Produkcja chityny i chitozanu z grzybów
Sonikacja jest wysoce wydajną metodą uwalniania chityny i chitozanu ze źródeł grzybowych, takich jak grzyby kapeluszowe. Chityna i chitozan muszą zostać poddane depolimeryzacji i deacetylacji na dalszych etapach przetwarzania, aby uzyskać biopolimer wysokiej jakości. Wspomagane ultradźwiękami depolimeryzacja i deacetylacja stanowią wysoce skuteczną, prostą i szybką technikę, która pozwala uzyskać wysokiej jakości chitozany o dużej masie cząsteczkowej i lepszej biodostępności.
Chityna i chitozan z grzybów otrzymywane za pomocą sonikacji
Grzyby jadalne i lecznicze, takie jak Lentinus edodes (shiitake), Ganoderma lucidum (lingzhi lub reishi), Inonotus obliquus (czaga), Agaricus bisporus (pieczarka dwuzarodnikowa), Hericium erinaceus (soplówka jeżowata), Cordyceps sinensis (maczużnik chiński), Grifola frondosa (żagwica listkowata), Trametes versicolor (Coriolus versicolor, Polyporus versicolor, wrośniak różnobarwny) oraz wiele innych gatunków grzybów są szeroko wykorzystywane jako żywność oraz do ekstrakcji związków bioaktywnych. Grzyby te, a także pozostałości po ich przetwarzaniu (odpady grzybowe), mogą być wykorzystywane do produkcji chitozanu. Sonikacja nie tylko wspomaga uwalnianie chityny ze struktury ściany komórkowej grzybów, lecz także prowadzi do przekształcania chityny w cenny chitozan poprzez wspomagane ultradźwiękami depolimeryzację i deacetylację.
Intensywna sonikacja z wykorzystaniem układu ultradźwiękowego z sonotrodą jest techniką stosowaną do wspomagania depolimeryzacji i deacetylacji chityny, prowadzących do powstawania chitozanu. Chityna jest naturalnie występującym polisacharydem obecnym w egzoszkieletach skorupiaków i owadów oraz w ścianach komórkowych niektórych grzybów. Chitozan otrzymuje się z chityny poprzez usunięcie grup acetylowych z jej cząsteczki.
Ultradźwiękowa procedura przekształcania chityny grzybowej w chitozan
Podczas stosowania intensywnej sonikacji do produkcji chitozanu z chityny zawiesinę chityny poddaje się działaniu fal ultradźwiękowych o wysokiej intensywności i niskiej częstotliwości, zwykle w zakresie od 20 kHz do 30 kHz. Proces ten generuje intensywną kawitację akustyczną, polegającą na powstawaniu, wzroście i zapadaniu się mikroskopijnych pęcherzyków próżniowych w cieczy. Kawitacja wytwarza lokalnie niezwykle duże siły ścinające, wysokie temperatury (do kilku tysięcy stopni Celsjusza) i ciśnienia (do kilkuset atmosfer) w cieczy otaczającej pęcherzyki kawitacyjne. Te ekstremalne warunki przyczyniają się do rozpadu polimeru chityny i następującej po nim deacetylacji.
Obrazy SEM chityn i chitozanów z dwóch gatunków grzybów: a) chityna z L. vellereus; b) chityna z P. ribis; c) chitozan z L.vellereus; d) chitozan z P. ribis.
zdjęcie i badanie: © Erdoğan et al., 2017
Ultradźwiękowa depolimeryzacja chityny
Depolimeryzacja chityny zachodzi wskutek łącznego działania sił mechanicznych, takich jak mikroprzepływy i strumienie cieczy, a także inicjowanych ultradźwiękami reakcji chemicznych wywoływanych przez wolne rodniki i inne reaktywne formy powstające podczas kawitacji. Fale wysokiego ciśnienia generowane podczas kawitacji poddają łańcuchy chityny naprężeniom ścinającym, powodując rozszczepienie polimeru na mniejsze fragmenty.
