Як використовувати ультразвукові тканинні гомогенізатори Hielscher
Перш ніж очищати або характеризувати внутрішньоклітинні макромолекули, такі як білки, органели, ферменти або активні сполуки, важливо використовувати ефективний метод лізису тканин і розпаду клітин. Ультразвук є високоефективним методом підготовки клітин, що швидко вивільняє внутрішньоклітинні матеріали в буферний розчин. Механічні зсувні сили, що виникають під час ультразвукової гомогенізації тканин, можна точно налаштувати відповідно до конкретних матеріалів. Це дозволяє проводити делікатне препарування м'яких тканин або зріз ДНК/РНК з більш легким ультразвуковим звуком, а також інтенсивну ультразвукову кавітацію для руйнівного руйнування клітин (наприклад, для наннохлоропсису, дріжджів).
Нижче наведено вибір тканин, клітин та іншої біологічної речовини з рекомендованими протоколами ультразвуку та рекомендаціями щодо ефективної підготовки ваших зразків за допомогою ультразвукового гомогенізатора тканин або дробарки клітин.
Лабораторний ультразвуковий апарат UP200Ht (200 Вт, 26 кГц) для завдань з підготовки зразків
Як приготувати лізати, гомогенати та екстракти з біологічних матеріалів
В алфавітному порядку:
Acetobacter suboxydans
Актиноміцети (Actinomyces)
Активність ЛФ та ЛДГ
Застосування ультразвуку:
Визначення активності ЛФ і ЛДГ та вмісту білка
Заморожені зразки клітин розморожували протягом 20 хв на льоду з подальшим лізисом клітин з PBS, що містив 1% Triton X-100, протягом 50 хв на льоду. Під час лізису клітин кожен зразок піддавався ультразвуковому дослідженню протягом 1 хв при потужності 80 Вт за допомогою ультразвукового процесора UP100H (Ультразвук Хілшера).
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Довідкова / Наукова робота:
Бернхардт, А. та ін. (2008): Мінералізований колаген - штучний позаклітинний кістковий матрикс - покращує остеогенну диференціацію стромальних клітин кісткового мозку.
Визначення активності ЛФ і ЛДГ та вмісту білка
Заморожені зразки клітин розморожували протягом 20 хв на льоду з подальшим лізисом клітин з PBS, що містив 1% Triton X-100, протягом 50 хв на льоду. Під час лізису клітин кожен зразок піддавався ультразвуковому дослідженню протягом 1 хв при потужності 80 Вт за допомогою ультразвукового процесора UP100H (Ультразвук Хілшера).
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Довідкова / Наукова робота:
Бернхардт, А. та ін. (2008): Мінералізований колаген - штучний позаклітинний кістковий матрикс - покращує остеогенну диференціацію стромальних клітин кісткового мозку.
Аморфний трикальцій фосфат (АТСФ)
Застосування ультразвуку:
Наночастинки ATCP, які є виключно реактивним попередником для утворення гідроксиапатиту, були дисперговані в хлороформі, що містить 5 % (w/w) Tween20, віднесеного до PLGA, за допомогою ультразвукового пристрою Hielscher UP400S на потужності 320 Вт протягом 5 хв. із застосуванням імпульсних інтервалів (50%) для забезпечення релаксації частинок.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Довідкова / Наукова робота:
Мон, Дірк; Еге, Дуйгу; Фельдман, Кирифл; Шнайдер, Олівер Д.; Імфельд, Томас; Боккаччіні, Альдо Р. (2014): Сферичні наповнювачі наночастинок фосфату кальцію дозволяють обробляти полімерами апарати для фіксації кісток з високою біоактивністю. Безкоштовна бібліотека 01 травня 2010 року. 21 січня 2014 року.
Наночастинки ATCP, які є виключно реактивним попередником для утворення гідроксиапатиту, були дисперговані в хлороформі, що містить 5 % (w/w) Tween20, віднесеного до PLGA, за допомогою ультразвукового пристрою Hielscher UP400S на потужності 320 Вт протягом 5 хв. із застосуванням імпульсних інтервалів (50%) для забезпечення релаксації частинок.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Довідкова / Наукова робота:
Мон, Дірк; Еге, Дуйгу; Фельдман, Кирифл; Шнайдер, Олівер Д.; Імфельд, Томас; Боккаччіні, Альдо Р. (2014): Сферичні наповнювачі наночастинок фосфату кальцію дозволяють обробляти полімерами апарати для фіксації кісток з високою біоактивністю. Безкоштовна бібліотека 01 травня 2010 року. 21 січня 2014 року.
антоціани
Застосування ультразвуку:
Антоціани: ди-глюкозиди, моноглюкозиди, ацильовані моноглюкозиди та ацильовані ди-глюкозиди пеонідину, мальвідину, ціанідину, петунідину та дельфінідину:екстракція зі шкірки винограду за 40 сек.; рН 5,0; Співвідношення матеріалу/розчинника для екстракції 1:6.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Антоціани: ди-глюкозиди, моноглюкозиди, ацильовані моноглюкозиди та ацильовані ди-глюкозиди пеонідину, мальвідину, ціанідину, петунідину та дельфінідину:екстракція зі шкірки винограду за 40 сек.; рН 5,0; Співвідношення матеріалу/розчинника для екстракції 1:6.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Антрахінони
Застосування ультразвуку:
Екстракція антрахінонів з коренів Morinda citrifolia
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Екстракція антрахінонів з коренів Morinda citrifolia
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Кісточки абрикоса
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова попередня обробка перед екстракцією олії з насіння Jatropha curcas L. для покращення екстракції.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Ультразвукова попередня обробка перед екстракцією олії з насіння Jatropha curcas L. для покращення екстракції.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Artemisia selengensis Turcz
Застосування ультразвуку:
Екстракція рутину (1,0 г подрібненого зразка в 30 мл метанолу) при 25 ° C за 5-10 хв.
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H
Екстракція рутину (1,0 г подрібненого зразка в 30 мл метанолу) при 25 ° C за 5-10 хв.
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H
Aspergillus flavus
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Aspergillus flavus у середовищі росту Сабуро
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S
Ультразвукова інактивація Aspergillus flavus у середовищі росту Сабуро
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S
B. sphaericus / Bacillus sphaericus
Спори Bacillus anthracis sterne 34F2
Застосування ультразвуку:
Ультразвукове видалення спор Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 та Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Використання 150 ppm гіпохлориту натрію разом з ультразвуком призвело до інактивації спор.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S при 100% амплітуді
Довідкова / Наукова робота:
Памарті, С.Р. та ін.: Ефективність ультразвуку при знезараженні спор Bacillus spp, вбудованих у складні харчові матриці, прикріплені до різних контактних поверхонь.
Ультразвукове видалення спор Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 та Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Використання 150 ppm гіпохлориту натрію разом з ультразвуком призвело до інактивації спор.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S при 100% амплітуді
Довідкова / Наукова робота:
Памарті, С.Р. та ін.: Ефективність ультразвуку при знезараженні спор Bacillus spp, вбудованих у складні харчові матриці, прикріплені до різних контактних поверхонь.
Спори Bacillus cereus ATCC 21281
Застосування ультразвуку:
Ультразвукове видалення спор Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 та Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Використання 150 ppm гіпохлориту натрію разом з ультразвуком призвело до інактивації спор.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S при 100% амплітуді
Довідкова / Наукова робота:
Памарті, С.Р. та ін.: Ефективність ультразвуку при знезараженні спор Bacillus spp, вбудованих у складні харчові матриці, прикріплені до різних контактних поверхонь.
Ультразвукове видалення спор Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 та Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Використання 150 ppm гіпохлориту натрію разом з ультразвуком призвело до інактивації спор.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S при 100% амплітуді
Довідкова / Наукова робота:
Памарті, С.Р. та ін.: Ефективність ультразвуку при знезараженні спор Bacillus spp, вбудованих у складні харчові матриці, прикріплені до різних контактних поверхонь.
Bacillus subtilis
Застосування ультразвуку:
Ультразвук високої потужності та низької частоти в малих обсягах бактеріальної суспензії призводить до безперервного зниження кількості бактеріальних клітин, тобто переважає частота загибелі. У великих обсягах ультразвукова діагностика призводить до початкового збільшення кількості клітин, що свідчить про злипання бактерій, але потім це початкове зростання знижується, коли дезкумація закінчується, і швидкість загибелі стає більш важливою.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200St
Довідкова / Наукова робота:
Джойс, Е.; Пхулл, С. С.; Лорімер, Дж. Мейсон, Т. Д. (2003): Розробка та оцінка ультразвуку для лікування бактеріальних суспензій. Дослідження частоти, потужності та часу ультразвуку на культивованих видах Bacillus. Ультразвук. Сонохім. 10/2003. Р. 315-318.
Ультразвук високої потужності та низької частоти в малих обсягах бактеріальної суспензії призводить до безперервного зниження кількості бактеріальних клітин, тобто переважає частота загибелі. У великих обсягах ультразвукова діагностика призводить до початкового збільшення кількості клітин, що свідчить про злипання бактерій, але потім це початкове зростання знижується, коли дезкумація закінчується, і швидкість загибелі стає більш важливою.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200St
Довідкова / Наукова робота:
Джойс, Е.; Пхулл, С. С.; Лорімер, Дж. Мейсон, Т. Д. (2003): Розробка та оцінка ультразвуку для лікування бактеріальних суспензій. Дослідження частоти, потужності та часу ультразвуку на культивованих видах Bacillus. Ультразвук. Сонохім. 10/2003. Р. 315-318.
Barley's Alpha-amylase
Застосування ультразвуку:
Стимуляція або пригнічення активності альфа-амілази ячменю: зразок (10 г насіння ячменю) диспергували в 80 мл водопровідної води при прямому ультразвуковому дослідженні інтенсивністю 20, 60 і 100% амплітуди, циле 50% і з додатковим перемішуванням. Сонотрон занурювали в розчин приблизно на 9 мм. Розчин обробляють при постійній температурі 30С° протягом 5, 10 і 15 хв.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S, амплітуди: 20, 60 і 100%; cyle 50%; Сонотрод S3, 30С°.
Довідкова / Наукова робота:
Yaldagard et al. (2008): Вплив ультразвукової енергії на активність альфа-амілази ячменю при післяпосівній обробці насіння
Стимуляція або пригнічення активності альфа-амілази ячменю: зразок (10 г насіння ячменю) диспергували в 80 мл водопровідної води при прямому ультразвуковому дослідженні інтенсивністю 20, 60 і 100% амплітуди, циле 50% і з додатковим перемішуванням. Сонотрон занурювали в розчин приблизно на 9 мм. Розчин обробляють при постійній температурі 30С° протягом 5, 10 і 15 хв.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S, амплітуди: 20, 60 і 100%; cyle 50%; Сонотрод S3, 30С°.
Довідкова / Наукова робота:
Yaldagard et al. (2008): Вплив ультразвукової енергії на активність альфа-амілази ячменю при післяпосівній обробці насіння
Наупліі вусоногих
Застосування ультразвуку:
Руйнування клітин / знищення мезозоопланктону: шляхом ультразвукування в наступних умовах чотирьох швидкостей потоку (200, 400, 520 і 800 lh-1) і чотирьох амплітуд (25, 50, 75 і 100 %) було досягнуто коефіцієнта знищення від 61 до 97 %.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP2000hd
Довідкова / Наукова робота:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і перекис водню як очищення баластних вод – Досліди з мезозоопланктоном в слабосолоно-солонуватою воді.
Руйнування клітин / знищення мезозоопланктону: шляхом ультразвукування в наступних умовах чотирьох швидкостей потоку (200, 400, 520 і 800 lh-1) і чотирьох амплітуд (25, 50, 75 і 100 %) було досягнуто коефіцієнта знищення від 61 до 97 %.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP2000hd
Довідкова / Наукова робота:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і перекис водню як очищення баластних вод – Досліди з мезозоопланктоном в слабосолоно-солонуватою воді.
Штами біфідобактерій: B. breve ATCC 15700, B. animalis subsp. Lactis (BB-12), B. longum (BB-46)
Застосування ультразвуку:
Руйнування клітин бактерій та вивільнення ß-галактозидази зі штамів біфідобактерій: B. breve ATCC 15700, B. animalis subsp. Lactis (BB-12), B. longum (BB-46): 100 мл пастеризованого молока, змішаного з культурою бактерій, вводили за допомогою ультразвуку. Кавітація викликає руйнування бактеріальних клітин і в той же час вивільнення ß-галактозидази.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP1000hd: амплітуда: 10%, потужність: 80 Вт, амплітуда: 100%, потужність: 200 Вт; Сонотроде БС2д34; 15-30 хв.
Довідкова / Наукова робота:
Hung et al. (2009): Ферментація йогурту за допомогою ультразвуку з пробіотиками.
