Solunulkoinen matriisiuutto 96-kaivoisella Sonicator-UIP400MTP
Perinteisiin soluväliaineen (EM) uuttomenetelmiin liittyy usein useita vaiheita biofilmimatriisin häiritsemiseksi. Nämä tekniikat voivat kuitenkin olla aikaa vieviä ja epäjohdonmukaisia, mikä johtaa tulosten vaihteluun. 96-kuoppaisen levysonikaattorin UIP400MTP avulla EM-uuttoprosessi helpottuu merkittävästi, mikä tarjoaa erittäin tehokkaan, tarkan ja tasaisen biofilmin häiriön korkean suorituskyvyn muodoissa. UIP400MTP käyttää kohdennettua ultraääntä kontrolloidun kavitaation tuottamiseen, hajottamalla tehokkaasti biofilmimatriisin säilyttäen samalla biofilmiin upotettujen solujen elinkelpoisuuden ja eheyden. UIP400MTP käyttö parantaa loppupään määritysten, kuten metabolomio- ja proteomiikka-analyysien, elinkelpoisuustestien ja mikrobilääkeherkkyystutkimusten, toistettavuutta ja tarkkuutta. Virtaviivaistamalla sähkömagneettista uuttoa UIP400MTP antaa tutkijoille mahdollisuuden saavuttaa johdonmukaisia ja laadukkaita tuloksia, jotka tarjoavat syvempää tietoa biofilmin dynamiikasta ja vuorovaikutuksesta ulkoisten tekijöiden kanssa.
soluväliaineen uuttaminen
Soluväliaine (EM) on mikro-organismien, kuten Candida albicansin, muodostamien biofilmien kriittinen komponentti. Polysakkarideista, proteiineista, lipideistä ja solunulkoisesta DNA:sta koostuva EM tarjoaa rakenteellisen eheyden, välittää tarttumista pintoihin ja edistää merkittävästi mikrobilääkeresistenssiä. EM: n uuttaminen ja analysointi on välttämätöntä biofilmibiologian ymmärtämiseksi, lääkeresistenssin mekanismien selvittämiseksi ja uusien terapeuttisten kohteiden tunnistamiseksi.
Protokolla soluväliaineen (EM) uuttamiseksi Candida albicans -biofilmeistä käyttäen UIP400MTP
Tämä protokolla keskittyy staattisten Candida albicans -biofilmien solunulkoisen matriisin (EM) uuttamiseen. UIP400MTP sonikaattorin integrointi korvaamaan perinteiset kaavinta- tai entsyymipohjaiset vaiheet tehokkuuden ja toistettavuuden parantamiseksi.
Tarvittavat materiaalit
Vaiheittaiset ohjeet EM-uuttoon
- Staattisen biofilmin muodostuminen
Staattisia biofilmejä varten inokuloidaan C. albicans 96-kuoppalevyn kuoppiin RPMI-1640-väliaineella. Jokaisessa kuopassa on oltava tasainen tilavuus inokulaattia (esim. 200 μl kuoppaa kohti).
Levyä inkuboidaan 37 °C:ssa staattisissa olosuhteissa 24 tunnin ajan, jotta kuopan pinnoille muodostuu biokalvoa. - Biofilmin valmistelu uuttamista varten
Inkuboinnin jälkeen imetään ja heitetään käytetty väliaine varovasti kustakin kuopasta biofilmiä häiritsemättä.
Huuhtele jokainen kuoppa huolellisesti steriilillä PBS:llä (esim. 200 μl) löysästi kiinnittyneiden solujen ja planktonisten roskien poistamiseksi. Toista tämä vaihe kahdesti.
Lisää tuoretta PBS: ää tai uuttopuskuria (esim. 200 μl) kuhunkin kuoppaan valmistautuaksesi sonikaatioon. - Sonikaatio UIP400MTP kanssa
Aseta PBS:ää tai uuttopuskuria sisältävä 96-kuoppainen levy UIP400MTP sonicator -lokeroon. Aseta monikuoppalevy oikein noudattamalla käyttöoppaan ohjeita.
Sonikoidaan 5-6 minuuttia lempeällä asetuksella (60% amplitudi, pulssitila), mikä varmistaa biofilmirakenteen tasaisen häiriön ja EM-komponenttien vapautumisen.
Käytä UIP400MTP sonicatorin lämpötilan säätöä (lämpötila-anturi ja asetukset) liiallisen kuumenemisen tai näytevaurioiden välttämiseksi. - Kationinvaihtohartsin (CER) käsittely
Siirrä sonikoitu neste kustakin kuopasta uuteen 96-kuoppaiseen levyyn.
Lisätään kuhunkin kuoppaan kaksinkertainen tilavuus CER-suspensiota (valmistettu PBS:ssä tai puskurissa) (esim. 400 μl kokonaistilavuus kuoppaa kohti).
Levy suljetaan ja inkuboidaan levyravistimessa tai rotaattorissa nopeudella 400 kierrosta minuutissa 3 tunnin ajan, jotta EM-komponentit voidaan sitoa ja eristää. - Erotus ja suodatus
Sentrifugoidaan levyä 2 000 × g:ssa 10 minuutin ajan hartsin ja solujen erottamiseksi supernatantista.
