Cómo utilizar los homogeneizadores ultrasónicos de tejidos de Hielscher
Encontrará a continuación una selección de tejidos, células y otros materiales biológicos con los protocolos de tratamiento con ultrasonidos y recomendaciones relacionadas, cómo preparar su muestra de manera eficiente usando un homogeneizador ultrasónico.

homogeneizador de tejido ultrasónico UP100H
Cómo preparar a su lisados, homogeneizados y extractos de materiales biológicos
En orden alfabético:
suboxydans Acetobacter
La disrupción celular en 5-15 seg.
Recomendación Dispositivo:
UP200St
Actinomics
La interrupción y la proteína de extracción en 3-5 min.
Recomendación Dispositivo:
UP50H
actividad de la LDH y ALP
Determinación de la ALP y de la actividad LDH y el contenido de proteínas
muestras de células congeladas se descongelaron durante 20 min en hielo, seguido de la lisis celular con PBS que contenía 1% de Triton X-100 durante 50 min en hielo. Durante la lisis celular cada muestra se sometió a ultrasonidos durante 1 min a 80 W con un procesador ultrasónico UP100H (Hielscher Ultrasonidos).
Recomendación Dispositivo:
UP100H
Referencia / Trabajo de investigación:
Bernhardt, A. et al. (2008): colágeno mineralizado una artificial, hueso extracelular de matriz mejora la diferenciación osteogénica de las células del estroma de médula ósea.
fosfato tricálcico amorfo (ATCP)
ATCP nano-partículas, que son un precursor excepcionalmente reactivo para la formación de hidroxiapatita, se dispersaron en cloroformo que contenía 5% (w / w) Tween20 refiere PLGA utilizando los UP400S dispositivo de ultrasonidos Hielscher a 320W durante 5 min. la aplicación de los intervalos de impulsos (50%) para permitir la relajación de las partículas.
Recomendación Dispositivo:
UP400S
Referencia / Trabajo de investigación:
Mohn, Dirk; Ege, Duygu; Feldman, Kirifl; Schneider, Oliver D .; Imfeld, Thomas; Boccaccini, Aldo R. (2014): esféricos rellenos de nanopartículas de fosfato de calcio permiten el procesamiento de polímeros de los dispositivos de fijación de huesos con alta bioactividad. La Biblioteca Libre 01 de mayo de 2010. 21 de enero de 2014.
Las antocianinas
Las antocianinas: di-glucósidos, mono-glucósido, monoglucósidos acilados aciladas y di-glucósidos de peonidina, malvidina, cianidina, delfinidina petunidina y extracción a partir de piel de uva en 40 seg .; pH 5,0; relación de disolvente / material de extracción de 1: 6.
Recomendación Dispositivo:
UP100H
antraquinonas
La extracción de antraquinonas de las raíces de Morinda citrifolia
Recomendación Dispositivo:
UP400S
semillas de albaricoque
Ultrasonic pre-tratamiento antes de la extracción del aceite de las semillas de Jatropha curcas L. para mejorar la extracción.
Recomendación Dispositivo:
UP400S
Artemisia selengensis Turcz
Extracción de rutina (1.0g de muestra molida en 30 mL de metanol) a 25°C en 5-10 min.
Recomendación Dispositivo:
UP50H
Aspergillus flavus
Ultrasonic inactivación de Aspergillus flavus en medio de crecimiento Sabouraud
Recomendación Dispositivo:
UP200S
B. sphaericus / Bacillus sphaericus
Bacillus anthracis Sterne esporas 34F2
eliminación ultrasónica de Bacillus anthracis Sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 y Bacillus thuringiensis ATCC 33680 esporas. El uso de 150 ppm de hipoclorito de sodio junto con ultrasonido dio lugar a la inactivación de las esporas.
Recomendación Dispositivo:
UP200S a 100% de la amplitud
Referencia / Trabajo de investigación:
Pamarthi, S. R. et al .: Eficacia de Ultrasonido en esporas spp Desoiling Bacillus Embedded en matrices alimentarias complejas adjuntos a diversas superficies de contacto.
Bacillus cereus ATCC 21281 esporas
eliminación ultrasónica de Bacillus anthracis Sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 y Bacillus thuringiensis ATCC 33680 esporas. El uso de 150 ppm de hipoclorito de sodio junto con ultrasonido dio lugar a la inactivación de las esporas.
Recomendación Dispositivo:
UP200S a 100% de la amplitud
Referencia / Trabajo de investigación:
Pamarthi, S. R. et al .: Eficacia de Ultrasonido en esporas spp Desoiling Bacillus Embedded en matrices alimentarias complejas adjuntos a diversas superficies de contacto.
Bacillus subtilis
De alta potencia, el ultrasonido de baja frecuencia en bajos volúmenes de resultados suspensión bacteriana en una reducción continua en el número de células bacterianas es decir, predomina el grado de destrucción. En volúmenes más grandes, los resultados de sonicación en un aumento inicial en el número de células que sugieren desgranado de las bacterias pero este aumento inicial luego cae a medida que los acabados desgranado y el grado de eliminación se vuelve más importante.
Recomendación Dispositivo:
UP200St
Referencia / Trabajo de investigación:
Joyce, E .; Phull, S. S .; Lorimer, J. P .; Mason, T. J. (2003): El desarrollo y evaluación de ultrasonido para el tratamiento de suspensiones bacterianas. Un estudio de frecuencia, potencia y sonicación vez en la especie Bacillus cultivadas. Ultrason. Sonochem. 10/2003. pp. 315-318.
La alfa-amilasa de cebada
Estimular o inhibir la actividad de alfa-amilasa de cebada: La muestra (10 g de semillas de cebada) se dispersó en 80 ml de agua del grifo a sonicación directa en la intensidad de ultrasonidos de 20, 60 y 100% de la amplitud, cyle de 50% y con agitación adicional . El sonotrodo se sumergió aproximadamente 9 mm en la solución. La solución se procesa a temperatura constante de 30C ° durante 5, 10 y 15 min.
Recomendación Dispositivo:
UP200S, Amplitudes: 20, 60 y 100%; cyle de 50%; Sonotrodo S3, 30C °.
Referencia / Trabajo de investigación:
Yaldagard et al. (2008): Efecto de la energía ultrasónica sobre la actividad de La alfa-amilasa de cebada del convite posterior a la siembra de semillas
percebe nauplios
La disrupción celular / muerte de mesozooplancton: por sonicación bajo las siguientes condiciones de cuatro velocidades de flujo (200, 400, 520 y 800 de la LH-1) y cuatro amplitudes (25, 50, 75 y 100%) una tasa de muerte entre 61 y 97% tiene ha logrado.
Recomendación Dispositivo:
UIP2000hd
Referencia / Trabajo de investigación:
Viitaslo et al. (2005): El ozono, luz ultravioleta, Ultrasonido y peróxido de hidrógeno como tratamientos del agua de lastre – Los experimentos con suero salino mesozooplancton en condiciones de poca agua salobre.
cepas de bifidobacterias: B. breve ATCC 15700, B. animalis subsp. Lactis (BB-12), B. longum (BB-46)
Destrucción de células bacterianas y liberación de ß-galactosidasa de cepas de Bifidobacterias: B. breve ATCC 15700, B. animalis subsp. Lactis (BB-12), B. longum (BB-46): Se aplicó 100 mL de leche pasteurizada mezclada con cultivo de bacterias con ultrasonido. La cavitación causa la destrucción de las células bacterianas y, al mismo tiempo, la liberación de la ß-galactosidasa.