Руйнування клітин бактерій та вивільнення ß-галактозидази зі штамів біфідобактерій: B. breve ATCC 15700, B. animalis subsp. Lactis (BB-12), B. longum (BB-46): 100 мл пастеризованого молока, змішаного з культурою бактерій, вводили за допомогою ультразвуку. Кавітація викликає руйнування бактеріальних клітин і в той же час вивільнення ß-галактозидази.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP1000hd: амплітуда: 10%, потужність: 80 Вт, амплітуда: 100%, потужність: 200 Вт; Сонотроде БС2д34; 15-30 хв.
Довідкова / Наукова робота:
Hung et al. (2009): Ферментація йогурту за допомогою ультразвуку з пробіотиками.
BL21(DE3) клітини pAtHNL (клітини Arabidopsis thaliana)
Застосування ультразвуку:
Руйнування клітин: 15 г BL21-(DE3)_pAtHNL клітини були повільно підвішені в 50 мМ фосфатного буфера калію (рН 7,5) при 0 град С.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S + сонотрод S14D: при 70 Вт/см2 (4 х 5 хв), охолоджується в крижаній ванні
Довідкова / Наукова робота:
Okrob, D. et al. (2009): Гідроксінітрилліаза з Arabidopsis thaliana: ідентифікація параметрів реакції синтезу енантіочистого ціаногідрину чистим та іммобілізованим каталізатором. Адв. Катальська. 2011, 353, 2399 – 2408.
Руйнування клітин: 15 г BL21-(DE3)_pAtHNL клітини були повільно підвішені в 50 мМ фосфатного буфера калію (рН 7,5) при 0 град С.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S + сонотрод S14D: при 70 Вт/см2 (4 х 5 хв), охолоджується в крижаній ванні
Довідкова / Наукова робота:
Okrob, D. et al. (2009): Гідроксінітрилліаза з Arabidopsis thaliana: ідентифікація параметрів реакції синтезу енантіочистого ціаногідрину чистим та іммобілізованим каталізатором. Адв. Катальська. 2011, 353, 2399 – 2408.
Клітини крові (червоний і білий)
Болдін з листя Болдо (Peumus boldus Molina)
Застосування ультразвуку:
Важливою активною сполукою в болдо є болдин ((S)-2,9-дігідрокси-1,10-диметоксіапорфін), який, крім катехіну ((2S,3R)-2-(3,4-дігідроксі-феніл)-3,4-дігідро-1(2H)-бензопіран-3,5,7-тріол), є основними компонентами алкалоїдної та флавоноїдної фракції в листі болдо. Болдин є сильним антиоксидантним агентом, який зазнає пероксидативного пошкодження, опосередкованого вільними радикалами, і діє як ефективний поглинач гідроксильних радикалів.
Процедура екстракції: Для типової процедури екстракції зразки листя болдо екстрагували з 1 л дистильованої води при атмосферному тиску за допомогою ультразвукового апарату UIP1000hd в пакетному і проточному режимі. Час екстракції коливається від 10 до 40 хв., при інтенсивності ультразвуку від 10 до 23 Вт/см2, і температурний діапазон від 10 до 70 ° C. Найкращі результати досягаються за таких умов: інтенсивність ультразвуку 23 Вт/см2 протягом 40 хв. при температурі 36°С
Результатів: Результати аналізу показують, що високопотужна ультразвукова діагностика посилює вивільнення аналітів рослинного матриксного матеріалу Boldo зі значно кращими темпами порівняно зі звичайним методом: рівний вихід вивільнявся при ультразвуковому дослідженні за 30 хв., тоді як звичайний час екстракції становив 2 год.
Chemat (2013) та його колеги показали, що ультразвукова екстракція покращує ефективність рослинної екстракції, одночасно скорочуючи час екстракції при підвищеній концентрації екстрактів (однакова кількість розчинника та рослинного матеріалу). Аналіз показав, що оптимізованими умовами були: потужність звуку 23 Вт/см2 з UIP1000hd протягом 40 хв і температурою 36°С. Оптимізовані параметри ультразвукової екстракції забезпечують кращу екстракцію в порівнянні зі звичайною мацерацією за часом процесу (30 хв. замість 120 хв.), більш високий вихід, більш високу енергоефективність, поліпшену чистоту, більш високу безпеку і кращу якість продукції.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP1000hd з сонотродом BS2d34 та проточною камерою
Довідкова / Наукова робота:
Петіньї, Л.; Періно-Іссартьє, С.; Вайсман, Дж.; Чемат, Ф. (2013): Пакетна та безперервна екстракція за допомогою ультразвуку листя болдо (Peumus boldus mol.). Міжнародний журнал молекулярних наук 14, 2013. 5750-5764.
Важливою активною сполукою в болдо є болдин ((S)-2,9-дігідрокси-1,10-диметоксіапорфін), який, крім катехіну ((2S,3R)-2-(3,4-дігідроксі-феніл)-3,4-дігідро-1(2H)-бензопіран-3,5,7-тріол), є основними компонентами алкалоїдної та флавоноїдної фракції в листі болдо. Болдин є сильним антиоксидантним агентом, який зазнає пероксидативного пошкодження, опосередкованого вільними радикалами, і діє як ефективний поглинач гідроксильних радикалів.
Процедура екстракції: Для типової процедури екстракції зразки листя болдо екстрагували з 1 л дистильованої води при атмосферному тиску за допомогою ультразвукового апарату UIP1000hd в пакетному і проточному режимі. Час екстракції коливається від 10 до 40 хв., при інтенсивності ультразвуку від 10 до 23 Вт/см2, і температурний діапазон від 10 до 70 ° C. Найкращі результати досягаються за таких умов: інтенсивність ультразвуку 23 Вт/см2 протягом 40 хв. при температурі 36°С
Результатів: Результати аналізу показують, що високопотужна ультразвукова діагностика посилює вивільнення аналітів рослинного матриксного матеріалу Boldo зі значно кращими темпами порівняно зі звичайним методом: рівний вихід вивільнявся при ультразвуковому дослідженні за 30 хв., тоді як звичайний час екстракції становив 2 год.
Chemat (2013) та його колеги показали, що ультразвукова екстракція покращує ефективність рослинної екстракції, одночасно скорочуючи час екстракції при підвищеній концентрації екстрактів (однакова кількість розчинника та рослинного матеріалу). Аналіз показав, що оптимізованими умовами були: потужність звуку 23 Вт/см2 з UIP1000hd протягом 40 хв і температурою 36°С. Оптимізовані параметри ультразвукової екстракції забезпечують кращу екстракцію в порівнянні зі звичайною мацерацією за часом процесу (30 хв. замість 120 хв.), більш високий вихід, більш високу енергоефективність, поліпшену чистоту, більш високу безпеку і кращу якість продукції.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP1000hd з сонотродом BS2d34 та проточною камерою
Довідкова / Наукова робота:
Петіньї, Л.; Періно-Іссартьє, С.; Вайсман, Дж.; Чемат, Ф. (2013): Пакетна та безперервна екстракція за допомогою ультразвуку листя болдо (Peumus boldus mol.). Міжнародний журнал молекулярних наук 14, 2013. 5750-5764.
Сироватковий альбумін великої рогатої худоби (BSA)
Застосування ультразвуку:
Мікрокапсулювання в полі(молочно-ко-гліколевій кислоті) за 40 сек.
Рекомендація щодо пристрою:
GDmini
Довідкова / Наукова робота:
Freitas et al. (2005): Проточна ультразвукова емульгування в поєднанні зі статичним мікрозмішуванням для асептичного виробництва мікросфер шляхом екстракції розчинником.
Мікрокапсулювання в полі(молочно-ко-гліколевій кислоті) за 40 сек.
Рекомендація щодо пристрою:
GDmini
Довідкова / Наукова робота:
Freitas et al. (2005): Проточна ультразвукова емульгування в поєднанні зі статичним мікрозмішуванням для асептичного виробництва мікросфер шляхом екстракції розчинником.
Стовбур головного мозку + надниркова залоза
Застосування ультразвуку:
Дисперсійний та нуклеотидний аналіз; Розмір зразка: 10 мг зразків у 10 мл рідини.
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H
Дисперсійний та нуклеотидний аналіз; Розмір зразка: 10 мг зразків у 10 мл рідини.
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H
Candida albicans
Вуглеводи, полісахариди та інші функціональні сполуки
Застосування ультразвуку:
Екстракція вуглеводів, полісахаридів та інших функціональних сполук
Рекомендація щодо пристрою:
UP200St
Екстракція вуглеводів, полісахаридів та інших функціональних сполук
Рекомендація щодо пристрою:
UP200St
Карнозна кислота з розмарину
Застосування ультразвуку:
Екстракція карнозної кислоти, активної сполуки, з розмарину.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Екстракція карнозної кислоти, активної сполуки, з розмарину.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Капсаїциноїди
Застосування ультразвуку:
Екстракція капсаїциноїдів (капсаїцин, нордігідрокапсаїцин) з перцю чилі: Капсаїциноїди з Стручковий перець (Capsicum frutescens) перець отримували методом ультразвукової екстракції за таких умов: розчинник: 95% (об/об) етанол, співвідношення розчинник/маса 10 мл/г, час екстракції ультразвуком 40 хв, температура екстракції 45 °C. Вихід екстрагенту: 85% від капсаїциноїдів
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Екстракція капсаїциноїдів (капсаїцин, нордігідрокапсаїцин) з перцю чилі: Капсаїциноїди з Стручковий перець (Capsicum frutescens) перець отримували методом ультразвукової екстракції за таких умов: розчинник: 95% (об/об) етанол, співвідношення розчинник/маса 10 мл/г, час екстракції ультразвуком 40 хв, температура екстракції 45 °C. Вихід екстрагенту: 85% від капсаїциноїдів
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Каротиноїди, бета-каротиноїди
кДНК
Застосування ультразвуку:
РНК Poly-A очищали за допомогою набору для очищення мРНК Dynabeads (Invitrogen) відповідно до інструкцій виробника та обробляли протягом 30 хв при 37 °C TURBO DNase (Ambion; 0,2 одиниці/1 мкг РНК). Синтез першого і другого ланцюга відбувався за протоколом виробника. Близько 500 нг дволанцюгової кДНК було фрагментовано за допомогою ультразвуку з хворобою Хілшера UTR200. ДНК була упакована в 2% агарозний гель високої роздільної здатності і вирізана фрагмента вагою 230-270 п.н.
Рекомендація щодо пристрою:
UTR200 або TD_CupHorn
Довідкова / Наукова робота:
Делфт, Дж. Гай, вул. Лієнгард, М.; Альбрехт, М. В.; Кірпій, А.; Брауерс, К.; Клаессен, С.; Лізаррага, Д.; Лерах, Х.; Хервіг, Р.; Кляйнянс, Д. (2012): РНК-Seq дає нове розуміння реакцій транскриптомів, індукованих канцерогеном бензо[а]піреном. Токсикологічні науки 130/2, 2012. 427–439.
РНК Poly-A очищали за допомогою набору для очищення мРНК Dynabeads (Invitrogen) відповідно до інструкцій виробника та обробляли протягом 30 хв при 37 °C TURBO DNase (Ambion; 0,2 одиниці/1 мкг РНК). Синтез першого і другого ланцюга відбувався за протоколом виробника. Близько 500 нг дволанцюгової кДНК було фрагментовано за допомогою ультразвуку з хворобою Хілшера UTR200. ДНК була упакована в 2% агарозний гель високої роздільної здатності і вирізана фрагмента вагою 230-270 п.н.
Рекомендація щодо пристрою:
UTR200 або TD_CupHorn
Довідкова / Наукова робота:
Делфт, Дж. Гай, вул. Лієнгард, М.; Альбрехт, М. В.; Кірпій, А.; Брауерс, К.; Клаессен, С.; Лізаррага, Д.; Лерах, Х.; Хервіг, Р.; Кляйнянс, Д. (2012): РНК-Seq дає нове розуміння реакцій транскриптомів, індукованих канцерогеном бензо[а]піреном. Токсикологічні науки 130/2, 2012. 427–439.
Caryophanon latum
Застосування ультразвуку:
Екстракція глюкозаміну, мурамової кислоти, аланіну, глутамінової кислоти та лізину з каріофанон-датуму.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Екстракція глюкозаміну, мурамової кислоти, аланіну, глутамінової кислоти та лізину з каріофанон-датуму.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Целюлоза
Застосування ультразвуку:
Гомогенізація / отримання ізотопно однорідної целюлози.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S; в крижаній ванні
Довідкова / Наукова робота:
Laumer et al. (2009): Новий підхід до гомогенізації целюлози з використанням мікрокількостей для аналізу стабільних ізотопів.
Гомогенізація / отримання ізотопно однорідної целюлози.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S; в крижаній ванні
Довідкова / Наукова робота:
Laumer et al. (2009): Новий підхід до гомогенізації целюлози з використанням мікрокількостей для аналізу стабільних ізотопів.
Нанокристали целюлози (ЧПУ), приготовані з ЧПУ з евкаліптової целюлози
Застосування ультразвуку:
Нанокристали целюлози (ЧПУ), приготовані з ЧПУ з евкаліптової целюлози, були модифіковані реакцією з метиладипоілхлоридом, CNCm, або з сумішшю оцтової та сірчаної кислоти, CNCa. Тому ліофілізовані ЧПУ, CNCm і CNCa повторно диспергували в чистих розчинниках (EA, THF або DMF) при 0,1 мас.%, шляхом магнітного перемішування протягом ночі при (24 ± 1) С, а потім 20 хв в ультразвуковій ванні з використанням UP100H Hielscher Ultrasonics (Німеччина), оснащеного сонотродом 130 Вт/см2, при 24 ± 1 градус. Після цього в дисперсію з ЧПУ додавали ООВ, завдяки чому кінцева концентрація полімеру становила 0,9 мас.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H; при 24 градусах С протягом 20 хв.
Довідкова / Наукова робота:
Блахечен, Л. С. та ін (2013): Взаємодія колоїдної стабільності нанокристалів целюлози та їх диспергації в матриксі бутирату ацелюлози. Клітковина 2013.
Нанокристали целюлози (ЧПУ), приготовані з ЧПУ з евкаліптової целюлози, були модифіковані реакцією з метиладипоілхлоридом, CNCm, або з сумішшю оцтової та сірчаної кислоти, CNCa. Тому ліофілізовані ЧПУ, CNCm і CNCa повторно диспергували в чистих розчинниках (EA, THF або DMF) при 0,1 мас.%, шляхом магнітного перемішування протягом ночі при (24 ± 1) С, а потім 20 хв в ультразвуковій ванні з використанням UP100H Hielscher Ultrasonics (Німеччина), оснащеного сонотродом 130 Вт/см2, при 24 ± 1 градус. Після цього в дисперсію з ЧПУ додавали ООВ, завдяки чому кінцева концентрація полімеру становила 0,9 мас.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H; при 24 градусах С протягом 20 хв.
Довідкова / Наукова робота:
Блахечен, Л. С. та ін (2013): Взаємодія колоїдної стабільності нанокристалів целюлози та їх диспергації в матриксі бутирату ацелюлози. Клітковина 2013.
Целюлоза з жому цукрової тростини
Застосування ультразвуку:
Екстракція целюлози з жому цукрової тростини
Рекомендація щодо пристрою:
UP200St
Екстракція целюлози з жому цукрової тростини
Рекомендація щодо пристрою:
UP200St
Аналіз на ХІП
Застосування ультразвуку:
Ультразвук використовується для лізису клітин з метою вивільнення хроматину. Для фрагментації хроматину використовується легке (імпульсне) ультразвукове дослідження. Крім того, ультразвук прискорює швидкість зв'язування антитіл з білками-мішенями і тим самим скорочує час імунопреципітації.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Довідкова / Наукова робота:
Basselet, P. et al. (2008): Обробка зразків для аналізу ентерогеморагічної кишкової палички (EHEC) на основі масиву ДНК-чіпа.
Лаурі, А. (2005): Молекулярний аналіз розвитку пелюсток за допомогою X-ChIP та двогібридної технології. Дисертація Кельнського університету, 2005.
Ультразвук використовується для лізису клітин з метою вивільнення хроматину. Для фрагментації хроматину використовується легке (імпульсне) ультразвукове дослідження. Крім того, ультразвук прискорює швидкість зв'язування антитіл з білками-мішенями і тим самим скорочує час імунопреципітації.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Довідкова / Наукова робота:
Basselet, P. et al. (2008): Обробка зразків для аналізу ентерогеморагічної кишкової палички (EHEC) на основі масиву ДНК-чіпа.
Лаурі, А. (2005): Молекулярний аналіз розвитку пелюсток за допомогою X-ChIP та двогібридної технології. Дисертація Кельнського університету, 2005.
хроматин
Застосування ультразвуку:
Зрізання хроматину
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S; при 30% амплітуді і 0,5 циклу; на льоду.
Довідкова / Наукова робота:
Oh et al. (2003): Ген карбоксилази ацетил-КоА регулюється стеринним регуляторним елемент-зв'язуючим білком-1 у печінці.
Зрізання хроматину
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S; при 30% амплітуді і 0,5 циклу; на льоду.
Довідкова / Наукова робота:
Oh et al. (2003): Ген карбоксилази ацетил-КоА регулюється стеринним регуляторним елемент-зв'язуючим білком-1 у печінці.
Екстракція хроматину
Застосування ультразвуку:
Лізат клітин MEL DS19 проводили ультразвуковим дослідженням 10 патронів по 20 с кожен на 70% від максимальної потужності за допомогою ультразвукового процесора Hielscher 200W UP200H
Рекомендація щодо пристрою:
UP200H; 70% від максимальної потужності; Імпульсний режим: 10 циклів по 20 сек.
Довідкова / Наукова робота:
Kang, H. Ch. et al. (2010): PIAS1 регулює локалізацію CP2c та формування активного промоторного комплексу в експресії а-глобіну, специфічного для еритроїдних клітин. Нуклеїнові кислоти рез. 38/ 16, 2010. Р. 5456–5471.
Лізат клітин MEL DS19 проводили ультразвуковим дослідженням 10 патронів по 20 с кожен на 70% від максимальної потужності за допомогою ультразвукового процесора Hielscher 200W UP200H
Рекомендація щодо пристрою:
UP200H; 70% від максимальної потужності; Імпульсний режим: 10 циклів по 20 сек.
Довідкова / Наукова робота:
Kang, H. Ch. et al. (2010): PIAS1 регулює локалізацію CP2c та формування активного промоторного комплексу в експресії а-глобіну, специфічного для еритроїдних клітин. Нуклеїнові кислоти рез. 38/ 16, 2010. Р. 5456–5471.
Хроматографії
Застосування ультразвуку:
Ультразвукове випромінювання адсорбанта в розчиннику усуває агломери протягом декількох секунд і готує однорідну, легко упаковується колону. Актуально для приготування адсорбенту (наприклад, силікагелю) перед проведенням колонкової хроматографії.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Ультразвукове випромінювання адсорбанта в розчиннику усуває агломери протягом декількох секунд і готує однорідну, легко упаковується колону. Актуально для приготування адсорбенту (наприклад, силікагелю) перед проведенням колонкової хроматографії.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Кладоцерани
Застосування ультразвуку:
Руйнування клітин мезозоопланктону
Рекомендація щодо пристрою:
UP2000hd з проточною коміркою
Довідкова / Наукова робота:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і перекис водню як очищення баластних вод – Досліди з мезозоопланктоном в слабосолоно-солонуватою воді.
Руйнування клітин мезозоопланктону
Рекомендація щодо пристрою:
UP2000hd з проточною коміркою
Довідкова / Наукова робота:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і перекис водню як очищення баластних вод – Досліди з мезозоопланктоном в слабосолоно-солонуватою воді.
Дорослі веслоногі та веслоногі
Застосування ультразвуку:
Руйнування клітин мезозоопланктону: шляхом ультразвуку в наступних умовах чотирьох швидкостей потоку (200, 400, 520 і 800 lh-1) і чотирьох амплітуд (25, 50, 75 і 100%) було досягнуто коефіцієнта знищення від 87 до 99%.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP2000hd з проточною коміркою
Довідкова / Наукова робота:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і перекис водню як очищення баластних вод – Досліди з мезозоопланктоном в слабосолоно-солонуватою воді.
Руйнування клітин мезозоопланктону: шляхом ультразвуку в наступних умовах чотирьох швидкостей потоку (200, 400, 520 і 800 lh-1) і чотирьох амплітуд (25, 50, 75 і 100%) було досягнуто коефіцієнта знищення від 87 до 99%.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP2000hd з проточною коміркою
Довідкова / Наукова робота:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і перекис водню як очищення баластних вод – Досліди з мезозоопланктоном в слабосолоно-солонуватою воді.
Наупліі веслоногих
Застосування ультразвуку:
Руйнування клітин мезозоопланктону: шляхом ультразвуку в наступних умовах чотирьох швидкостей потоку (200, 400, 520 і 800 lh-1) і чотирьох амплітуд (25, 50, 75 і 100%) було досягнуто коефіцієнта знищення від 87 до 99%.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP2000hd з проточною коміркою
Довідкова / Наукова робота:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і перекис водню як очищення баластних вод – Досліди з мезозоопланктоном в слабосолоно-солонуватою воді.
Руйнування клітин мезозоопланктону: шляхом ультразвуку в наступних умовах чотирьох швидкостей потоку (200, 400, 520 і 800 lh-1) і чотирьох амплітуд (25, 50, 75 і 100%) було досягнуто коефіцієнта знищення від 87 до 99%.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP2000hd з проточною коміркою
Довідкова / Наукова робота:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і перекис водню як очищення баластних вод – Досліди з мезозоопланктоном в слабосолоно-солонуватою воді.
COS7-клітини
Застосування ультразвуку:
Лізис у буфері 400 мкл
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S; 7 циклів
Довідкова / Наукова робота:
Zaim (2005): Analyse von Nesprin-2 Defizienten Mäusen.
Лізис у буфері 400 мкл
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S; 7 циклів
Довідкова / Наукова робота:
Zaim (2005): Analyse von Nesprin-2 Defizienten Mäusen.
Cryptosporidium parvaum
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Cryptosporidium parvaum (найпростіших) у воді.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Довідкова / Наукова робота:
Цукамото, І.; Їм, Б.; Ставараче, К. Е.; Фурута, М.; Хашиба, К.; Маеда, Ю. (2004): Інактивація Saccharomyces cerevisiae ультразвуковим опроміненням. Ультразвукова сонохімія 11/2004. Р. 61–65.
Ультразвукова інактивація Cryptosporidium parvaum (найпростіших) у воді.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Довідкова / Наукова робота:
Цукамото, І.; Їм, Б.; Ставараче, К. Е.; Фурута, М.; Хашиба, К.; Маеда, Ю. (2004): Інактивація Saccharomyces cerevisiae ультразвуковим опроміненням. Ультразвукова сонохімія 11/2004. Р. 61–65.
Кубосоми
Застосування ультразвуку:
Кубосоми – або порожні, або леговані молекулами флуорофора – були приготовлені шляхом диспергування відповідної кількості моноолеїну в розчині Pluronic F108 за допомогою ультразвукового апарату UP100H. Для отримання флуоресцентних кубосоми флуорофор диспергували в розплавленому моноолеїні шляхом м'якого сонифікації, а потім диспергували в Pluronic F108. Така ж процедура була виконана, коли флуоресцентні кубосоми також були завантажені кверцетином.
Зразок: розмір зразка: 4 мл – приблизно 96,4 мас.% води, 3,3 мас.% моноолеїну, 0.3 мас.% Pluronic F108. Процентний вміст флуорофора становив 2,5 × 10−3 і 2,8 × 10−3 мас. Кількість доданого кверцетину: 6,4 × 10−6 мас%.
Ультразвукова хвороба: UP100H, амплітуда 90%, імпульсний цикл 0,9, протягом 10 хв.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Довідкова / Наукова робота:
Мурджа, С.; Боначчі, С.; Фальчі, А. М.; Лампіс, С.; Ліпполіс, В.; Мелі, В.; Мондуцці, М.; Проді, Л.; Шмідт, Дж.; Тальмон, Ю.; Кальтагірон, К. (2013): Флуоресцентні кубосоми, навантажені ліками: універсальні наночастинки для потенційних терапевтичних застосувань. Ленгмюр 29, 2013. 6673-6679.
Кубосоми – або порожні, або леговані молекулами флуорофора – були приготовлені шляхом диспергування відповідної кількості моноолеїну в розчині Pluronic F108 за допомогою ультразвукового апарату UP100H. Для отримання флуоресцентних кубосоми флуорофор диспергували в розплавленому моноолеїні шляхом м'якого сонифікації, а потім диспергували в Pluronic F108. Така ж процедура була виконана, коли флуоресцентні кубосоми також були завантажені кверцетином.
Зразок: розмір зразка: 4 мл – приблизно 96,4 мас.% води, 3,3 мас.% моноолеїну, 0.3 мас.% Pluronic F108. Процентний вміст флуорофора становив 2,5 × 10−3 і 2,8 × 10−3 мас. Кількість доданого кверцетину: 6,4 × 10−6 мас%.
Ультразвукова хвороба: UP100H, амплітуда 90%, імпульсний цикл 0,9, протягом 10 хв.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Довідкова / Наукова робота:
Мурджа, С.; Боначчі, С.; Фальчі, А. М.; Лампіс, С.; Ліпполіс, В.; Мелі, В.; Мондуцці, М.; Проді, Л.; Шмідт, Дж.; Тальмон, Ю.; Кальтагірон, К. (2013): Флуоресцентні кубосоми, навантажені ліками: універсальні наночастинки для потенційних терапевтичних застосувань. Ленгмюр 29, 2013. 6673-6679.
Dekkera bruxellensis
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Dekkera bruxellensis у воді
Рекомендація щодо пристрою:
UIP1500hd
Довідкова / Наукова робота:
Бортвік, К. А. ДЖ.; Коклі, В. Т.; Макдоннелл, М. Б.; Новотний, Г.; Бенеш, Е.; грфшл, . M (2005): Розробка нового компактного ультразвукового апарату для руйнування клітин. Ж. Мікробіо. Метамфетаміни. 60/2005. Р. 207–216. / Лерінц, А. (2004): Ультразвукове клітинне руйнування дріжджів у суспензії на водній основі. Біосис. 89/2004. Р. 297–308. / Цукамото, І.; Їм, Б.; Ставараче, К. Е.; Фурута, М.; Хашиба, К.; Маеда, Ю. (2004): Інактивація Saccharomyces cerevisiae ультразвуковим опроміненням. Ультразвук. Сонохім. 11/2004. С. 61–65.
Ультразвукова інактивація Dekkera bruxellensis у воді
Рекомендація щодо пристрою:
UIP1500hd
Довідкова / Наукова робота:
Бортвік, К. А. ДЖ.; Коклі, В. Т.; Макдоннелл, М. Б.; Новотний, Г.; Бенеш, Е.; грфшл, . M (2005): Розробка нового компактного ультразвукового апарату для руйнування клітин. Ж. Мікробіо. Метамфетаміни. 60/2005. Р. 207–216. / Лерінц, А. (2004): Ультразвукове клітинне руйнування дріжджів у суспензії на водній основі. Біосис. 89/2004. Р. 297–308. / Цукамото, І.; Їм, Б.; Ставараче, К. Е.; Фурута, М.; Хашиба, К.; Маеда, Ю. (2004): Інактивація Saccharomyces cerevisiae ультразвуковим опроміненням. Ультразвук. Сонохім. 11/2004. С. 61–65.
Деккера/ Brettanomyces bruxellensis
Застосування ультразвуку:
Інактивація за 90-120 сек.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP1500hd
Довідкова / Наукова робота:
Дивись вище
Інактивація за 90-120 сек.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP1500hd
Довідкова / Наукова робота:
Дивись вище
ДНК
Застосування ультразвуку:
Фрагментація ДНК: 2 хв. ультразвукове дослідження 100 мкл з UP100H або 4 хв. УЗД 100 мкл з UTR200.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H, UTR200 або VialTweeter
Довідкова / Наукова робота:
Larguinho M. et al. (2010): Розробка швидкої та ефективної стратегії фрагментації ДНК на основі ультразвуку.
Фрагментація ДНК: 2 хв. ультразвукове дослідження 100 мкл з UP100H або 4 хв. УЗД 100 мкл з UTR200.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H, UTR200 або VialTweeter
Довідкова / Наукова робота:
Larguinho M. et al. (2010): Розробка швидкої та ефективної стратегії фрагментації ДНК на основі ультразвуку.
Клітини Drosophila melanogaster S2
Застосування ультразвуку:
Екстракція клітинних білків з клітин Drosophila melanogaster S2: заморожені клітини S2 (1,56108) лізували в буфері для гомогенізації крижаного холоду об'ємом 1 мл (100 мМ Tris-HCl pH 7,5, 1% SDS) і залишали на льоду на 10 хв. Лізис клітин був завершений ультразвуковим дослідженням на льоду (6615 сплесків, імпульс 0,5 с; інтенсивність 75%) за допомогою ультразвукового процесора Hielscher UP200S.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S (200 Вт), імпульсний режим інтенсивності 75%: 6615 серій, імпульс 0,5 с.
Довідкова / Наукова робота:
Schwientek, T. et al. (2007): Серійний лектиновий підхід до О-глікопротеома муцинового типу клітин Drosophila melanogaster S2. Протеоміка 7, 2007. Р. 3264-3277.
Екстракція клітинних білків з клітин Drosophila melanogaster S2: заморожені клітини S2 (1,56108) лізували в буфері для гомогенізації крижаного холоду об'ємом 1 мл (100 мМ Tris-HCl pH 7,5, 1% SDS) і залишали на льоду на 10 хв. Лізис клітин був завершений ультразвуковим дослідженням на льоду (6615 сплесків, імпульс 0,5 с; інтенсивність 75%) за допомогою ультразвукового процесора Hielscher UP200S.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S (200 Вт), імпульсний режим інтенсивності 75%: 6615 серій, імпульс 0,5 с.
Довідкова / Наукова робота:
Schwientek, T. et al. (2007): Серійний лектиновий підхід до О-глікопротеома муцинового типу клітин Drosophila melanogaster S2. Протеоміка 7, 2007. Р. 3264-3277.
Похідні кишкової палички
Застосування ультразвуку:
Руйнування клітин похідних E. coli: заморожені гранули, що відповідають об'єму зразка Vculture = 4/OD mL, були ресуспендовані в 580 мкл 10 мМ фосфату калію pH 7, 1 mM EDTA. Додавали 20 мкл лізоциму (концентрація 1 г Л-1) і інкубували клітинну суспензію на льоду близько 30 хв. Після цього клітини порушувалися безперервним ультразвуковим дослідженням за допомогою ультразвукового апарату (UP 200S Ultraschallprozessor, Dr. Hielscher GmbH, Teltow) на льоду, з амплітудою 50 % протягом 20 сек. Розчинні і нерозчинні фракції клітин розділяли центрифугуванням при 13000 об/хв протягом 20 хв. Нерозчинні білки двічі промивали за допомогою 10 мМ фосфатного калію буфера рН 7, 1 мМ ЕДТА і зберігали при –20 °C.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S з амплітудою 50%
Довідкова / Наукова робота:
HA (2005): Оптимізація виробництва активних рекомбінантних білків, вивчення впливу малих білків теплового шоку Escherichia coli, IbpA та IbpB, на реактивацію in vivo тіл включення.
Руйнування клітин похідних E. coli: заморожені гранули, що відповідають об'єму зразка Vculture = 4/OD mL, були ресуспендовані в 580 мкл 10 мМ фосфату калію pH 7, 1 mM EDTA. Додавали 20 мкл лізоциму (концентрація 1 г Л-1) і інкубували клітинну суспензію на льоду близько 30 хв. Після цього клітини порушувалися безперервним ультразвуковим дослідженням за допомогою ультразвукового апарату (UP 200S Ultraschallprozessor, Dr. Hielscher GmbH, Teltow) на льоду, з амплітудою 50 % протягом 20 сек. Розчинні і нерозчинні фракції клітин розділяли центрифугуванням при 13000 об/хв протягом 20 хв. Нерозчинні білки двічі промивали за допомогою 10 мМ фосфатного калію буфера рН 7, 1 мМ ЕДТА і зберігали при –20 °C.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S з амплітудою 50%
Довідкова / Наукова робота:
HA (2005): Оптимізація виробництва активних рекомбінантних білків, вивчення впливу малих білків теплового шоку Escherichia coli, IbpA та IbpB, на реактивацію in vivo тіл включення.
Антиген гранульозного ехінокока
Застосування ультразвуку:
Лізис і розпад клітин: гомогенізований зразок білка, розчинного в зрілому E. granulosus, приготований шляхом заморожування-розморожування в рідкому азоті і 42◦C, був проведений ультразвуковим випромінюванням при напрузі 110 В, 170 Вт протягом 3×15 сек на льоду. Після цього зразок центрифугували протягом 15 хв при 10000 г. Концентрацію білка вимірювали за методом Бредфорда і зберігали при -20◦С.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S; 170 Вт, охолодження на льоду; 3 х 15 сек.
Довідкова / Наукова робота:
Tabar et al. (2010): Серодіагностика гідатидозу овець за допомогою гідатидної рідини, протосколекса та всього тіла антигену Echinococcus granulosus.
Лізис і розпад клітин: гомогенізований зразок білка, розчинного в зрілому E. granulosus, приготований шляхом заморожування-розморожування в рідкому азоті і 42◦C, був проведений ультразвуковим випромінюванням при напрузі 110 В, 170 Вт протягом 3×15 сек на льоду. Після цього зразок центрифугували протягом 15 хв при 10000 г. Концентрацію білка вимірювали за методом Бредфорда і зберігали при -20◦С.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S; 170 Вт, охолодження на льоду; 3 х 15 сек.
Довідкова / Наукова робота:
Tabar et al. (2010): Серодіагностика гідатидозу овець за допомогою гідатидної рідини, протосколекса та всього тіла антигену Echinococcus granulosus.
Кишкова паличка Гр-
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація кишкової палички Gr- в молоці і соках.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Довідкова / Наукова робота:
Ценкер, М.; Хайнц, В.; Кнорр, Д. (2003): Застосування термічної обробки за допомогою ультразвуку для збереження та збереження якості рідких харчових продуктів. J Food Prot 66/2003. Р. 1642–1649.
Ультразвукова інактивація кишкової палички Gr- в молоці і соках.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Довідкова / Наукова робота:
Ценкер, М.; Хайнц, В.; Кнорр, Д. (2003): Застосування термічної обробки за допомогою ультразвуку для збереження та збереження якості рідких харчових продуктів. J Food Prot 66/2003. Р. 1642–1649.
Escherchia coli Gr- в сольовому розчині
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Escherchia coli Gr- в фізіологічному розчині.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Довідкова / Наукова робота:
Дакхаус, Х.; Мейсон, Т. Дж.; Пхулл, С. С.; Лорімер, Д. П. (2004): Вплив ультразвуку на мікробну дезінфекцію за допомогою гіпохлориту. Ультразвук. Сонохім. 11/ 2004. Р. 173–176.
Ультразвукова інактивація Escherchia coli Gr- в фізіологічному розчині.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Довідкова / Наукова робота:
Дакхаус, Х.; Мейсон, Т. Дж.; Пхулл, С. С.; Лорімер, Д. П. (2004): Вплив ультразвуку на мікробну дезінфекцію за допомогою гіпохлориту. Ультразвук. Сонохім. 11/ 2004. Р. 173–176.
Escherchia coli Gr- у воді
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Escherchia coli Gr- у воді.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Довідкова / Наукова робота:
Фурута, М.; Ямагуті, М.; Цукамото, Т.; Їм, Б.; Ставараче, К. Е.; Хасіба, К.; Маеда, Ю. (2004): Інактивація Escherichia coli ультразвуковим опроміненням. Ультразвук. Сонохім. 11/2004. Р. 57–60.
Ультразвукова інактивація Escherchia coli Gr- у воді.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Довідкова / Наукова робота:
Фурута, М.; Ямагуті, М.; Цукамото, Т.; Їм, Б.; Ставараче, К. Е.; Хасіба, К.; Маеда, Ю. (2004): Інактивація Escherichia coli ультразвуковим опроміненням. Ультразвук. Сонохім. 11/2004. Р. 57–60.
Глаукома головки оптичного нерва
Застосування ультразвуку:
Фрагментація РНК оптичних нервових головок (з очей щурів): головку оптичного нерва (ONH) заморожували на сухому льоду та зберігали при температурі 80 °C перед екстракцією. РНК була виділена шляхом ультразвукового дослідження заморожених нервових головок у буфері для екстракції набору за допомогою зонда MS 0.5 (UP50H), а потім, після інструкцій, наданих набором Arcturus, включаючи лікування ДНКазою для видалення будь-якої ДНК. Очищену РНК піддавали кількісному вивченню.
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H з зондом MS0.5
Довідкова / Наукова робота:
Johnson et al. (2007): Глобальні зміни в експресії гена голови зорового нерва після впливу підвищеного внутрішньоочного тиску на моделі глаукоми щурів.
Фрагментація РНК оптичних нервових головок (з очей щурів): головку оптичного нерва (ONH) заморожували на сухому льоду та зберігали при температурі 80 °C перед екстракцією. РНК була виділена шляхом ультразвукового дослідження заморожених нервових головок у буфері для екстракції набору за допомогою зонда MS 0.5 (UP50H), а потім, після інструкцій, наданих набором Arcturus, включаючи лікування ДНКазою для видалення будь-якої ДНК. Очищену РНК піддавали кількісному вивченню.
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H з зондом MS0.5
Довідкова / Наукова робота:
Johnson et al. (2007): Глобальні зміни в експресії гена голови зорового нерва після впливу підвищеного внутрішньоочного тиску на моделі глаукоми щурів.
Глікозаміноглікан хондроїтину сульфат (КС)
Застосування ультразвуку:
Визначення КС за допомогою аналізу диметилметиленового синього
Ресуспендація клітин: гранули CS у мікроцентрифужних пробірках були ресуспендовані в 0,5 мл розчину папаїну 0,1 мг/мл у збалансованому сольовому розчині Hank's (HBSS) за допомогою імпульсів від ультразвукового ріжка (UP 100H, Hielscher Ultrasonics GmbH, Німеччина) у циклі 1 та 100% амплітуді протягом 3 сек. Після цього травлення відбувалося при температурі 60 °C протягом 24 год.
Для імуноферментного аналізу (ELISA) клітини потім суспендували в дистильованій та деіонізованій воді в концентрації 106 клітин/мл і зберігали в морозильній камері при –70 °C протягом ночі, щоб полегшити лізис клітин. Потім клітини гомогенізували ультразвуковим дослідженням протягом 40 секунд за допомогою ультразвукового тканинного гомогенізатора Hielscher UP100H.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Довідкова / Наукова робота:
Vandrovcova et al. (2011): Вплив покриттів колагену та хондроїтинсульфату (CS) на полі-(лактид-ко-гліколід) (PLGA) на остеобластоподібні клітини MG 63. Фізіол., Респ.60; 2011. 797-813.
Визначення КС за допомогою аналізу диметилметиленового синього
Ресуспендація клітин: гранули CS у мікроцентрифужних пробірках були ресуспендовані в 0,5 мл розчину папаїну 0,1 мг/мл у збалансованому сольовому розчині Hank's (HBSS) за допомогою імпульсів від ультразвукового ріжка (UP 100H, Hielscher Ultrasonics GmbH, Німеччина) у циклі 1 та 100% амплітуді протягом 3 сек. Після цього травлення відбувалося при температурі 60 °C протягом 24 год.
Для імуноферментного аналізу (ELISA) клітини потім суспендували в дистильованій та деіонізованій воді в концентрації 106 клітин/мл і зберігали в морозильній камері при –70 °C протягом ночі, щоб полегшити лізис клітин. Потім клітини гомогенізували ультразвуковим дослідженням протягом 40 секунд за допомогою ультразвукового тканинного гомогенізатора Hielscher UP100H.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Довідкова / Наукова робота:
Vandrovcova et al. (2011): Вплив покриттів колагену та хондроїтинсульфату (CS) на полі-(лактид-ко-гліколід) (PLGA) на остеобластоподібні клітини MG 63. Фізіол., Респ.60; 2011. 797-813.
Клітини HaCaT
Застосування ультразвуку:
Лізис HaCaT-клітин для імунопреципітації хроматину (ChIP): клітини HaCaT фіксували за допомогою 1% формальдегіду протягом 10 хвилин при 37uC. Нерухомі клітини лізували в буфері RIPA і проводили ультразвукове дослідження на льоду ультразвуковим пристроєм потужністю 100 Вт при амплітуді = 1 і шпаруватості = 100% в 12 однохвилинних (12 х 1 хв.) імпульсах.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H; протягом 12 хв на льоду,
Довідкова / Наукова робота:
Zhang et al. (2007): Базонуклін регулює підмножину генів рибосомної РНК у клітинах HaCaT.
Лізис HaCaT-клітин для імунопреципітації хроматину (ChIP): клітини HaCaT фіксували за допомогою 1% формальдегіду протягом 10 хвилин при 37uC. Нерухомі клітини лізували в буфері RIPA і проводили ультразвукове дослідження на льоду ультразвуковим пристроєм потужністю 100 Вт при амплітуді = 1 і шпаруватості = 100% в 12 однохвилинних (12 х 1 хв.) імпульсах.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H; протягом 12 хв на льоду,
Довідкова / Наукова робота:
Zhang et al. (2007): Базонуклін регулює підмножину генів рибосомної РНК у клітинах HaCaT.
Гепарин: Деполімеризація гепарину
Застосування ультразвуку:
Ультразвуковий метод дозволяє виробляти низькомолекулярний гепарин (НМГ). Тому гепарин піддається каталізованої перекисом водню радикальної деполімеризації. Реакція дуже швидка і займає менше 1 години, тоді як процес фізико-хімічної деполімеризації ґрунтується на м'яких умовах реакції, не вимагає агресивних або токсичних реагентів і забезпечує продукт без хімічних артефактів. Таким чином, ультразвуковий процес добре підходить для великомасштабного виробництва НМГ, а також аналогів, вироблених з природних сульфатованих полісахаридів.
Ультразвукова процедура:
Для фізико-хімічної деполімеризації нефракціонованого гепарину шляхом ультразвукової радикальної деполімеризації гепарин розчиняли у воді до кінцевої концентрації 25 мг/мл (5 мл). Реакційну суміш проводили ультразвукове дослідження за допомогою ультразвукового апарату зондового типу UP50H. Ультразвуковий апарат був оснащений зондом (мікронаконечник MS3) діаметром 3 мм, який забезпечував амплітуду 180 мкм. Процесор генерував механічні поздовжні коливання з частотою 30 кГц, які створювалися електричним збудженням. Реакційна суміш підтримувалася при температурі 60 ° C в реакторі Редліса®, а ультразвукові хвилі застосовувалися у вигляді імпульсу тривалістю 0,5 секунди, щоб запобігти нагріванню суміші. Аліквоту нульового часу (250 мкл) видаляли з розчину перед запуском реакції шляхом одночасного додавання перекису водню і застосування ультразвукових хвиль. Перекис водню був доданий для отримання кінцевого співвідношення перекис водню/гепарин (w/w) 0,15 (3,75 мг/мл).
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H з сонотродом MS3
Довідкова / Наукова робота:
Ахур, Уссама; Брідо, Ніколя; Годхбані, Азза; Ле Жубіо, Флоріан; Борденаве Юшеро, Стефані; Санньє, Фредерік; Піо, Жан-Марі; Фрутьє Арноден, Інгрід; Могар, Тьєррі (2013): Ультразвуковий препарат низькомолекулярного гепарину (НМГ) з антикоагулянтною активністю. вуглеводні полімери 97; 2013. 684–689.
Ультразвуковий метод дозволяє виробляти низькомолекулярний гепарин (НМГ). Тому гепарин піддається каталізованої перекисом водню радикальної деполімеризації. Реакція дуже швидка і займає менше 1 години, тоді як процес фізико-хімічної деполімеризації ґрунтується на м'яких умовах реакції, не вимагає агресивних або токсичних реагентів і забезпечує продукт без хімічних артефактів. Таким чином, ультразвуковий процес добре підходить для великомасштабного виробництва НМГ, а також аналогів, вироблених з природних сульфатованих полісахаридів.
Ультразвукова процедура:
Для фізико-хімічної деполімеризації нефракціонованого гепарину шляхом ультразвукової радикальної деполімеризації гепарин розчиняли у воді до кінцевої концентрації 25 мг/мл (5 мл). Реакційну суміш проводили ультразвукове дослідження за допомогою ультразвукового апарату зондового типу UP50H. Ультразвуковий апарат був оснащений зондом (мікронаконечник MS3) діаметром 3 мм, який забезпечував амплітуду 180 мкм. Процесор генерував механічні поздовжні коливання з частотою 30 кГц, які створювалися електричним збудженням. Реакційна суміш підтримувалася при температурі 60 ° C в реакторі Редліса®, а ультразвукові хвилі застосовувалися у вигляді імпульсу тривалістю 0,5 секунди, щоб запобігти нагріванню суміші. Аліквоту нульового часу (250 мкл) видаляли з розчину перед запуском реакції шляхом одночасного додавання перекису водню і застосування ультразвукових хвиль. Перекис водню був доданий для отримання кінцевого співвідношення перекис водню/гепарин (w/w) 0,15 (3,75 мг/мл).
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H з сонотродом MS3
Довідкова / Наукова робота:
Ахур, Уссама; Брідо, Ніколя; Годхбані, Азза; Ле Жубіо, Флоріан; Борденаве Юшеро, Стефані; Санньє, Фредерік; Піо, Жан-Марі; Фрутьє Арноден, Інгрід; Могар, Тьєррі (2013): Ультразвуковий препарат низькомолекулярного гепарину (НМГ) з антикоагулянтною активністю. вуглеводні полімери 97; 2013. 684–689.
Хміль
Застосування ультразвуку:
Екстракція активних сполук / рослинних екстрактів у воді та етанолі.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Екстракція активних сполук / рослинних екстрактів у воді та етанолі.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Lactobacillus (лізис/виділення ДНК різних штамів Lactobacillus)
Застосування ультразвуку:
Штами Lactobacillus: L. pontis, L. sanfranciscensis, L. farciminis, L. panis, L. oris, L. vaginalis і L. reuteri, L. sp.
Порядок дій: Для виділення ДНК одиночних колоній був розроблений протокол ультразвукового лізису. Одна колонія (діаметром від 2 до 3 мм) була підвішена в буфері лізису 100 мкл (20 мМ ЕДТА, 10 мМ Тріс [рН 7,9], 1% Тритон Х-100, 500 мМ гуанідин-HCl, 250 мМ NaCl). Клітини лізували за допомогою 1 хв ультразвуку за допомогою зондового типу ультразвукового апарату UP50H. Після додавання 150 мкл холодного етанолу (-20 ° C) суміш центрифугували над спіновою колонкою набору серветок QIAamp і, нарешті, елюювали 60 мкл буфера (10 мМ Tris [pH 7,5]).
Щоб мати інструмент для швидкої та надійної ідентифікації поодиноких чистих культур, ПЛР-аналіз поєднали з швидкою процедурою виділення ДНК. Трудомісткі процедури ферментативного лізису і варіабельна сприйнятливість бактерій до лізоциму були подолані ультразвуковою обробкою клітин з подальшим очищенням і концентрацією шляхом зв'язування ДНК з матрицею кремнезему. Клітинний матеріал однієї колонії виявився достатнім для проведення ПЛР.
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H
Довідкова / Наукова робота:
Мюллер, М. Р. А. (2000): Характеристика мікробної екосистеми зернових ферментацій за допомогою молекулярно-біологічних методів. Дисертація Кельнського університету, 2000.
Штами Lactobacillus: L. pontis, L. sanfranciscensis, L. farciminis, L. panis, L. oris, L. vaginalis і L. reuteri, L. sp.
Порядок дій: Для виділення ДНК одиночних колоній був розроблений протокол ультразвукового лізису. Одна колонія (діаметром від 2 до 3 мм) була підвішена в буфері лізису 100 мкл (20 мМ ЕДТА, 10 мМ Тріс [рН 7,9], 1% Тритон Х-100, 500 мМ гуанідин-HCl, 250 мМ NaCl). Клітини лізували за допомогою 1 хв ультразвуку за допомогою зондового типу ультразвукового апарату UP50H. Після додавання 150 мкл холодного етанолу (-20 ° C) суміш центрифугували над спіновою колонкою набору серветок QIAamp і, нарешті, елюювали 60 мкл буфера (10 мМ Tris [pH 7,5]).
Щоб мати інструмент для швидкої та надійної ідентифікації поодиноких чистих культур, ПЛР-аналіз поєднали з швидкою процедурою виділення ДНК. Трудомісткі процедури ферментативного лізису і варіабельна сприйнятливість бактерій до лізоциму були подолані ультразвуковою обробкою клітин з подальшим очищенням і концентрацією шляхом зв'язування ДНК з матрицею кремнезему. Клітинний матеріал однієї колонії виявився достатнім для проведення ПЛР.
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H
Довідкова / Наукова робота:
Мюллер, М. Р. А. (2000): Характеристика мікробної екосистеми зернових ферментацій за допомогою молекулярно-біологічних методів. Дисертація Кельнського університету, 2000.
Lactobacillus acidophilus Gr+
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Lactobacillus acidophilus Gr+ у молоці та соках.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP500hd
Довідкова / Наукова робота:
Ценкер, М.; Хайнц, В.; Кнорр, Д. (2003): Застосування термічної обробки за допомогою ультразвуку для збереження та збереження якості рідких харчових продуктів. J Food Prot 66/2003. Р. 1642–1649.
Ультразвукова інактивація Lactobacillus acidophilus Gr+ у молоці та соках.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP500hd
Довідкова / Наукова робота:
Ценкер, М.; Хайнц, В.; Кнорр, Д. (2003): Застосування термічної обробки за допомогою ультразвуку для збереження та збереження якості рідких харчових продуктів. J Food Prot 66/2003. Р. 1642–1649.
Legionella pneumophila Gr+ в розведеному середовищі
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Legionella pneumophila Gr+ у розведеному середовищі.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP500hd
Довідкова / Наукова робота:
Даджур, М. Ф.; Огіно, К.; Мацумура, С.; Накамура, С.; Шімідзу Н. (2006): Дезінфекція Legionella pneumophila шляхом ультразвукової обробки TiO2. Вода Res 40/2006. Р.1137–1142.
Ультразвукова інактивація Legionella pneumophila Gr+ у розведеному середовищі.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP500hd
Довідкова / Наукова робота:
Даджур, М. Ф.; Огіно, К.; Мацумура, С.; Накамура, С.; Шімідзу Н. (2006): Дезінфекція Legionella pneumophila шляхом ультразвукової обробки TiO2. Вода Res 40/2006. Р.1137–1142.
Leuconostoc mesenteroides
Застосування ультразвуку:
Активність лізозмеу лейкоцитів при мієлоцитарному лейкозі: суспензію клітин проводили ультразвукове дослідження протягом 15 хв., а зразки – на активність лізоциму. Визначали концентрацію лізоциму в лейкоцитах уг./10 клітин.
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H
Активність лізозмеу лейкоцитів при мієлоцитарному лейкозі: суспензію клітин проводили ультразвукове дослідження протягом 15 хв., а зразки – на активність лізоциму. Визначали концентрацію лізоциму в лейкоцитах уг./10 клітин.
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H
Лейкоцитарна ізозимна активність при мієлоцитарному лейкозі
Застосування ультразвуку:
Підготовка зразків: суспензію клітин піддавали ультразвуковій обробці та аналізували зразки на активність лізоциму. Визначали концентрацію лізоциму в лейкоцитах ug/106.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200St
Підготовка зразків: суспензію клітин піддавали ультразвуковій обробці та аналізували зразки на активність лізоциму. Визначали концентрацію лізоциму в лейкоцитах ug/106.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200St
ліпосоми
Застосування ультразвуку:
Формування позашляховиків
Натисніть тут, щоб дізнатися більше про ультразвуковий препарат ліпосомами!
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H; 3 цикли по 5 хв; в крижаній ванні.
Формування позашляховиків
Натисніть тут, щоб дізнатися більше про ультразвуковий препарат ліпосомами!
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H; 3 цикли по 5 хв; в крижаній ванні.
Малахітовий зелений
Застосування ультразвуку:
Сонофотокаталітична деградація малахітового зеленого (сильного бактерициду): Лише фотокаталітична деградація значно швидша, ніж сонолітична деградація, ефективність можна покращити шляхом поєднання двох процесів. Малахітовий зелений, сильний бактерицид, дуже екотоксичний для морських бактерій, але він перетворюється на органіку, яка менш або не токсична.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Сонофотокаталітична деградація малахітового зеленого (сильного бактерициду): Лише фотокаталітична деградація значно швидша, ніж сонолітична деградація, ефективність можна покращити шляхом поєднання двох процесів. Малахітовий зелений, сильний бактерицид, дуже екотоксичний для морських бактерій, але він перетворюється на органіку, яка менш або не токсична.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Ацилювання мангіферину
Застосування ультразвуку:
Мангіферин (1,3,6,7-тетрагідрокси-2-[3,4,5-тригідрокси-6-(гідроксиметил)оксан-2-іл]ксантен-9-он; формула: C19H18O11)є поліфенолом структури С-глікозилксантону, який можна знайти в багатьох видах рослин. Мангіферин проявляє різну фармакологічну активність. Регіоселективне ацилювання мангіферину може дуже ефективно каталізуватися ліпазою під дією ультразвуку. У порівнянні з традиційними методами, каталіз за допомогою ультразвуку вирізняється такими перевагами, як коротший час реакції та вищі виходи. Оптимальними умовами для проведення ультразвукової ацилювання мангіферину були знайдені наступні:
ліпаза: PCL, донор ацилу: вінілацетат; реакційний розчинник: ДМСО, температура реакції: 45 градусів, ультразвукова потужність: 200 Вт; Співвідношення субстрату: донор ацилу/мангіферин 6/1, ензимне навантаження: 6 мг/мл
Вихід регіоселективного ацилювання становив до 84%.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200St або UP200Ht
Довідкова / Наукова робота:
Див.: Ван, З.; Ван, Р.; Тянь, Дж.; Чжао, Б; Вей, X. Ф.; Су, Ю.Л.; Лі, Ч. Й.; Цао, С. Г.; Ван, Л. (2010): Вплив ультразвуку на каталізоване ліпазою регіоселективне ацилювання мангіферину в неводних розчинниках. J. Asian Nat Prod. Res. 12/1, 2010. 56-63.
Мангіферин (1,3,6,7-тетрагідрокси-2-[3,4,5-тригідрокси-6-(гідроксиметил)оксан-2-іл]ксантен-9-он; формула: C19H18O11)є поліфенолом структури С-глікозилксантону, який можна знайти в багатьох видах рослин. Мангіферин проявляє різну фармакологічну активність. Регіоселективне ацилювання мангіферину може дуже ефективно каталізуватися ліпазою під дією ультразвуку. У порівнянні з традиційними методами, каталіз за допомогою ультразвуку вирізняється такими перевагами, як коротший час реакції та вищі виходи. Оптимальними умовами для проведення ультразвукової ацилювання мангіферину були знайдені наступні:
ліпаза: PCL, донор ацилу: вінілацетат; реакційний розчинник: ДМСО, температура реакції: 45 градусів, ультразвукова потужність: 200 Вт; Співвідношення субстрату: донор ацилу/мангіферин 6/1, ензимне навантаження: 6 мг/мл
Вихід регіоселективного ацилювання становив до 84%.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200St або UP200Ht
Довідкова / Наукова робота:
Див.: Ван, З.; Ван, Р.; Тянь, Дж.; Чжао, Б; Вей, X. Ф.; Су, Ю.Л.; Лі, Ч. Й.; Цао, С. Г.; Ван, Л. (2010): Вплив ультразвуку на каталізоване ліпазою регіоселективне ацилювання мангіферину в неводних розчинниках. J. Asian Nat Prod. Res. 12/1, 2010. 56-63.
Екстракція молекул
Застосування ультразвуку:
Протокол екстракції для екстракції з гіпсу, реоліту, базальту, золи едфелла та обсидіанового скла:
Зразок реголіту або щебеню вагою 1 г підлягає рідкій екстракції під ультразвуковим опроміненням для вилучення та розчинення цільових молекул. Тому 3 мл MeOH P80 додали до аналогового зразка вагою 1 г у скляній пробірці та проводили ультразвукове дослідження протягом 20 хвилин за допомогою ультразвукового приладу зондового типу UP50H встановлюють на 40% амплітуду. Суміші давали відстоятися протягом 10 хвилин, а каламутний супернатант, що утворився над осадженим аналоговим зразком, декантували в центрифужні пробірки об'ємом 1,5 мл. Щоб мінімізувати втрати екстрагованих компонентів шляхом адсорбції на поверхнях гідрофобних полімерних центрифужних пробірок, пробірки спочатку блокували 0,5% (w/v) BSA в 100 мМ HEPES pH 7,4. Супернатанти освітлювали центрифугуванням при 17000 G протягом 10 хвилин і зберігали при температурі 2 – 8 °C у скляних флаконах до перевірки в імунологічному аналізі.
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H
Довідкова / Наукова робота:
Рікс, К. (2012): Виявлення життя на Марсі та чіп Life Marker: аналізи антитіл для виявлення органічних молекул у рідких екстрактах марсіанських зразків. Дисертація Кренфілдського університету, 2012.
Протокол екстракції для екстракції з гіпсу, реоліту, базальту, золи едфелла та обсидіанового скла:
Зразок реголіту або щебеню вагою 1 г підлягає рідкій екстракції під ультразвуковим опроміненням для вилучення та розчинення цільових молекул. Тому 3 мл MeOH P80 додали до аналогового зразка вагою 1 г у скляній пробірці та проводили ультразвукове дослідження протягом 20 хвилин за допомогою ультразвукового приладу зондового типу UP50H встановлюють на 40% амплітуду. Суміші давали відстоятися протягом 10 хвилин, а каламутний супернатант, що утворився над осадженим аналоговим зразком, декантували в центрифужні пробірки об'ємом 1,5 мл. Щоб мінімізувати втрати екстрагованих компонентів шляхом адсорбції на поверхнях гідрофобних полімерних центрифужних пробірок, пробірки спочатку блокували 0,5% (w/v) BSA в 100 мМ HEPES pH 7,4. Супернатанти освітлювали центрифугуванням при 17000 G протягом 10 хвилин і зберігали при температурі 2 – 8 °C у скляних флаконах до перевірки в імунологічному аналізі.
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H
Довідкова / Наукова робота:
Рікс, К. (2012): Виявлення життя на Марсі та чіп Life Marker: аналізи антитіл для виявлення органічних молекул у рідких екстрактах марсіанських зразків. Дисертація Кренфілдського університету, 2012.
Гранули печінки миші
Застосування ультразвуку:
Гранули промивали та ультразвукували протягом 5 хв ще 0,5 мл LB2 і центрифугували при 12 000 г ще 20 хв, після чого збирали отримані дві фракції супернатанту. Нарешті, гранули розчиняли в 0,5 мл буфера, що містив 40 мМ трис-основи, 5 М сечовини, 2 М тіосечовини, 4% CHAPS, 100 мМ DTT, 0,5% (об/об) біоліт 3-10 (LB3), і проводили ультразвукову обробку та центрифугування при 12 000 г протягом 20 хв.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S; протягом 5 хв.
Довідкова / Наукова робота:
Gazzana et al. (2009): Оновлення щодо протеома печінки миші.
Гранули промивали та ультразвукували протягом 5 хв ще 0,5 мл LB2 і центрифугували при 12 000 г ще 20 хв, після чого збирали отримані дві фракції супернатанту. Нарешті, гранули розчиняли в 0,5 мл буфера, що містив 40 мМ трис-основи, 5 М сечовини, 2 М тіосечовини, 4% CHAPS, 100 мМ DTT, 0,5% (об/об) біоліт 3-10 (LB3), і проводили ультразвукову обробку та центрифугування при 12 000 г протягом 20 хв.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S; протягом 5 хв.
Довідкова / Наукова робота:
Gazzana et al. (2009): Оновлення щодо протеома печінки миші.
Суспензія печінки миші
Застосування ультразвуку:
Гомогенізація зразка для отримання клітинного лізату.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S; протягом 3 х 20 сек.
Довідкова / Наукова робота:
Gazzana et al. (2009): Оновлення щодо протеома печінки миші.
Гомогенізація зразка для отримання клітинного лізату.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S; протягом 3 х 20 сек.
Довідкова / Наукова робота:
Gazzana et al. (2009): Оновлення щодо протеома печінки миші.
Penicillium digitatum
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Penicillium digitatum (патоген рослин) у середовищі росту Sabouraud.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200St
Довідкова / Наукова робота:
Лопес-Мало, А.; Палу, Е.; Хіменес-Фернандес, М.; Альзамора, С. М.; Герреро, С. (2005): Багатофакторна інактивація грибів, що поєднує термозвук та антимікробні препарати. Ж. Їжа Eng. 67/ 2005. Р. 87–93.
Ультразвукова інактивація Penicillium digitatum (патоген рослин) у середовищі росту Sabouraud.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200St
Довідкова / Наукова робота:
Лопес-Мало, А.; Палу, Е.; Хіменес-Фернандес, М.; Альзамора, С. М.; Герреро, С. (2005): Багатофакторна інактивація грибів, що поєднує термозвук та антимікробні препарати. Ж. Їжа Eng. 67/ 2005. Р. 87–93.
Фікоціанін з Spirulina platensis (Arthrospira platensis)
Застосування ультразвуку:
Екстракція фікоціаніну з клітин Spirulina platensis (Arthrospira platensis).
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Екстракція фікоціаніну з клітин Spirulina platensis (Arthrospira platensis).
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Рослинні клітини і тканини рослин
Застосування ультразвуку:
30% упакованих рослинних клітин (В/В) і дистильованої води порушуються ультразвуковим випромінюванням протягом 1-15 хв.; Розпад рослинної тканини: 1 г сухої тканини, зваженої в спирті, розпадається під час ультразвукового дослідження тривалістю близько 5 хв.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
30% упакованих рослинних клітин (В/В) і дистильованої води порушуються ультразвуковим випромінюванням протягом 1-15 хв.; Розпад рослинної тканини: 1 г сухої тканини, зваженої в спирті, розпадається під час ультразвукового дослідження тривалістю близько 5 хв.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Тромбоцитів
Застосування ультразвуку:
Препарат лізату тромбоцитів: розрив через 1-5 хв.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200Ht
Препарат лізату тромбоцитів: розрив через 1-5 хв.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200Ht
Pleurotus tuberregium
Застосування ультразвуку:
Екстракція полісахаридів з їстівного гриба Pleurotus tuberregium
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Екстракція полісахаридів з їстівного гриба Pleurotus tuberregium
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Полі(молочно-ко-гліколева кислота) (PLGA)
Застосування ультразвуку:
Приготування бичачого сироваткового альбуміну (BSA)-насиченої полі(молочно-ко-гліколевої кислоти) (PLGA) методом ультразвуку за 40 сек.
Рекомендація щодо пристрою:
Дміні; на 40 сек.
Довідкова / Наукова робота:
Freitas et al. (2005): Проточна ультразвукова емульгування в поєднанні зі статичним мікрозмішуванням для асептичного виробництва мікросфер шляхом екстракції розчинником.
Приготування бичачого сироваткового альбуміну (BSA)-насиченої полі(молочно-ко-гліколевої кислоти) (PLGA) методом ультразвуку за 40 сек.
Рекомендація щодо пристрою:
Дміні; на 40 сек.
Довідкова / Наукова робота:
Freitas et al. (2005): Проточна ультразвукова емульгування в поєднанні зі статичним мікрозмішуванням для асептичного виробництва мікросфер шляхом екстракції розчинником.
Поліфеноли з яблука
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова екстракція поліфенолів з яблука. Розчинник: водний. Збільшення врожайності на 6%; інтенсивність ультразвуку: 20-75 Вт/мл; Температура процесу: нагріта до 80 град.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP2000hd
Довідкова / Наукова робота:
Вільху, К.; Манасія, Р.; Моусон, Р.; Ашоккумар, М. (2011): Ультразвукове відновлення та модифікація харчових інгредієнтів. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для їжі та біопереробки. Нью-Йорк: Спрінгер, 2011. Р. 345-368.
Ультразвукова екстракція поліфенолів з яблука. Розчинник: водний. Збільшення врожайності на 6%; інтенсивність ультразвуку: 20-75 Вт/мл; Температура процесу: нагріта до 80 град.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP2000hd
Довідкова / Наукова робота:
Вільху, К.; Манасія, Р.; Моусон, Р.; Ашоккумар, М. (2011): Ультразвукове відновлення та модифікація харчових інгредієнтів. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для їжі та біопереробки. Нью-Йорк: Спрінгер, 2011. Р. 345-368.
Поліфеноли з чорного чаю
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова екстракція поліфенолів з чорного чаю. Розчинник: водний. Збільшення врожайності на 6-18%; інтенсивність ультразвуку: 8-10 Вт/мл; Тиск навколишнього середовища, температура процесу: нагрітий до 90 градС.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP2000hd
Довідкова / Наукова робота:
Вільху, К.; Манасія, Р.; Моусон, Р.; Ашоккумар, М. (2011): Ультразвукове відновлення та модифікація харчових інгредієнтів. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для їжі та біопереробки. Нью-Йорк: Спрінгер, 2011. Р. 345-368.
Ультразвукова екстракція поліфенолів з чорного чаю. Розчинник: водний. Збільшення врожайності на 6-18%; інтенсивність ультразвуку: 8-10 Вт/мл; Тиск навколишнього середовища, температура процесу: нагрітий до 90 градС.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP2000hd
Довідкова / Наукова робота:
Вільху, К.; Манасія, Р.; Моусон, Р.; Ашоккумар, М. (2011): Ультразвукове відновлення та модифікація харчових інгредієнтів. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для їжі та біопереробки. Нью-Йорк: Спрінгер, 2011. Р. 345-368.
Поліфеноли з червоних виноградних вичавок
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова екстракція поліфенолів з червоних виноградних вичавок. Розчинник: водний. Збільшення врожайності на 11-35%; інтенсивність ультразвуку: 20-75 Вт/мл; тиск навколишнього середовища.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP2000hd
Довідкова / Наукова робота:
Вільху, К.; Манасія, Р.; Моусон, Р.; Ашоккумар, М. (2011): Ультразвукове відновлення та модифікація харчових інгредієнтів. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для їжі та біопереробки. Нью-Йорк: Спрінгер, 2011. Р. 345-368.
Ультразвукова екстракція поліфенолів з червоних виноградних вичавок. Розчинник: водний. Збільшення врожайності на 11-35%; інтенсивність ультразвуку: 20-75 Вт/мл; тиск навколишнього середовища.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP2000hd
Довідкова / Наукова робота:
Вільху, К.; Манасія, Р.; Моусон, Р.; Ашоккумар, М. (2011): Ультразвукове відновлення та модифікація харчових інгредієнтів. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для їжі та біопереробки. Нью-Йорк: Спрінгер, 2011. Р. 345-368.
Поліфеноли, амінокислоти та кофеїн із зеленого чаю
Застосування ультразвуку:
Екстракція активних сполук із зеленого чаю у воді
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Екстракція активних сполук із зеленого чаю у воді
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Свинина: Розсіл свинячих корейок
Застосування ультразвуку:
Для ультразвукового розсолу свинячу корейку (Longissimus dorsi) занурювали в розсіл хлориду натрію (40 г L−1) і обробляли при температурі 5°C низькочастотним ультразвуком (20 кГц) при низькій інтенсивності (2–4 Вт/см−2). Досліджено вплив ультразвукового затвердіння на мікроструктуру свинячої тканини, денатурацію білків, водозв'язуючу здатність (WBC), водоутримуючу здатність (WHC), коефіцієнт дифузії хлориду натрію (D) та на текстурний профіль м'яса (TPA). Результати показали, що ультразвукова обробка викликала сприятливі мікроструктурні зміни в м'ясній тканині. Водоутримуюча здатність і текстурні властивості були покращені ультразвуковою обробкою в порівнянні як з перекинутими, так і зі статичними засоленими зразками. Однак ці позитивні ефекти значною мірою залежали від інтенсивності ультразвуку. Більш високі інтенсивності та/або довший час лікування спричиняли денатурацію білків. Модель коефіцієнта постійної дифузії змогла точно описати кінетику дифузії NaCl під час розведення. Ультразвукова обробка значно посилювала дифузію солі в порівнянні зі зразками, засоленими в статичних умовах, а коефіцієнт дифузії експоненціально збільшувався зі збільшенням інтенсивності ультразвуку.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200Ht з сонотроде S26d40
Довідкова / Наукова робота:
Сіро, І.; Вен, Чс.; Балла, Чс.; Йонас, Г.; Зік, І.; Фрідріх, Л. (2009): Застосування методики ультразвукового затвердіння для покращення дифузії хлориду натрію в м'ясі свиней. Журнал харчової інженерії 91/2, 2009. 353–362.
Для ультразвукового розсолу свинячу корейку (Longissimus dorsi) занурювали в розсіл хлориду натрію (40 г L−1) і обробляли при температурі 5°C низькочастотним ультразвуком (20 кГц) при низькій інтенсивності (2–4 Вт/см−2). Досліджено вплив ультразвукового затвердіння на мікроструктуру свинячої тканини, денатурацію білків, водозв'язуючу здатність (WBC), водоутримуючу здатність (WHC), коефіцієнт дифузії хлориду натрію (D) та на текстурний профіль м'яса (TPA). Результати показали, що ультразвукова обробка викликала сприятливі мікроструктурні зміни в м'ясній тканині. Водоутримуюча здатність і текстурні властивості були покращені ультразвуковою обробкою в порівнянні як з перекинутими, так і зі статичними засоленими зразками. Однак ці позитивні ефекти значною мірою залежали від інтенсивності ультразвуку. Більш високі інтенсивності та/або довший час лікування спричиняли денатурацію білків. Модель коефіцієнта постійної дифузії змогла точно описати кінетику дифузії NaCl під час розведення. Ультразвукова обробка значно посилювала дифузію солі в порівнянні зі зразками, засоленими в статичних умовах, а коефіцієнт дифузії експоненціально збільшувався зі збільшенням інтенсивності ультразвуку.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200Ht з сонотроде S26d40
Довідкова / Наукова робота:
Сіро, І.; Вен, Чс.; Балла, Чс.; Йонас, Г.; Зік, І.; Фрідріх, Л. (2009): Застосування методики ультразвукового затвердіння для покращення дифузії хлориду натрію в м'ясі свиней. Журнал харчової інженерії 91/2, 2009. 353–362.
Porphyra yezoensis
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова деградація полісахаридів з Porphyra yezoensis: 50 мл розчину полісаккаридів porphyra yezoensis (суха вага) було проведено ультразвукове дослідження протягом 4 годин за допомогою UP400S.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S; імпульсне ультразвукове дослідження (цикли: 2 с увімкнено / 2 сек вимкнено) при 20 °C.
Ультразвукова деградація полісахаридів з Porphyra yezoensis: 50 мл розчину полісаккаридів porphyra yezoensis (суха вага) було проведено ультразвукове дослідження протягом 4 годин за допомогою UP400S.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S; імпульсне ультразвукове дослідження (цикли: 2 с увімкнено / 2 сек вимкнено) при 20 °C.
Порошки
Застосування ультразвуку:
Подрібнення, деагломерація і диспергування до дрібних, відносних однорідних розмірів частинок.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200St
Подрібнення, деагломерація і диспергування до дрібних, відносних однорідних розмірів частинок.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200St
Щурячі кістки
Печінка щура
Застосування ультразвуку:
Руйнування та гомогенізація тканин за допомогою UP400S.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S; 3 рази по 30 сек.; на льоду.
Довідкова / Наукова робота:
Oh et al. (2003): Ген ацетил-КоА-карбоксилази регулюється стерином регуляторним елементом-зв'язуючим білком-1 у печінці. Журнал біологічної хімії, 2003.
Руйнування та гомогенізація тканин за допомогою UP400S.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S; 3 рази по 30 сек.; на льоду.
Довідкова / Наукова робота:
Oh et al. (2003): Ген ацетил-КоА-карбоксилази регулюється стерином регуляторним елементом-зв'язуючим білком-1 у печінці. Журнал біологічної хімії, 2003.
Шкіра щура
Равольфія Серпентина
ребаудіозид А
Застосування ультразвуку:
Зразки 10 г сухого та меленого листя стевії екстрагували у воді об'ємом 100 мл при безперервному перемішуванні (за допомогою магнітної мішалки). Значення рН контролювали за допомогою 0,01 М фосфату натрію рН 7. Зразок був поміщений у скляну склянку об'ємом 150 мл і проклятий ультразвуковим апаратом зондового типу (UIP500hd, 20 кГц, 500 Вт). Кінчик сонотроде був занурений приблизно на 1,5 см в кашку з листя стевії. Ультразвуковий апарат був налаштований на вихідну потужність 350 Вт. Легка ультразвукова обробка потужністю 350 Вт протягом 5-10 хв при постійній температурі процесу 30 ° C дала ребаудіозид А вихід 30-34 г на 100 г зразка. Після ультразвукового дослідження розчин екстракту центрифугували і відфільтровували через мікропористу мембрану 0,45 мкм; фільтрат був узятий для тотального аналізу вмісту ребаудіозиду А. Вихід екстракції загального вмісту ребаудіозиду А був проаналізований методом ВЕРХ.
За допомогою ультразвукової екстракції без розчинників було отримано високий вихід ребаудіозиду А порівняно з традиційними методами екстракції, такими як термічна екстракція або мацерація.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP500hd
Зразки 10 г сухого та меленого листя стевії екстрагували у воді об'ємом 100 мл при безперервному перемішуванні (за допомогою магнітної мішалки). Значення рН контролювали за допомогою 0,01 М фосфату натрію рН 7. Зразок був поміщений у скляну склянку об'ємом 150 мл і проклятий ультразвуковим апаратом зондового типу (UIP500hd, 20 кГц, 500 Вт). Кінчик сонотроде був занурений приблизно на 1,5 см в кашку з листя стевії. Ультразвуковий апарат був налаштований на вихідну потужність 350 Вт. Легка ультразвукова обробка потужністю 350 Вт протягом 5-10 хв при постійній температурі процесу 30 ° C дала ребаудіозид А вихід 30-34 г на 100 г зразка. Після ультразвукового дослідження розчин екстракту центрифугували і відфільтровували через мікропористу мембрану 0,45 мкм; фільтрат був узятий для тотального аналізу вмісту ребаудіозиду А. Вихід екстракції загального вмісту ребаудіозиду А був проаналізований методом ВЕРХ.
За допомогою ультразвукової екстракції без розчинників було отримано високий вихід ребаудіозиду А порівняно з традиційними методами екстракції, такими як термічна екстракція або мацерація.
Рекомендація щодо пристрою:
UIP500hd
рисовий крохмаль
Застосування ультразвуку:
Порушення, виділення крохмалю та розрив нековалентних зв'язків між білком і крохмалем у кашці з рисового борошна (33%) у 20 – 40 хв.
Рекомендація щодо пристрою:
UP500hd; 20 – 40 хв.
Порушення, виділення крохмалю та розрив нековалентних зв'язків між білком і крохмалем у кашці з рисового борошна (33%) у 20 – 40 хв.
Рекомендація щодо пристрою:
UP500hd; 20 – 40 хв.
Коловертки
Застосування ультразвуку:
Руйнування клітин мезозоопланктону: шляхом ультразвуку в наступних умовах чотирьох швидкостей потоку (200, 400, 520 і 800lh-1) і чотирьох амплітуд (25, 50, 75 і 100%) було досягнуто коефіцієнта знищення від 58 до 85%.
Рекомендація щодо пристрою:
UP2000 з проточною коміркою
Довідкова / Наукова робота:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і перекис водню як очищення баластних вод – Досліди з мезозоопланктоном в слабосолоній солонуватій воді. Журнал морської екологічної інженерії, 8(1), 35-55.
Руйнування клітин мезозоопланктону: шляхом ультразвуку в наступних умовах чотирьох швидкостей потоку (200, 400, 520 і 800lh-1) і чотирьох амплітуд (25, 50, 75 і 100%) було досягнуто коефіцієнта знищення від 58 до 85%.
Рекомендація щодо пристрою:
UP2000 з проточною коміркою
Довідкова / Наукова робота:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ультрафіолетове світло, ультразвук і перекис водню як очищення баластних вод – Досліди з мезозоопланктоном в слабосолоній солонуватій воді. Журнал морської екологічної інженерії, 8(1), 35-55.