EM:ää sisältävä supernatantti siirretään varovasti kustakin kuopasta uuteen 96-kuoppaiseen levyyn.
Supernatantti suodatetaan 0,22 μm:n suodattimen läpi käyttäen levypohjaista tyhjöjakotukkijärjestelmää tai vastaavaa puhtaan EM-uutteen saamiseksi. - EM: n analyysi
Käytä tekniikoita, kuten UPLC-Q-TOF-MS, kohdentamattomaan metaboliittiprofilointiin tai käytä erityisiä määrityksiä (esim. BCA proteiineille, triglyseridille ja hiilihydraattien kvantifiointisarjoille) EM-komponenttien karakterisoimiseksi.
Korkean suorituskyvyn soluväliaineen uuttaminen
Solunulkoisen matriisin (EM) uuttamisen korkea tehokkuus UIP400MTP-sonikaattorilla on mullistanut näytteen valmistelun määrityksiin, jotka edellyttävät biofilmin ominaisuuksien tarkkaa analysointia. UIP400MTP käyttää ultraääniaaltoja biofilmimatriisin tarkkaan ja tasaiseen hajottamiseen, mikä mahdollistaa EM-komponenttien tehokkaan vapautumisen säilyttäen samalla solujen elinkelpoisuuden ja eheyden. Tämä lähestymistapa parantaa merkittävästi sellaisten määritysten luotettavuutta kuin biofilmin elinkelpoisuustestit, proteomiikka- ja metabolomiikkatutkimukset sekä mikrobilääkeherkkyyden arvioinnit.
Biofilmin talteenottotesteissä, kuten pesäkkeitä muodostavien yksiköiden (CFU) laskennassa, EM-uuttaminen UIP400MTP kanssa varmistaa reagenssien esteettömän pääsyn biofilmiin upotettuihin soluihin. Samoin proteomiikka- ja metabolomiikka-analyysit, kuten UPLC-Q-TOF-MS, hyötyvät proteiinien, lipidien ja metaboliittien korkean tuoton eristämisestä. UIP400MTP tukee myös tarkkaa mikrobilääkeherkkyyden testausta, mikä mahdollistaa biofilmin MIC- ja MBEC-arvojen tarkan määrittämisen. Lisäksi UIP400MTP helpottama tehokas uuttaminen auttaa entsyymiaktiivisuusmäärityksissä, komponenttien kvantifioinnissa ja rakennetutkimuksissa, mikä tarjoaa arvokasta tietoa solunulkoisten matriisien roolista biofilmiarkkitehtuurissa, adheesiossa ja resistenssimekanismeissa.
Tämä korkean suorituskyvyn toistettavissa oleva uuttomenetelmä optimoi EM-valmistelun ja takaa erinomaiset tulokset useissa biofilmiin liittyvissä määrityksissä.
Korkean suorituskyvyn EM-uutto 96-kuoppaisella levysonikaattorilla UIP400MTP
Kirjallisuus / Viitteet
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
Usein Kysytyt Kysymykset
Mikä on soluväliaineen tarkoitus?
Soluväliaine (EM tai ECM) tarjoaa rakenteellista tukea soluille, säätelee solujen välistä viestintää ja vaikuttaa solujen käyttäytymiseen.
Mitä soluväliaine tekee kudoksille?
Kudoksille EM toimii rakennustelineenä, joka ylläpitää rakenteellista eheyttä, helpottaa mekaanista joustavuutta ja välittää biokemiallista signalointia säätelemään prosesseja, kuten kasvua, erilaistumista ja korjausta.
Mikä on soluväliaineen tarttuvuus?
Soluväliaineen adheesio viittaa solujen ja EM: n väliseen vuorovaikutukseen, jota välittävät pääasiassa solun pinnan adheesiomolekyylit, kuten integriinit, mikä mahdollistaa solujen ankkuroinnin, signaalinsiirron ja migraation.
Miksi soluväliaine uutetaan määrityksiä varten?
EM uutetaan määrityksiä varten, jotta voidaan tutkia sen koostumusta, ymmärtää sen rooli soluprosesseissa ja tutkia sen vaikutusta taudin etenemiseen, mukaan lukien biofilmin muodostuminen ja mikrobilääkeresistenssi.
Mitkä ovat soluväliaineen yleiset uuttomenetelmät?
Yleisiä uuttomenetelmiä ovat fysikaaliset menetelmät, kuten ultrasonication, kemialliset käsittelyt pesuaineilla tai suoloilla ja entsymaattinen pilkkominen EM-komponenttien eristämiseksi säilyttäen samalla niiden eheys.
Mikä on soluton soluväliaine (dECM)?
Decellularized extracellular matrix (dECM) saadaan poistamalla solumateriaalia kudoksista säilyttäen samalla EM:n rakenteelliset ja biokemialliset ominaisuudet. Sitä käytetään regeneratiivisessa lääketieteessä kudosteknologian ja soluviljelyn telineenä.
Lue lisää solunulkoisen matriisin ultraääniavusteisesta dekellularisaatiosta!
Hielscher Ultrasonics valmistaa korkean suorituskyvyn ultraäänihomogenisaattoreita laboratorio jotta Teollisuuden koko.


