Τεχνολογία Υπερήχων Hielscher

Υπερήχων DNA διάτμηση

  • Κατά τη διάρκεια DNA και RNA διάτμησης, τα μόρια DNA σπάσει σε μικρότερα κομμάτια. DNA κατακερματισμός / RNA είναι ένα από τα σημαντικά βήματα prep δείγματος που απαιτούνται δημιουργήσει βιβλιοθήκες για αλληλούχηση επόμενης γενιάς (NGS).
  • Υπερήχων DNA διάτμησης χρησιμοποιεί τις δυνάμεις της ακουστικής σπηλαίωσης να σπάσει το DNA ή RNA σε κομμάτια των 100 – BP 5kb.
  • Υπερήχων διάτμηση επιτρέπει την ακριβή κατάτμηση του DNA και προσαρμογή στο επιθυμητό μήκος DNA.

 

Υπερήχων DNA διάτμηση

Hielscher Ultrasonics προσφέρει διάφορες λύσεις με βάση υπερήχους για DNA, RNA και χρωματίνης διάτμηση. Επιλέξουν μεταξύ ενός ανιχνευτή τύπου ultrasonicators (π.χ. UP100H) για άμεση κατεργασία υπερήχων χρησιμοποιώντας ένα microtip ή χρησιμοποιήστε το VialTweeeter ή την υπερηχητική cuphorn έμμεσης παρασκευή DNA των διαφόρων δειγμάτων ταυτόχρονα. Hielscher προσφέρει την ιδανική συσκευή λαμβάνοντας υπόψη τις ανάγκες σας: Είτε έχετε 1 ή μέχρι 10 δείγματα, όγκοι από μικρολίτρο να λίτρου – Hielscher υπερήχων επεξεργαστές είναι διαθέσιμοι για να ανταποκριθούν στις απαιτήσεις σας για την προετοιμασία του DNA, RNA και χρωματίνης θραύσματα στο σωστό μήκος. Αναπαραγωγιμότητα, εύκολη λειτουργία και ακριβή έλεγχο επιτρέπουν μια αξιόπιστη βιβλιοθήκη για την ανάλυση αλληλουχίας επόμενης γενιάς.
Σε αντίθεση με ενζυματική κατάτμηση του DNA, υπερήχων διάτμηση εφαρμόζεται καθαρό μηχανικές δυνάμεις διατμήσεως χωρίς την προσθήκη χημικών ουσιών. Με την ακριβή ρύθμιση των παραμέτρων της διεργασίας, με υπερήχους διάτμησης παράγει θραύσματα υψηλού μοριακού βάρους DNA (πλασμίδιο και γενωμικό DNA).
Καθαρισμένα νουκλεϊκά οξέα μπορούν να ενισχυθούν πριν ή μετά από ένα στάδιο κατακερματισμού.
παράμετροι επεξεργασίας με υπερήχους (ισχύς, κύκλος παλμού / ριπές, χρόνου και θερμοκρασίας) μπορούν να ελέγχονται με ασφάλεια μέσω των ρυθμίσεων του λογισμικού.

Πλεονεκτήματα:

  • ακριβής έλεγχος
  • κύκλων επεξεργασίας με υπερήχους και το χρόνο ακριβώς προσαρμόσιμο σε επιθυμητό μέγεθος DNA
  • θραύσματα βάρους DNA υψηλού μοριακού
  • έλεγχος θερμοκρασίας
  • Γρήγορα
  • επαναλήψιμα αποτελέσματα
  • autoclavable
  • διάφορες λύσεις: Probe-τύπου, VialTweeter και Cuphorn

