Preparação ultrassónica de amostras para ensaios ELISA
Os ensaios como o ELISA são amplamente utilizados no diagnóstico in vitro, na deteção de proteínas associadas a doenças e no controlo de qualidade (por exemplo, na monitorização de alergénios alimentares). A preparação ultrassónica de amostras é uma técnica rápida, fiável e reprodutível para lisar células e isolar proteínas intracelulares, DNA, RNA e organelos. A Hielscher Ultrasonics oferece várias soluções ultrassónicas para a preparação prática de amostras individuais, de múltiplos frascos, bem como de placas de microtitulação e placas de 96 poços.
ELISA – Ensaio de imunoabsorção enzimática
ELISA significa ensaio de imunoabsorção enzimática e é uma técnica de análise bioquímica amplamente utilizada, pertencente à categoria dos ensaios de ligação a ligandos. No ELISA, adiciona-se uma amostra líquida a uma fase sólida estacionária com propriedades de ligação especiais. Normalmente, a fase sólida estacionária é aplicada como revestimento de uma placa de poços ou placa ELISA. Em seguida, adicionam-se sequencialmente vários reagentes líquidos, procede-se à incubação e à lavagem, de modo que, por fim, ocorre uma alteração ótica (por exemplo, o desenvolvimento de cor pelo produto de uma reação enzimática) no líquido final presente no poço. A alteração ótica permite medir a quantidade do analito através de uma chamada «leitura» quantitativa. Para a leitura quantitativa, utiliza-se um espectrofotómetro, fluorómetro ou luminómetro para detetar e medir a intensidade da luz transmitida. A sensibilidade da deteção é influenciada pela amplificação do sinal durante as reações analíticas. Uma vez que as reações enzimáticas são processos de amplificação bem estudados e fiáveis, utilizam-se enzimas para gerar o sinal. As enzimas estão ligadas aos reagentes de deteção em proporções fixas para permitir uma quantificação exata, o que também explica a designação «ligado a enzimas» do ensaio de imunoabsorção.
Como os ensaios ELISA são realizados em placas de microtitulação / placas de 96 poços, esta técnica é conhecida como uma técnica de ensaio baseada em placas e é utilizada, por exemplo, no diagnóstico clínico in vitro, na investigação, no desenvolvimento de fármacos, etc., para detetar e quantificar anticorpos, péptidos, proteínas e hormonas.
A técnica ELISA é frequentemente utilizada como ferramenta de diagnóstico em medicina, biotecnologia e fitopatologia, sendo também uma importante medida de controlo de qualidade em várias indústrias.
A unidade de preparação ultrassónica de amostras VialTweeter é utilizada para a lise celular e a extração de proteínas antes dos ensaios ELISA
Preparação ultrassónica de amostras antes do ELISA
Antes de se poder realizar o ensaio ELISA, as amostras necessitam de etapas de preparação, como a lise celular e a extração de proteínas intracelulares, DNA, RNA, etc. A vantagem da lise celular ultrassónica e do isolamento de proteínas é a sua elevada eficiência, fiabilidade e reprodutibilidade. Todos estes fatores são importantes para obter diagnósticos e resultados de investigação de elevada qualidade
- Tratamento homogéneo das amostras
- Lise completa
- Extração completa de proteínas (por exemplo, anticorpos, DNA)
- Adaptação ideal ao tipo de célula
- Para qualquer tamanho de amostra
- Reprodutível
- Com controlo de temperatura
- Registo automático de dados no cartão SD
Protocolo de lise celular ultrassónica antes do ELISA
- Para culturas celulares: Antes da lise celular ultrassónica, centrifugue as células durante 5 min a 270 x g numa microcentrífuga. Remova o sobrenadante por aspiração e ressuspenda as células em 30 – 100 μL de tampão RIPA. Em seguida, incube o sedimento celular em gelo durante 30 min.
- A amostra celular está agora pronta para a lise ultrassónica:
Utilize um sonicador de sonda (por exemplo, UP200Ht com sonda S26d2) ou um dispositivo ultrassónico para múltiplas amostras (por exemplo, VialTweeter para a sonicação simultânea de até 10 frascos ou o UIP400MPT para placas de microtitulação / placas de 96 poços), dependendo da quantidade de amostras que necessita de preparar.