Recomendación Dispositivo:
UIP1000hd: Amplitud: 10%, potencia: 80W, amplitud: 100%, potencia: 200 W; Sonotrodo BS2d34; 15-30 min.
Referencia / Trabajo de investigación:
Hung et al. (2009): Ultrasonido Aided yogur con probióticos fermentación.
células BL21 (DE3) pAtHNL (células de Arabidopsis thaliana)
La disrupción celular: 15 g BL21- células (DE3) _pAtHNL se suspendieron lentamente en tampón de fosfato de potasio 50 mM (pH 7,5) a 0 degC.
Recomendación Dispositivo:
UP200S + Sonotrodo S14D: a 70W/cm2 (4 x 5 min), enfriado en un baño de hielo
Referencia / Trabajo de investigación:
Okrob, D. et al (2009): hidroxinitrilo liasa de Arabidopsis thaliana: Identificación de los parámetros de reacción para enantiopuros cianohidrina Síntesis por Catalyst Pure e inmovilizado. Adv. Synth. Catal. 2011, 353, 2399-2408.
Células de la sangre (rojo y blanco)
Boldina a partir de hojas de boldo (Peumus boldus Molina)
Un compuesto activo importante en boldo es boldina ((S) -2,9-dihidroxi-1,10-dimethoxiaporphine), que es además de catequina ((2S, 3R) -2- (3,4-dihidroxi-fenil) -3 , 4-dihidro-1 (2H) benzopiran-3,5,7-triol) los principales componentes del alcaloide y la fracción flavonoide en hojas de boldo. Boldina es un agente antioxidante fuerte que sufre daño por radicales libres mediada peroxidativo y actúa como un eliminador de radicales hidroxilo eficiente.
Procedimiento de extracción: Para un procedimiento de extracción típico, las muestras de hojas de boldo se extrajeron con 1 litro de agua destilada a presión atmosférica usando el ultrasonicador UIP1000hd en el modo de flujo continuo de lote y. Tiempo de rangos de extracción de entre 10 y 40 min., Con una intensidad de ultrasonidos de entre 10 y 23 W / cm2Y un intervalo de temperatura de 10 a 70 ° C. Los mejores resultados wer consiguen bajo las siguientes condiciones: intensidad de ultrasonidos de 23 W / cm2 durante 40 min. a una temperatura de 36 ° C
resultados: Los resultados del análisis muestran que la sonicación de alta potencia aumenta la liberación analito de material de la matriz vegetal de boldo significativamente mejores tasas comparación con el método convencional: igual rendimiento fue liberado por sonicación en 30 min. mientras que el tiempo de extracción convencional fue 2 h.
Chemat (2013) y los compañeros de trabajo han demostrado que la extracción asistida por ultrasonidos mejora la eficiencia de la extracción de la planta, mientras que la reducción de tiempo de extracción en incremento de la concentración de los extractos (misma cantidad de material de disolvente y de la planta). El análisis reveló que las condiciones optimizadas fueron: la energía de ultrasonidos 23 W / cm2 de alto rendimiento empleando UIP1000hd durante 40 min. y una temperatura de 36 ° C. Los parámetros optimizados de la extracción de ultrasonidos proporcionan una mejor extracción en comparación con una maceración convencional en términos de tiempo de proceso (30 min. En lugar de 120 min.), Mayor rendimiento, mayor eficiencia energética, la mejora de la limpieza, una mayor seguridad y una mejor calidad del producto.
Recomendación Dispositivo:
UIP1000hd con sonotrodo BS2d34 y celda de flujo
Referencia / Trabajo de investigación:
Petigny, L .; PERINO-Issartier, S .; Wajsman, J .; Chemat, F. (2013): Lote y Ultrasonido extracción continua asistida de las hojas de boldo (Peumus boldus Mol.). International Journal of Molecular Science 14, 2013. 5750 hasta 5764.
albúmina de suero bovino (BSA)
La microencapsulación en poli (ácido láctico-co-glicólico) en 40 seg.
Recomendación Dispositivo:
Dmini
Referencia / Trabajo de investigación:
Freitas et al. (2005): emulsificación ultrasónica de flujo continuo combinado con micromezcla estática para la producción aséptica de microesferas mediante extracción con disolvente.
tronco encefálico + glándula adrenal
Dispersión y análisis nucleotid; tamaño de la muestra: 10 mg de muestras de 10 ml de fluido.
Recomendación Dispositivo:
UP50H
Candida albicans
Los hidratos de carbono, polisacáridos y otros compuestos funcionales
La extracción de los hidratos de carbono, polisacáridos y otros compuestos funcionales
Recomendación Dispositivo:
UP200St
El ácido carnósico a partir del romero
La extracción de ácido carnósico, un compuesto activo, de romero.
Recomendación Dispositivo:
UP400S
capsaicinoides
La extracción de capsaicinoides (capsaicina, nordihidrocapsaicina) de chiles: capsaicinoides de Capsicum frutescens pimientos se obtuvo a través de la extracción por ultrasonidos bajo las siguientes condiciones: disolvente: 95% (v / v) de etanol, la relación de disolvente / masa de 10 ml / g, 40 min. sonicación tiempo de extracción, 45 ° C extracción temperatura. rendimiento de extracción: 85% de los capsaicinoides
Recomendación Dispositivo:
UP400S
Carotenoides, el beta-carotenoides
ADNc
Poli-A ARN se purificó con el kit de purificación de ARNm Dynabeads (Invitrogen) siguiendo las instrucciones del fabricante y se trató durante 30 min a 37 ° C con TURBO DNasa (Ambion; 0,2 unidades / 1 g de ARN). síntesis de la primera y de la segunda cadena siguió el protocolo del fabricante. Acerca de 500 ng de ADNc de doble cadena se fragmentó mediante sonicación con Hielscher de UTR200. ADN fue empaquetada en gel de agarosa de alta resolución 2% y se cortaron 230-270 bp fragmentos.
Recomendación Dispositivo:
UTR200 o TD_CupHorn
Referencia / Trabajo de investigación:
Delft, J. van; Gaj, St .; Lienhard, M .; Albrecht, M. W .; Kirpiy, A .; Brauers, K .; Claessen, S .; Lizarraga, D .; Lehrach, H .; Herwig, R .; Kleinjans, J. (2012): RNA-Seq proporciona nuevos conocimientos en las respuestas Transcriptome inducido por el carcinógeno benzo [a] pireno. Ciencias toxicológicos 130/2, 2012. 427-439.
Caryophanon grande;
Extracción de glucosamina, ácido murámico, alanina, ácido glutámico y lisina de datum caryophanon.
Recomendación Dispositivo:
UP100H
Celulosa
Homogeneizar / preparación de celulosa isotópicamente homogénea.
Recomendación Dispositivo:
UP200S; en un baño de hielo
Referencia / Trabajo de investigación:
Laumer et al. (2009): Un nuevo enfoque para la homogeneización de celulosa a utilizar microamounts para análisis de isótopos estables.
nanocristales de celulosa (CNC) preparados a partir de los CNC de celulosa de eucalipto
Los nanocristales de celulosa (CNC) preparados a partir de CNC de celulosa de eucalipto fueron modificados por la reacción con cloruro de metilo adipoil, CNCm, o con una mezcla de ácido acético y ácido sulfúrico, CNCa. Por lo tanto, los CNC liofilizados, CNCm y CNCa se redispersaron en disolventes puros (EA, THF o DMF) al 0,1 % en peso, agitando bymagnéticamente durante la noche a (24 ± 1) C, seguido de 20 minutos en un baño de ultrasonidos con ultrasonidos UP100H Hielscher Ultrasonics (Alemania), equipado con un sonotrodo de 130 W/cm2, a 24 ± 1 grados C. Después de esto, se agregó CAB a la dispersión del CNC, de modo que la concentración final del polímero fue de 0,9 % en peso.
Recomendación Dispositivo:
UP100H; a los 24 degC durante 20 min.
Referencia / Trabajo de investigación:
Blachechen, L. S. et al (2013): Interacción de la estabilidad coloidal de nanocristales de celulosa y su dispersabilidad en la matriz de acetato butirato de celulosa. Celulosa 2013.
Celulosa a partir de bagazo de caña
La extracción de celulosa a partir de bagazo de caña
Recomendación Dispositivo:
UP200St
chip de ensayo
Ultrasonidos se utiliza para la lisis celular para liberar la cromatina. Leve (pulsado) sonicación se usa para fragmentar la cromatina. Además, el ultrasonido acelera la velocidad de anticuerpo de unión a proteínas diana y reduce así el tiempo de inmunoprecipitación.
Recomendación Dispositivo:
UP100H
Referencia / Trabajo de investigación:
Basselet, P. et al. (2008): Procesamiento de las muestras para el análisis basado en la matriz de chips de ADN de Escherichia coli enterohemorrágica (EHEC).
Lauri, A. (2005): El análisis molecular del desarrollo de pétalos por X-chip y la tecnología de dos híbridos. Disertación Universidad de Colonia 2005.
cromatina
Esquila de la cromatina
Recomendación Dispositivo:
UP400S; en 30% de la amplitud y 0,5 ciclo; sobre hielo.
Referencia / Trabajo de investigación:
Oh et al. (2003): Acetil-CoA carboxilasa gen está regulada por la proteína-1 de esteroles Regulatory Element-unión en el hígado.
extracción de la cromatina
El lisado de células MEL DS19 se sometió a ultrasonidos con 10 rondas de 20 s cada uno a 70% de la producción máxima usando el UP200H procesador de ultrasonidos Hielscher 200W
Recomendación Dispositivo:
UF200 ः70% de la salida máxima; modo pulso: 10 ciclos de 20 seg. cada uno.
Referencia / Trabajo de investigación:
Kang, H. Ch. et al (2010): PIAS1 regula la localización del CP2c y la formación del complejo promotor activo en la expresión de la a-globina específica de las células eritroideas. Nucleic Acids Res. 38/ 16, 2010. pp. 5456-5471.
cromatografía
La sonicación de la adsorbente en el disolvente elimina aglomerados dentro de unos pocos segundos y se prepara un uniforme, la columna fácilmente embalado. Relevante para la preparación de adsorbente (por ejemplo, gel de sílice) antes de la cromatografía en columna.
Recomendación Dispositivo:
UP400S
cladóceros
La disrupción celular de mesozooplancton
Recomendación Dispositivo:
UP2000hd con celda de flujo
Referencia / Trabajo de investigación:
Viitaslo et al. (2005): El ozono, luz ultravioleta, Ultrasonido y peróxido de hidrógeno como tratamientos del agua de lastre – Los experimentos con suero salino mesozooplancton en condiciones de poca agua salobre.
adultos y copepoditos copépodos
La disrupción celular de mesozooplancton: por sonicación bajo las siguientes condiciones de cuatro velocidades de flujo (200, 400, 520 y 800 de la LH-1) y cuatro amplitudes (25, 50, 75 y 100%) una tasa de muerte entre 87 y 99% se ha logrado .
Recomendación Dispositivo:
UIP2000hd con celda de flujo
Referencia / Trabajo de investigación:
Viitaslo et al. (2005): El ozono, luz ultravioleta, Ultrasonido y peróxido de hidrógeno como tratamientos del agua de lastre – Los experimentos con suero salino mesozooplancton en condiciones de poca agua salobre.
nauplios de copépodos
La disrupción celular de mesozooplancton: por sonicación bajo las siguientes condiciones de cuatro velocidades de flujo (200, 400, 520 y 800 de la LH-1) y cuatro amplitudes (25, 50, 75 y 100%) una tasa de muerte entre 87 y 99% se ha logrado .
Recomendación Dispositivo:
UIP2000hd con celda de flujo
Referencia / Trabajo de investigación:
Viitaslo et al. (2005): El ozono, luz ultravioleta, Ultrasonido y peróxido de hidrógeno como tratamientos del agua de lastre – Los experimentos con suero salino mesozooplancton en condiciones de poca agua salobre.
COS7 células
La lisis en 400 l de tampón
Recomendación Dispositivo:
UP200S; 7 ciclos
Referencia / Trabajo de investigación:
Zaim (2005): Análisis de nesprin-2 ratones deficientes.
parvaum Cryptosporidium
Ultrasonic inactivación de Cryptosporidium parvaum (protozoos) en agua.
Recomendación Dispositivo:
UP400S
Referencia / Trabajo de investigación:
Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Furuta, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Inactivación de Saccharomyces cerevisiae por irradiación ultrasónica. Ultrasonido. Sonochem. 11/2004. págs. 61-65.
Cubosomas
Cubosomas – ya sea vacío o dopado con moléculas de fluoróforo – se prepararon mediante la dispersión de la cantidad apropiada de monooleína en una solución de Pluronic F108 usando el UP100H ultrasonicador. Para obtener cubosomas fluorescentes, el fluoróforo se dispersó en la monooleına fundida por sonificación suave antes de la dispersión en F108 Pluronic. El mismo procedimiento se siguió cuando los cubosomas fluorescentes también se cargaron con quercetina.
tamaño de la muestra:: Ejemplo 4 ml – aprox. 96,4% en peso de agua, 3,3% en peso de monooleína, 0,3% en peso de Pluronic F108. El porcentaje del fluoróforo fue de 2,5 × 10-3 y 2,8 × 10-3% en peso. Cantidad de quercetina añadido: 6,4 × 10-6% en peso.
Sonicación: UP100H, La amplitud del 90%, ciclo de pulso 0,9, durante 10 min.
Recomendación Dispositivo:
UP100H
Referencia / Trabajo de investigación:
Murgia, S.; Tex, S.; Niñas, A. M.; Lampis, S.; Entre bastidores, V.; Meli, V.; Monduzzi, M.; Prodi, L.; Schmidt, J.; Talmon, Y.; Caltagirone, C. (2013): Droga-Cargado fluorescente cubosomas: Versátil nanopartículas para Aplicaciones potenciales teranóstico. Langmuir 29, 2013. desde 6673 hasta 6679.
bruxellensis Dekkera
Ultrasonic inactivación de Dekkera bruxellensis en agua
Recomendación Dispositivo:
UIP1500hd
Referencia / Trabajo de investigación:
Borthwick, K. A. J.; Coakley, W. T.; McDonnell, M. B.; Nowotny, H.; Benes, E.; Grfschl, .M (2005): Desarrollo de un nuevo sonicador compacto para la disrupción celular. J. Microbio. Metanfetaminas. 60/2005. págs. 207 a 216. / Lörincz, A. (2004): Interrupción celular ultrasónica de levaduras en suspensiones a base de agua. Biosys. Eng. 89/ 2004. págs. 297 a 308. / Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Furuta, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Inactivación de Saccharomyces cerevisiae por irradiación ultrasónica. Ultrasonido. Sonochem. 11/2004. págs. 61-65.