Πρωτόκολλα για Υπερήχων DNA διάτμησης

Για Δοκιμασία χρωματίνης ανοσοκατακρήμνισης

Εν συντομία, τα κύτταρα τοποθετήθηκαν σε τρυβλία διαμέτρου 60 mm (400.000 ανά τρυβλίο) και διαμολύνθηκαν με RhoA siRNA (όπως περιγράφεται). μετά από 72 ώρες, αυτά επωάστηκαν με φορμαλδεΰδη (τελική συγκέντρωση, 1%) για 10 λεπτά στους 37 ° C για να διασυνδέσουν τις πρωτεΐνες με το DNA. Η αντίδραση σταυροσύνδεσης σβήστηκε με την προσθήκη ενός δέκατου όγκου 1.25 mol / L γλυκίνης, δίνοντας τελική συγκέντρωση 125 mmol / L. Τα κύτταρα πλύθηκαν δύο φορές με παγωμένο PBS, επαναιωρήθηκαν σε ρυθμιστικό δοκιμασίας ραδιοανοσοκατακρήμνισης [150 mmol / L NaCI, 1% ΝΡ40, 0.5% δεοξυχολικό, 0.1% SDS, 5 mmol / L EDTA, 50 mmol / L Tris-HCl )] που περιέχει 1 mmol / L φαινυλομεθυλοσουλφονυλο φθορίδιο, 1 Ag / mL απροτινίνη και 1 Ag / mL πεπστατίνη Α και διατηρούνται σε πάγο για 30 λεπτά. Στη συνέχεια, κυτταρολύματα υπέστησαν επεξεργασία με υπερήχους σε πάγο με α Hielscher UP200S υπερήχων υπερήχων (3 χ 40 s, εύρος 40%, κύκλος 1? Hielscher Ultrasonics GmbH) μέχρι σταυροειδείς δεσμούς chromatins είχαν διατμηθεί προς απόδοση θραυσμάτων DNA μεταξύ 200 και 1.000 bp. Ένα δέκατο του πλήρους λύμα χρησιμοποιήθηκε για την ποσοτικοποίηση της ποσότητας του DNA που εμφανίζεται σε διαφορετικά δείγματα και θεωρείται ως “συνολικό DNA εισόδου”. Τα υπερκείμενα επωάστηκαν με σπέρμα σολομού DNA / πρωτεΐνης αγαρόζη-50 πολτό% για τη μείωση των μη ειδικό υπόβαθρο. Ανοσοκαταβύθιση ακολούθως έγινε όλη τη νύκτα στους 4 ° C με 5 Ag αντι-ΝΡ-ΝΒ ρ65 (Upstate) ή χωρίς αντίσωμα (αρνητικός μάρτυρας). Αυτά τα υπερκείμενα συμπληρωμένο με 5 mol / L NaCl και θερμάνθηκε όλη τη νύκτα στους 65 ° C για να επανέλθει πρωτεΐνης-ϋΝΑ διασταυρούμενων δεσμών. Τα ανοσοσύμπλοκα περαιτέρω κατεργασία με DNase- και RNase-free πρωτεϊνάση Κ, και το DNA καθαρίστηκε με εκχύλιση φαινόλης / χλωροφορμίου και καταβύθιση με αιθανόλη. PCR έγινε με ειδικούς εναρκτήρες που αντιστοιχούν σε μία αλληλουχία μέσα στην περιοχή υποκινητή του ανθρώπινου γονιδίου iNOS (ρ1 εκκινητής: 5¶-GAGGGCTTTCCCA- GAACCAAG-3¶? Ρ2 εκκινητής: GCTGGGCTACTGACCCAG- CAGTTCCAG-3¶). (Doublier et al., 2008)

μελέτες EGFP-έκφραση

Για τις μελέτες έκφρασης, το ανασυνδυασμένο στέλεχος L. tarentolae ρ10 :: F9Begfp1.4dBsat # 12 (Ιένα Bioscience, Germany) με το γονίδιο για EGFP (Ενισχυμένη Πράσινη Φθορίζουσα Πρωτεΐνη), χρωμοσωμική SSU ολοκληρωμένη, καλλιεργήθηκε σε διάφορα μέσα όπως περιγράφεται προηγουμένως και επιπροσθέτως συμπληρωμένο με 100 mg l-1 Nourseothricin (Ιένα Bioscience, Γερμανία). Κατά τη διάρκεια της καλλιέργειας, ελήφθησαν δείγματα 1 ml, φυγοκεντρήθηκαν (2000 χ g, 20 ° C, 10 λεπτά) και πλύθηκε με διάλυμα 0.9% NaCl. Σβώλος επαναιωρηματοποιήθηκε σε ρυθμιστικό (20 mM HEPES, 5 mM EDTA, 2 mM DTT) και αποσυντίθεται διά χρησιμοποιήσεως υπερήχων με τον υπερηχητικό επεξεργαστή Up400s (Εφαρμογή ενέργειας ~ 400 Ws). Τα κυτταρικά υπολείμματα απομακρύνθηκαν με φυγοκέντρηση (6000 χ g, 4 ° C, 5 λεπτά) και αναλύθηκε με δωδεκυλικό θειικό νάτριο - ηλεκτροφόρηση πηκτής πολυακρυλαμιδίου (SDS-PAGE) κάτω από αναγωγικές συνθήκες σύμφωνα με την μέθοδο του Laemmli (1970) με πηκτώματα polyacralamide 12,5% . EGFP-έκφραση εξετάστηκε σε αναδευόμενη καλλιέργεια. (Fritsche et al. 2007)

UP100H Hielscher χρησιμοποιήθηκε για την παρασκευή EHEC DNA για ανάλυση της σειράς τσιπ

Ηλεκτροφορητική ανάλυση γονιδιακού DNA της E. coli EDL933 υποβλήθηκε 0 - 15 λεπτά με υπερήχους. L υποδεικνύει τη σκάλα DNA. (Basselet et al. 2008)

Αίτηση για πληροφορίες




Σημειώστε τις Πολιτική Απορρήτου.


χρωματίνης ανοσοκατακρήμνιση

Υπερήχων UP100H διάρρηξης κυττάρων (100W) για λύση, κυτταρική διάσπαση και DNA διάτμηση.Η δοκιμασία χρωματίνη ανοσοκαταβύθιση διεξήχθη χρησιμοποιώντας το τσιπ-ITTm Express (Active Motif, Carlsbad, CA, USA) σύμφωνα με τις οδηγίες του κατασκευαστή με μερικές τροποποιήσεις. Εν συντομία, διαφοροποιημένα ανθρώπινα ποδοκύτταρα ήταν διασυνδεδεμένη με 1% φορμαλδεΰδη για 10 λεπτά σε θερμοκρασία δωματίου. Τα κύτταρα πλύθηκαν με παγωμένο PBS και η αντίδραση στερέωσης σταμάτησε με προσθήκη 0,125 Μ γλυκίνη για 5 λεπτά σε θερμοκρασία δωματίου. Τα κύτταρα πλύθηκαν και πάλι με παγωμένο PBS και αποξέστηκαν από το τρυβλίο. Τα κύτταρα σφαιροποιήθηκαν με φυγοκέντρηση και επαναιωρήθηκαν στο ρυθμιστικό διάλυμα λύσης. Μετά από φυγοκέντρηση, σφαιροποιήθηκαν πυρήνες επανεναιωρήθηκαν στο ρυθμιστικό διάτμησης, επωάστηκαν σε πάγο για 30 λεπτά και η χρωματίνη ήταν ψαλιδισμένα με κατεργασία υπερήχων, π.χ. UP100H (Hielscher Ultrasonics GmbH, Teltow, Germany) με ισχύ 25% 5 παλμούς 20 δευτερολέπτων ο καθένας σε πάγο σε θραύσματα περίπου 200-600 bp. Η διατμημένη χρωματίνη στη συνέχεια φυγοκεντρήθηκε και το υπερκείμενο συλλέχθηκε. Για ανοσοκαταβυθίσεις, 60 μΐ χρωματίνης επωάστηκαν με 1 μ§ αντισωμάτων Sp1 (Santa Cruz Biotechnology, Santa Cruz, CA, ΗΠΑ), αντισωμάτων NF-κΒ ρ65 (Abcam, Cambridge, UK) ή NF-κΒ ρ50 (Abcam) IgG (Zymed Laboratories, South San Francisco, CA, USA), ως αρνητικός έλεγχος, όλη τη νύχτα στους 4 ° C με ήπια περιστροφή. Τα ανοσοσυμπλέγματα που συνδέονται με μαγνητικά σφαιρίδια συλλέχθηκαν χρησιμοποιώντας μαγνητική βάση, πλύθηκαν εκτεταμένα και οι διασυνδέσεις πρωτεΐνης / ϋΝΑ αναστράφηκαν και το DNA εκλούστηκε για ανάλυση PCR σε πραγματικό χρόνο. (Ristola et al., 2009)