Ultradźwiękowa deacetylacja chityny
Oprócz depolimeryzacji intensywna sonikacja wspomaga również deacetylację chityny. Deacetylacja polega na usunięciu grup acetylowych z cząsteczki chityny, co prowadzi do powstania chitozanu. Intensywna energia ultradźwiękowa, a w szczególności wysokie temperatury i ciśnienia generowane podczas kawitacji, przyspieszają reakcję deacetylacji. Warunki sprzyjające reakcjom, wytwarzane przez kawitację, pomagają rozrywać wiązania grup acetylowych w chitynie, prowadząc do uwalniania kwasu octowego i przekształcania chityny w chitozan.
Ogólnie intensywna sonikacja usprawnia zarówno depolimeryzację, jak i deacetylację, dostarczając energii mechanicznej i chemicznej niezbędnej do rozkładu polimeru chityny i ułatwienia jego przekształcenia w chitozan. Technika ta stanowi szybką i wydajną metodę produkcji chitozanu z chityny, mającą liczne zastosowania w różnych branżach, w tym w farmacji, rolnictwie i inżynierii biomedycznej.
Przemysłowa produkcja chitozanu z grzybów za pomocą ultradźwięków dużej mocy
Komercyjna produkcja chityny i chitozanu opiera się głównie na odpadach z branż morskich (tj. rybołówstwa, pozyskiwania skorupiaków i mięczaków itp.). Różne źródła surowców prowadzą do uzyskiwania chityny i chitozanu o różnej jakości, co skutkuje wahaniami produkcji i jakości związanymi z sezonową zmiennością połowów. Ponadto według doniesień chitozan pochodzący ze źródeł grzybowych wykazuje lepsze właściwości, takie jak jednorodna długość łańcuchów polimeru i większa rozpuszczalność, w porównaniu z chitozanem ze źródeł morskich. (por. Ghormade et al., 2017) Aby zapewnić dostawy chitozanu o jednolitych właściwościach, ekstrakcja chityny z gatunków grzybów stała się stabilną alternatywną metodą produkcji. Produkcję chityny i chitozanu z grzybów można prowadzić łatwo i niezawodnie, wykorzystując technologię ultradźwiękowej ekstrakcji i deacetylacji. Intensywna sonikacja rozbija struktury komórkowe, uwalniając chitynę, i wspomaga transport masy w rozpuszczalnikach wodnych, zapewniając większy uzysk chityny i lepszą wydajność ekstrakcji. Następująca po niej ultradźwiękowa deacetylacja przekształca chitynę w cenny chitozan. Zarówno ultradźwiękową ekstrakcję chityny, jak i jej deacetylację do chitozanu można skalować liniowo do dowolnego poziomu produkcji komercyjnej.
Sonikator UP400St do ekstrakcji z grzybów: sonikacja zapewnia wysoki uzysk związków bioaktywnych, takich jak polisacharydy chityna i chitozan
Wyniki badań nad ultradźwiękową deacetylacją chityny i chitozanu
Zhu et al. (2018) stwierdzają w swoim badaniu, że ultradźwiękowa deacetylacja okazała się kluczowym przełomem, umożliwiając przekształcenie β-chityny w chitozan o stopniu deacetylacji 83–94% przy obniżonych temperaturach reakcji. Zdjęcie po lewej przedstawia obraz SEM chitozanu poddanego ultradźwiękowej deacetylacji (90 W, 15 min, 20 w/v% NaOH, 1:15 (g: mL) (zdjęcie i badanie: © Zhu et al., 2018)
W ich procedurze roztwór NaOH (20 w/v %) przygotowano przez rozpuszczenie płatków NaOH w wodzie dejonizowanej. Następnie roztwór zasady dodano do osadu GLSP (0,5 g) w probówce wirówkowej, przy stosunku fazy stałej do cieczy wynoszącym 1:20 (g: mL). Chitozan dodano do NaCl (40 mL, 0,2 M) i kwasu octowego (0,1 M) przy stosunku objętości roztworów 1:1. Następnie zawiesinę poddano działaniu ultradźwięków w łagodnej temperaturze 25°C przez 60 min za pomocą sonikatora z sonotrodą (250W, 20kHz). (por. Zhu et al., 2018)
Pandit et al. (2021) stwierdzili, że stężenia kwasu stosowanego do rozpuszczania polimeru rzadko wpływają na szybkość degradacji roztworów chitozanu, a szybkość ta w dużej mierze zależy od temperatury, intensywności fal ultradźwiękowych i siły jonowej ośrodków stosowanych do rozpuszczania polimeru. (por. Pandit et al., 2021)