Para a sonicação de uma amostra individual com uma sonda, coloque as células em tubos de microcentrífuga de 1,5 mL. - Predefina a duração do tratamento ultrassónico, a energia total fornecida, o modo de ciclo e/ou os limites de temperatura no menu digital do sonicador. Isto garante uma sonicação altamente fiável e repetibilidade.
- Introduza o sonotrodo e ligue o dispositivo ultrassónico. Desloque suavemente a microponta da sonda ultrassónica através da amostra para a sonicar uniformemente.
Para a maioria das células, a lise ultrassónica estará concluída após 2 – 4 ciclos de sonicação de 10 s. - Após a sonicação, retire o sonotrodo da amostra. As amostras devem ser incubadas em gelo durante 5 min. Em seguida, centrifugue a 10 000 x g durante 20 min para sedimentar os detritos. Transfira os sobrenadantes para um novo tubo de microcentrífuga. Identifique os analitos e armazene a -20°C.
- O sonotrodo ultrassónico pode ser limpo passando-lhe cuidadosamente um pano com álcool ou por sonicação num copo de laboratório cheio de álcool, por exemplo, etanol a 70%. Todas as sondas ultrassónicas fabricadas em titânio podem ser esterilizadas em autoclave.
Extração de proteínas de células de E.coli com a sonda ultrassónica UP200St
- Lave o tecido com PBS gelado (0,01M, pH=7,4) para remover completamente o excesso de sangue hemolisado.
- Pese o tecido (rim, coração, pulmão, baço, etc.) e macere-o em pequenos pedaços, que são homogeneizados em PBS. O volume de PBS necessário está relacionado com o peso do tecido. Como regra prática, 1g de tecido requer aproximadamente 9mL de PBS. Recomenda-se adicionar ao PBS um inibidor de proteases. (Em alternativa, pode utilizar-se RIPA ou um tampão de lise hipotónico que contenha uma mistura de inibidores de proteases e fosfatases.)
- Dependendo do tamanho do tecido, um breve tratamento com vórtex (aproximadamente 1–2 min. em impulsos de 15 s) pode ser útil para o pré-tratamento do tecido.
- Monte uma microponta, por exemplo, S26d2, no seu sonicador. Coloque o tubo de amostra com o tecido num banho de gelo.
- Sonique a amostra com o seu sonicador, por exemplo, UP200St (80% de amplitude), durante 1 min. em modo pulsado (15s ligado, 15s de pausa). Mantenha a amostra no banho de gelo.
- Os homogenatos são depois centrifugados para obter frações específicas (citosólicas, nucleares, mitocondriais ou lisossomais), a fim de enriquecer a proteína para análise. Ao centrifugar a amostra durante 5 minutos a 5000×g, recolhe-se o sobrenadante.
Controlo fiável da temperatura durante a sonicação
A temperatura é um fator crucial que influencia o processo e é especialmente importante no tratamento de amostras biológicas, por exemplo, para evitar a degradação térmica das proteínas. Tal como todas as técnicas mecânicas de preparação de amostras, a sonicação gera calor. Contudo, a temperatura das amostras pode ser bem controlada quando se utilizam os dispositivos da Hielscher Ultrasonics. Apresentamos várias opções para monitorizar e controlar a temperatura das suas amostras durante a preparação pré-analítica com um sonicador de sonda ou o VialTweeter.
- Monitorização da temperatura da amostra: Todos os processadores ultrassónicos digitais da Hielscher estão equipados com software inteligente e um sensor de temperatura conectável. Ligue o sensor de temperatura ao dispositivo ultrassónico (por exemplo, UP200Ht, UP200St, VialTweeter, sonicador para placas de múltiplos poços UIP400MTP) e introduza a ponta do sensor de temperatura num dos tubos de amostra. Através do ecrã tátil digital a cores, pode definir, no menu do processador ultrassónico, um intervalo de temperatura específico para a sonicação da sua amostra. O sonicador para automaticamente quando se atinge a temperatura máxima e permanece em pausa até a temperatura da amostra descer para o valor inferior da temperatura ∆ definida. Em seguida, a sonicação recomeça automaticamente. Esta funcionalidade inteligente evita a degradação induzida pelo calor.
- No caso da unidade ultrassónica para múltiplas amostras VialTweeter, o bloco de titânio que contém os tubos de amostra pode ser pré-arrefecido. Colocar o bloco VialTweeter (apenas o sonotrodo, sem o transdutor!) no frigorífico ou no congelador para pré-arrefecer o bloco de titânio ajuda a retardar o aumento da temperatura na amostra. Se possível, a própria amostra também pode ser pré-arrefecida.
- Utilize um banho de gelo ou gelo seco para arrefecer durante a sonicação. Coloque o(s) tubo(s) de amostra num banho de gelo durante a sonicação. Para o VialTweeter, utilize um tabuleiro pouco profundo cheio de gelo seco e coloque o VialTweeter sobre o gelo seco, para que o calor se possa dissipar rapidamente.
Clientes de todo o mundo utilizam os sonicadores de sonda da Hielscher, bem como as unidades de sonicação para múltiplas amostras VialTweeter e UIP400MTP, no seu trabalho diário de preparação de amostras em laboratórios biológicos, bioquímicos, médicos e clínicos. Com o software inteligente e o controlo de temperatura dos processadores da Hielscher, a temperatura é controlada de forma fiável e evita-se a degradação das amostras induzida pelo calor. A preparação ultrassónica de amostras com as soluções ultrassónicas da Hielscher proporciona resultados altamente fiáveis e reprodutíveis!
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Bibliografia / Referências
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- Claudia Lindemann, Nataliya Lupilova, Alexandra Müller, Bettina Warscheid, Helmut E. Meyer, Katja Kuhlmann, Martin Eisenacher, Lars I. Leichert (2013): Redox Proteomics Uncovers Peroxynitrite-Sensitive Proteins that Help Escherichia coli to Overcome Nitrosative Stress. J Biol Chem. 2013 Jul 5; 288(27): 19698–19714.
- Elahe Motevaseli, Mahdieh Shirzad, Seyed Mohammad Akrami, Azam-Sadat Mousavi, Akbar Mirsalehian, Mohammad Hossein Modarressi (2013): Normal and tumour cervical cells respond differently to vaginal lactobacilli, independent of pH and lactate. ed. Microbiol. 2013 Jul; 62(Pt 7):1065-1072.
- Nico Böhmer, Andreas Dautel, Thomas Eisele, Lutz Fischer (2012): Recombinant expression, purification and characterisation of the native glutamate racemase from Lactobacillus plantarum NC8. Protein Expr Purif. 2013 Mar;88(1):54-60.
Informações úteis
Que tipos de ELISA existem?
Existem vários tipos de ELISA, que se distinguem pelo seu princípio de funcionamento. São conhecidos como ELISA direto, ELISA indireto, ELISA em sanduíche, ELISA competitivo e ELISA inverso. A seguir, apresentamos uma visão geral dos vários tipos de ELISA e das suas principais características e diferenças.
O ELISA pode ser realizado num formato qualitativo ou quantitativo. Os resultados qualitativos fornecem um simples resultado positivo ou negativo, enquanto no ELISA quantitativo a densidade ótica (OD) da amostra é comparada com uma curva padrão, que consiste normalmente numa diluição em série de uma solução de concentração conhecida da molécula-alvo.
ELISA direto
O ELISA direto é a forma mais simples de ensaio ELISA, em que se utiliza apenas um anticorpo primário marcado com uma enzima e não são necessários anticorpos secundários. O anticorpo primário marcado com uma enzima liga-se diretamente ao alvo, ou seja, ao antigénio. A solução tamponada de antigénio é adicionada a cada poço de uma placa de microtitulação (normalmente placas de 96 poços, placas ELISA), onde adere à superfície plástica através de interações de carga. Quando a enzima ligada ao anticorpo primário reage com o seu substrato, produz um sinal visível que pode ser medido através de um espectrofotómetro, fluorómetro ou luminómetro.
ELISA indireto
Para o teste ELISA indireto, são necessários um anticorpo primário e um anticorpo secundário. Contudo, ao contrário do ELISA direto, é o anticorpo secundário que é marcado com uma enzima, em vez do anticorpo primário. O antigénio é imobilizado na placa de poços e o anticorpo primário liga-se a ele. Posteriormente, o anticorpo secundário marcado com uma enzima liga-se ao anticorpo primário. Por fim, a enzima ligada ao anticorpo secundário reage com o seu substrato para produzir um sinal visível que pode ser detetado.
ELISA em sanduíche
Enquanto nos testes ELISA direto e indireto o antigénio é imobilizado e aplicado como revestimento na superfície da placa de poços, no ELISA em sanduíche o anticorpo é imobilizado na superfície plástica da placa ELISA. Os anticorpos imobilizados no ELISA em sanduíche são conhecidos como anticorpos de captura. Além dos anticorpos de captura, no ELISA em sanduíche também são necessários os chamados anticorpos de deteção. Os anticorpos de deteção incluem um anticorpo primário de deteção não marcado e um anticorpo secundário de deteção marcado com uma enzima.
Numa sequência de etapas, o antigénio de interesse liga-se ao anticorpo de captura imobilizado na placa. Em seguida, o anticorpo primário de deteção liga-se ao antigénio. Depois, o anticorpo secundário de deteção liga-se ao anticorpo primário de deteção. Na etapa final da reação, a enzima reage com o seu substrato para produzir um sinal visível que pode ser detetado oticamente.
ELISA competitivo
O ELISA competitivo, também conhecido como ELISA de inibição, é o tipo de ELISA mais complexo porque envolve a utilização de um antigénio inibidor. Cada um dos três formatos, ELISA direto, indireto e em sanduíche, pode ser adaptado ao formato ELISA competitivo. No ELISA competitivo, o antigénio inibidor e o antigénio de interesse competem pela ligação ao anticorpo primário.
Para o ELISA competitivo, incuba-se um anticorpo não marcado na presença do seu antigénio, ou seja, da amostra. Estes complexos ligados de anticorpo/antigénio são depois adicionados a um poço revestido com antigénio.
A placa é lavada para remover os anticorpos não ligados. O ELISA competitivo tem este nome porque, quanto mais antigénio existir na amostra, mais complexos antigénio-anticorpo se formam. Isto significa que há menos anticorpos não ligados disponíveis para se ligarem ao antigénio no poço e que os antigénios têm de competir por um anticorpo disponível. Adiciona-se um anticorpo secundário correspondente ao anticorpo primário. Este segundo anticorpo está ligado à enzima. Quando se adiciona o substrato, as enzimas restantes produzem um sinal cromogénico ou fluorescente.
Nesta altura, a reação é interrompida para evitar a eventual saturação do sinal.
Alguns kits de ELISA competitivo incluem um antigénio ligado a uma enzima em vez de um anticorpo ligado a uma enzima. O antigénio marcado compete com o antigénio da amostra (não marcado) pelos locais de ligação do anticorpo primário. Quanto menos antigénio existir na amostra, mais antigénio marcado é retido no poço e mais forte é o sinal.
ELISA inverso
O ELISA inverso mantém os antigénios em suspensão no fluido de teste, sem utilizar placas de poços. O teste ELISA inverso mede a quantidade de anticorpo ligado através do antigénio. Foi desenvolvido especificamente para detetar e investigar a proteína do envelope do vírus do Nilo Ocidental e a forma como é capaz de encontrar anticorpos específicos do vírus.
Que marcadores enzimáticos são utilizados no ELISA?
A lista abaixo apresenta os marcadores enzimáticos mais comuns utilizados nos ensaios ELISA, que permitem medir os resultados do ensaio após a sua conclusão.
- A OPD (dicloridrato de o-fenilenodiamina) adquire uma cor âmbar para detetar a HRP (peroxidase de rábano), que é frequentemente utilizada como proteína conjugada.
- A TMB (3,3′,5,5′-tetrametilbenzidina) adquire uma cor azul ao detetar a HRP e uma cor amarela após a adição de ácido sulfúrico ou fosfórico.
- O ABTS (sal de diamónio do ácido 2,2′-azinobis [3-etilbenzotiazolina-6-sulfónico]) adquire uma cor verde ao detetar a HRP.
- O PNPP (fosfato de p-nitrofenilo, sal dissódico) adquire uma cor amarela ao detetar a fosfatase alcalina.