EHEC παρασκεύασμα DNA για ανάλυση της σειράς τσιπ

Διευθέτηση των υλικών κυτταρικής λύσεως και εκχυλίζεται DNAs
Βακτηριακά σφαιρίδια σε εναιώρηση εντός PBS στην επιθυμητή τελική συγκέντρωση υποβλήθηκαν σε επεξεργασία με υπερήχων διαταραχή UP100H (Hielscher GmbH, Germany) εφοδιασμένη με μικροτσίπ MS1 (διαμέτρου 1 mm). Η συχνότητα λειτουργίας ήταν 30 kHz και η αποτελεσματική ισχύ εξόδου ήταν 100 W. Κατά τη διάρκεια της λειτουργίας, τα δείγματα ψύχθηκαν σε λουτρό πάγου-ύδατος, αναμίχθηκαν και φυγοκεντρήθηκαν. Τα δείγματα χρησιμοποιήθηκαν για μελέτες κυτταρομετρίας ροής, ενώ για μεταγενέστερο χειρισμό, τα δείγματα υποβλήθηκαν σε θερμική επεξεργασία (95 ° C, 5 λεπτά). Τα ακατέργαστα κυτταρολύματα υποβλήθηκαν σε επεξεργασία με ένα μίγμα φαινόλης: χλωροφορμίου: ισοαμυλικής αλκοόλης (25: 24: 1). Ένας ίσος όγκος αυτού του μίγματος προστέθηκε στο δείγμα λύματος, το διάλυμα στροβιλίστηκε σθεναρώς για 15 δευτερόλεπτα και φυγοκεντρήθηκε στα 15.000 xg για 2 λεπτά σε θερμοκρασία δωματίου (RT) γύρω στους 22 ° C. Η κορυφαία υδατική φάση που περιείχε το γονιδιωματικό ϋΝΑ διαχωρίστηκε προσεκτικά και συλλέχθηκε σε ένα νέο στείρο σωλήνα Eppendorf.
Ακολούθως, τα δείγματα υπεβλήθησαν σε κατεργασία με υπερήχους για να θραυσθεί το DNA. Το βήμα κατεργασίας υπερήχων πραγματοποιήθηκε υπό τις ίδιες συνθήκες που περιγράφηκαν παραπάνω. Για να αξιολογηθούν τα αποτελέσματα κατακερματισμού στο γονιδιωματικό ϋΝΑ, τα δείγματα αναλύθηκαν χρησιμοποιώντας ηλεκτροφόρηση πηκτής αγαρόζης.
(…) Τα δείγματα που υποβλήθηκαν σε υπερήχους προηγουμένως για 2,5 λεπτά υποβλήθηκαν σε στάδιο εκχύλισης μετά από θερμική επεξεργασία και φυγοκέντρηση. Το ϋΝΑ που απελευθερώνεται εκχυλίζεται δύο φορές με ένα μείγμα φαινόλης: χλωροφορμίου: ισοαμυλικής αλκοόλης και στη συνέχεια υποβάλλεται σε δεύτερη κατεργασία με υπερήχους για 0-15 λεπτά. Η ηλεκτροφόρηση πηκτής αγαρόζης χρησιμοποιήθηκε για τον προσδιορισμό της κατανομής μεγέθους του DNA που υποβλήθηκε σε υπερηχητική θραύση μετά την εκχύλιση (Εικ. Στην πάνω δεξιά πλευρά). Πολύ κατακερματισμένο DNA ήταν εμφανές από την παρουσία ενός επιχρίσματος ϋΝΑ αντί των ταινιών υψηλού μοριακού βάρους που απομακρύνθηκαν από τα δείγματα με υπερήχους για 2.5 λεπτά ή περισσότερο. Η μακρύτερη υπερήχηση μείωσε σταδιακά τα μήκη των τεμαχίων στα περίπου 150-600 bp και η υπερήχηση για 15 λεπτά περαιτέρω αποδόμησε αυτά τα θραύσματα, όπως φαίνεται κυρίως από το πάνω μέρος του επιχρίσματος. Έτσι, το μέσο μέγεθος θραύσματος ϋΝΑ βαθμιαία μειώθηκε με το χρόνο υπερήχων και η επεξεργασία των 5 λεπτών επέτρεψε να ληφθούν τα μεγέθη θραυσμάτων ϋΝΑ που είναι τα πλέον κατάλληλα για προσδιορισμούς συστοιχίας τσιπ. Τέλος, καθιερώθηκε η διαδικασία παρασκευής του αναλύτη DNA που περιλαμβάνει πρώτα 2 λεπτά υπερηχητικής επεξεργασίας, εκχύλιση DNA (2χ), και επακόλουθη κατεργασία με υπερήχους 5 λεπτών. (Basselet κ.ά., 2008)

Χρωματίνη Ανοσοκαταβύθιση (ChIP)

Ultrasonic processor UP100H for DNA, RNA and chromatin shearing. (Click to enlarge!)Τα κύτταρα ΗΕΚ293 καλλιεργήθηκαν όπως περιγράφηκε παραπάνω και σταθεροποιήθηκαν με 2 mM διηλεκτριμιδυλ-γλουταρικό άλας για 45 λεπτά σε θερμοκρασία δωματίου. Ακολούθως, τα κύτταρα πλύθηκαν δύο φορές με PBS. Η χρωματίνη διασυνδέθηκε για 10 λεπτά σε θερμοκρασία δωματίου χρησιμοποιώντας 1% (ν / ν) φορμαλδεΰδη και πλύθηκε δύο φορές με παγωμένο PBS. Η αντίδραση σταυροσύνδεσης σταμάτησε με επώαση με γλυκίνη σε τελική συγκέντρωση 0,125 Μ για 5 λεπτά σε θερμοκρασία δωματίου. Μετά από επώαση με τρυψίνη, τα κύτταρα αποξέστηκαν από τον δίσκο κυτταροκαλλιέργειας και πλύθηκαν δύο φορές με PBS. Το κυτταρικό ίζημα επαναιωρήθηκε σε ρυθμιστικό διάλυμα λύσης (5 mM Pipes, ρΗ 8,0, 85 mM KCI και 0,5% (ν / ν) Nonidet Ρ-40), επωάστηκε σε πάγο για 10 λεπτά και ομογενοποιήθηκε με ομογενοποιητή Dounce. Ακολούθως, οι πυρήνες σφαιροποιήθηκαν με φυγοκέντρηση (3500 χ g, 5 λεπτά, 4 ° C) και επαναιωρήθηκαν σε ρυθμιστικό πυρήνων (50 mM Τπδ-ΗΟΙ, ρΗ 8,1, 10 mM EDTA και 1% (βάρος / όγκος) SDS). Οι πυρήνες διαταράχθηκαν με κατεργασία με υπερήχους με τρεις παλμούς των 20 σε ένα UP50H υπερήχων (Hielscher Ultraschall Technologie) σε μια ρύθμιση του κύκλου 0,5 και του πλάτους 30%, αποδίδοντας θραύσματα γενωμικού DNA με μέγεθος μεγαλύτερο μέρος των 200 - 1000 bp. Για ChIP, 50g του DNA αραιώθηκε 4-φορές σε ρυθμιστικό διάλυμα ανοσοκαθίζησης (16.7 mM Tris-HCl, ρΗ 8,1, 167 mM NaCl, 1,2 mM EDTA, 1,1% (ν / ν) Triton Χ-100, και 0.01% (w / v) SDS). (Weiske et al. 2006)

ανάλυση τροποποίηση ιστονών με χρωματίνης ανοσοκαταβύθιση (ChIP)

Εν συντομία, 6 χ 106 τα κύτταρα πλύθηκαν δύο φορές με PBS και διασυνδέθηκαν στην πλάκα καλλιέργειας για 15 λεπτά σε θερμοκρασία δωματίου παρουσία 0,5% φορμαλδεΰδης. Η αντίδραση σταυροσύνδεσης σταμάτησε με προσθήκη 0,125 Μ γλυκίνης. Όλα τα επόμενα βήματα πραγματοποιήθηκαν στους 48 ° C. Όλα τα ρυθμιστικά διαλύματα προθερμάνθηκαν και περιείχαν αναστολείς πρωτεάσης (Complete Mini, Roche). Τα κύτταρα πλύθηκαν δύο φορές με PBS και στη συνέχεια αποξέστηκαν. Τα συλλεγέντα σφαιρίδια διαλύθηκαν σε 1 ml ρυθμιστικού διαλύματος λύσης (1% SDS, 5 mM EDTA, 50 mM Tris ρΗ 8) και υποβλήθηκαν σε επεξεργασία με υπερήχους σε ψυχρό λουτρό αιθανόλης για 10 κύκλους σε πλάτος 100% UP50H υπερήχων (Hielscher, Teltow, Γερμανία). Χρωματίνη κατακερματισμός οπτικοποιήθηκε σε γέλη αγαρόζης 1%. Λήφθηκε θραύσματα ήταν στην 200-500pb εύρος. Διαλυτό χρωματίνη λήφθηκε με φυγοκέντρηση των δειγμάτων σε επεξεργασία με υπερήχους σε 14.000 για 10 λεπτά στους 48 ° C. Το διαλυτό κλάσμα αραιώθηκε 1/10 σε ρυθμιστικό διάλυμα αραίωσης (1% Triton Χ-100, 2 mM EDTA, 20 mM Tris ρΗ 8, 150 mM NaCl), στη συνέχεια, δειγματίστηκε και φυλάχθηκε στους 80 ° C μέχρι τη χρήση. (Rodriguez et al. 2008)

Συσκευή Ισχύς [W] Τύπος Όγκος [mL]
VialTweeter 200 Αυτόνομο 0.5 1,5
UP50H 50 χειρός ή standmounted 0.01 250
UP100H 100 χειρός ή standmounted 0.01 500
Uf200 ः t 200 χειρός ή standmounted 0.1 1000
UP200St 200 η οποία έχει τοποθετηθεί 0.1 1000
UP400St 400 η οποία έχει τοποθετηθεί 5,0 2000
Cuphorn 200 Κιούθορν, ηθοποιός 10 200
GDmini2 200 χωρίς κυψέλες ροής χωρίς μόλυνση

Αίτηση για πληροφορίες




Σημειώστε τις Πολιτική Απορρήτου.


VialTweeter Hielscher είναι is'deal για την ταυτόχρονη παρασκευή πολλαπλών δειγμάτων

VialTweeter για την υπερηχητική prep δείγμα

Επικοινωνήστε μαζί μας! / Ρωτήστε μας!

Ζητήστε περισσότερες πληροφορίες

Χρησιμοποιήστε την παρακάτω φόρμα, εάν επιθυμείτε να ζητήσετε πρόσθετες πληροφορίες σχετικά με την ομοιογενοποίηση με υπερήχους. Θα χαρούμε να σας προσφέρουμε ένα υπερηχητικό σύστημα που θα ικανοποιεί τις απαιτήσεις σας.









Παρακαλείστε να σημειώσετε ότι η Πολιτική Απορρήτου.


Λογοτεχνία / Αναφορές

  • Basselet Π, Wegrzyn G., Enfors S.-O., Gabig-Ciminska M. (2008): Η επεξεργασία των δειγμάτων για τσιπ DNA συστοιχίας που βασίζεται ανάλυση των εντεροαιμορραγική Escherichia coli (EHEC). Μικροβιακή Εργοστάσια κυττάρων 7:29. 2008.
  • . Doublier S., Riganti Ch, Voena C., Costamagna C., Aldieri Ε, Pescarmona G., Ghigo D., Bosia Α (008): RhoA κατασιγάσει Επαναφέρει την αντίσταση στην δοξορουβικίνη σε ανθρώπινα καρκινικά κύτταρα του παχέος εντέρου. Molecular Cancer Research 6 (10), 2008.
  • Fredlund Ε, Gidlund Α, Olsen Μ, Börjesson Τ, Spliid ΝΗΗ, Simonsson M. (2008): αξιολόγηση Μέθοδος εκχύλισης Fusarium DNA από μυκήλια και σίτου για κάτω-ροή πραγματικού χρόνου PCR ποσοτικοποίηση και της συσχέτισης με μυκοτοξίνη επίπεδα . Εφημερίδα των μικροβιολογικών μεθόδων του 2008.
  • Fritsche C., Sitz Μ, Weiland Ν, Breitling R., Pohl Η.-ϋ. (2007): Χαρακτηρισμός της συμπεριφοράς ανάπτυξης των Leishmania tarentolae - ένα νέο σύστημα έκφρασης για ανασυνδυασμένες πρωτεΐνες. Εφημερίδα των Βασικές Microbiology 47, 2007. 384-393.
  • Ristola Μ, Arpiainen Σ, Saleem Μ Α, Mathieson Π W., Welsh Γ Ι, Lehtonen Σ, Holthöfer Η (2009): Κανονισμός της Neph3 γονιδίου σε ποδοκύτταρα - βασικούς ρόλους των μεταγραφικών παραγόντων NF-κΒ και Sp1. BMC Μοριακής Βιολογίας 10:83, 2009.
  • Rodriguez J., Vives L., Ζορντά Μ, Morales C., Munoz Μ, Vendrell Ε, Peinado Μ Α (2008): Γονιδιώματος-ευρεία εντοπισμό μη μεθυλιωμένων DNA ΑΙυ επαναλήψεων σε φυσιολογικά και καρκινικά κύτταρα. Nucleic Acids Research Vol. 36, Νο 3, 2008. 770-784.
  • Weiske J. Huber O. (2006): Η τριάδας ιστιδίνης Protein Hint1 εναύσματα Απόπτωση Ανεξάρτητα από την ενζυμική της δράση. The Journal of Biological Chemistry. Vol. 281, Νο 37, 2006. 27.356-27366.


Γεγονότα που αξίζει να γνωρίζουμε

Υπερήχων / ακουστική σπηλαίωση δημιουργεί ιδιαίτερα έντονη δυνάμεις που προωθεί τις διαδικασίες κρυστάλλωση και καθίζηση (Κάντε κλικ για μεγέθυνση!)

Υπερήχων DNA διάτμηση βασίζεται στην ακουστική σπηλαίωση και υδροδυναμικές δυνάμεις διατμήσεως του