W innym badaniu Zhu et al. (2019) wykorzystali proszki z zarodników Ganoderma lucidum jako surowiec grzybowy i badali deacetylację wspomaganą ultradźwiękami oraz wpływ parametrów przetwarzania, takich jak czas sonikacji, stosunek fazy stałej do cieczy, stężenie NaOH i moc napromieniania, na stopień deacetylacji (DD) chitozanu. Najwyższą wartość DD uzyskano przy następujących parametrach ultradźwiękowych: 20 min sonikacji przy 80W, 10% (g:ml) NaOH, 1:25 (g:ml). Morfologię powierzchni, grupy chemiczne, stabilność termiczną i krystaliczność chitozanu otrzymanego ultradźwiękowo zbadano za pomocą SEM, FTIR, TG i XRD. Zespół badawczy donosi o znaczącym zwiększeniu stopnia deacetylacji (DD), lepkości dynamicznej ([η]) i masy cząsteczkowej (Mv¯) chitozanu wytworzonego ultradźwiękowo. Wyniki podkreśliły, że technika ultradźwiękowej deacetylacji materiału grzybowego jest wysoce skuteczną metodą produkcji chitozanu nadającego się do zastosowań biomedycznych. (por. Zhu et al., 2019)
Lepsza jakość chitozanu dzięki ultradźwiękowej depolimeryzacji i deacetylacji
Procesami ekstrakcji i depolimeryzacji chityny / chitozanu prowadzonymi za pomocą ultradźwięków można precyzyjnie sterować, a parametry procesu ultradźwiękowego można dostosować do surowców i docelowej jakości produktu końcowego (np. masy cząsteczkowej, stopnia deacetylacji). Pozwala to dostosować proces ultradźwiękowy do czynników zewnętrznych i ustawić optymalne parametry w celu uzyskania lepszych rezultatów i wydajności.
Chitozan poddany ultradźwiękowej deacetylacji wykazuje doskonałą biodostępność i biokompatybilność. Przy porównaniu właściwości biomedycznych biopolimerów chitozanu przygotowanych ultradźwiękowo z chitozanem otrzymanym termicznie chitozan wytworzony ultradźwiękowo wykazuje znacznie lepszą żywotność fibroblastów (komórek L929) oraz zwiększoną aktywność przeciwbakteryjną zarówno wobec Escherichia coli (E. coli), jak i Staphylococcus aureus (S. aureus).
(por. Zhu et al., 2018)
Obrazy ze skaningowej mikroskopii elektronowej (SEM) w powiększeniu 100× przedstawiające a) gladius, b) gladius poddany działaniu ultradźwięków, c) β-chitynę, d) β-chitynę poddaną działaniu ultradźwięków oraz e) chitozan (źródło: Preto et al. 2017)
Wysokowydajne urządzenia ultradźwiękowe do przetwarzania chityny i chitozanu
Fragmentacja chityny i deacetylacja chityny do chitozanu wymagają wydajnych i niezawodnych urządzeń ultradźwiękowych, które mogą zapewniać wysokie amplitudy, umożliwiają precyzyjne sterowanie parametrami procesu i mogą pracować 24/7 pod dużym obciążeniem oraz w wymagających warunkach. Gama produktów Hielscher Ultrasonics niezawodnie spełnia te wymagania. Oprócz wyjątkowej wydajności ultradźwiękowej sonikatory Hielscher wyróżniają się wysoką sprawnością energetyczną, co stanowi znaczącą korzyść ekonomiczną – szczególnie przy zastosowaniu w komercyjnej produkcji na dużą skalę.
Sonikatory Hielscher to wysokowydajne systemy, które można wyposażyć w akcesoria, takie jak sonotrody, wzmacniacze amplitudy, reaktory lub komory przepływowe, aby optymalnie dopasować je do potrzeb procesu.
Dzięki cyfrowemu kolorowemu wyświetlaczowi, możliwości wstępnego programowania przebiegów sonikacji, automatycznemu zapisywaniu danych na zintegrowanej karcie SD, zdalnemu sterowaniu przez przeglądarkę i wielu innym funkcjom sonikatory Hielscher zapewniają najwyższy poziom kontroli procesu i łatwości obsługi. W połączeniu z solidną konstrukcją i zdolnością do pracy pod dużym obciążeniem systemy ultradźwiękowe Hielscher są niezawodnymi urządzeniami do intensywnej pracy w produkcji.