С. fragilis
Saccharomyces cerevisiae
Застосування ультразвуку:
Порушення
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Довідкова / Наукова робота:
Герреро, С,; Лопес-Мало, А.; Альзамора, С. М. (2001): Вплив ультразвуку на виживаність Saccharomyces cerevisiae: вплив температури, рН та амплітуди. Іннов. Продовольчих наук Emerg Technol. 2/2001. Р. 31–39.
Порушення
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Довідкова / Наукова робота:
Герреро, С,; Лопес-Мало, А.; Альзамора, С. М. (2001): Вплив ультразвуку на виживаність Saccharomyces cerevisiae: вплив температури, рН та амплітуди. Іннов. Продовольчих наук Emerg Technol. 2/2001. Р. 31–39.
Saccharomyces cerevisiae
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Saccharomyces cerevisiae в живильному середовищі Сабуро та в сольовому розчині.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Довідкова / Наукова робота:
Яп, А.; Їранек, В.; Грбін, П.; Барнс, М.; Бейтс, Д. (2007): Дослідження застосування ультразвуку високої потужності для очищення та дезінфекції бочок і дощок. Австрія. Нова Зеландія Винна Індустрія. J. 22(3)/ 2007. Р. 96–104.
Ультразвукова інактивація Saccharomyces cerevisiae в живильному середовищі Сабуро та в сольовому розчині.
Рекомендація щодо пристрою:
UP400S
Довідкова / Наукова робота:
Яп, А.; Їранек, В.; Грбін, П.; Барнс, М.; Бейтс, Д. (2007): Дослідження застосування ультразвуку високої потужності для очищення та дезінфекції бочок і дощок. Австрія. Нова Зеландія Винна Індустрія. J. 22(3)/ 2007. Р. 96–104.
Шафран, крокус sativus
Застосування ультразвуку:
Екстракція активних сполук (ароматизаторів і барвників).
Натисніть тут, щоб прочитати більше про екстракцію з шафрану!
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H
Довідкова / Наукова робота:
Kadkhodaee та ін (2007): Ультразвукова екстракція активних сполук з шафрану. Акта Хортик. 739, 2007. 417-425.
Екстракція активних сполук (ароматизаторів і барвників).
Натисніть тут, щоб прочитати більше про екстракцію з шафрану!
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H
Довідкова / Наукова робота:
Kadkhodaee та ін (2007): Ультразвукова екстракція активних сполук з шафрану. Акта Хортик. 739, 2007. 417-425.
Salmonella Senftenberg 775W Gr-
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова інактивація Salmonella Senftenberg 775W Gr- у цитрат-фосфатному буфері McIlvaine або поживному бульйоні.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Довідкова / Наукова робота:
Альварес, І.; Манас, П.; Вірто, Р.; Кондон, С. (2006): Інактивація Salmonella Senftenberg 775W ультразвуковими хвилями під тиском при різних водних активностях. Ін-т Харчова мікробіола. 108/2006. Р. 218–225.
Ультразвукова інактивація Salmonella Senftenberg 775W Gr- у цитрат-фосфатному буфері McIlvaine або поживному бульйоні.
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Довідкова / Наукова робота:
Альварес, І.; Манас, П.; Вірто, Р.; Кондон, С. (2006): Інактивація Salmonella Senftenberg 775W ультразвуковими хвилями під тиском при різних водних активностях. Ін-т Харчова мікробіола. 108/2006. Р. 218–225.
Salvia miltiorrhiza bunge
Застосування ультразвуку:
Екстракція біологічно активних сполук: даншенсу натрію та чотирьох таншинонів (дигідротаншіон I, таншинон I, криптотаншинон та таншинон IIA).
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Екстракція біологічно активних сполук: даншенсу натрію та чотирьох таншинонів (дигідротаншіон I, таншинон I, криптотаншинон та таншинон IIA).
Рекомендація щодо пристрою:
UP100H
Шавлія лікарська
Застосування ультразвуку:
Екстракція активних сполук з шавлії лікарської (шавлії) менш ніж за 2 години.
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H
Екстракція активних сполук з шавлії лікарської (шавлії) менш ніж за 2 години.
Рекомендація щодо пристрою:
UP50H
сироватка
Кістозна печінка, легені та позитивна кров овець (антигени Echinococcus granulosus)
Застосування ультразвуку:
Кістозна печінка овець, легені та позитивна кров (антигени Echinococcus granulosus у ягнят): потім зразок проводили ультразвукове дослідження протягом 2 × 15 секунд на льоду, поки не було видно інтактних протосколіків.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S; 2 х 15 сек.
Довідкова / Наукова робота:
Tabar et al. (2009): Відповідь антитіл проти гідатидної рідини, протосколексу та всього організму антигенів Echinococcus granulosus у ягнят. Журнал ветеринарних досліджень, том 10, випуск 3; 2009. 283-288.
Кістозна печінка овець, легені та позитивна кров (антигени Echinococcus granulosus у ягнят): потім зразок проводили ультразвукове дослідження протягом 2 × 15 секунд на льоду, поки не було видно інтактних протосколіків.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S; 2 х 15 сек.
Довідкова / Наукова робота:
Tabar et al. (2009): Відповідь антитіл проти гідатидної рідини, протосколексу та всього організму антигенів Echinococcus granulosus у ягнят. Журнал ветеринарних досліджень, том 10, випуск 3; 2009. 283-288.
Сорбітант триолеат, етанол (як розчинник) і порошок Bi-2212
Застосування ультразвуку:
Деагломерат – суспензія, що містить диспергатор сорбітант триолеат, етанол (як розчинник) і порошок Bi-2212.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S; протягом 3 хв.
Довідкова / Наукова робота:
Mora et al. (2009): Виготовлення надпровідних покриттів на структурній керамічній плитці.
Деагломерат – суспензія, що містить диспергатор сорбітант триолеат, етанол (як розчинник) і порошок Bi-2212.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200S; протягом 3 хв.
Довідкова / Наукова робота:
Mora et al. (2009): Виготовлення надпровідних покриттів на структурній керамічній плитці.
Ізофлавони сої
Застосування ультразвуку:
ультразвукова екстракція ізофлавонів сої у воді та розчиннику. Підвищений вихід до 15% ефективності екстракції.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200St
Довідкова / Наукова робота:
Ростагно та ін (2003), посилання на Вільху К.; Манасія, Р.; Моусон, Р.; Ашоккумар, М. (2011): Ультразвукове відновлення та модифікація харчових інгредієнтів. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для їжі та біопереробки. Нью-Йорк: Спрінгер, 2011. Р. 345-368.
ультразвукова екстракція ізофлавонів сої у воді та розчиннику. Підвищений вихід до 15% ефективності екстракції.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200St
Довідкова / Наукова робота:
Ростагно та ін (2003), посилання на Вільху К.; Манасія, Р.; Моусон, Р.; Ашоккумар, М. (2011): Ультразвукове відновлення та модифікація харчових інгредієнтів. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для їжі та біопереробки. Нью-Йорк: Спрінгер, 2011. Р. 345-368.
Соєвий білок
Застосування ультразвуку:
Ультразвукова екстракція соєвого білка у воді та лузі (гідроксиді натрію). Збільшення врожайності на 53%. Вбудоване ультразвукове дослідження виявилося більш ефективним при пакетному видаленні (вбудоване ультразвукування дало на 23% вищий вихід, ніж при пакетному ультразвукуванні).
Рекомендація щодо пристрою:
UIP1000hd для партії / мензурки та з реактором з проточною коміркою для вбудованого ультразвуку.
Довідкова / Наукова робота:
Моултон і Ван (1982), посилання на Вільху, К.; Манасія, Р.; Моусон, Р.; Ашоккумар, М. (2011): Ультразвукове відновлення та модифікація харчових інгредієнтів. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для їжі та біопереробки. Нью-Йорк: Спрінгер, 2011. Р. 345-368.
Ультразвукова екстракція соєвого білка у воді та лузі (гідроксиді натрію). Збільшення врожайності на 53%. Вбудоване ультразвукове дослідження виявилося більш ефективним при пакетному видаленні (вбудоване ультразвукування дало на 23% вищий вихід, ніж при пакетному ультразвукуванні).
Рекомендація щодо пристрою:
UIP1000hd для партії / мензурки та з реактором з проточною коміркою для вбудованого ультразвуку.
Довідкова / Наукова робота:
Моултон і Ван (1982), посилання на Вільху, К.; Манасія, Р.; Моусон, Р.; Ашоккумар, М. (2011): Ультразвукове відновлення та модифікація харчових інгредієнтів. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ультразвукові технології для їжі та біопереробки. Нью-Йорк: Спрінгер, 2011. Р. 345-368.
Головки сперматозоїдів (людські)
Хвости сперматозоїдів (людина)
Stevia rebaudiana Bert.
Застосування ультразвуку:
Ультразвукову екстракцію глікозиду стевіозиду зі зразків 10 г сухого листя Stevia rebaudiana з чотирма розмірами частинок (0,315 мм, 2 мм, 6,3 мм та подрібнене сухе листя) змішували з різними розчинниками: дистильованою водою та сумішами вода/етанол (55% та 70%) з різним співвідношенням маси зразка до об'єму розчинника: 1/10, 1/8, 1/5 (w/v), а потім піддавали ультразвуковій обробці при кімнатній температурі. Час ультразвуку: < 5 хвилин.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200St
Ультразвукову екстракцію глікозиду стевіозиду зі зразків 10 г сухого листя Stevia rebaudiana з чотирма розмірами частинок (0,315 мм, 2 мм, 6,3 мм та подрібнене сухе листя) змішували з різними розчинниками: дистильованою водою та сумішами вода/етанол (55% та 70%) з різним співвідношенням маси зразка до об'єму розчинника: 1/10, 1/8, 1/5 (w/v), а потім піддавали ультразвуковій обробці при кімнатній температурі. Час ультразвуку: < 5 хвилин.
Рекомендація щодо пристрою:
UP200St
Зв'яжіться з нами! / Запитайте нас!
У цьому посібнику пояснюється, який тип ультразвукового апарату найкраще підходить для ваших завдань з підготовки зразків, таких як лізис, руйнування клітин, виділення білків, фрагментація ДНК та РНК у лабораторіях, аналіз та дослідження. Виберіть ідеальний тип звукового апарату для вашого застосування, обсяг зразка, номер зразка та пропускну здатність. Hielscher Ultrasonics має ідеальний ультразвуковий гомогенізатор для вас!
Як знайти ідеальний ультразвуковий засіб для руйнування клітин та екстракції білка в науці та аналізі
Високоефективні ультразвукові апарати для будь-яких розмірів
Руйнівники клітин Hielscher Ultrasonics і тканинні гомогенізатори доступні в будь-якому розмірі для будь-якого обсягу. Незалежно від того, чи потрібно вам проводити ультразвукове дослідження невеликих розмірів зразків, зразків маси, таких як 96-лункові пластини, середніх обсягів або вантажівок на годину, наше портфоліо пропонує ідеальний ультразвуковий апарат для вашого застосування. Компактні ручні ультразвукові гомогенізатори оптимальні для лабораторій та досліджень, тоді як наша промислова серія охоплює все від 0,5 кВт до 16 кВт на ультразвуковий процесор. Завдяки можливості встановлення у вигляді кластерів, за допомогою ультразвукових приладів Hielscher ви можете обробляти практично будь-які обсяги. Надійність ультразвукового обладнання Hielscher дозволяє працювати 24/7 у важких умовах і в складних умовах.
Складне та інтелектуальне програмне забезпечення забезпечує максимальний контроль процесу та зручність для оператора. Всі дані УЗД автоматично записуються на вбудовану SD-карту. Інші інтелектуальні функції включають попереднє налаштування та збереження параметрів звуку, підключення до локальної мережі та дистанційне керування браузером.
Наведена нижче таблиця дає уявлення про приблизну потужність обробки наших ультразвукових апаратів лабораторного розміру для гомогенізації тканин та інших завдань з підготовки зразків:
| Рекомендовані пристрої | Об'єм партії | Витрата |
|---|---|---|
| UIP400MTP 96-лунковий пластинчастий звуковий апарат | Багатолункові / мікротитрові пластини | Н.А. |
| Ультразвуковий CupHorn | CupHorn для флаконів або мензурки | Н.А. |
| GDmini2 | Ультразвуковий мікропотоковий реактор | Н.А. |
| VialTweeter | 0від .5 до 1.5 мл | Н.А. |
| UP100H | Від 1 до 500 мл | Від 10 до 200 мл/хв |
| UP200Ht, UP200St | Від 10 до 1000 мл | Від 20 до 200 мл/хв |
| UP400St | Від 10 до 2000 мл | Від 20 до 400 мл/хв |
| Ультразвуковий шейкер для сита | Н.А. | Н.А. |
Ультразвуковий апарат UP200Ht з мікронаконечником 2 мм S26d2 для ультразвукового дослідження невеликих зразків