Як користуватися ультразвуковими гомогенізаторами тканин Hielscher
Перед очищенням або визначенням характеристик внутрішньоклітинних макромолекул, як-от білків, органел, ферментів або активних сполук, необхідно застосувати ефективний метод лізису тканин і дезінтеграції клітин. Ультразвукова обробка – високоефективний метод підготовки клітин, який забезпечує швидке вивільнення внутрішньоклітинних матеріалів у буферний розчин. Механічні зсувні сили, що виникають під час ультразвукової гомогенізації тканин, можна точно регулювати відповідно до конкретного матеріалу. Це дає змогу як дбайливо готувати м’які тканини або фрагментувати ДНК/РНК під дією зсувних сил за м’якшої ультразвукової обробки, так і застосовувати інтенсивну ультразвукову кавітацію для руйнування клітин (наприклад, нанохлоропсису, дріжджів).
Нижче наведено добірку тканин, клітин та інших біологічних матеріалів із рекомендованими протоколами ультразвукової обробки й настановами щодо ефективної підготовки зразків за допомогою ультразвукового гомогенізатора тканин або руйнувача клітин.
Лабораторний ультразвуковий прилад UP200Ht (200W, 26kHz) для підготовки зразків
Як готувати лізати, гомогенати й екстракти з біологічних матеріалів
В алфавітному порядку:
Ацетобактер субоксиданс
Актиноміцес
Застосування ультразвуку:
Руйнування клітин та екстракція білків за 3–5 min.
Рекомендований пристрій:
UP50H
Руйнування клітин та екстракція білків за 3–5 min.
Рекомендований пристрій:
UP50H
Активність ALP і LDH
Застосування ультразвуку:
Визначення активності ALP і LDH та вмісту білка
Заморожені зразки клітин розморожували протягом 20 min на льоду, після чого проводили лізис клітин у PBS із вмістом 1% Triton X-100 протягом 50 min на льоду. Під час лізису клітин кожен зразок обробляли ультразвуком протягом 1 min за потужності 80 W за допомогою ультразвукового процесора UP100H (Hielscher Ultrasonics).
Рекомендований пристрій:
UP100H
Джерело / Наукова публікація:
Bernhardt, A. et al. (2008): Мінералізований колаген – штучний позаклітинний кістковий матрикс – поліпшує остеогенну диференціацію стромальних клітин кісткового мозку.
Визначення активності ALP і LDH та вмісту білка
Заморожені зразки клітин розморожували протягом 20 min на льоду, після чого проводили лізис клітин у PBS із вмістом 1% Triton X-100 протягом 50 min на льоду. Під час лізису клітин кожен зразок обробляли ультразвуком протягом 1 min за потужності 80 W за допомогою ультразвукового процесора UP100H (Hielscher Ultrasonics).
Рекомендований пристрій:
UP100H
Джерело / Наукова публікація:
Bernhardt, A. et al. (2008): Мінералізований колаген – штучний позаклітинний кістковий матрикс – поліпшує остеогенну диференціацію стромальних клітин кісткового мозку.
Аморфний трикальційфосфат (ATCP)
Застосування ультразвуку:
Наночастинки ATCP, які є винятково реакційноздатним прекурсором для утворення гідроксиапатиту, диспергували в хлороформі з вмістом 5 % (w/w) Tween20 відносно PLGA за допомогою ультразвукового пристрою Hielscher UP400S за потужності 320W протягом 5 min. Обробку проводили в імпульсному режимі (50%), щоб забезпечити релаксацію частинок.
Рекомендований пристрій:
UP400S
Джерело / Наукова публікація:
Mohn, Dirk; Ege, Duygu; Feldman, Kirifl; Schneider, Oliver D.; Imfeld, Thomas; Boccaccini, Aldo R. (2014): Сферичні наночастинкові наповнювачі з фосфату кальцію дають змогу виготовляти методами переробки полімерів пристрої для фіксації кісток із високою біоактивністю. Безкоштовна бібліотека 01 травня 2010 року. 21 січня 2014 року.
Наночастинки ATCP, які є винятково реакційноздатним прекурсором для утворення гідроксиапатиту, диспергували в хлороформі з вмістом 5 % (w/w) Tween20 відносно PLGA за допомогою ультразвукового пристрою Hielscher UP400S за потужності 320W протягом 5 min. Обробку проводили в імпульсному режимі (50%), щоб забезпечити релаксацію частинок.
Рекомендований пристрій:
UP400S
Джерело / Наукова публікація:
Mohn, Dirk; Ege, Duygu; Feldman, Kirifl; Schneider, Oliver D.; Imfeld, Thomas; Boccaccini, Aldo R. (2014): Сферичні наночастинкові наповнювачі з фосфату кальцію дають змогу виготовляти методами переробки полімерів пристрої для фіксації кісток із високою біоактивністю. Безкоштовна бібліотека 01 травня 2010 року. 21 січня 2014 року.
Антоціани
Застосування ультразвуку:
Антоціани: диглюкозиди, моноглюкозид, ацильовані моноглюкозиди й ацильовані диглюкозиди пеонідину, мальвідину, ціанідину, петунідину та дельфінідину: екстракція зі шкірки винограду за 40 sec.; pH 5,0; співвідношення матеріалу до екстракційного розчинника 1:6.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Антоціани: диглюкозиди, моноглюкозид, ацильовані моноглюкозиди й ацильовані диглюкозиди пеонідину, мальвідину, ціанідину, петунідину та дельфінідину: екстракція зі шкірки винограду за 40 sec.; pH 5,0; співвідношення матеріалу до екстракційного розчинника 1:6.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Антрахінони
Застосування ультразвуку:
Екстракція антрахінонів із коренів Morinda citrifolia
Рекомендований пристрій:
UP400S
Екстракція антрахінонів із коренів Morinda citrifolia
Рекомендований пристрій:
UP400S
Насіння абрикоса
Застосування ультразвуку:
Попередня ультразвукова обробка перед екстракцією олії з насіння Jatropha curcas L. для поліпшення екстракції.
Рекомендований пристрій:
UP400S
Попередня ультразвукова обробка перед екстракцією олії з насіння Jatropha curcas L. для поліпшення екстракції.
Рекомендований пристрій:
UP400S
Полин селенгінський Турчанінова
Застосування ультразвуку:
Екстракція рутину (1,0g подрібненого зразка в 30 mL метанолу) за температури 25°C протягом 5–10 min.
Рекомендований пристрій:
UP50H
Екстракція рутину (1,0g подрібненого зразка в 30 mL метанолу) за температури 25°C протягом 5–10 min.
Рекомендований пристрій:
UP50H
Аспергіл жовтий
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Aspergillus flavus у поживному середовищі Сабуро
Рекомендований пристрій:
UP200S
Ультразвукова інактивація Aspergillus flavus у поживному середовищі Сабуро
Рекомендований пристрій:
UP200S
Б. сферична / Бацила сферична
Спори Bacillus anthracis sterne 34F2
Застосування ультразвуку:
Ультразвукове видалення спор Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 і Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Застосування 150 ppm гіпохлориту натрію разом з ультразвуком дійсно призвело до інактивації спор.
Рекомендований пристрій:
UP200S за амплітуди 100%
Джерело / Наукова публікація:
Pamarthi, S.R. et al.: Ефективність ультразвуку у видаленні забруднень, що містять спори Bacillus spp, включені у складні харчові матриці, прикріплені до різних контактних поверхонь.
Ультразвукове видалення спор Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 і Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Застосування 150 ppm гіпохлориту натрію разом з ультразвуком дійсно призвело до інактивації спор.
Рекомендований пристрій:
UP200S за амплітуди 100%
Джерело / Наукова публікація:
Pamarthi, S.R. et al.: Ефективність ультразвуку у видаленні забруднень, що містять спори Bacillus spp, включені у складні харчові матриці, прикріплені до різних контактних поверхонь.
Спори Bacillus cereus ATCC 21281
Застосування ультразвуку:
Ультразвукове видалення спор Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 та Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Застосування 150 ppm гіпохлориту натрію разом з ультразвуком призвело до інактивації спор.
Рекомендований пристрій:
UP200S за амплітуди 100%
Джерело / наукова публікація:
Pamarthi, S.R. et al.: Ефективність ультразвуку у видаленні забруднень зі спорами Bacillus spp, вбудованими у складні харчові матриці, що прилипли до різних контактних поверхонь.
Ультразвукове видалення спор Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 та Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Застосування 150 ppm гіпохлориту натрію разом з ультразвуком призвело до інактивації спор.
Рекомендований пристрій:
UP200S за амплітуди 100%
Джерело / наукова публікація:
Pamarthi, S.R. et al.: Ефективність ультразвуку у видаленні забруднень зі спорами Bacillus spp, вбудованими у складні харчові матриці, що прилипли до різних контактних поверхонь.
Сінна паличка
Застосування ультразвуку:
Ультразвук високої потужності та низької частоти в малих об’ємах бактеріальної суспензії спричиняє безперервне зменшення кількості бактеріальних клітин, тобто переважає їх загибель. У більших об’ємах ультразвукова обробка спричиняє початкове збільшення кількості клітин, що свідчить про роз’єднання бактеріальних скупчень, проте після завершення цього роз’єднання кількість клітин зменшується, оскільки їх загибель набуває більшого значення.
Рекомендований пристрій:
UP200St
Джерело / наукова публікація:
Joyce, E.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P.; Mason, T. J. (2003): Розроблення та оцінювання застосування ультразвуку для обробки бактеріальних суспензій. Дослідження впливу частоти, потужності та тривалості ультразвукової обробки на культивовані види Bacillus. Ultrason. Sonochem. 10/2003. с. 315–318.
Ультразвук високої потужності та низької частоти в малих об’ємах бактеріальної суспензії спричиняє безперервне зменшення кількості бактеріальних клітин, тобто переважає їх загибель. У більших об’ємах ультразвукова обробка спричиняє початкове збільшення кількості клітин, що свідчить про роз’єднання бактеріальних скупчень, проте після завершення цього роз’єднання кількість клітин зменшується, оскільки їх загибель набуває більшого значення.
Рекомендований пристрій:
UP200St
Джерело / наукова публікація:
Joyce, E.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P.; Mason, T. J. (2003): Розроблення та оцінювання застосування ультразвуку для обробки бактеріальних суспензій. Дослідження впливу частоти, потужності та тривалості ультразвукової обробки на культивовані види Bacillus. Ultrason. Sonochem. 10/2003. с. 315–318.
Альфа-амілаза ячменю
Застосування ультразвуку:
Стимулювання або пригнічення активності альфа-амілази ячменю: зразок (10 g насіння ячменю) диспергували в 80 ml водопровідної води за безпосередньої ультразвукової обробки з інтенсивністю ультразвуку, заданою амплітудами 20, 60 та 100%, робочим циклом 50% і додатковим перемішуванням. Сонотрод занурювали в розчин приблизно на 9 mm. Розчин обробляли за сталої температури 30C° протягом 5, 10 та 15 min.
Рекомендований пристрій:
UP200S, амплітуди: 20, 60 та 100%; робочий цикл 50%; сонотрод S3, 30C°.
Джерело / наукова публікація:
Yaldagard et al. (2008): Вплив потужності ультразвуку на активність альфа-амілази ячменю за післяпосівної обробки насіння
Стимулювання або пригнічення активності альфа-амілази ячменю: зразок (10 g насіння ячменю) диспергували в 80 ml водопровідної води за безпосередньої ультразвукової обробки з інтенсивністю ультразвуку, заданою амплітудами 20, 60 та 100%, робочим циклом 50% і додатковим перемішуванням. Сонотрод занурювали в розчин приблизно на 9 mm. Розчин обробляли за сталої температури 30C° протягом 5, 10 та 15 min.
Рекомендований пристрій:
UP200S, амплітуди: 20, 60 та 100%; робочий цикл 50%; сонотрод S3, 30C°.
Джерело / наукова публікація:
Yaldagard et al. (2008): Вплив потужності ультразвуку на активність альфа-амілази ячменю за післяпосівної обробки насіння
Наупліуси вусоногих раків
Застосування ультразвуку:
Руйнування клітин / знищення мезозоопланктону: за ультразвукової обробки з чотирма значеннями об’ємної витрати (200, 400, 520 та 800 lh-1) і чотирма амплітудами (25, 50, 75 та 100 %) було досягнуто частки загиблих організмів від 61 до 97 %.
Рекомендований пристрій:
UIP2000hd
Джерело / наукова публікація:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і пероксид водню як засоби обробки баластної води – експерименти з мезозоопланктоном у слабосолонуватій воді.
Руйнування клітин / знищення мезозоопланктону: за ультразвукової обробки з чотирма значеннями об’ємної витрати (200, 400, 520 та 800 lh-1) і чотирма амплітудами (25, 50, 75 та 100 %) було досягнуто частки загиблих організмів від 61 до 97 %.
Рекомендований пристрій:
UIP2000hd
Джерело / наукова публікація:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і пероксид водню як засоби обробки баластної води – експерименти з мезозоопланктоном у слабосолонуватій воді.