Fragmentacja i deacetylacja chityny wymagają ultradźwięków dużej mocy, aby uzyskać docelową konwersję i końcowy produkt chitozanowy wysokiej jakości. Wysokie amplitudy i podwyższone ciśnienia mają kluczowe znaczenie zwłaszcza dla fragmentacji płatków chityny oraz etapów depolimeryzacji / deacetylacji. Przemysłowe procesory ultradźwiękowe Hielscher Ultrasonics z łatwością zapewniają bardzo wysokie amplitudy. Amplitudy do 200µm można utrzymywać nieprzerwanie podczas pracy 24/7. Dla jeszcze wyższych amplitud dostępne są sonotrody ultradźwiękowe wykonywane na zamówienie. Moc systemów ultradźwiękowych Hielscher umożliwia wydajną i szybką depolimeryzację i deacetylację w bezpiecznym i łatwym w obsłudze procesie.
Reaktor ultradźwiękowy z sonotrodą UIP2000hdT o mocy 2000W do ekstrakcji chityny z grzybów i następującej po niej depolimeryzacji / deacetylacji
| Objętość partii | Natężenie przepływu | Zalecane urządzenia |
|---|---|---|
| 1 do 500mL | 10 do 200mL/min | UP100H |
| 10 do 2000mL | 20 do 400mL/min | UP200Ht, UP400St |
| 0,1 do 20L | 0,2 do 4L/min | UIP2000hdT |
| 10 do 100L | 2 do 10L/min | UIP4000hdT |
| nie dotyczy | 10 do 100L/min | UIP16000 |
| nie dotyczy | większe | zespół urządzeń UIP16000 |
Skontaktuj się z nami! / Zapytaj nas!
Synergistyczna obróbka chityny usprawniona przez sonikację
Aby przezwyciężyć wady (tj. niską wydajność, wysokie koszty energii, długi czas przetwarzania, toksyczne rozpuszczalniki) tradycyjnej chemicznej i enzymatycznej deacetylacji chityny, do przetwarzania chityny i chitozanu wprowadzono ultradźwięki o wysokiej intensywności. Sonikacja o wysokiej intensywności i wynikające z niej efekty kawitacji akustycznej prowadzą do szybkiego rozszczepiania łańcuchów polimeru i zmniejszają polidyspersyjność, wspomagając tym samym syntezę chitozanu. Ponadto ultradźwiękowe siły ścinające intensyfikują transport masy w roztworze, dzięki czemu usprawniają reakcje chemiczne, hydrolityczne lub enzymatyczne. Ultradźwiękową obróbkę chityny można łączyć z istniejącymi już technikami jej przetwarzania, takimi jak metody chemiczne, hydroliza lub procedury enzymatyczne.
Chemiczna deacetylacja i depolimeryzacja wspomagane ultradźwiękami
Ponieważ chityna jest niereaktywnym i nierozpuszczalnym biopolimerem, musi przejść etapy demineralizacji, deproteinizacji i depolimeryzacji / deacetylacji, aby uzyskać rozpuszczalny i biodostępny chitozan. Te etapy procesu obejmują obróbkę mocnymi kwasami, takimi jak HCl, i mocnymi zasadami, takimi jak NaOH i KOH. Ponieważ te konwencjonalne etapy procesu są niewydajne, powolne i wymagają dużych nakładów energii, intensyfikacja procesu przez sonikację znacząco usprawnia produkcję chitozanu. Zastosowanie ultradźwięków dużej mocy zwiększa uzysk i jakość chitozanu, skraca proces z kilku dni do kilku godzin, pozwala stosować łagodniejsze rozpuszczalniki i sprawia, że cały proces jest bardziej energooszczędny.
Deproteinizacja chityny usprawniona ultradźwiękami
Vallejo-Dominguez et al. (2021) stwierdzili w badaniu deproteinizacji chityny, że „zastosowanie ultradźwięków do produkcji biopolimerów zmniejszyło zawartość białka oraz wielkość cząstek chityny. Dzięki wspomaganiu ultradźwiękami otrzymano chitozan o wysokim stopniu deacetylacji i średniej masie cząsteczkowej”.