Dekkera / Brettanomyces bruxellensis
La inactivación en 90-120 seg.
Recomendación Dispositivo:
UIP1500hd
Referencia / Trabajo de investigación:
véase más arriba
ADN
la fragmentación del ADN: 2 min. sonicación de 100! l con UP100H o 4 min. sonicación de 100 pl con UTR200.
Recomendación Dispositivo:
UP100H, UTR200 o VialTweeter
Referencia / Trabajo de investigación:
Larguinho M. et al. (2010): Desarrollo de una estrategia basada en ultrasonidos rápido y eficiente para la fragmentación del ADN.
células Drosophila melanogaster S2
Extracción de proteínas celulares de células de Drosophila melanogaster S2: Las células S2 congeladas (1.56108) fueron lisadas en un tampón de homogeneización de 1 mL (100 mM Tris-HCl pH 7.5, 1% SDS) y dejadas en hielo durante 10 min. La lisis celular se completó con ultrasonido sobre hielo (6615 ráfagas, pulso de 0,5 s; intensidad del 75%) con un procesador ultrasónico Hielscher UP200S.
Recomendación Dispositivo:
UP200S (200W), 75% modo intensitypulse: ráfagas 6615, 0,5 s de impulso.
Referencia / Trabajo de investigación:
Schwientek, T. et al. (2007): Un enfoque lectina de serie a la de tipo mucina O-glicoproteoma de células Drosophila melanogaster S2. Proteómica 7, 2007. pp. 3.264 hasta 3.277.
derivados de E. coli
Interrupción celular de los derivados de E. coli: los sedimentos congelados correspondientes al volumen de muestra de Vculture = 4 / OD mL se resuspendieron en 580 μL de tampón de fosfato de potasio 10 mM, pH 7, EDTA 1 mM. Se añadieron 20 mu l de lisozima (concentración de 1 g L - 1) y la suspensión de células se incubó en hielo durante aproximadamente 30 minutos. Posteriormente, las células se interrumpieron mediante ultrasonidos continuos con un ultrasonicador (UP 200S Ultraschallprozessor, Dr. Hielscher GmbH, Teltow) en hielo, a una amplitud del 50% durante 20 segundos. Las fracciones celulares solubles e insolubles se separaron por centrifugación a 13000 rpm durante 20 min. Las proteínas insolubles se lavaron dos veces con tampón de fosfato de potasio 10 mM pH 7, EDTA 1 mM y se almacenaron a -20ºC.
Recomendación Dispositivo:
UP200S con 50% de amplitud
Referencia / Trabajo de investigación:
HA (2005): Optimización de la producción de proteína recombinante activa, explorar el impacto de las pequeñas proteínas de choque térmico de Escherichia coli, IbpA y IbpB, en la reactivación in vivo de cuerpos de inclusión.
Echinococcus granulosus antígeno
La lisis celular y la desintegración: La muestra homogeneizada de proteína soluble de E. granulosus maduro, preparado por congelación-descongelación en nitrógeno líquido y 42◦C, ha sido sonicado a 110V, 170W para 3×15 seg en hielo. Después de eso, la muestra se centrifugó durante 15 minutos a 10000 g. concentaration de proteína se midió por el método de Bradford y se almacenó a -20◦C.
Recomendación Dispositivo:
UP200S; 170W, enfriamiento en hielo; 3 x 15 seg.
Referencia / Trabajo de investigación:
Tabar et al. (2010): El serodiagnóstico de la hidatidosis Ovejas con hidatídico de fluidos, protoescólex y de todo el cuerpo de Echinococcus granulosus antígeno.
Escherichia coli Gr-
Ultrasónica inactivación de Escherichia coli Gr- en la leche y zumos.
Recomendación Dispositivo:
UP100H
Referencia / Trabajo de investigación:
Zenker, M .; Heinz, V .; Knorr, D. (2003): aplicación de ultrasonidos asistido procesamiento térmico para la conservación y la calidad de la retención de alimentos líquidos. J Food Prot 66/2003. pp. 1642-1649.
Escherichia coli Gr- en solución salina
Ultrasónica inactivación de Escherichia coli Gr- en solución salina.
Recomendación Dispositivo:
UP100H
Referencia / Trabajo de investigación:
Duckhouse, H.; Mason, T. J.; Phull, S. S. S.; Lorimer, J. P. (2004): El efecto de la sonicación en la desinfección microbiana con hipoclorito. Ultrasonido. Sonochem. 11/ 2004. pp. 173-176.
Escherichia coli en agua Gr-
Inactivación ultrasónica de Escherchia coli Gr- en agua.
Recomendación Dispositivo:
UP100H
Referencia / Trabajo de investigación:
... Furuta, M; Yamaguchi, M; Tsukamoto, T; Yim, B; Stavarache, CE; Hasiba, K; Maeda, Y. (2004):..... La inactivación de Escherichia coli por irradiación ultrasónica Ultrason Sonochem 11 / 2004. pp. 57-60.
Glaucoma, la cabeza del nervio óptico
RNA fragmentación de cabezas nerviosas ópticas (de ojos de rata): La cabeza del nervio óptico (ONH) se congeló en hielo seco y se almacenó a 80 ° C antes de la extracción. ARN se aisló mediante sonicación de las cabezas de los nervios congelados en el tampón de extracción kit usando un 0,5 sonda MS (UP50H) y luego, después de las instrucciones proporcionadas por el kit Arcturus, incluyendo tratamiento con DNasa para eliminar cualquier ADN. ARN purificado se cuantificó.
Recomendación Dispositivo:
UP50H MS0.5 con sonda
Referencia / Trabajo de investigación:
Johnson et al. (2007): Los cambios globales en la cabeza del nervio óptico Expresión génica después de la exposición a elevada presión intraocular en el glaucoma un modelo de rata.
sulfato de condroitina glicosaminoglicano (CS)
La determinación de CS por dimetilmetileno azul Ensayo
La resuspensión de las células: bolitas de CS en tubos de microcentrífuga se resuspendieron en 0,5 ml de una solución 0,1 mg / ml de papaína en solución salina equilibrada de Hank (HBSS) usando pulsos de un cabezal de ultrasonidos (UP 100H, Hielscher Ultrasonidos GmbH, Alemania) en el ciclo 1 y 100% de amplitud durante 3 s. A partir de entonces, la digestión se llevó a cabo a 60 ° C durante 24 h.
Para el ensayo de inmunoabsorción ligado a enzimas (ELISA), las células se suspendieron a continuación en agua destilada y desionizada a una concentración de 106 células / ml, y se mantuvieron en un congelador a -70 ° C durante la noche con el fin de facilitar la lisis celular. Después las células se homogeneizaron por tratamiento con ultrasonidos durante 40 segundos. usando el Hielscher UP100H homogeneizador de tejido ultrasónico.
Recomendación Dispositivo:
UP100H
Referencia / Trabajo de investigación:
Vandrovcova et al. (2011): Influencia de los recubrimientos de colágeno y sulfato de condroitina (CS) de poli- (lactida-co-glicólico) (PLGA) en MG 63 células osteoblastos igual. Physiol. Res. 60; 2011. 797-813.
Las células HaCaT
La lisis de las células HaCaT para Inmunoprecipitación de cromatina (ChIP): Las células HaCaT se fijaron con formaldehído al 1% durante 10 minutos a 37uC. Las células fijadas se lisaron en los impulsos tampón RIPA y se sonicó en hielo con un dispositivo ultrasónico 100W en amplitud = 1 y ciclo de trabajo = 100% en 12 de un minuto (12 x 1 min.).
Recomendación Dispositivo:
UP100H; durante 12 min. sobre hielo,
Referencia / Trabajo de investigación:
Zhang et al. (2007): Basonuclin regula un subconjunto de los genes de ARN ribosómico en células HaCaT.
Heparina: La despolimerización de la heparina
El método ultrasónico permite producir una heparina de bajo peso molecular (HBPM). Por lo tanto, la heparina se somete a una despolimerización radical catalizada por peróxido de hidrógeno. La reacción es muy rápida y tarda menos de 1 hora, mientras que el proceso de despolimerización fisicoquímica se basa en condiciones de reacción suaves, no requiere reactivos agresivos o tóxicos, y proporciona un producto libre de artefactos químicos. Así, el proceso de ultrasonidos es muy adecuado para la producción a gran escala de HBPM, pero también los análogos produce a partir de polisacáridos sulfatados naturales.
Procedimiento de ultrasonidos:
Para la despolimerización fisicoquímica de la heparina no fraccionada por despolimerización radical asistida por ultrasonidos, la heparina se disolvió en agua hasta una concentración final de 25 mg / ml (5 ml). La mezcla de reacción se sonicó usando un ultrasonicador de tipo sonda UP50H. El ultrasonicador estaba equipado con una sonda (micro MS3 punta) con un diámetro de 3 mm, que proporciona una amplitud de 180μm. El procesador genera vibraciones longitudinales mecánicas con una frecuencia de 30 kHz que fueron producidos por excitación eléctrica. La mezcla de reacción se mantuvo a 60 ° C en un reactor de Radleys® y ondas ultrasónicas se aplica como un pulso de 0,5 seg para evitar el calentamiento mezcla. Una parte alícuota de zerotime (250μl) se eliminó de la solución antes de la puesta en marcha de reacción por adición simultánea de peróxido de hidrógeno y la aplicación de ondas ultrasónicas. Se añadió peróxido de hidrógeno para obtener un peróxido de hidrógeno / heparina final (w / w) proporción de 0,15 (3,75 mg / ml).
Recomendación Dispositivo:
UP50H con sonotrodo MS3
Referencia / Trabajo de investigación:
Achour, Oussama; Bridiau, Nicolas; Godhbani, Azza; Le Joubioux, Florian; Bordenave Juchereau, Stephanie; Sannier, Fredéric; Piot, Jean-Marie; Fruitier Arnaudin, Ingrid; Maugard, Thierry (2013): Preparación asistida por ultrasonidos de una heparina de bajo peso molecular (HBPM) con actividad anticoagulante. Polímeros de carbohidratos 97; 2013. 684–689.
El lúpulo
Extracción de compuestos activos / extractos de hierbas en agua y etanol.
Recomendación Dispositivo:
UP400S
Lactobacillus (lisis / aislamiento de ADN de diversas cepas de Lactobacillus)
cepas de Clostridium: L. puentes, L. L. sanfranciscensis salchichas, pan, L., L. L. boca, vaginal y de L. reuteri, L. sp.
Procedimiento: Para el aislamiento de ADN de colonias individuales, se desarrolló un protocolo de lisis por ultrasonidos. Una colonia (de 2 a 3 mm de diámetro) se suspendió en 100? L de tampón de lisis (EDTA 20 mM, Tris 10 mM [pH 7,9], 1% de Triton X-100, 500 mM de guanidina-HCl, NaCl 250 mM). Las células se lisaron por 1 min de ultrasonicación con un ultrasonicador de tipo sonda UP50H. Después de la adición de 150μl de etanol frío (-20°C), la mezcla se centrifugó sobre una columna de centrifugado del kit de tejido QIAamp y finalmente se eluyó con 60μl de tampón (10 mM Tris[pH 7,5]).
Para disponer de una herramienta para una identificación rápida y fiable de cultivos puros individuales, el ensayo de PCR fue combinada con un procedimiento de aislamiento de ADN rápido. Consume mucho tiempo procedimientos de lisis enzimáticas y la susceptibilidad variable de las bacterias a la lisozima fueron superados por tratamiento con ultrasonidos de las células, con la purificación y la concentración subsiguiente por el ADN de unión a una matriz de sílice. Se encontró que el material celular de una sola colonia para ser suficiente para la PCR.
Recomendación Dispositivo:
UP50H
Referencia / Trabajo de investigación:
Müller, M. R. A. (2000): Caracterización de la Ecosistema Microbiano de Fermentaciones de cereales utilizando Molecular Biological Methods. Disertación Universidad de Colonia, 2000.
Lactobacillus acidophilus Gr +
Ultrasónica inactivación de Lactobacillus acidophilus Gr + en la leche y zumos.
Recomendación Dispositivo:
UIP500hd
Referencia / Trabajo de investigación:
Zenker, M .; Heinz, V .; Knorr, D. (2003): aplicación de ultrasonidos asistido procesamiento térmico para la conservación y la calidad de la retención de alimentos líquidos. J Food Prot 66/2003. pp. 1642-1649.
Legionella pneumophila Gr + en medio diluido
Ultrasonic inactivación de Legionella pneumophila Gr + en un medio diluido.
Recomendación Dispositivo:
UIP500hd
Referencia / Trabajo de investigación:
Dadjour, M. F.; Ogino, C.; Matsumura, S.; Nakamura, S.; Shimizu N. (2006): Desinfección de Legionella pneumophila mediante tratamiento ultrasónico con TiO2. Water Res 40/2006. pp.1137-1142.
Leuconostoc mesenteroides
actividad lisozima de leucocitos en la leucemia mielocítica: la suspensión celular se sometió a ultrasonidos durante 15 min. y las muestras se ensayaron para la actividad de lisozima. Se determinó la concentración de lisozima de las células los leucocitos ug./10.
Recomendación Dispositivo:
UP50H
actividad isozym de leucocitos en la leucemia mielocítica
Preparación de la muestra: suspensión de células se trató por ultrasonidos y las muestras se ensayó para actividad de la lisozima. La concentración de lisozima de la ug leucocitos / se determinó 106.
Recomendación Dispositivo:
UP200St
liposomas
La formación de los SUV
Haga clic aquí para leer más acerca de la preparación de liposomas de ultrasonidos!
Recomendación Dispositivo:
UP50H; 3 ciclos de 5 min; en un baño de hielo.
Verde malaquita
degradación Sonophotocatalytic de Malachite Green (un fuerte bactericida): La degradación fotocatalítica sola es considerablemente más rápido que la degradación sonolytic, la eficiencia puede ser mejorada mediante el acoplamiento de los dos procesos. verde malaquita, un fuerte bactericida, es muy ecotóxicos a bacterias marinas, pero se convierte en compuestos orgánicos que son menos o no tóxicos.
Recomendación Dispositivo:
UP400S
acilación mangiferina
Mangiferin (1,3,6,7-tetrahidroxi-2- [3,4,5-trihidroxi-6- (hidroximetil) Oxan-2-il] xanten-9-ona; fórmula: C19H18O11) es un polifenol de la estructura de C-glicosilxantona que se puede encontrar en muchas especies de plantas. Mangiferin muestra varias actividades farmacológicas. La acilación regioselectiva de la mangiferina puede ser muy eficientemente catalizada por la lipasa bajo ultrasonido. En comparación con los métodos convencionales, la catálisis asistida por ultrasonidos destaca por las ventajas de un tiempo de reacción más corto y un rendimiento más alto. Las condiciones óptimas para la acilación ultrasónica de mangiferina se encontraron de la siguiente manera:
lipasa: PCL, acilo donante: acetato de vinilo; disolvente de reacción: DMSO, temperatura de reacción: 45 degC, potencia ultrasónica: 200W; relación de sustrato: donador de acilo / manguiferina 6/1, carga enzimática: 6 mg / ml
El rendimiento acilación regioselectiva era de hasta 84%.
Recomendación Dispositivo:
UP200St o UP200Ht
Referencia / Trabajo de investigación:
cp .: Wang, Z .; Wang, R .; Tian, J .; Zhao, B; Wei, X.F .; Su, Y.L .; Li, C.Y .; Cao, S.G .; Wang, L. (2010): El efecto de los ultrasonidos sobre acilación regioselectiva catalizada por lipasa de manguiferina en disolventes no acuosos. J. asiática Nat Prod. Res. 12/1, 2010. 56-63.
la extracción de moléculas
protocolo de extracción para la extracción a partir de yeso, rheolite, basalto, ceniza edfell y vidrio obsidiana:
Una muestra de 1 g de regolith o roca triturada está sujeto a la extracción de líquido bajo irradiación ultrasónica para extraer y solubilizar moléculas diana. Por lo tanto, se añadió P80 3 ml de MeOH a la muestra analógica 1 g en un tubo de ensayo de vidrio y se sonicó durante 20 minutos con un dispositivo de tipo sonda ultrasónica UP50H fijado en el 40% de la amplitud. La mezcla se dejó en reposo durante 10 minutos, y el sobrenadante turbio que se había formado por encima de la muestra analógica sedimentado se decantó en tubos de 1,5 ml de centrífuga. Para minimizar la pérdida de los componentes extraídos por adsorción a superficies de los tubos de centrífuga de polímero hidrófobo, los tubos se bloquearon primero con 0,5% (w / v) de BSA en 100 mM HEPES pH 7,4. Los sobrenadantes se clarificaron por centrifugación a 17.000 G durante 10 minutos y se almacenaron a 2 - 8 ° C en viales de vidrio hasta el ensayo en el inmunoensayo.
Recomendación Dispositivo:
UP50H
Referencia / Trabajo de investigación:
Rix, C. (2012): La detección de la vida en Marte y la Vida Marcador Chip: Anticuerpo ensayos para detectar moléculas orgánicas en líquidos extractos de muestras de Marte. Cranfield Universidad tesis doctoral de 2012.
pellets de hígado de ratón
Los pelets se lavaron y se sometieron a ultrasonidos durante 5 min con otros 0,5 ml de LB2 y se centrifugaron a 12.000 g durante otros 20 min, y se recogieron las dos fracciones resultantes de sobrenadante. Finalmente, los gránulos se disolvieron con 0,5 ml de tampón que contiene mM tris base 40, 5 M urea, tiourea 2 M, 4% de CHAPS, DTT 100 mM, 0,5% (v / v) biolyte 3-10 (LB3), y eran sonicó y se centrifugó a 12.000 g durante 20 min.
Recomendación Dispositivo:
UP200S; durante 5 min.
Referencia / Trabajo de investigación:
Gazzana et al. (2009): Una actualización sobre proteoma hígado de ratón.
suspensión de hígado de ratón
la homogeneización de la muestra para producir lisado celular.
Recomendación Dispositivo:
UP200S; para 3 x 20 seg.
Referencia / Trabajo de investigación:
Gazzana et al. (2009): Una actualización sobre proteoma hígado de ratón.
Penicillium digitatum
Ultrasonic inactivación de Penicillium digitatum (un patógeno vegetal) en medio de crecimiento Sabouraud.
Recomendación Dispositivo:
UP200St
Referencia / Trabajo de investigación:
López-Malo, A.; Palou, E.; Jimenez-Fernández, M.; Alzamora, S. M.; Guerrero, S. (2005): multifactorial fúngica inactivación combinando termosonicación y antimicrobianos. J. Eng Alimentos. 67 / 2005. pp. 87-93.
Ficocianina de Spirulina platensis (Arthrospira platensis)
Extracción de ficocianina a partir de células Spirulina platensis (Arthrospira platensis).
Recomendación Dispositivo:
UP400S
Las células vegetales y tejidos de plantas
30% de células vegetales envasados (W / V) y agua destilada se rompen mediante sonicación durante 1-15 min .; planta de desintegración del tejido: 1 g de tejido se seca en suspensión en alcohol se desintegra durante la sonicación de aproximadamente 5 min.
Recomendación Dispositivo:
UP100H
Las plaquetas
preparación de lisado de plaquetas: La interrupción en 1-5 min.
Recomendación Dispositivo:
UP200Ht
tuberregium de ostras
La extracción de polisacáridos a partir del hongo comestible Pleurotus tuberregium
Recomendación Dispositivo:
UP400S
Poli (láctico-co-ácido glicólico) (PLGA)
Preparación de albúmina de suero (BSA) poli bovina RESORTE (ácido láctico-co-glicólico) (PLGA) por sonicación en 40 seg.
Recomendación Dispositivo:
Dmini; de 40 segundos.
Referencia / Trabajo de investigación:
Freitas et al. (2005): emulsificación ultrasónica de flujo continuo combinado con micromezcla estática para la producción aséptica de microesferas mediante extracción con disolvente.
Polifenoles de la manzana
extracción por ultrasonidos de los polifenoles de la manzana. Disolvente: acuoso. Aumento del rendimiento en un 6%; intensidad de sonicación: 20-75Ws / ml; temp .: proceso calentó a 80 degC.
Recomendación Dispositivo:
UIP2000hd
Referencia / Trabajo de investigación:
Vilkhu, K .; Manasés, R .; Mawson, R .; Ashokkumar, M. (2011): Ultrasonidos de recuperación y modificación de ingredientes alimentarios. En: Feng / Barbosa-Cánovas / Weiss (2011): Ultrasound Technologies para la Alimentación y Bioprocesos. Nueva York: Springer, 2011. pp 345-368..
Los polifenoles del té negro
extracción por ultrasonidos de los polifenoles de té negro. Disolvente: acuoso. Aumento del rendimiento por 6-18%; intensidad de sonicación: 8-10Ws / ml; presión ambiente, temp .: proceso calentado a 90 degC.
Recomendación Dispositivo:
UIP2000hd
Referencia / Trabajo de investigación:
Vilkhu, K .; Manasés, R .; Mawson, R .; Ashokkumar, M. (2011): Ultrasonidos de recuperación y modificación de ingredientes alimentarios. En: Feng / Barbosa-Cánovas / Weiss (2011): Ultrasound Technologies para la Alimentación y Bioprocesos. Nueva York: Springer, 2011. pp 345-368..
Polifenoles de orujo de uva roja
extracción por ultrasonidos de los polifenoles de orujo de uva roja. Disolvente: acuoso. Aumento del rendimiento por 11-35%; intensidad de sonicación: 20-75Ws / ml; presión ambiental.
Recomendación Dispositivo:
UIP2000hd
Referencia / Trabajo de investigación:
Vilkhu, K .; Manasés, R .; Mawson, R .; Ashokkumar, M. (2011): Ultrasonidos de recuperación y modificación de ingredientes alimentarios. En: Feng / Barbosa-Cánovas / Weiss (2011): Ultrasound Technologies para la Alimentación y Bioprocesos. Nueva York: Springer, 2011. pp 345-368..
Los polifenoles, aminoácidos y cafeína de té verde
Extracción de compuestos activos a partir de té verde en agua
Recomendación Dispositivo:
UP400S
Cerdo: Salmuera de lomos de cerdo
Para salmuera asistida por ultrasonidos, los lomos de cerdo (Longissimus dorsi) se sumergieron en salmuera de cloruro de sodio (40 g L-1) y se trataron a 5 ° C con ultrasonido de baja frecuencia (20 kHz) a baja intensidad (2-4 W / cm -2). Se investigó el efecto del curado asistido por ultrasonidos sobre la microestructura del tejido porcino, desnaturalización de proteínas, capacidad de retención de agua (WBC), capacidad de retención de agua (WHC), coeficiente de difusión de cloruro de sodio (D) y perfil de textura de carne (TPA). Los resultados mostraron que el tratamiento ultrasónico causó cambios microestructurales favorables en el tejido cárnico. La capacidad de retención de agua y las propiedades de textura se mejoraron mediante tratamiento ultrasónico en comparación con muestras de salmuera estática y en tambor. Sin embargo, estos efectos positivos fueron altamente dependientes de la intensidad ultrasónica. Las intensidades más altas y / o los tiempos de tratamiento más largos causaron la desnaturalización de las proteínas. El modelo de coeficiente de difusión constante fue capaz de describir con precisión la cinética de difusión de NaCl durante la salmuera. El tratamiento ultrasónico mejoró significativamente la difusión de la sal en comparación con las muestras en salmuera en condiciones estáticas y el coeficiente de difusión aumentó exponencialmente con el aumento de la intensidad ultrasónica.
Recomendación Dispositivo:
UP200Ht con sonotrodo S26d40
Referencia / Trabajo de investigación:
Siro, I .; Ven, Cs .; Balla, Cs .; Jonas, G .; Zeke, I .; Friedrich, L. (2009): aplicación de una técnica de curado asistida por ultrasonido para mejorar la difusión de cloruro de sodio en la carne de porcino. Revista de Ingeniería de Alimentos 91/2, 2009. 353-362.
Porfirio yezoensis
degradación ultrasónico de polisacáridos de Porphyra yezoensis: 50 ml de 1,0 g / 100 ml Porphyra yezoensis polisacáridos solución (peso seco) han sido sonicado durante 4 h con un UP400S.
Recomendación Dispositivo:
UP400S; ultrasonido pulsado (ciclos: 2 seg on / 2 seg off) a 20 ° C.
polvos
Molienda, desaglomeración y dispersión a tamaño de partícula pequeño y relativamente uniforme.
Recomendación Dispositivo:
UP200St
los huesos de ratas
La interrupción de 1 gm en 5-7 min.
Recomendación Dispositivo:
UP200St
de hígado de rata
La interrupción y la homogeneización de tejido con un UP400S.
Recomendación Dispositivo:
UP400S; 3 veces durante 30 s .; sobre hielo.
Referencia / Trabajo de investigación:
Oh et al. (2003): El gen de la acetilcarboxilasa Acetyl-CoA está regulado por la proteína-1 que une el elemento regulador del esterol en el hígado.
piel de rata
bobina Rawolfia
La extracción del alcaloide reserpina.
Recomendación Dispositivo:
UP100H
rebaudiósido A
Las muestras de hojas de 10 g de stevia secas y de tierra se extrajeron en 100 ml de agua bajo agitación continua (con un agitador magnético). El valor de pH se controló con 0,01 M pH 7 de fosfato de sodio. La muestra se puso en un vaso de precipitados de vidrio de 150 y se sonicó con un ultrasonicador de tipo sonda (UIP500hd, 20 kHz, 500 vatios). La punta del sonotrodo se sumergió aproximadamente 1,5 cm en la suspensión de las hojas de stevia. El dispositivo de ultrasonidos se fijó para una potencia de 350W. Un tratamiento de sonicación suave de 350 W durante 5-10 min. a una temperatura de proceso constante de 30 ° C dio un rebaudiósido un rendimiento de 30-34g por muestra de 100 g. Después de la sonicación, la solución de extracto se centrifugó y filtró a través de 0,45 micras membrana microporosa; el filtrado fue tomada para el análisis de contenido total de rebaudiósido A. El rendimiento de la extracción del contenido total de rebaudiósido A se analizó por HPLC.
Por la extracción asistida por ultrasonidos libre de disolvente, se obtuvo un alto rendimiento de rebaudiósido A en comparación con los métodos tradicionales de extracción tales como la extracción de calor o maceración.
Recomendación Dispositivo:
UIP500hd
Almidón de arroz
La interrupción, el aislamiento de almidón, y ruptura de enlaces no covalentes entre la proteína y el almidón en una suspensión de harina de arroz (33%) en 20 – 40 min.
Recomendación Dispositivo:
UP500hd; 20 – 40 min.
rotíferos
La disrupción celular de mesozooplancton: por sonicación bajo las siguientes condiciones de cuatro velocidades de flujo (200, 400, 520 y 800lh-1) y cuatro amplitudes (25, 50, 75 y 100%) una tasa de muerte entre 58 y 85% ha sido alcanzado.
Recomendación Dispositivo:
2000 UP con celda de flujo
Referencia / Trabajo de investigación:
Viitaslo et al. (2005): El ozono, luz ultravioleta, Ultrasonido y peróxido de hidrógeno como tratamientos del agua de lastre – Los experimentos con suero salino mesozooplancton en condiciones de poca agua salobre.
S. fragilis
liberación de galactokinease en 4 min.
Recomendación Dispositivo:
UP200St
Saccharomyces cerevisiae
Ruptura
Recomendación Dispositivo:
UP400S
Referencia / Trabajo de investigación:
Guerrero, S ,; López-Malo, A .; Alzamora, S. M. (2001): efecto de los ultrasonidos sobre la supervivencia de Saccharomyces cerevisiae: influencia de la temperatura, el pH y la amplitud. Innov. Food Sci. Emerg Technol. 2/2001. pp. 31-39.
Saccharomyces cerevisiae
Ultrasonic inactivación de Saccharomyces cerevisiae en medio de crecimiento Sabouraud y en solución salina.
Recomendación Dispositivo:
UP400S
Referencia / Trabajo de investigación:
Yap, A.; Jiranek, V.; Grbin, P.; Barnes, M.; Bates, D. (2007): Estudios sobre la aplicación de ultrasonidos de alta potencia para la limpieza y desinfección de barriles y tablas. Austr. NZ Industria Vitivinícola J. 22(3)/ 2007. pp. 96-104.
Azafrán, Crocus sativus
Extracción de compuestos activos (sabores y agentes de color).
Haga clic aquí para leer más sobre la extracción del azafrán!
Recomendación Dispositivo:
UP50H
Referencia / Trabajo de investigación:
Kadkhodaee et al. (2007): Ultrasonidos Extracción de compuestos activos de azafrán.
Salmonella Senftenberg 775W Gr-
Ultrasonic inactivación de Salmonella Senftenberg 775W Gr- en tampón de citrato-fosfato de McIlvaine o caldo nutriente.
Recomendación Dispositivo:
UP100H
Referencia / Trabajo de investigación:
Álvarez, I .; Manas, P .; Virto, R .; Condon, S. (2006): Inactivación de Salmonella Senftenberg 775W por ondas ultrasónicas bajo presión a diferentes actividades de agua. En t. J. Microbiol Alimentos. 108/2006. pp. 218-225.
Salvia miltiorrhiza Bunge
Extracción de compuestos activos biológicos: Danshensu de sodio y cuatro tanshinones (dihydrotanshione I, tanshinone I, cryptotanshinone y tanshinone IIA).
Recomendación Dispositivo:
UP100H
Salvia officinalis
Extracción de compuestos activos de Salvia officinalis (salvia) en menos de 2 horas.
Recomendación Dispositivo:
UP50H
Suero
hígados quísticas de las ovejas, los pulmones y la sangre positivo (Echinococcus granulosus antígenos)
hígados Ovejas quísticas, los pulmones y la sangre positivo (Echinococcus granulosus antígenos en corderos): La muestra se sometió a ultrasonidos durante 2 x 15 segundos en hielo hasta que no protoescólices intactas eran visibles.
Recomendación Dispositivo:
UP200S; 2 x 15 seg.
Referencia / Trabajo de investigación:
Tabar et al. (2009): La respuesta de anticuerpos contra el líquido hidatídico, protoescólex y todo el cuerpo de los antígenos de Echinococcus granulosus en corderos.
Sorbitant trioleato de etanol (como disolvente) y polvo de Bi-2212
Desaglomerar una suspensión que contiene el dispersante Sorbitant trioleato de etanol (como disolvente) y polvo de Bi-2212.
Recomendación Dispositivo:
UP200S; durante 3 min.
Referencia / Trabajo de investigación:
Mora et al. (2009): La fabricación de superconductores de recubrimientos sobre las baldosas cerámicas estructurales.
Las isoflavonas de soja
extracción ultrasónica de isoflavonas de soja en agua y disolvente. El aumento de rendimiento de hasta un 15% en la eficiencia de extracción.
Recomendación Dispositivo:
UP200St
Referencia / Trabajo de investigación:
Rostagno et al. (2003), referenciado por Vilkhu, K .; Manasés, R .; Mawson, R .; Ashokkumar, M. (2011): Ultrasonidos de recuperación y modificación de ingredientes alimentarios. En: Feng / Barbosa-Cánovas / Weiss (2011): Ultrasound Technologies para la Alimentación y Bioprocesos. Nueva York: Springer, 2011. pp 345-368..
Proteína de soya
Extracción ultrasónica de proteína de soja en agua y álcali (hidróxido de sodio). Aumento del rendimiento en un 53%. La sonicación en línea fue encontrada más eficiente como extracción por lotes (la sonicación en línea dio un 23% más de rendimiento que la sonicación por lotes).
Recomendación Dispositivo:
UIP1000hd para el lote / vaso de precipitados y con reactor celda de flujo para sonicación en línea.
Referencia / Trabajo de investigación:
Moulton y Wang (1982), referenciado por Vilkhu, K .; Manasés, R .; Mawson, R .; Ashokkumar, M. (2011): Ultrasonidos de recuperación y modificación de ingredientes alimentarios. En: Feng / Barbosa-Cánovas / Weiss (2011): Ultrasound Technologies para la Alimentación y Bioprocesos. Nueva York: Springer, 2011. pp 345-368..
cabezas de los espermatozoides (humanos)
colas de los espermatozoides (humanos)
Stevia Rebaudiana Bert.
extracción por ultrasonidos de glicósido esteviósido partir de muestras de 10 g de hojas secas de Stevia rebaudiana con tamaños de cuatro partículas (0,315 mm, 2 mm, 6,3 mm y hojas secas trituradas) se mezclaron con diferentes disolventes: agua destilada y mezclas de agua / etanol (55% y 70%) con diferente peso de la muestra a disolvente relaciones de volumen: 1/10, 1/8, 1/5 (w / v) después se expuso a ultrasonidos a temperatura ambiente. tiempo de sonicación: < 5 min. Recomendación Dispositivo:
UP200St
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Ultrasonidos de alto rendimiento para cualquier tamaño
Hielscher Ultrasonics’ Los disruptores celulares ultrasónicos de alto rendimiento y los homogeneizadores de tejidos están disponibles en cualquier tamaño y para cualquier volumen. Tanto si tiene que sonicar muestras de pequeño tamaño, muestras de masa como placas de 96 pocillos, volúmenes de tamaño medio o cargas de camión por hora, nuestra cartera ofrece el ultrasonido ideal para su aplicación. Los homogeneizadores ultrasónicos compactos de mano son óptimos para el laboratorio y la investigación, mientras que nuestra serie industrial cubre todo lo que va de 0,5kW a 16kW por procesador ultrasónico. Con la posibilidad de ser instalados como clusters, con los ultrasonidos de Hielscher puede procesar prácticamente cualquier volumen. La robustez de los equipos de ultrasonidos de Hielscher permite un funcionamiento 24/7 en condiciones de trabajo pesado y en entornos exigentes.
El sofisticado e inteligente software permite el máximo control del proceso y la comodidad del operador. Todos los datos de sonicación se registran automáticamente en una tarjeta SD incorporada. Otras características inteligentes incluyen la preselección y el almacenamiento de los parámetros de sonicación, la conexión LAN y el control remoto del navegador.
En la siguiente tabla encontrará algunas indicaciones sobre la capacidad de procesamiento aproximada de nuestros sonicadores:
Volumen del lote | Tasa de flujo | Dispositivos recomendados |
---|---|---|
Placas de 96 pozos/microtítulo | n.a. | UIP400MTP |
10 frascos de 0,5 a 1,5 ml. | n.a. | VialTweeter en UP200St |
CupHorn para la sonicación indirecta, por ejemplo, hasta 5 viales | n.a. | UP200ST_TD_CupHorn |
0De 0,01 a 250 ml. | 5 a 100mL/min | UP50H |
1 a 500 mL | 10 a 200 mL/min. | UP100H |
10 a 2000 mL | 20 a 400 mL/min. | UP200Ht, UP400St |
0,1 a 20 L | 0,2 a 4 L/min | UIP2000hdT |
10 a 100 L | 2 a 10 L/min | UIP4000hdT |
n.a. | 10 a 100 L/min | UIP16000 |
n.a. | mayor | Grupo de UIP16000 |

Ultrasonicador UP200Ht con 2mm microtip S26d2 para la sonicación de pequeñas muestras