Штами біфідобактерій: Б. бреве ATCC 15700, Б. анімаліс підвид лактіс (BB-12), Б. лонгум (BB-46)
Застосування ультразвуку:
Руйнування бактеріальних клітин і вивільнення ß-галактозидази зі штамів біфідобактерій: B. breve ATCC 15700, B. animalis subsp. Lactis (BB-12), B. longum (BB-46): 100 mL пастеризованого молока, змішаного з бактеріальною культурою, обробляли ультразвуком. Кавітація спричиняє руйнування бактеріальних клітин і водночас вивільнення ß-галактозидази.
Рекомендований пристрій:
UIP1000hd: амплітуда: 10%, потужність: 80W, амплітуда: 100%, потужність: 200W; сонотрод BS2d34; 15–30 min.
Джерело / наукова публікація:
Hung et al. (2009): Ферментація йогурту з пробіотиками за сприяння ультразвуку.
Руйнування бактеріальних клітин і вивільнення ß-галактозидази зі штамів біфідобактерій: B. breve ATCC 15700, B. animalis subsp. Lactis (BB-12), B. longum (BB-46): 100 mL пастеризованого молока, змішаного з бактеріальною культурою, обробляли ультразвуком. Кавітація спричиняє руйнування бактеріальних клітин і водночас вивільнення ß-галактозидази.
Рекомендований пристрій:
UIP1000hd: амплітуда: 10%, потужність: 80W, амплітуда: 100%, потужність: 200W; сонотрод BS2d34; 15–30 min.
Джерело / наукова публікація:
Hung et al. (2009): Ферментація йогурту з пробіотиками за сприяння ультразвуку.
Клітини BL21(DE3) pAtHNL (клітини арабідопсису Таля)
Застосування ультразвуку:
Руйнування клітин: 15 g клітин BL21-(DE3)_pAtHNL повільно суспендували в 50 mM калій-фосфатному буфері (pH 7,5) за температури 0 degC.
Рекомендований пристрій:
UP200S + сонотрод S14D: за 70W/cm2 (4 x 5 min), з охолодженням у крижаній бані
Джерело / наукова публікація:
Okrob, D. et al (2009): Гідроксинітрилліаза з Arabidopsis thaliana: визначення параметрів реакції для синтезу енантіомерно чистих ціангідринів із використанням чистого та іммобілізованого каталізатора. Adv. Synth. Catal. 2011, 353, 2399 – 2408.
Руйнування клітин: 15 g клітин BL21-(DE3)_pAtHNL повільно суспендували в 50 mM калій-фосфатному буфері (pH 7,5) за температури 0 degC.
Рекомендований пристрій:
UP200S + сонотрод S14D: за 70W/cm2 (4 x 5 min), з охолодженням у крижаній бані
Джерело / наукова публікація:
Okrob, D. et al (2009): Гідроксинітрилліаза з Arabidopsis thaliana: визначення параметрів реакції для синтезу енантіомерно чистих ціангідринів із використанням чистого та іммобілізованого каталізатора. Adv. Synth. Catal. 2011, 353, 2399 – 2408.
Клітини крові (еритроцити та лейкоцити)
Болдин із листя больдо (пеумус больдо Моліна)
Застосування ультразвуку:
Важливою активною сполукою больдо є больдин ((S)-2,9-dihydroxy-1,10-dimethoxiaporphine), який разом із катехіном ((2S,3R)-2-(3,4-dihydroxy-phenyl)-3,4-dihydro-1(2H)-benzopyran-3,5,7-triol) належить до основних компонентів алкалоїдної та флавоноїдної фракції листя больдо. Больдин є сильним антиоксидантом, що зазнає пероксидативного пошкодження, опосередкованого вільними радикалами, та діє як ефективний поглинач гідроксильних радикалів.
Процедура екстракції: За типовою процедурою екстракції зразки листя больдо екстрагували 1L дистильованої води за атмосферного тиску за допомогою ультразвукового пристрою UIP1000hd у періодичному та проточному режимах. Тривалість екстракції становить від 10 до 40 min., інтенсивність ультразвуку – від 10 до 23 W/cm2, а діапазон температур – від 10 до 70°C. Найкращих результатів досягли за таких умов: інтенсивність ультразвуку 23 W/cm2 протягом 40 min. за температури 36°C
Результати: Результати аналізу показують, що ультразвукова обробка високої потужності посилює вивільнення аналіту з рослинної матриці больдо, забезпечуючи значно вищу швидкість порівняно з традиційним методом: однакового виходу досягли за 30 min. ультразвукової обробки, тоді як тривалість традиційної екстракції становила 2h.
Chemat (2013) та співавтори показали, що екстракція за допомогою ультразвуку підвищує ефективність екстракції рослинної сировини, водночас скорочуючи її тривалість і підвищуючи концентрацію екстрактів (за однакової кількості розчинника та рослинної сировини). Аналіз виявив такі оптимізовані умови: потужність ультразвукової обробки 23 W/cm2 за допомогою UIP1000hd протягом 40 min. за температури 36°C. Оптимізовані параметри ультразвукової екстракції забезпечують кращу екстракцію порівняно з традиційною мацерацією завдяки скороченню тривалості процесу (30 min. замість 120 min.), вищому виходу, вищій енергоефективності, підвищеній чистоті, вищій безпеці та кращій якості продукту.
Рекомендований пристрій:
UIP1000hd із сонотродом BS2d34 і проточною коміркою
Джерело / Наукова публікація:
Petigny, L.; Périno-Issartier, S.; Wajsman, J.; Chemat, F. (2013): Періодична та безперервна екстракція листя больдо (Peumus boldus Mol.) за допомогою ультразвуку. International Journal of Molecular Science 14, 2013. 5750–5764.
Важливою активною сполукою больдо є больдин ((S)-2,9-dihydroxy-1,10-dimethoxiaporphine), який разом із катехіном ((2S,3R)-2-(3,4-dihydroxy-phenyl)-3,4-dihydro-1(2H)-benzopyran-3,5,7-triol) належить до основних компонентів алкалоїдної та флавоноїдної фракції листя больдо. Больдин є сильним антиоксидантом, що зазнає пероксидативного пошкодження, опосередкованого вільними радикалами, та діє як ефективний поглинач гідроксильних радикалів.
Процедура екстракції: За типовою процедурою екстракції зразки листя больдо екстрагували 1L дистильованої води за атмосферного тиску за допомогою ультразвукового пристрою UIP1000hd у періодичному та проточному режимах. Тривалість екстракції становить від 10 до 40 min., інтенсивність ультразвуку – від 10 до 23 W/cm2, а діапазон температур – від 10 до 70°C. Найкращих результатів досягли за таких умов: інтенсивність ультразвуку 23 W/cm2 протягом 40 min. за температури 36°C
Результати: Результати аналізу показують, що ультразвукова обробка високої потужності посилює вивільнення аналіту з рослинної матриці больдо, забезпечуючи значно вищу швидкість порівняно з традиційним методом: однакового виходу досягли за 30 min. ультразвукової обробки, тоді як тривалість традиційної екстракції становила 2h.
Chemat (2013) та співавтори показали, що екстракція за допомогою ультразвуку підвищує ефективність екстракції рослинної сировини, водночас скорочуючи її тривалість і підвищуючи концентрацію екстрактів (за однакової кількості розчинника та рослинної сировини). Аналіз виявив такі оптимізовані умови: потужність ультразвукової обробки 23 W/cm2 за допомогою UIP1000hd протягом 40 min. за температури 36°C. Оптимізовані параметри ультразвукової екстракції забезпечують кращу екстракцію порівняно з традиційною мацерацією завдяки скороченню тривалості процесу (30 min. замість 120 min.), вищому виходу, вищій енергоефективності, підвищеній чистоті, вищій безпеці та кращій якості продукту.
Рекомендований пристрій:
UIP1000hd із сонотродом BS2d34 і проточною коміркою
Джерело / Наукова публікація:
Petigny, L.; Périno-Issartier, S.; Wajsman, J.; Chemat, F. (2013): Періодична та безперервна екстракція листя больдо (Peumus boldus Mol.) за допомогою ультразвуку. International Journal of Molecular Science 14, 2013. 5750–5764.
Бичачий сироватковий альбумін (BSA)
Застосування ультразвуку:
Мікрокапсулювання в полі(молочній-ко-гліколевій кислоті) за 40 sec.
Рекомендований пристрій:
GDmini
Джерело / Наукова публікація:
Freitas et al. (2005): Проточне ультразвукове емульгування в поєднанні зі статичним мікрозмішуванням для асептичного виробництва мікросфер шляхом екстракції розчинником.
Мікрокапсулювання в полі(молочній-ко-гліколевій кислоті) за 40 sec.
Рекомендований пристрій:
GDmini
Джерело / Наукова публікація:
Freitas et al. (2005): Проточне ультразвукове емульгування в поєднанні зі статичним мікрозмішуванням для асептичного виробництва мікросфер шляхом екстракції розчинником.
Стовбур головного мозку + надниркова залоза
Застосування ультразвуку:
Диспергування та аналіз нуклеотидів; розмір зразка: зразки масою 10 mg у 10 ml рідини.
Рекомендований пристрій:
UP50H
Диспергування та аналіз нуклеотидів; розмір зразка: зразки масою 10 mg у 10 ml рідини.
Рекомендований пристрій:
UP50H
Кандида альбіканс
Вуглеводи, полісахариди та інші функціональні сполуки
Застосування ультразвуку:
Екстракція вуглеводів, полісахаридів та інших функціональних сполук
Рекомендований пристрій:
UP200St
Екстракція вуглеводів, полісахаридів та інших функціональних сполук
Рекомендований пристрій:
UP200St
Карнозова кислота з розмарину
Застосування ультразвуку:
Екстракція карнозинової кислоти, активної сполуки, з розмарину.
Рекомендований пристрій:
UP400S
Екстракція карнозинової кислоти, активної сполуки, з розмарину.
Рекомендований пристрій:
UP400S
Капсаїциноїди
Застосування ультразвуку:
Екстракція капсаїциноїдів (капсаїцину, нордигідрокапсаїцину) з перцю чилі: капсаїциноїди з перцю Capsicum frutescens отримували шляхом ультразвукової екстракції за таких умов: розчинник: 95% (v/v) етанол, співвідношення об’єму розчинника до маси сировини 10 ml/g, тривалість ультразвукової екстракції 40 min., температура екстракції 45°C. Вихід екстракції: 85% капсаїциноїдів
Рекомендований пристрій:
UP400S
Екстракція капсаїциноїдів (капсаїцину, нордигідрокапсаїцину) з перцю чилі: капсаїциноїди з перцю Capsicum frutescens отримували шляхом ультразвукової екстракції за таких умов: розчинник: 95% (v/v) етанол, співвідношення об’єму розчинника до маси сировини 10 ml/g, тривалість ультразвукової екстракції 40 min., температура екстракції 45°C. Вихід екстракції: 85% капсаїциноїдів
Рекомендований пристрій:
UP400S
Каротиноїди, бета-каротиноїди
cDNA
Застосування ультразвуку:
Полі-А РНК очищували за допомогою набору Dynabeads mRNA purification kit (Invitrogen) згідно з інструкціями виробника та обробляли протягом 30 min за температури 37°C ферментом TURBO DNase (Ambion; 0,2 одиниці/1 μg РНК). Синтез першого та другого ланцюгів проводили згідно з протоколом виробника. Близько 500ng дволанцюгової кДНК фрагментували шляхом ультразвукової обробки за допомогою пристрою Hielscher UTR200. ДНК розділяли у 2% агарозному гелі з високою роздільною здатністю та вирізали фрагменти довжиною 230–270 bp.
Рекомендований пристрій:
UTR200 або TD_CupHorn
Джерело / Наукова публікація:
Delft, J. van; Gaj, St.; Lienhard,M.; Albrecht, M. W.; Kirpiy, A.; Brauers, K.; Claessen, S.; Lizarraga, D.; Lehrach, H.; Herwig, R.; Kleinjans, J. (2012): RNA-Seq дає нове розуміння реакцій транскриптому, індукованих канцерогеном бензо[a]піреном. Toxicological Sciences 130/2, 2012. 427–439.
Полі-А РНК очищували за допомогою набору Dynabeads mRNA purification kit (Invitrogen) згідно з інструкціями виробника та обробляли протягом 30 min за температури 37°C ферментом TURBO DNase (Ambion; 0,2 одиниці/1 μg РНК). Синтез першого та другого ланцюгів проводили згідно з протоколом виробника. Близько 500ng дволанцюгової кДНК фрагментували шляхом ультразвукової обробки за допомогою пристрою Hielscher UTR200. ДНК розділяли у 2% агарозному гелі з високою роздільною здатністю та вирізали фрагменти довжиною 230–270 bp.
Рекомендований пристрій:
UTR200 або TD_CupHorn
Джерело / Наукова публікація:
Delft, J. van; Gaj, St.; Lienhard,M.; Albrecht, M. W.; Kirpiy, A.; Brauers, K.; Claessen, S.; Lizarraga, D.; Lehrach, H.; Herwig, R.; Kleinjans, J. (2012): RNA-Seq дає нове розуміння реакцій транскриптому, індукованих канцерогеном бензо[a]піреном. Toxicological Sciences 130/2, 2012. 427–439.
Каріофанон латум
Застосування ультразвуку:
Екстракція глюкозаміну, мурамової кислоти, аланіну, глутамінової кислоти та лізину з caryophanon datum.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Екстракція глюкозаміну, мурамової кислоти, аланіну, глутамінової кислоти та лізину з caryophanon datum.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Целюлоза
Застосування ультразвуку:
Гомогенізація/ підготовка ізотопно однорідної целюлози.
Рекомендований пристрій:
UP200S; у крижаній бані
Джерело/ наукова публікація:
Laumer et al. (2009): Новий підхід до гомогенізації целюлози для використання мікрокількостей у дослідженнях стабільних ізотопів.
Гомогенізація/ підготовка ізотопно однорідної целюлози.
Рекомендований пристрій:
UP200S; у крижаній бані
Джерело/ наукова публікація:
Laumer et al. (2009): Новий підхід до гомогенізації целюлози для використання мікрокількостей у дослідженнях стабільних ізотопів.
Нанокристали целюлози (CNC), отримані з нанокристалів евкаліптової целюлози
Застосування ультразвуку:
Нанокристали целюлози (CNC), отримані з нанокристалів евкаліптової целюлози CNCs, модифікували реакцією з methyl adipoyl chloride, отримуючи CNCm, або із сумішшю оцтової та сірчаної кислот, отримуючи CNCa. Для цього ліофілізовані CNCs, CNCm та CNCa повторно диспергували в чистих розчинниках (EA, THF або DMF) за концентрації 0,1 wt%, перемішуючи магнітною мішалкою протягом ночі за температури (24 ± 1) C, після чого обробляли протягом 20 min в ультразвуковій бані з використанням UP100H Hielscher Ultrasonics (Німеччина), оснащеного сонотродом 130 W/cm2, за температури 24 ± 1 degC. Після цього до дисперсії CNC додавали CAB, щоб кінцева концентрація полімеру становила 0,9 wt%.
Рекомендований пристрій:
UP100H; за температури 24 degC протягом 20 min.
Джерело/ наукова публікація:
Blachechen, L. S. et al (2013): Взаємозв’язок між колоїдною стабільністю нанокристалів целюлози та їхньою диспергованістю в матриці ацетобутирату целюлози. Cellulose 2013.
Нанокристали целюлози (CNC), отримані з нанокристалів евкаліптової целюлози CNCs, модифікували реакцією з methyl adipoyl chloride, отримуючи CNCm, або із сумішшю оцтової та сірчаної кислот, отримуючи CNCa. Для цього ліофілізовані CNCs, CNCm та CNCa повторно диспергували в чистих розчинниках (EA, THF або DMF) за концентрації 0,1 wt%, перемішуючи магнітною мішалкою протягом ночі за температури (24 ± 1) C, після чого обробляли протягом 20 min в ультразвуковій бані з використанням UP100H Hielscher Ultrasonics (Німеччина), оснащеного сонотродом 130 W/cm2, за температури 24 ± 1 degC. Після цього до дисперсії CNC додавали CAB, щоб кінцева концентрація полімеру становила 0,9 wt%.
Рекомендований пристрій:
UP100H; за температури 24 degC протягом 20 min.
Джерело/ наукова публікація:
Blachechen, L. S. et al (2013): Взаємозв’язок між колоїдною стабільністю нанокристалів целюлози та їхньою диспергованістю в матриці ацетобутирату целюлози. Cellulose 2013.
Целюлоза з багаси цукрової тростини
Застосування ультразвуку:
Екстракція целюлози з багаси цукрової тростини
Рекомендований пристрій:
UP200St
Екстракція целюлози з багаси цукрової тростини
Рекомендований пристрій:
UP200St
Аналіз методом імунопреципітації хроматину (ChIP)
Застосування ультразвуку:
Ультразвукову обробку використовують для лізису клітин із метою вивільнення хроматину. М’яку (імпульсну) ультразвукову обробку застосовують для фрагментації хроматину. Крім того, ультразвук прискорює зв’язування антитіл із цільовими білками й завдяки цьому скорочує час імунопреципітації.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Джерело/ наукова публікація:
Basselet, P. et al. (2008): Обробка зразків для аналізу ентерогеморагічної Escherichia coli (EHEC) на основі ДНК-мікрочипів.
Lauri, A. (2005): Молекулярний аналіз розвитку пелюсток за допомогою X-ChIP і двогібридної технології. Дисертація, Кельнський університет, 2005.
Ультразвукову обробку використовують для лізису клітин із метою вивільнення хроматину. М’яку (імпульсну) ультразвукову обробку застосовують для фрагментації хроматину. Крім того, ультразвук прискорює зв’язування антитіл із цільовими білками й завдяки цьому скорочує час імунопреципітації.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Джерело/ наукова публікація:
Basselet, P. et al. (2008): Обробка зразків для аналізу ентерогеморагічної Escherichia coli (EHEC) на основі ДНК-мікрочипів.
Lauri, A. (2005): Молекулярний аналіз розвитку пелюсток за допомогою X-ChIP і двогібридної технології. Дисертація, Кельнський університет, 2005.
Хроматин
Застосування ультразвуку:
Фрагментація хроматину під дією зсувних сил
Рекомендований пристрій:
UP400S; за амплітуди 30% і циклу 0,5; на льоду.
Джерело/ наукова публікація:
Oh et al. (2003): Ген ацетил-КоА-карбоксилази регулюється білком-1, що зв’язує стеролрегуляторний елемент, у печінці.
Фрагментація хроматину під дією зсувних сил
Рекомендований пристрій:
UP400S; за амплітуди 30% і циклу 0,5; на льоду.
Джерело/ наукова публікація:
Oh et al. (2003): Ген ацетил-КоА-карбоксилази регулюється білком-1, що зв’язує стеролрегуляторний елемент, у печінці.
Виділення хроматину
Застосування ультразвуку:
Лізат клітин MEL DS19 піддавали ультразвуковій обробці впродовж 10 раундів тривалістю 20 s кожен за 70% максимальної вихідної потужності за допомогою ультразвукового процесора Hielscher UP200H потужністю 200W
Рекомендований пристрій:
UP200H; 70% максимальної вихідної потужності; імпульсний режим: 10 циклів тривалістю 20 sec. кожен.
Джерело/ наукова публікація:
Kang, H. Ch. et al (2010): PIAS1 регулює локалізацію CP2c та утворення активного промоторного комплексу під час специфічної для еритроїдних клітин експресії a-глобіну. Nucleic Acids Res. 38/ 16, 2010. с. 5456–5471.
Лізат клітин MEL DS19 піддавали ультразвуковій обробці впродовж 10 раундів тривалістю 20 s кожен за 70% максимальної вихідної потужності за допомогою ультразвукового процесора Hielscher UP200H потужністю 200W
Рекомендований пристрій:
UP200H; 70% максимальної вихідної потужності; імпульсний режим: 10 циклів тривалістю 20 sec. кожен.
Джерело/ наукова публікація:
Kang, H. Ch. et al (2010): PIAS1 регулює локалізацію CP2c та утворення активного промоторного комплексу під час специфічної для еритроїдних клітин експресії a-глобіну. Nucleic Acids Res. 38/ 16, 2010. с. 5456–5471.
Хроматографія
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова обробка адсорбенту в розчиннику усуває агломерати за кілька секунд і дає змогу отримати однорідну колонку, яку легко заповнювати. Застосовується для підготовки адсорбенту (наприклад, силікагелю) перед колонковою хроматографією.
Рекомендований пристрій:
UP400S
Ультразвукова обробка адсорбенту в розчиннику усуває агломерати за кілька секунд і дає змогу отримати однорідну колонку, яку легко заповнювати. Застосовується для підготовки адсорбенту (наприклад, силікагелю) перед колонковою хроматографією.
Рекомендований пристрій:
UP400S
Гіллястовусі ракоподібні
Застосування ультразвуку:
Руйнування клітин мезозоопланктону
Рекомендований пристрій:
UP2000hd з проточною коміркою
Джерело/ наукова публікація:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і пероксид водню як засоби обробки баластної води – експерименти з мезозоопланктоном у солонуватій воді з низькою солоністю.
Руйнування клітин мезозоопланктону
Рекомендований пристрій:
UP2000hd з проточною коміркою
Джерело/ наукова публікація:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і пероксид водню як засоби обробки баластної води – експерименти з мезозоопланктоном у солонуватій воді з низькою солоністю.
Дорослі веслоногі ракоподібні та копеподити
Застосування ультразвуку:
Руйнування клітин мезозоопланктону: ультразвукова обробка за чотирьох значень об’ємної витрати (200, 400, 520 і 800 lh-1) та чотирьох значень амплітуди (25, 50, 75 і 100%) дала змогу досягти рівня загибелі від 87 до 99%.
Рекомендований пристрій:
UIP2000hd з проточною коміркою
Джерело/ наукова публікація:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і пероксид водню як засоби обробки баластної води – експерименти з мезозоопланктоном у солонуватій воді з низькою солоністю.
Руйнування клітин мезозоопланктону: ультразвукова обробка за чотирьох значень об’ємної витрати (200, 400, 520 і 800 lh-1) та чотирьох значень амплітуди (25, 50, 75 і 100%) дала змогу досягти рівня загибелі від 87 до 99%.
Рекомендований пристрій:
UIP2000hd з проточною коміркою
Джерело/ наукова публікація:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і пероксид водню як засоби обробки баластної води – експерименти з мезозоопланктоном у солонуватій воді з низькою солоністю.
Наупліуси веслоногих ракоподібних
Застосування ультразвуку:
Руйнування клітин мезозоопланктону: ультразвукова обробка за чотирьох значень об’ємної витрати (200, 400, 520 і 800 lh-1) та чотирьох значень амплітуди (25, 50, 75 і 100%) дала змогу досягти рівня загибелі від 87 до 99%.
Рекомендований пристрій:
UIP2000hd з проточною коміркою
Джерело/ наукова публікація:
Viitaslo та ін. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і пероксид водню як засоби обробки баластних вод – експерименти з мезозоопланктоном у слабосолонуватій воді з низькою солоністю.
Руйнування клітин мезозоопланктону: ультразвукова обробка за чотирьох значень об’ємної витрати (200, 400, 520 і 800 lh-1) та чотирьох значень амплітуди (25, 50, 75 і 100%) дала змогу досягти рівня загибелі від 87 до 99%.
Рекомендований пристрій:
UIP2000hd з проточною коміркою
Джерело/ наукова публікація:
Viitaslo та ін. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і пероксид водню як засоби обробки баластних вод – експерименти з мезозоопланктоном у слабосолонуватій воді з низькою солоністю.
Клітини COS7
Застосування ультразвуку:
Лізис у 400 μl буфера
Рекомендований пристрій:
UP200S; 7 циклів
Джерело/наукова публікація:
Zaim (2005): Аналіз мишей із дефіцитом Nesprin-2.
Лізис у 400 μl буфера
Рекомендований пристрій:
UP200S; 7 циклів
Джерело/наукова публікація:
Zaim (2005): Аналіз мишей із дефіцитом Nesprin-2.
Криптоспоридій парвум
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Cryptosporidium parvaum (найпростіших) у воді.
Рекомендований пристрій:
UP400S
Джерело/наукова публікація:
Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Furuta, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Інактивація Saccharomyces cerevisiae ультразвуковим опроміненням. Ultrasonics Sonochemistry 11/2004. с. 61–65.
Ультразвукова інактивація Cryptosporidium parvaum (найпростіших) у воді.
Рекомендований пристрій:
UP400S
Джерело/наукова публікація:
Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Furuta, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Інактивація Saccharomyces cerevisiae ультразвуковим опроміненням. Ultrasonics Sonochemistry 11/2004. с. 61–65.
Кубосоми
Застосування ультразвуку:
Кубосоми – порожні або з доданими молекулами флуорофора – готували диспергуванням відповідної кількості моноолеїну в розчині Pluronic F108 за допомогою ультразвукового пристрою UP100H. Для отримання флуоресцентних кубосом флуорофор диспергували в розплавленому моноолеїні шляхом м’якої ультразвукової обробки перед диспергуванням у Pluronic F108. Таку саму процедуру застосовували, коли флуоресцентні кубосоми також завантажували кверцетином.
Зразок: об’єм зразка: 4 mL – прибл. 96,4 wt% води, 3,3 wt % моноолеїну, 0,3 wt% Pluronic F108. Відсотковий вміст флуорофора становив 2,5 × 10−3 та 2,8 × 10−3 wt%. Кількість доданого кверцетину: 6,4 × 10−6 wt%.
Ультразвукова обробка: UP100H, амплітуда 90%, імпульсний цикл 0,9, протягом 10 min.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Джерело/наукова публікація:
Murgia, S.; Bonacchi,S.; Falchi, A. M.; Lampis, S.; Lippolis, V.; Meli, V.; Monduzzi, M.; Prodi, L.; Schmidt, J.; Talmon, Y.; Caltagirone, C. (2013): Флуоресцентні кубосоми, завантажені лікарськими речовинами: універсальні наночастинки для потенційного тераностичного застосування. Langmuir 29, 2013. 6673–6679.
Кубосоми – порожні або з доданими молекулами флуорофора – готували диспергуванням відповідної кількості моноолеїну в розчині Pluronic F108 за допомогою ультразвукового пристрою UP100H. Для отримання флуоресцентних кубосом флуорофор диспергували в розплавленому моноолеїні шляхом м’якої ультразвукової обробки перед диспергуванням у Pluronic F108. Таку саму процедуру застосовували, коли флуоресцентні кубосоми також завантажували кверцетином.
Зразок: об’єм зразка: 4 mL – прибл. 96,4 wt% води, 3,3 wt % моноолеїну, 0,3 wt% Pluronic F108. Відсотковий вміст флуорофора становив 2,5 × 10−3 та 2,8 × 10−3 wt%. Кількість доданого кверцетину: 6,4 × 10−6 wt%.
Ультразвукова обробка: UP100H, амплітуда 90%, імпульсний цикл 0,9, протягом 10 min.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Джерело/наукова публікація:
Murgia, S.; Bonacchi,S.; Falchi, A. M.; Lampis, S.; Lippolis, V.; Meli, V.; Monduzzi, M.; Prodi, L.; Schmidt, J.; Talmon, Y.; Caltagirone, C. (2013): Флуоресцентні кубосоми, завантажені лікарськими речовинами: універсальні наночастинки для потенційного тераностичного застосування. Langmuir 29, 2013. 6673–6679.
Деккера брюкселленсіс
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Dekkera bruxellensis у воді
Рекомендований пристрій:
UIP1500hd
Джерело/наукова публікація:
Borthwick, K. A. J.; Coakley, W. T.; McDonnell, M. B.; Nowotny, H.; Benes, E.; Grfschl, .M (2005): Розроблення нового компактного ультразвукового пристрою для руйнування клітин. J. Microbio. Meths. 60/2005. с. 207–216. / Lörincz, A. (2004): Ультразвукове руйнування клітин дріжджів у водних суспензіях. Biosys. Eng. 89/ 2004. с. 297–308. / Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Furuta, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Інактивація Saccharomyces cerevisiae ультразвуковим опроміненням. Ultrason. Sonochem. 11/2004. с. 61–65.
Ультразвукова інактивація Dekkera bruxellensis у воді
Рекомендований пристрій:
UIP1500hd
Джерело/наукова публікація:
Borthwick, K. A. J.; Coakley, W. T.; McDonnell, M. B.; Nowotny, H.; Benes, E.; Grfschl, .M (2005): Розроблення нового компактного ультразвукового пристрою для руйнування клітин. J. Microbio. Meths. 60/2005. с. 207–216. / Lörincz, A. (2004): Ультразвукове руйнування клітин дріжджів у водних суспензіях. Biosys. Eng. 89/ 2004. с. 297–308. / Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Furuta, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Інактивація Saccharomyces cerevisiae ультразвуковим опроміненням. Ultrason. Sonochem. 11/2004. с. 61–65.
Деккера / бреттаноміцес брюкселленсіс
Застосування ультразвуку:
Інактивація за 90–120 sec.
Рекомендований пристрій:
UIP1500hd
Джерело/наукова публікація:
див. вище
Інактивація за 90–120 sec.
Рекомендований пристрій:
UIP1500hd
Джерело/наукова публікація:
див. вище
ДНК
Застосування ультразвуку:
Фрагментація ДНК: ультразвукова обробка 100μL протягом 2 min. за допомогою UP100H або ультразвукова обробка 100μL протягом 4 min. за допомогою UTR200.
Рекомендований пристрій:
UP100H, UTR200 або VialTweeter
Джерело/наукова публікація:
Larguinho M. та ін. (2010): Розроблення швидкої та ефективної стратегії фрагментації ДНК на основі ультразвуку.
Фрагментація ДНК: ультразвукова обробка 100μL протягом 2 min. за допомогою UP100H або ультразвукова обробка 100μL протягом 4 min. за допомогою UTR200.
Рекомендований пристрій:
UP100H, UTR200 або VialTweeter
Джерело/наукова публікація:
Larguinho M. та ін. (2010): Розроблення швидкої та ефективної стратегії фрагментації ДНК на основі ультразвуку.
Клітини S2 дрозофіли меланогастер
Застосування ультразвуку:
Екстракція клітинних білків із клітин S2 Drosophila melanogaster: заморожені клітини S2 (1,56108) лізували в 1 mL охолодженого на льоду буфера для гомогенізації (100 mM Tris-HCl pH 7,5, 1% SDS) і залишали на льоду на 10 min. Лізис клітин завершували ультразвуковою обробкою на льоду (6615 серій імпульсів, тривалість імпульсу 0,5 s; інтенсивність 75%) за допомогою ультразвукового процесора Hielscher UP200S.
Рекомендований пристрій:
UP200S (200W), інтенсивність 75%; імпульсний режим: 6615 серій імпульсів, тривалість імпульсу 0,5 s.
Джерело/наукова публікація:
Schwientek, T. та ін. (2007): Послідовний лектиновий підхід до дослідження O-глікопротеому муцинового типу клітин S2 Drosophila melanogaster. Proteomics 7, 2007. с. 3264–3277.
Екстракція клітинних білків із клітин S2 Drosophila melanogaster: заморожені клітини S2 (1,56108) лізували в 1 mL охолодженого на льоду буфера для гомогенізації (100 mM Tris-HCl pH 7,5, 1% SDS) і залишали на льоду на 10 min. Лізис клітин завершували ультразвуковою обробкою на льоду (6615 серій імпульсів, тривалість імпульсу 0,5 s; інтенсивність 75%) за допомогою ультразвукового процесора Hielscher UP200S.
Рекомендований пристрій:
UP200S (200W), інтенсивність 75%; імпульсний режим: 6615 серій імпульсів, тривалість імпульсу 0,5 s.
Джерело/наукова публікація:
Schwientek, T. та ін. (2007): Послідовний лектиновий підхід до дослідження O-глікопротеому муцинового типу клітин S2 Drosophila melanogaster. Proteomics 7, 2007. с. 3264–3277.
Похідні кишкової палички
Застосування ультразвуку:
Руйнування клітин похідних E. coli: заморожені осади, що відповідали об’єму зразка Vculture = 4/OD mL, ресуспендували в 580 μL 10 mM калій-фосфатного буфера з pH 7 і 1 mM EDTA. Додавали 20 μL лізоциму (концентрація 1 g L-1), після чого клітинну суспензію інкубували на льоду протягом приблизно 30 min. Потім клітини руйнували безперервною ультразвуковою обробкою за допомогою ультразвукового пристрою (UP 200S Ultraschallprozessor, Dr. Hielscher GmbH, Teltow) на льоду за амплітуди 50 % протягом 20 sec. Розчинну та нерозчинну клітинні фракції розділяли центрифугуванням за 13 000 rpm протягом 20 min. Нерозчинні білки двічі промивали 10 mM калій-фосфатним буфером з pH 7 і 1 mM EDTA та зберігали за –20°C.
Рекомендований пристрій:
UP200S з амплітудою 50%
Джерело / наукова публікація:
HA (2005): Оптимізація виробництва активних рекомбінантних білків: дослідження впливу малих білків теплового шоку Escherichia coli, IbpA та IbpB, на реактивацію тілець включення in vivo.
Руйнування клітин похідних E. coli: заморожені осади, що відповідали об’єму зразка Vculture = 4/OD mL, ресуспендували в 580 μL 10 mM калій-фосфатного буфера з pH 7 і 1 mM EDTA. Додавали 20 μL лізоциму (концентрація 1 g L-1), після чого клітинну суспензію інкубували на льоду протягом приблизно 30 min. Потім клітини руйнували безперервною ультразвуковою обробкою за допомогою ультразвукового пристрою (UP 200S Ultraschallprozessor, Dr. Hielscher GmbH, Teltow) на льоду за амплітуди 50 % протягом 20 sec. Розчинну та нерозчинну клітинні фракції розділяли центрифугуванням за 13 000 rpm протягом 20 min. Нерозчинні білки двічі промивали 10 mM калій-фосфатним буфером з pH 7 і 1 mM EDTA та зберігали за –20°C.
Рекомендований пристрій:
UP200S з амплітудою 50%
Джерело / наукова публікація:
HA (2005): Оптимізація виробництва активних рекомбінантних білків: дослідження впливу малих білків теплового шоку Escherichia coli, IbpA та IbpB, на реактивацію тілець включення in vivo.
Антиген ехінокока гранульозного
Застосування ультразвуку:
Лізис і дезінтеграція клітин: гомогенізований зразок розчинних білків зрілих E. granulosus, підготовлений шляхом заморожування в рідкому азоті та розморожування за 42◦C, обробляли ультразвуком за 110V, 170W протягом 3×15 sec на льоду. Після цього зразок центрифугували протягом 15min за 10 000g. Концентрацію білка визначали методом Бредфорда, а зразок зберігали за -20◦C.
Рекомендований пристрій:
UP200S; 170W, охолодження на льоду; 3 x 15 sec.
Джерело / наукова публікація:
Tabar et al. (2010): Серодіагностика ехінококозу овець із використанням гідатидної рідини, протосколекса та антигену цілого тіла Echinococcus granulosus.
Лізис і дезінтеграція клітин: гомогенізований зразок розчинних білків зрілих E. granulosus, підготовлений шляхом заморожування в рідкому азоті та розморожування за 42◦C, обробляли ультразвуком за 110V, 170W протягом 3×15 sec на льоду. Після цього зразок центрифугували протягом 15min за 10 000g. Концентрацію білка визначали методом Бредфорда, а зразок зберігали за -20◦C.
Рекомендований пристрій:
UP200S; 170W, охолодження на льоду; 3 x 15 sec.
Джерело / наукова публікація:
Tabar et al. (2010): Серодіагностика ехінококозу овець із використанням гідатидної рідини, протосколекса та антигену цілого тіла Echinococcus granulosus.
Грамнегативна кишкова паличка
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Escherchia coli Gr- у молоці та соках.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Джерело / наукова публікація:
Zenker, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Застосування термічної обробки за допомогою ультразвуку для консервування та збереження якості рідких харчових продуктів. J Food Prot 66/2003. с. 1642–1649.
Ультразвукова інактивація Escherchia coli Gr- у молоці та соках.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Джерело / наукова публікація:
Zenker, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Застосування термічної обробки за допомогою ультразвуку для консервування та збереження якості рідких харчових продуктів. J Food Prot 66/2003. с. 1642–1649.
Грамнегативна кишкова паличка у фізіологічному розчині
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Escherchia coli Gr- у фізіологічному розчині.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Джерело / наукова публікація:
Duckhouse, H.; Mason, T. J.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P. (2004): Вплив ультразвукової обробки на мікробну дезінфекцію з використанням гіпохлориту. Ultrason. Sonochem. 11/ 2004. с. 173–176.
Ультразвукова інактивація Escherchia coli Gr- у фізіологічному розчині.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Джерело / наукова публікація:
Duckhouse, H.; Mason, T. J.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P. (2004): Вплив ультразвукової обробки на мікробну дезінфекцію з використанням гіпохлориту. Ultrason. Sonochem. 11/ 2004. с. 173–176.
Грамнегативна кишкова паличка у воді
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Escherchia coli Gr- у воді.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Джерело / наукова публікація:
Furuta, M.; Yamaguchi, M.; Tsukamoto, T.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Hasiba, K.; Maeda, Y. (2004): Інактивація Escherichia coli ультразвуковим опроміненням. Ultrason. Sonochem. 11/2004. с. 57–60.
Ультразвукова інактивація Escherchia coli Gr- у воді.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Джерело / наукова публікація:
Furuta, M.; Yamaguchi, M.; Tsukamoto, T.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Hasiba, K.; Maeda, Y. (2004): Інактивація Escherichia coli ультразвуковим опроміненням. Ultrason. Sonochem. 11/2004. с. 57–60.
Глаукома, диск зорового нерва
Застосування ультразвуку:
Фрагментація РНК дисків зорового нерва (з очей щурів): диск зорового нерва (ONH) заморожували на сухому льоду та зберігали за 80°C до екстракції. РНК виділяли шляхом ультразвукової обробки заморожених дисків зорового нерва в екстракційному буфері з набору за допомогою зонда MS 0.5 (UP50H), після чого дотримувалися інструкцій до набору Arcturus, зокрема проводили обробку ДНКазою для видалення будь-якої ДНК. Кількість очищеної РНК визначали кількісно.
Рекомендований пристрій:
UP50H із зондом MS0.5
Джерело / наукова публікація:
Johnson et al. (2007): Глобальні зміни експресії генів диска зорового нерва після впливу підвищеного внутрішньоочного тиску в моделі глаукоми у щурів.
Фрагментація РНК дисків зорового нерва (з очей щурів): диск зорового нерва (ONH) заморожували на сухому льоду та зберігали за 80°C до екстракції. РНК виділяли шляхом ультразвукової обробки заморожених дисків зорового нерва в екстракційному буфері з набору за допомогою зонда MS 0.5 (UP50H), після чого дотримувалися інструкцій до набору Arcturus, зокрема проводили обробку ДНКазою для видалення будь-якої ДНК. Кількість очищеної РНК визначали кількісно.
Рекомендований пристрій:
UP50H із зондом MS0.5
Джерело / наукова публікація:
Johnson et al. (2007): Глобальні зміни експресії генів диска зорового нерва після впливу підвищеного внутрішньоочного тиску в моделі глаукоми у щурів.