Ultradźwiękowa hydroliza do depolimeryzacji chityny
W hydrolizie chemicznej do deacetylacji chityny stosuje się kwasy lub zasady, jednak deacetylacja zasadowa (np. z wykorzystaniem wodorotlenku sodu NaOH) jest stosowana szerzej. Hydroliza kwasowa jest metodą alternatywną wobec tradycyjnej deacetylacji chemicznej; wykorzystuje się w niej roztwory kwasów organicznych do depolimeryzacji chityny i chitozanu. Metodę hydrolizy kwasowej stosuje się przede wszystkim wtedy, gdy masa cząsteczkowa chityny i chitozanu musi być jednorodna. Ten konwencjonalny proces hydrolizy jest znany jako powolny, energochłonny i kosztowny. Konieczność stosowania mocnych kwasów, wysokich temperatur i ciśnień sprawia, że hydrolityczny proces otrzymywania chitozanu jest bardzo kosztowną i czasochłonną procedurą. Stosowane kwasy wymagają dalszych procesów, takich jak neutralizacja i odsalanie.
Włączenie ultradźwięków dużej mocy do procesu hydrolizy pozwala znacznie obniżyć wymagania dotyczące temperatury i ciśnienia dla hydrolitycznego rozszczepiania chityny i chitozanu. Ponadto sonikacja umożliwia stosowanie niższych stężeń kwasów lub łagodniejszych kwasów. Dzięki temu proces jest bardziej zrównoważony, wydajny, opłacalny i przyjaźniejszy dla środowiska.
Chemiczna deacetylacja wspomagana ultradźwiękami
Chemiczną dezintegrację i deacetylację chityny i chitozanu uzyskuje się głównie poprzez obróbkę chityny lub chitozanu kwasami mineralnymi (np. kwasem chlorowodorowym HCl), azotynem sodu (NaNO2) lub nadtlenkiem wodoru (H2O2). Ultradźwięki zwiększają szybkość deacetylacji, skracając tym samym czas reakcji wymagany do uzyskania docelowego stopnia deacetylacji. Oznacza to, że sonikacja skraca wymagany czas przetwarzania z 12–24 godzin do kilku godzin. Ponadto sonikacja pozwala stosować znacznie niższe stężenia substancji chemicznych, na przykład 40% (w/w) wodorotlenku sodu przy zastosowaniu sonikacji, podczas gdy bez użycia ultradźwięków wymagane jest 65% (w/w).
Deacetylacja ultradźwiękowo-enzymatyczna
Chociaż enzymatyczna deacetylacja jest łagodną i przyjazną dla środowiska formą przetwarzania, jej wydajność i koszty sprawiają, że jest nieopłacalna. Ze względu na złożone, pracochłonne i kosztowne izolowanie i oczyszczanie enzymów z produktu końcowego na dalszych etapach procesu enzymatyczna deacetylacja chityny nie jest wdrażana w produkcji komercyjnej, lecz stosowana wyłącznie w laboratoriach badań naukowych.
Wstępna obróbka ultradźwiękowa przed enzymatyczną deacetylacją fragmentuje cząsteczki chityny, zwiększając tym samym powierzchnię i udostępniając enzymom większą jej część. Wysokowydajna sonikacja pomaga usprawnić enzymatyczną deacetylację i czyni proces bardziej ekonomicznym.
Literatura / Źródła
- Ospina Álvarez S.P., Ramírez Cadavid D.A., Escobar Sierra D.M., Ossa Orozco C.P., Rojas Vahos D.F., Zapata Ocampo P., Atehortúa L. (2014): Comparison of extraction methods of chitin from Ganoderma lucidum mushroom obtained in submerged culture. Biomed Research International 2014.
- Valu M.V., Soare L.C., Sutan N.A., Ducu C., Moga S., Hritcu L., Boiangiu R.S., Carradori S. (2020): Optimization of Ultrasonic Extraction to Obtain Erinacine A and Polyphenols with Antioxidant Activity from the Fungal Biomass of Hericium erinaceus. Foods, Dec 18;9(12), 2020.
- Erdoğan, Sevil & Kaya, Murat & Akata, Ilgaz (2017): Chitin extraction and chitosan production from cell wall of two mushroom species (Lactarius vellereus and Phyllophora ribis). AIP Conference Proceedings 2017.
- Zhu, L., