|---|---|
| 0,5 à 1,5mL | n.a. | VialTweeter |
| 1 à 500mL | 10 à 200mL/min | UP100H |
| 10 à 2000mL | 20 à 400mL/min | UP200Ht, UP400St |
| 0,1 à 20L | 0,2 à 4L/min | UIP2000hdT |
| 10 à 100L | 2 à 10L/min | UIP4000hdT |
| 15 à 150L | 3 à 15L/min | UIP6000hdT |
| 15 à 150L | 3 à 15L/min | UIP6000hdT |
| n.a. | 10 à 100L/min | UIP16000 |
| n.a. | supérieur | cluster de UIP16000 |
Contactez-nous ! / Posez-nous vos questions !
Bibliographie / Références
- Marco Paini, Sean Ryan Daly, Bahar Aliakbarian, Ali Fathi, Elmira Arab Tehrany, Patrizia Perego, Fariba Dehghani, Peter Valtchev (2015): An efficient liposome based method for antioxidants encapsulation. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, Volume 136, 2015. 1067-1072.
- Yao, X., Bunt, C., Cornish, J., Quek, S.-Y. and Wen, J. (2014): Preparation, Optimization and Characterization of Bovine Lactoferrin-loaded Liposomes and Solid Lipid Particles Modified by Hydrophilic Polymers Using Factorial Design. Chemical Biology and Drug Design 83, 2014. 560-575.
- Seyedeh Parinaz Akhlaghi, Iris Renata Ribeiro, Ben J. Boyd, Watson Loh (2016): Impact of preparation method and variables on the internal structure, morphology, and presence of liposomes in phytantriol-Pluronic® F127 cubosomes. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, Volume 145, 2016. 845-853.
Faits à savoir
Que sont les liposomes ?
Les liposomes sont des vésicules sphériques dotées d’une bicouche lipidique, utilisées pour encapsuler des composés. Ils sont préparés dans une solution contenant le composé à piéger. Pour les composés hydrophiles comme les protéines, on utilise une solution aqueuse, tandis que les molécules hydrophobes sont encapsulées à l’aide de solutions dans des solvants organiques mélangés à des lipides. Cette polyvalence rend les liposomes précieux pour l’administration de médicaments et d’autres applications biomédicales.
Qu’est-ce que la méthode d’évaporation en phase inverse pour la préparation de liposomes ?
La méthode d’évaporation en phase inverse pour la préparation de liposomes consiste à dissoudre des lipides dans un mélange chloroforme/méthanol et à former un film lipidique mince par évaporation rotative. Ce film est ensuite redissous dans de l’éther diéthylique pour créer des vésicules en phase inverse. Une phase aqueuse contenant le principe actif et du Tween 80 est mélangée à la phase organique, formant une émulsion eau-dans-huile. L’émulsion est soniquée à l’aide d’un sonicateur à sonde, puis soumise à une nouvelle évaporation rotative pour produire un gel, qui finit par former des liposomes lors d’une évaporation supplémentaire. La suspension finale est complétée par l’ajout de tampon PBS et l’élimination des solvants résiduels à l’azote gazeux, ce qui donne des liposomes conservés à 4°C.
Quel est l’effet de la sonication sur les liposomes ?
La sonication agit sur les liposomes en utilisant des ondes ultrasonores pour perturber et mélanger les phases lipidique et aqueuse, favorisant la formation d’une dispersion homogène. Ce procédé aide à contrôler la taille et l’uniformité des liposomes et empêche la surchauffe en permettant des impulsions d’énergie intermittentes. La cavitation contrôlée provoquée par la sonication assure une encapsulation efficace des principes actifs dans les liposomes.
Qu’est-ce que la transition de phase dans les liposomes ?
La transition de phase dans les liposomes désigne le changement de l’état physique du lipide induit par la température. La température de transition de phase est la température spécifique à laquelle les lipides passent de la phase gel ordonnée, où les chaînes hydrocarbonées sont entièrement étendues et étroitement empilées, à la phase cristalline liquide désordonnée, où les chaînes hydrocarbonées deviennent orientées de manière aléatoire et fluides. Cette transition influe sur la stabilité et la perméabilité des liposomes ainsi que sur leur interaction avec les substances encapsulées.
Qu’est-ce que la méthode d’extrusion pour la préparation de liposomes ?
La méthode d’hydratation de film mince est parfois aussi appelée méthode d’extrusion, car l’étape d’hydratation du film mince est suivie d’une étape d’extrusion. Lors de l’extrusion, les liposomes sont extrudés à travers des membranes en polycarbonate afin d’obtenir des liposomes petits et homogènes. Comme alternative à l’extrusion, la taille des liposomes est souvent réduite par sonication.
Qu’est-ce que la méthode de sonication des liposomes ?
La sonication est utilisée dans diverses méthodes de formation de liposomes. Elle est appliquée pour l’émulsification des lipides et des solvants, pour la réhydratation du film lipidique et pour la réduction de la taille des liposomes. Pour la méthode d’évaporation en phase inverse, les lipides sont émulsifiés par ultrasons avec une phase aqueuse. Pour la méthode du film mince, un film lipidique séché est réhydraté à l’aide d’un sonicateur afin de créer une suspension de vésicules multilamellaires. Plusieurs techniques de préparation de liposomes utilisent la sonication pour la réduction ultérieure de la taille des liposomes formés. Ici, la sonication permet d’obtenir des liposomes uniformément petits et stables, adaptés à diverses applications.
Hielscher Ultrasonics fabrique des homogénéisateurs à ultrasons haute performance pour le laboratoire jusqu’à l’échelle industrielle.