Глікозаміноглікан хондроїтинсульфат (CS)
Застосування ультразвуку:
Визначення CS методом аналізу з диметилметиленовим синім
Ресуспендування клітин: осади CS у мікроцентрифужних пробірках ресуспендували в 0,5 ml розчину папаїну з концентрацією 0,1mg/ml у збалансованому сольовому розчині Генкса (HBSS), використовуючи імпульси ультразвукового сонотрода (UP 100H, Hielscher Ultrasonics GmbH, Німеччина) за циклу 1 та амплітуди 100 % протягом 3 sec. Після цього проводили розщеплення за 60 °C протягом 24 h.
Для імуноферментного аналізу (ELISA) клітини потім суспендували в дистильованій і деіонізованій воді за концентрації 106 клітин/ml та залишали на ніч у морозильній камері за –70°C для полегшення лізису клітин. Потім клітини гомогенізували ультразвуковою обробкою протягом 40 sec. за допомогою ультразвукового гомогенізатора тканин Hielscher UP100H.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Джерело / наукова публікація:
Vandrovcova et al. (2011): Вплив покриттів із колагену та хондроїтинсульфату (CS) на полі(лактид-ко-гліколіді) (PLGA) на остеобластоподібні клітини MG 63. Physiol. Res. 60; 2011. 797–813.
Визначення CS методом аналізу з диметилметиленовим синім
Ресуспендування клітин: осади CS у мікроцентрифужних пробірках ресуспендували в 0,5 ml розчину папаїну з концентрацією 0,1mg/ml у збалансованому сольовому розчині Генкса (HBSS), використовуючи імпульси ультразвукового сонотрода (UP 100H, Hielscher Ultrasonics GmbH, Німеччина) за циклу 1 та амплітуди 100 % протягом 3 sec. Після цього проводили розщеплення за 60 °C протягом 24 h.
Для імуноферментного аналізу (ELISA) клітини потім суспендували в дистильованій і деіонізованій воді за концентрації 106 клітин/ml та залишали на ніч у морозильній камері за –70°C для полегшення лізису клітин. Потім клітини гомогенізували ультразвуковою обробкою протягом 40 sec. за допомогою ультразвукового гомогенізатора тканин Hielscher UP100H.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Джерело / наукова публікація:
Vandrovcova et al. (2011): Вплив покриттів із колагену та хондроїтинсульфату (CS) на полі(лактид-ко-гліколіді) (PLGA) на остеобластоподібні клітини MG 63. Physiol. Res. 60; 2011. 797–813.
Клітини HaCaT
Застосування ультразвуку:
Лізис клітин HaCaT для імунопреципітації хроматину (ChIP): клітини HaCaT фіксували 1% формальдегідом протягом 10 хвилин за температури 37uC. Фіксовані клітини лізували в буфері RIPA та обробляли ультразвуком на льоду за допомогою ультразвукового пристрою потужністю 100W за амплітуди = 1 і робочого циклу = 100%, застосовуючи 12 однохвилинних (12 x 1 min.) імпульсів.
Рекомендований пристрій:
UP100H; протягом 12 min. на льоду,
Джерело / наукова публікація:
Zhang et al. (2007): Базонуклін регулює підмножину генів рибосомної РНК у клітинах HaCaT.
Лізис клітин HaCaT для імунопреципітації хроматину (ChIP): клітини HaCaT фіксували 1% формальдегідом протягом 10 хвилин за температури 37uC. Фіксовані клітини лізували в буфері RIPA та обробляли ультразвуком на льоду за допомогою ультразвукового пристрою потужністю 100W за амплітуди = 1 і робочого циклу = 100%, застосовуючи 12 однохвилинних (12 x 1 min.) імпульсів.
Рекомендований пристрій:
UP100H; протягом 12 min. на льоду,
Джерело / наукова публікація:
Zhang et al. (2007): Базонуклін регулює підмножину генів рибосомної РНК у клітинах HaCaT.
Гепарин: деполімеризація гепарину
Застосування ультразвуку:
Ультразвуковий метод дає змогу отримувати низькомолекулярний гепарин (LMWH). Для цього гепарин піддають радикальній деполімеризації, каталізованій пероксидом водню. Реакція відбувається дуже швидко й триває менше ніж 1 годину, а фізико-хімічний процес деполімеризації проходить за м’яких умов реакції, не потребує агресивних або токсичних реагентів і забезпечує отримання продукту без хімічних артефактів. Отже, ультразвуковий процес добре підходить для великомасштабного виробництва LMWH, а також аналогів, одержуваних із природних сульфатованих полісахаридів.
Методика ультразвукової обробки:
Для фізико-хімічної деполімеризації нефракціонованого гепарину шляхом радикальної деполімеризації за сприяння ультразвуку гепарин розчиняли у воді до кінцевої концентрації 25 mg/mL (5 mL). Реакційну суміш обробляли ультразвуком за допомогою зондового ультразвукового пристрою UP50H. Ультразвуковий пристрій був оснащений зондом (мікронаконечник MS3) діаметром 3mm, який забезпечував амплітуду 180μm. Процесор генерував механічні поздовжні коливання з частотою 30 kHz шляхом електричного збудження. Реакційну суміш підтримували за температури 60°C у реакторі Radleys®, а ультразвукові хвилі подавали імпульсами тривалістю 0,5sec, щоб запобігти нагріванню суміші. Аліквоту нульового моменту часу (250μl) відбирали з розчину перед початком реакції, яку запускали одночасним додаванням пероксиду водню та подаванням ультразвукових хвиль. Пероксид водню додавали для отримання кінцевого співвідношення пероксид водню/гепарин (w/w) 0,15 (3,75 mg/mL).
Рекомендований пристрій:
UP50H із сонотродом MS3
Джерело / наукова публікація:
Achour, Oussama; Bridiau, Nicolas; Godhbani, Azza; Le Joubioux, Florian; Bordenave Juchereau, Stephanie; Sannier, Fredéric; Piot, Jean-Marie; Fruitier Arnaudin, Ingrid; Maugard, Thierry (2013): Отримання низькомолекулярного гепарину (LMWH) з антикоагулянтною активністю за сприяння ультразвуку. Carbohydrate Polymers 97; 2013. 684–689.
Ультразвуковий метод дає змогу отримувати низькомолекулярний гепарин (LMWH). Для цього гепарин піддають радикальній деполімеризації, каталізованій пероксидом водню. Реакція відбувається дуже швидко й триває менше ніж 1 годину, а фізико-хімічний процес деполімеризації проходить за м’яких умов реакції, не потребує агресивних або токсичних реагентів і забезпечує отримання продукту без хімічних артефактів. Отже, ультразвуковий процес добре підходить для великомасштабного виробництва LMWH, а також аналогів, одержуваних із природних сульфатованих полісахаридів.
Методика ультразвукової обробки:
Для фізико-хімічної деполімеризації нефракціонованого гепарину шляхом радикальної деполімеризації за сприяння ультразвуку гепарин розчиняли у воді до кінцевої концентрації 25 mg/mL (5 mL). Реакційну суміш обробляли ультразвуком за допомогою зондового ультразвукового пристрою UP50H. Ультразвуковий пристрій був оснащений зондом (мікронаконечник MS3) діаметром 3mm, який забезпечував амплітуду 180μm. Процесор генерував механічні поздовжні коливання з частотою 30 kHz шляхом електричного збудження. Реакційну суміш підтримували за температури 60°C у реакторі Radleys®, а ультразвукові хвилі подавали імпульсами тривалістю 0,5sec, щоб запобігти нагріванню суміші. Аліквоту нульового моменту часу (250μl) відбирали з розчину перед початком реакції, яку запускали одночасним додаванням пероксиду водню та подаванням ультразвукових хвиль. Пероксид водню додавали для отримання кінцевого співвідношення пероксид водню/гепарин (w/w) 0,15 (3,75 mg/mL).
Рекомендований пристрій:
UP50H із сонотродом MS3
Джерело / наукова публікація:
Achour, Oussama; Bridiau, Nicolas; Godhbani, Azza; Le Joubioux, Florian; Bordenave Juchereau, Stephanie; Sannier, Fredéric; Piot, Jean-Marie; Fruitier Arnaudin, Ingrid; Maugard, Thierry (2013): Отримання низькомолекулярного гепарину (LMWH) з антикоагулянтною активністю за сприяння ультразвуку. Carbohydrate Polymers 97; 2013. 684–689.
Хміль
Застосування ультразвуку:
Екстракція активних сполук / отримання рослинних екстрактів у воді та етанолі.
Рекомендований пристрій:
UP400S
Екстракція активних сполук / отримання рослинних екстрактів у воді та етанолі.
Рекомендований пристрій:
UP400S
Лактобактерії (лізис і виділення ДНК різних штамів лактобактерій)
Застосування ультразвуку:
Штами Lactobacillus: L. pontis, L. sanfranciscensis, L. farciminis, L. panis, L. oris, L. vaginalis та L. reuteri, L. sp.
Методика: для виділення ДНК з окремих колоній розробили протокол ультразвукового лізису. Одну колонію (діаметром від 2 до 3 mm) суспендували в 100μl буфера для лізису (20 mM EDTA, 10 mM Tris [pH 7,9], 1% Triton X-100, 500 mM гуанідин-HCl, 250 mM NaCl). Клітини лізували шляхом ультразвукової обробки протягом 1 min за допомогою зондового ультразвукового пристрою UP50H. Після додавання 150μl холодного етанолу (-20°C) суміш центрифугували через спін-колонку з набору QIAamp для тканин і на завершення елюювали 60μl буфера (10 mM Tris [pH 7,5]).
Для швидкої та надійної ідентифікації окремих чистих культур ПЛР-аналіз поєднали зі швидкою процедурою виділення ДНК. Тривалих процедур ферментативного лізису та проблеми різної чутливості бактерій до лізоциму вдалося уникнути завдяки ультразвуковій обробці клітин із подальшим очищенням і концентруванням шляхом зв’язування ДНК із кремнеземною матрицею. Встановлено, що клітинного матеріалу однієї колонії достатньо для ПЛР.
Рекомендований пристрій:
UP50H
Джерело / наукова публікація:
Müller, M. R. A. (2000): Характеристика мікробної екосистеми ферментації зернових із використанням молекулярно-біологічних методів. Дисертація, Кельнський університет, 2000.
Штами Lactobacillus: L. pontis, L. sanfranciscensis, L. farciminis, L. panis, L. oris, L. vaginalis та L. reuteri, L. sp.
Методика: для виділення ДНК з окремих колоній розробили протокол ультразвукового лізису. Одну колонію (діаметром від 2 до 3 mm) суспендували в 100μl буфера для лізису (20 mM EDTA, 10 mM Tris [pH 7,9], 1% Triton X-100, 500 mM гуанідин-HCl, 250 mM NaCl). Клітини лізували шляхом ультразвукової обробки протягом 1 min за допомогою зондового ультразвукового пристрою UP50H. Після додавання 150μl холодного етанолу (-20°C) суміш центрифугували через спін-колонку з набору QIAamp для тканин і на завершення елюювали 60μl буфера (10 mM Tris [pH 7,5]).
Для швидкої та надійної ідентифікації окремих чистих культур ПЛР-аналіз поєднали зі швидкою процедурою виділення ДНК. Тривалих процедур ферментативного лізису та проблеми різної чутливості бактерій до лізоциму вдалося уникнути завдяки ультразвуковій обробці клітин із подальшим очищенням і концентруванням шляхом зв’язування ДНК із кремнеземною матрицею. Встановлено, що клітинного матеріалу однієї колонії достатньо для ПЛР.
Рекомендований пристрій:
UP50H
Джерело / наукова публікація:
Müller, M. R. A. (2000): Характеристика мікробної екосистеми ферментації зернових із використанням молекулярно-біологічних методів. Дисертація, Кельнський університет, 2000.
Lactobacillus acidophilus, грампозитивні
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Lactobacillus acidophilus Gr+ у молоці та соках.
Рекомендований пристрій:
UIP500hd
Джерело / наукова публікація:
Zenker, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Застосування термічної обробки за допомогою ультразвуку для консервування та збереження якості рідких харчових продуктів. J Food Prot 66/2003. С. 1642–1649.
Ультразвукова інактивація Lactobacillus acidophilus Gr+ у молоці та соках.
Рекомендований пристрій:
UIP500hd
Джерело / наукова публікація:
Zenker, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Застосування термічної обробки за допомогою ультразвуку для консервування та збереження якості рідких харчових продуктів. J Food Prot 66/2003. С. 1642–1649.
Legionella pneumophila, грампозитивні, у розведеному середовищі
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Legionella pneumophila Gr+ у розведеному середовищі.
Рекомендований пристрій:
UIP500hd
Джерело / наукова публікація:
Dadjour, M. F.; Ogino, C.; Matsumura, S.; Nakamura, S.; Shimizu N. (2006): Знезараження Legionella pneumophila ультразвуковою обробкою з TiO2. Water Res 40/2006. С.1137–1142.
Ультразвукова інактивація Legionella pneumophila Gr+ у розведеному середовищі.
Рекомендований пристрій:
UIP500hd
Джерело / наукова публікація:
Dadjour, M. F.; Ogino, C.; Matsumura, S.; Nakamura, S.; Shimizu N. (2006): Знезараження Legionella pneumophila ультразвуковою обробкою з TiO2. Water Res 40/2006. С.1137–1142.
Лейконосток мезентероїдес
Застосування ультразвуку:
Активність лізоциму лейкоцитів при мієлоцитарному лейкозі: клітинну суспензію обробляли ультразвуком протягом 15 min., а зразки аналізували на активність лізоциму. Визначали концентрацію лізоциму в лейкоцитах у ug./10 клітин.
Рекомендований пристрій:
UP50H
Активність лізоциму лейкоцитів при мієлоцитарному лейкозі: клітинну суспензію обробляли ультразвуком протягом 15 min., а зразки аналізували на активність лізоциму. Визначали концентрацію лізоциму в лейкоцитах у ug./10 клітин.
Рекомендований пристрій:
UP50H
Активність ізоферментів лейкоцитів при мієлоїдному лейкозі
Застосування ультразвуку:
Підготовка зразків: клітинну суспензію обробляли ультразвуком, а зразки аналізували на активність лізоциму. Визначали концентрацію лізоциму в лейкоцитах у ug/106.
Рекомендований пристрій:
UP200St
Підготовка зразків: клітинну суспензію обробляли ультразвуком, а зразки аналізували на активність лізоциму. Визначали концентрацію лізоциму в лейкоцитах у ug/106.
Рекомендований пристрій:
UP200St
Ліпосоми
Застосування ультразвуку:
Утворення SUVs
Натисніть тут, щоб дізнатися більше про ультразвукове приготування ліпосом!
Рекомендований пристрій:
UP50H; 3 цикли по 5 min; у крижаній бані.
Утворення SUVs
Натисніть тут, щоб дізнатися більше про ультразвукове приготування ліпосом!
Рекомендований пристрій:
UP50H; 3 цикли по 5 min; у крижаній бані.
Малахітовий зелений
Застосування ультразвуку:
Сонофотокаталітична деструкція малахітового зеленого (сильного бактерициду): сама лише фотокаталітична деструкція відбувається значно швидше за сонолітичну деструкцію; ефективність можна підвищити шляхом поєднання цих двох процесів. Малахітовий зелений, сильний бактерицид, є дуже екотоксичним для морських бактерій, проте він перетворюється на органічні сполуки, які є менш токсичними або нетоксичними.
Рекомендований пристрій:
UP400S
Сонофотокаталітична деструкція малахітового зеленого (сильного бактерициду): сама лише фотокаталітична деструкція відбувається значно швидше за сонолітичну деструкцію; ефективність можна підвищити шляхом поєднання цих двох процесів. Малахітовий зелений, сильний бактерицид, є дуже екотоксичним для морських бактерій, проте він перетворюється на органічні сполуки, які є менш токсичними або нетоксичними.
Рекомендований пристрій:
UP400S
Ацилювання мангіферину
Застосування ультразвуку:
Мангіферин (1,3,6,7-Tetrahydroxy-2-[3,4,5-trihydroxy-6-(hydroxymethyl)oxan-2-yl]xanthen-9-one; формула: C19H18O11) є поліфенолом зі структурою C-глікозилксантону, який трапляється в багатьох видах рослин. Мангіферин виявляє різноманітну фармакологічну активність. Регіоселективне ацилювання мангіферину може дуже ефективно каталізуватися ліпазою за ультразвукової обробки. Порівняно з традиційними методами каталіз за допомогою ультразвуку вирізняється такими перевагами, як коротший час реакції та вищий вихід. Оптимальні умови ультразвукового ацилювання мангіферину було визначено такими:
ліпаза: PCL, донор ацильної групи: вінілацетат; розчинник реакції: DMSO, температура реакції: 45 degC, потужність ультразвуку: 200W; співвідношення субстратів: донор ацильної групи/мангіферин 6/1, кількість ферменту: 6 mg/ml
Вихід регіоселективного ацилювання становив до 84%.
Рекомендований пристрій:
UP200St або UP200Ht
Джерело / наукова публікація:
пор.: Wang, Z.; Wang, R.; Tian, J.; Zhao, B; Wei, X.F.; Su, Y.L.; Li, C.Y.; Cao, S.G.; Wang, L. (2010): Вплив ультразвуку на регіоселективне ацилювання мангіферину, каталізоване ліпазою, у неводних розчинниках. J. Asian Nat Prod. Res. 12/1, 2010. 56–63.
Мангіферин (1,3,6,7-Tetrahydroxy-2-[3,4,5-trihydroxy-6-(hydroxymethyl)oxan-2-yl]xanthen-9-one; формула: C19H18O11) є поліфенолом зі структурою C-глікозилксантону, який трапляється в багатьох видах рослин. Мангіферин виявляє різноманітну фармакологічну активність. Регіоселективне ацилювання мангіферину може дуже ефективно каталізуватися ліпазою за ультразвукової обробки. Порівняно з традиційними методами каталіз за допомогою ультразвуку вирізняється такими перевагами, як коротший час реакції та вищий вихід. Оптимальні умови ультразвукового ацилювання мангіферину було визначено такими:
ліпаза: PCL, донор ацильної групи: вінілацетат; розчинник реакції: DMSO, температура реакції: 45 degC, потужність ультразвуку: 200W; співвідношення субстратів: донор ацильної групи/мангіферин 6/1, кількість ферменту: 6 mg/ml
Вихід регіоселективного ацилювання становив до 84%.
Рекомендований пристрій:
UP200St або UP200Ht
Джерело / наукова публікація:
пор.: Wang, Z.; Wang, R.; Tian, J.; Zhao, B; Wei, X.F.; Su, Y.L.; Li, C.Y.; Cao, S.G.; Wang, L. (2010): Вплив ультразвуку на регіоселективне ацилювання мангіферину, каталізоване ліпазою, у неводних розчинниках. J. Asian Nat Prod. Res. 12/1, 2010. 56–63.
Екстракція молекул
Застосування ультразвуку:
Протокол екстракції з гіпсу, rheolite, базальту, попелу edfell та обсидіанового скла:
Зразок реголіту або подрібненої гірської породи масою 1g піддають рідинній екстракції під дією ультразвуку для вилучення та солюбілізації цільових молекул. Для цього до 1g модельного зразка у скляній пробірці додавали 3ml MeOH P80 та обробляли ультразвуком протягом 20 хвилин за допомогою ультразвукового пристрою зондового типу UP50H з амплітудою, встановленою на 40%. Суміш залишали відстоюватися протягом 10 хвилин, а каламутну надосадову рідину, що утворилася над осадженим зразком-аналогом, декантували в центрифужні пробірки об’ємом 1,5 ml. Щоб мінімізувати втрату екстрагованих компонентів унаслідок адсорбції на поверхнях центрифужних пробірок із гідрофобного полімеру, пробірки попередньо блокували 0,5% (w/v) BSA у 100 mM HEPES із pH 7,4. Надосадові рідини освітлювали центрифугуванням при 17 000 G протягом 10 хвилин і зберігали при 2 – 8°C у скляних флаконах до проведення імунологічного аналізу.
Рекомендований пристрій:
UP50H
Джерело / наукова публікація:
Rix, C.(2012): Виявлення життя на Марсі та чип Life Marker Chip: аналізи на основі антитіл для виявлення органічних молекул у рідких екстрактах марсіанських зразків. Дисертація, Кренфілдський університет, 2012.
Протокол екстракції з гіпсу, rheolite, базальту, попелу edfell та обсидіанового скла:
Зразок реголіту або подрібненої гірської породи масою 1g піддають рідинній екстракції під дією ультразвуку для вилучення та солюбілізації цільових молекул. Для цього до 1g модельного зразка у скляній пробірці додавали 3ml MeOH P80 та обробляли ультразвуком протягом 20 хвилин за допомогою ультразвукового пристрою зондового типу UP50H з амплітудою, встановленою на 40%. Суміш залишали відстоюватися протягом 10 хвилин, а каламутну надосадову рідину, що утворилася над осадженим зразком-аналогом, декантували в центрифужні пробірки об’ємом 1,5 ml. Щоб мінімізувати втрату екстрагованих компонентів унаслідок адсорбції на поверхнях центрифужних пробірок із гідрофобного полімеру, пробірки попередньо блокували 0,5% (w/v) BSA у 100 mM HEPES із pH 7,4. Надосадові рідини освітлювали центрифугуванням при 17 000 G протягом 10 хвилин і зберігали при 2 – 8°C у скляних флаконах до проведення імунологічного аналізу.
Рекомендований пристрій:
UP50H
Джерело / наукова публікація:
Rix, C.(2012): Виявлення життя на Марсі та чип Life Marker Chip: аналізи на основі антитіл для виявлення органічних молекул у рідких екстрактах марсіанських зразків. Дисертація, Кренфілдський університет, 2012.
Осади печінки миші
Застосування ультразвуку:
Осади промивали й обробляли ультразвуком протягом 5 min із додатковими 0,5 mL LB2, а потім центрифугували при 12 000 g ще протягом 20 min, після чого збирали дві отримані фракції надосадової рідини. Насамкінець осади розчиняли в 0,5 mL буфера, що містив 40 mM трис-основи, 5 M сечовини, 2 M тіосечовини, 4% CHAPS, 100 mM DTT, 0,5% (v/v) biolyte 3-10 (LB3), обробляли ультразвуком і центрифугували при 12 000 g протягом 20 min.
Рекомендований пристрій:
UP200S; протягом 5min.
Джерело / наукова публікація:
Gazzana та ін. (2009): Оновлені відомості про протеом печінки миші.
Осади промивали й обробляли ультразвуком протягом 5 min із додатковими 0,5 mL LB2, а потім центрифугували при 12 000 g ще протягом 20 min, після чого збирали дві отримані фракції надосадової рідини. Насамкінець осади розчиняли в 0,5 mL буфера, що містив 40 mM трис-основи, 5 M сечовини, 2 M тіосечовини, 4% CHAPS, 100 mM DTT, 0,5% (v/v) biolyte 3-10 (LB3), обробляли ультразвуком і центрифугували при 12 000 g протягом 20 min.
Рекомендований пристрій:
UP200S; протягом 5min.
Джерело / наукова публікація:
Gazzana та ін. (2009): Оновлені відомості про протеом печінки миші.
Суспензія печінки миші
Застосування ультразвуку:
Гомогенізація зразка для отримання клітинного лізату.
Рекомендований пристрій:
UP200S; протягом 3 x 20 sec.
Джерело / наукова публікація:
Gazzana та ін. (2009): Оновлені відомості про протеом печінки миші.
Гомогенізація зразка для отримання клітинного лізату.
Рекомендований пристрій:
UP200S; протягом 3 x 20 sec.
Джерело / наукова публікація:
Gazzana та ін. (2009): Оновлені відомості про протеом печінки миші.
Пеніциліум дигітатум
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Penicillium digitatum (патогена рослин) у поживному середовищі Сабуро.
Рекомендований пристрій:
UP200St
Джерело / наукова публікація:
López-Malo, A.; Palou, E.; Jiménez-Fernández, M.; Alzamora, S. M.; Guerrero, S. (2005): Багатофакторна інактивація грибів шляхом поєднання термоультразвукової обробки та антимікробних засобів. J. Food Eng. 67/ 2005. с. 87–93.
Ультразвукова інактивація Penicillium digitatum (патогена рослин) у поживному середовищі Сабуро.
Рекомендований пристрій:
UP200St
Джерело / наукова публікація:
López-Malo, A.; Palou, E.; Jiménez-Fernández, M.; Alzamora, S. M.; Guerrero, S. (2005): Багатофакторна інактивація грибів шляхом поєднання термоультразвукової обробки та антимікробних засобів. J. Food Eng. 67/ 2005. с. 87–93.
Фікоціанін зі Spirulina platensis (Arthrospira platensis)
Застосування ультразвуку:
Екстракція фікоціаніну з клітин Spirulina platensis (Arthrospira platensis).
Рекомендований пристрій:
UP400S
Екстракція фікоціаніну з клітин Spirulina platensis (Arthrospira platensis).
Рекомендований пристрій:
UP400S
Рослинні клітини та тканини
Застосування ультразвуку:
Ущільнені рослинні клітини в концентрації 30% (W/V) у дистильованій воді руйнують ультразвуковою обробкою протягом 1–15 min.; дезінтеграція рослинної тканини: 1 g висушеної тканини, суспендованої у спирті, дезінтегрують ультразвуковою обробкою протягом приблизно 5 min.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Ущільнені рослинні клітини в концентрації 30% (W/V) у дистильованій воді руйнують ультразвуковою обробкою протягом 1–15 min.; дезінтеграція рослинної тканини: 1 g висушеної тканини, суспендованої у спирті, дезінтегрують ультразвуковою обробкою протягом приблизно 5 min.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Тромбоцити
Застосування ультразвуку:
Приготування лізату тромбоцитів: руйнування за 1–5 min.
Рекомендований пристрій:
UP200Ht
Приготування лізату тромбоцитів: руйнування за 1–5 min.
Рекомендований пристрій:
UP200Ht
Плевротус туберрегіум
Застосування ультразвуку:
Екстракція полісахаридів із їстівного гриба Pleurotus tuberregium
Рекомендований пристрій:
UP400S
Екстракція полісахаридів із їстівного гриба Pleurotus tuberregium
Рекомендований пристрій:
UP400S
Полі(молочна-ко-гліколева кислота) (PLGA)
Застосування ультразвуку:
Приготування полі(молочної-ко-гліколевої кислоти) (PLGA), навантаженої бичачим сироватковим альбуміном (BSA), шляхом ультразвукової обробки протягом 40 sec.
Рекомендований пристрій:
Dmini; протягом 40sec.
Джерело / наукова публікація:
Freitas та ін. (2005): Проточне ультразвукове емульгування в поєднанні зі статичним мікрозмішуванням для асептичного виробництва мікросфер методом екстракції розчинника.
Приготування полі(молочної-ко-гліколевої кислоти) (PLGA), навантаженої бичачим сироватковим альбуміном (BSA), шляхом ультразвукової обробки протягом 40 sec.
Рекомендований пристрій:
Dmini; протягом 40sec.
Джерело / наукова публікація:
Freitas та ін. (2005): Проточне ультразвукове емульгування в поєднанні зі статичним мікрозмішуванням для асептичного виробництва мікросфер методом екстракції розчинника.
Поліфеноли з яблук
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова екстракція поліфенолів із яблука. Розчинник: водний. Збільшення виходу на 6%; інтенсивність ультразвукової обробки: 20–75Ws/ml; температура процесу: нагрівання до 80 degC.
Рекомендований пристрій:
UIP2000hd
Джерело / наукова публікація:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвукове вилучення та модифікація харчових інгредієнтів. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для харчової промисловості та біопереробки. Нью-Йорк: Springer, 2011. с. 345–368.
Ультразвукова екстракція поліфенолів із яблука. Розчинник: водний. Збільшення виходу на 6%; інтенсивність ультразвукової обробки: 20–75Ws/ml; температура процесу: нагрівання до 80 degC.
Рекомендований пристрій:
UIP2000hd
Джерело / наукова публікація:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвукове вилучення та модифікація харчових інгредієнтів. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для харчової промисловості та біопереробки. Нью-Йорк: Springer, 2011. с. 345–368.
Поліфеноли з чорного чаю
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова екстракція поліфенолів із чорного чаю. Розчинник: водний. Збільшення виходу на 6–18%; інтенсивність ультразвукової обробки: 8–10Ws/ml; тиск навколишнього середовища, температура процесу: нагрівання до 90 degC.
Рекомендований пристрій:
UIP2000hd
Джерело / наукова публікація:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвукове вилучення та модифікація харчових інгредієнтів. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для харчової промисловості та біопереробки. Нью-Йорк: Springer, 2011. с. 345–368.
Ультразвукова екстракція поліфенолів із чорного чаю. Розчинник: водний. Збільшення виходу на 6–18%; інтенсивність ультразвукової обробки: 8–10Ws/ml; тиск навколишнього середовища, температура процесу: нагрівання до 90 degC.
Рекомендований пристрій:
UIP2000hd
Джерело / наукова публікація:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвукове вилучення та модифікація харчових інгредієнтів. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для харчової промисловості та біопереробки. Нью-Йорк: Springer, 2011. с. 345–368.
Поліфеноли з вичавок червоного винограду
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова екстракція поліфенолів із вичавок червоного винограду. Розчинник: водний. Збільшення виходу на 11–35%; інтенсивність ультразвукової обробки: 20–75Ws/ml; атмосферний тиск.
Рекомендований пристрій:
UIP2000hd
Джерело / наукова публікація:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвукове вилучення та модифікація харчових інгредієнтів. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для харчової промисловості та біопереробки. New York: Springer, 2011. с. 345–368.
Ультразвукова екстракція поліфенолів із вичавок червоного винограду. Розчинник: водний. Збільшення виходу на 11–35%; інтенсивність ультразвукової обробки: 20–75Ws/ml; атмосферний тиск.
Рекомендований пристрій:
UIP2000hd
Джерело / наукова публікація:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвукове вилучення та модифікація харчових інгредієнтів. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для харчової промисловості та біопереробки. New York: Springer, 2011. с. 345–368.
Поліфеноли, амінокислота та кофеїн із зеленого чаю
Застосування ультразвуку:
Екстракція активних сполук із зеленого чаю у воді
Рекомендований пристрій:
UP400S
Екстракція активних сполук із зеленого чаю у воді
Рекомендований пристрій:
UP400S
Свинина: засолювання корейки в розсолі
Застосування ультразвуку:
Для соління за допомогою ультразвуку свинячу корейку (Longissimus dorsi) занурювали в розсіл хлориду натрію (40 g L−1) та обробляли за температури 5°C низькочастотним ультразвуком (20 kHz) низької інтенсивності (2–4 W/cm−2). Досліджували вплив соління за допомогою ультразвуку на мікроструктуру свинячої тканини, денатурацію білків, водозв’язувальну здатність (WBC), водоутримувальну здатність (WHC), коефіцієнт дифузії хлориду натрію (D) та профіль текстури м’яса (TPA). Результати показали, що ультразвукова обробка спричиняла сприятливі мікроструктурні зміни в м’ясній тканині. Ультразвукова обробка поліпшувала водоутримувальну здатність і текстурні властивості порівняно як зі зразками, засоленими з масуванням у барабані, так і зі зразками, засоленими у статичних умовах. Однак ці позитивні ефекти значною мірою залежали від інтенсивності ультразвуку. Вища інтенсивність та/або триваліша обробка спричиняли денатурацію білків. Модель зі сталим коефіцієнтом дифузії давала змогу точно описати кінетику дифузії NaCl під час соління. Ультразвукова обробка значно посилювала дифузію солі порівняно зі зразками, засоленими у статичних умовах, а коефіцієнт дифузії експоненційно зростав зі збільшенням інтенсивності ультразвуку.
Рекомендований пристрій:
UP200Ht із сонотродом S26d40
Джерело / наукова публікація:
Siro, I.; Ven, Cs.; Balla, Cs.; Jonas, G.; Zeke, I.; Friedrich, L. (2009): Застосування технології соління за допомогою ультразвуку для поліпшення дифузії хлориду натрію у свинині. Журнал харчової інженерії 91/2, 2009. 353–362.
Для соління за допомогою ультразвуку свинячу корейку (Longissimus dorsi) занурювали в розсіл хлориду натрію (40 g L−1) та обробляли за температури 5°C низькочастотним ультразвуком (20 kHz) низької інтенсивності (2–4 W/cm−2). Досліджували вплив соління за допомогою ультразвуку на мікроструктуру свинячої тканини, денатурацію білків, водозв’язувальну здатність (WBC), водоутримувальну здатність (WHC), коефіцієнт дифузії хлориду натрію (D) та профіль текстури м’яса (TPA). Результати показали, що ультразвукова обробка спричиняла сприятливі мікроструктурні зміни в м’ясній тканині. Ультразвукова обробка поліпшувала водоутримувальну здатність і текстурні властивості порівняно як зі зразками, засоленими з масуванням у барабані, так і зі зразками, засоленими у статичних умовах. Однак ці позитивні ефекти значною мірою залежали від інтенсивності ультразвуку. Вища інтенсивність та/або триваліша обробка спричиняли денатурацію білків. Модель зі сталим коефіцієнтом дифузії давала змогу точно описати кінетику дифузії NaCl під час соління. Ультразвукова обробка значно посилювала дифузію солі порівняно зі зразками, засоленими у статичних умовах, а коефіцієнт дифузії експоненційно зростав зі збільшенням інтенсивності ультразвуку.
Рекомендований пристрій:
UP200Ht із сонотродом S26d40
Джерело / наукова публікація:
Siro, I.; Ven, Cs.; Balla, Cs.; Jonas, G.; Zeke, I.; Friedrich, L. (2009): Застосування технології соління за допомогою ультразвуку для поліпшення дифузії хлориду натрію у свинині. Журнал харчової інженерії 91/2, 2009. 353–362.
Порфіра єзоензіс
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова деструкція полісахаридів Porphyra yezoensis: 50mL розчину полісахаридів porphyra yezoensis з концентрацією 1,0 g/100mL (за сухою масою) обробляли ультразвуком протягом 4 hr за допомогою UP400S.
Рекомендований пристрій:
UP400S; імпульсний ультразвук (цикли: 2 sec увімкнено / 2 sec вимкнено) за температури 20°C.
Ультразвукова деструкція полісахаридів Porphyra yezoensis: 50mL розчину полісахаридів porphyra yezoensis з концентрацією 1,0 g/100mL (за сухою масою) обробляли ультразвуком протягом 4 hr за допомогою UP400S.
Рекомендований пристрій:
UP400S; імпульсний ультразвук (цикли: 2 sec увімкнено / 2 sec вимкнено) за температури 20°C.
Порошки
Застосування ультразвуку:
Подрібнення, деагломерація та диспергування до малого, відносно однорідного розміру частинок.
Рекомендований пристрій:
UP200St
Подрібнення, деагломерація та диспергування до малого, відносно однорідного розміру частинок.
Рекомендований пристрій:
UP200St
Кістки щура
Печінка щура
Застосування ультразвуку:
Руйнування та гомогенізація тканини за допомогою UP400S.
Рекомендований пристрій:
UP400S; 3 рази по 30 sec.; на льоду.
Джерело / наукова публікація:
Oh та ін. (2003): Ген ацетил-КоА-карбоксилази регулюється в печінці білком-1, що зв’язується зі стерол-регуляторним елементом. Journal of Biological Chemistry 2003.
Руйнування та гомогенізація тканини за допомогою UP400S.
Рекомендований пристрій:
UP400S; 3 рази по 30 sec.; на льоду.
Джерело / наукова публікація:
Oh та ін. (2003): Ген ацетил-КоА-карбоксилази регулюється в печінці білком-1, що зв’язується зі стерол-регуляторним елементом. Journal of Biological Chemistry 2003.
Шкіра щура
Раувольфія зміїна
Ребаудіозид A
Застосування ультразвуку:
Зразки сухого подрібненого листя стевії масою 10g екстрагували у 100mL води за безперервного перемішування (магнітною мішалкою). Значення pH контролювали за допомогою 0,01 M фосфату натрію з pH 7. Зразок поміщали у скляний лабораторний стакан об’ємом 150 mL та обробляли ультразвуком за допомогою ультразвукового пристрою зондового типу (UIP500hd, 20kHz, 500W). Кінчик сонотрода занурювали приблизно на 1,5 cm у суспензію листя стевії. Ультразвуковий пристрій налаштовували на вихідну потужність 350W. М’яка ультразвукова обробка за потужності 350 W протягом 5–10 min. за сталої температури процесу 30°C забезпечувала вихід ребаудіозиду A 30–34g на 100g зразка. Після ультразвукової обробки розчин екстракту центрифугували та фільтрували крізь мікропористу мембрану 0,45 μm; фільтрат відбирали для аналізу загального вмісту ребаудіозиду A. Вихід екстракції за загальним вмістом ребаудіозиду A аналізували методом високоефективної рідинної хроматографії (ВЕРХ).
За допомогою ультразвукової екстракції без розчинника отримували високий вихід ребаудіозиду A порівняно з традиційними методами екстракції, такими як теплова екстракція або мацерація.
Рекомендований пристрій:
UIP500hd
Зразки сухого подрібненого листя стевії масою 10g екстрагували у 100mL води за безперервного перемішування (магнітною мішалкою). Значення pH контролювали за допомогою 0,01 M фосфату натрію з pH 7. Зразок поміщали у скляний лабораторний стакан об’ємом 150 mL та обробляли ультразвуком за допомогою ультразвукового пристрою зондового типу (UIP500hd, 20kHz, 500W). Кінчик сонотрода занурювали приблизно на 1,5 cm у суспензію листя стевії. Ультразвуковий пристрій налаштовували на вихідну потужність 350W. М’яка ультразвукова обробка за потужності 350 W протягом 5–10 min. за сталої температури процесу 30°C забезпечувала вихід ребаудіозиду A 30–34g на 100g зразка. Після ультразвукової обробки розчин екстракту центрифугували та фільтрували крізь мікропористу мембрану 0,45 μm; фільтрат відбирали для аналізу загального вмісту ребаудіозиду A. Вихід екстракції за загальним вмістом ребаудіозиду A аналізували методом високоефективної рідинної хроматографії (ВЕРХ).
За допомогою ультразвукової екстракції без розчинника отримували високий вихід ребаудіозиду A порівняно з традиційними методами екстракції, такими як теплова екстракція або мацерація.
Рекомендований пристрій:
UIP500hd
Рисовий крохмаль
Застосування ультразвуку:
Руйнування, виділення крохмалю та розрив нековалентних зв’язків між білком і крохмалем у суспензії рисового борошна (33%) за 20 – 40 min.
Рекомендований пристрій:
UP500hd; 20 – 40 min.
Руйнування, виділення крохмалю та розрив нековалентних зв’язків між білком і крохмалем у суспензії рисового борошна (33%) за 20 – 40 min.
Рекомендований пристрій:
UP500hd; 20 – 40 min.
Коловертки
Застосування ультразвуку:
Руйнування клітин мезозоопланктону: ультразвукова обробка за таких умов – чотири значення об’ємної витрати (200, 400, 520 і 800lh-1) та чотири значення амплітуди (25, 50, 75 і 100%) – забезпечила загибель від 58 до 85% організмів.
Рекомендований пристрій:
UP2000 з проточною коміркою
Джерело / Наукова публікація:
Viitaslo та ін. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і пероксид водню як засоби обробки баластної води – експерименти з мезозоопланктоном у солонуватій воді з низькою солоністю. Journal of Marine Environmental Engineering, 8(1), 35–55.
Руйнування клітин мезозоопланктону: ультразвукова обробка за таких умов – чотири значення об’ємної витрати (200, 400, 520 і 800lh-1) та чотири значення амплітуди (25, 50, 75 і 100%) – забезпечила загибель від 58 до 85% організмів.
Рекомендований пристрій:
UP2000 з проточною коміркою
Джерело / Наукова публікація:
Viitaslo та ін. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і пероксид водню як засоби обробки баластної води – експерименти з мезозоопланктоном у солонуватій воді з низькою солоністю. Journal of Marine Environmental Engineering, 8(1), 35–55.
С. фрагіліс
Сахароміцес церевізіє
Застосування ультразвуку:
Руйнування
Рекомендований пристрій:
UP400S
Джерело / Наукова публікація:
Guerrero, S,; López-Malo, A.; Alzamora, S. M. (2001): Вплив ультразвуку на виживання Saccharomyces cerevisiae: вплив температури, pH та амплітуди. Innov. Food Sci. Emerg Technol. 2/2001. с. 31–39.
Руйнування
Рекомендований пристрій:
UP400S
Джерело / Наукова публікація:
Guerrero, S,; López-Malo, A.; Alzamora, S. M. (2001): Вплив ультразвуку на виживання Saccharomyces cerevisiae: вплив температури, pH та амплітуди. Innov. Food Sci. Emerg Technol. 2/2001. с. 31–39.
Сахароміцес церевізіє
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Saccharomyces cerevisiae у поживному середовищі Сабуро та у фізіологічному розчині.
Рекомендований пристрій:
UP400S
Джерело / Наукова публікація:
Yap, A.; Jiranek, V.; Grbin, P.; Barnes, M.; Bates, D. (2007): Дослідження застосування ультразвуку високої потужності для очищення та дезінфекції бочок і дощок. Austr. NZ Wine Indust. J. 22(3)/ 2007. с. 96–104.
Ультразвукова інактивація Saccharomyces cerevisiae у поживному середовищі Сабуро та у фізіологічному розчині.
Рекомендований пристрій:
UP400S
Джерело / Наукова публікація:
Yap, A.; Jiranek, V.; Grbin, P.; Barnes, M.; Bates, D. (2007): Дослідження застосування ультразвуку високої потужності для очищення та дезінфекції бочок і дощок. Austr. NZ Wine Indust. J. 22(3)/ 2007. с. 96–104.
Шафран, Crocus sativus
Застосування ультразвуку:
Екстракція активних сполук (смакоароматичних і забарвлювальних речовин).
Натисніть тут, щоб дізнатися більше про екстракцію із шафрану!
Рекомендований пристрій:
UP50H
Джерело / Наукова публікація:
Kadkhodaee та ін. (2007): Ультразвукова екстракція активних сполук із шафрану. Acta Hortic. 739, 2007. 417–425.
Екстракція активних сполук (смакоароматичних і забарвлювальних речовин).
Натисніть тут, щоб дізнатися більше про екстракцію із шафрану!
Рекомендований пристрій:
UP50H
Джерело / Наукова публікація:
Kadkhodaee та ін. (2007): Ультразвукова екстракція активних сполук із шафрану. Acta Hortic. 739, 2007. 417–425.
Salmonella Senftenberg 775W, грамнегативні
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Salmonella Senftenberg 775W Gr- у цитратно-фосфатному буфері McIlvaine або поживному бульйоні.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Джерело / Наукова публікація:
Álvarez, I.; Manas, P.; Virto, R.; Condón, S. (2006): Інактивація Salmonella Senftenberg 775W ультразвуковими хвилями під тиском за різних значень активності води. Int. J. Food Microbiol. 108/2006. с. 218–225.
Ультразвукова інактивація Salmonella Senftenberg 775W Gr- у цитратно-фосфатному буфері McIlvaine або поживному бульйоні.
Рекомендований пристрій:
UP100H
Джерело / Наукова публікація:
Álvarez, I.; Manas, P.; Virto, R.; Condón, S. (2006): Інактивація Salmonella Senftenberg 775W ультразвуковими хвилями під тиском за різних значень активності води. Int. J. Food Microbiol. 108/2006. с. 218–225.
Шавлія червонокоренева Бунге
Застосування ультразвуку:
Екстракція біологічно активних сполук: натрієвої солі Danshensu та чотирьох таншинонів (dihydrotanshione I, таншинону I, криптотаншинону та таншинону IIA).
Рекомендований пристрій:
UP100H
Екстракція біологічно активних сполук: натрієвої солі Danshensu та чотирьох таншинонів (dihydrotanshione I, таншинону I, криптотаншинону та таншинону IIA).
Рекомендований пристрій:
UP100H
Шавлія лікарська
Застосування ультразвуку:
Екстракція активних сполук із Salvia Officinalis (шавлії) менш ніж за 2hr.
Рекомендований пристрій:
UP50H
Екстракція активних сполук із Salvia Officinalis (шавлії) менш ніж за 2hr.
Рекомендований пристрій:
UP50H
Сироватка
Печінка та легені овець із кістами й кров із позитивним результатом аналізу (антигени Echinococcus granulosus)
Застосування ультразвуку:
Уражені кістами печінка й легені овець та кров із позитивним результатом аналізу (антигени Echinococcus granulosus у ягнят): потім зразок обробляли ультразвуком протягом 2 × 15 sec на льоду, доки не залишалося видимих неушкоджених протосколексів.
Рекомендований пристрій:
UP200S; 2 x 15 sec.
Джерело / Наукова публікація:
Tabar та ін. (2009): Антитільна відповідь на антигени гідатидної рідини, протосколекса та цілого тіла Echinococcus granulosus у ягнят. Journal of Veterinary Research, том 10, випуск 3; 2009. 283–288.
Уражені кістами печінка й легені овець та кров із позитивним результатом аналізу (антигени Echinococcus granulosus у ягнят): потім зразок обробляли ультразвуком протягом 2 × 15 sec на льоду, доки не залишалося видимих неушкоджених протосколексів.
Рекомендований пристрій:
UP200S; 2 x 15 sec.
Джерело / Наукова публікація:
Tabar та ін. (2009): Антитільна відповідь на антигени гідатидної рідини, протосколекса та цілого тіла Echinococcus granulosus у ягнят. Journal of Veterinary Research, том 10, випуск 3; 2009. 283–288.
Тріолеат сорбітану, етанол (як розчинник) і порошок Bi-2212
Застосування ультразвуку:
Деагломерація суспензії, що містить диспергатор Sorbitant Trioleate, етанол (як розчинник) і порошок Bi-2212.
Рекомендований пристрій:
UP200S; протягом 3 min.
Джерело / наукова публікація:
Mora та ін. (2009): Виготовлення надпровідних покриттів на будівельних керамічних плитках.
Деагломерація суспензії, що містить диспергатор Sorbitant Trioleate, етанол (як розчинник) і порошок Bi-2212.
Рекомендований пристрій:
UP200S; протягом 3 min.
Джерело / наукова публікація:
Mora та ін. (2009): Виготовлення надпровідних покриттів на будівельних керамічних плитках.
Ізофлавони сої
Застосування ультразвуку:
ультразвукова екстракція ізофлавонів сої у воді та розчиннику. Підвищення виходу до 15% завдяки підвищенню ефективності екстракції.
Рекомендований пристрій:
UP200St
Джерело / наукова публікація:
Rostagno та ін. (2003), цитовано за Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвукове вилучення та модифікація харчових інгредієнтів. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для харчової промисловості та біопереробки. Нью-Йорк: Springer, 2011. с. 345–368.
ультразвукова екстракція ізофлавонів сої у воді та розчиннику. Підвищення виходу до 15% завдяки підвищенню ефективності екстракції.
Рекомендований пристрій:
UP200St
Джерело / наукова публікація:
Rostagno та ін. (2003), цитовано за Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвукове вилучення та модифікація харчових інгредієнтів. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для харчової промисловості та біопереробки. Нью-Йорк: Springer, 2011. с. 345–368.
Соєвий білок
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова екстракція соєвого білка у воді та лузі (гідроксиді натрію). Підвищення виходу на 53%. Ультразвукова обробка в потоці виявилася ефективнішою за періодичну екстракцію (ультразвукова обробка в потоці забезпечила на 23% вищий вихід, ніж періодична ультразвукова обробка).
Рекомендований пристрій:
UIP1000hd для періодичної обробки / обробки в хімічному стакані та з реактором із проточною коміркою для ультразвукової обробки в потоці.
Джерело / наукова публікація:
Moulton і Wang (1982), цитовано за Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвукове вилучення та модифікація харчових інгредієнтів. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для харчової промисловості та біопереробки. Нью-Йорк: Springer, 2011. с. 345–368.
Ультразвукова екстракція соєвого білка у воді та лузі (гідроксиді натрію). Підвищення виходу на 53%. Ультразвукова обробка в потоці виявилася ефективнішою за періодичну екстракцію (ультразвукова обробка в потоці забезпечила на 23% вищий вихід, ніж періодична ультразвукова обробка).
Рекомендований пристрій:
UIP1000hd для періодичної обробки / обробки в хімічному стакані та з реактором із проточною коміркою для ультразвукової обробки в потоці.
Джерело / наукова публікація:
Moulton і Wang (1982), цитовано за Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ультразвукове вилучення та модифікація харчових інгредієнтів. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для харчової промисловості та біопереробки. Нью-Йорк: Springer, 2011. с. 345–368.
Головки сперматозоїдів людини
Хвости сперматозоїдів людини
Стевія Ребоді (Бертоні)
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова екстракція глікозиду стевіозиду зі зразків сухого листя Stevia rebaudiana масою 10 g із чотирма розмірами частинок (0,315 mm, 2 mm, 6,3 mm та подрібнене сухе листя): зразки змішували з різними розчинниками – дистильованою водою та сумішами води й етанолу (55% і 70%) – за різних співвідношень маси зразка до об’єму розчинника: 1/10, 1/8, 1/5 (w/v), а потім піддавали дії ультразвуку за кімнатної температури. Тривалість ультразвукової обробки: < 5 min.
Рекомендований пристрій:
UP200St
Ультразвукова екстракція глікозиду стевіозиду зі зразків сухого листя Stevia rebaudiana масою 10 g із чотирма розмірами частинок (0,315 mm, 2 mm, 6,3 mm та подрібнене сухе листя): зразки змішували з різними розчинниками – дистильованою водою та сумішами води й етанолу (55% і 70%) – за різних співвідношень маси зразка до об’єму розчинника: 1/10, 1/8, 1/5 (w/v), а потім піддавали дії ультразвуку за кімнатної температури. Тривалість ультразвукової обробки: < 5 min.
Рекомендований пристрій:
UP200St
Зв’яжіться з нами! / Запитайте нас!
Високопродуктивні ультразвукові пристрої для будь-яких масштабів
Руйнівники клітин і гомогенізатори тканин Hielscher Ultrasonics доступні в будь-якому розмірі для будь-якого об’єму. Незалежно від того, чи потрібно вам обробляти ультразвуком невеликі зразки, велику кількість зразків, наприклад у 96-лункових планшетах, середні об’єми або цілі вантажівки матеріалу за годину, у нашому асортименті є ідеальний ультразвуковий пристрій для вашого застосування. Компактні ручні ультразвукові гомогенізатори оптимально підходять для лабораторних робіт і досліджень, тоді як наша промислова серія охоплює весь діапазон від 0,5kW до 16kW на один ультразвуковий процесор. Завдяки можливості об’єднання в кластери ультразвукові пристрої Hielscher дають змогу обробляти практично будь-який об’єм. Надійність ультразвукового обладнання Hielscher забезпечує роботу в режимі 24/7 за високих навантажень і в складних умовах.
Удосконалене інтелектуальне програмне забезпечення забезпечує найвищий рівень контролю процесу та зручності для оператора. Усі дані ультразвукової обробки автоматично записуються на вбудовану SD-карту. Інші інтелектуальні функції включають попереднє налаштування та збереження параметрів ультразвукової обробки, підключення до локальної мережі LAN і дистанційне керування через браузер.
Наведена нижче таблиця дає уявлення про приблизну продуктивність наших лабораторних ультразвукових пристроїв для гомогенізації тканин та інших завдань підготовки зразків:
| Рекомендовані пристрої | Об’єм партії | Об’ємна витрата |
|---|---|---|
| Ультразвуковий пристрій UIP400MTP для 96-лункових планшетів | багатолункові / мікротитрувальні планшети | n.a. |
| Ультразвуковий CupHorn | CupHorn для флаконів або хімічного стакана | n.a. |
| GDmini2 | ультразвуковий мікропроточний реактор | n.a. |
| VialTweeter | від 0,5 до 1,5mL | n.a. |
| UP100H | від 1 до 500mL | від 10 до 200mL/min |
| UP200Ht, UP200St | від 10 до 1000mL | від 20 до 200mL/min |
| UP400St | від 10 до 2000mL | від 20 до 400mL/min |
| Ультразвуковий ситовий струшувач | n.a. | n.a. |
Ультразвуковий пристрій UP200Ht з мікронаконечником S26d2 діаметром 2mm для ультразвукової обробки малих зразків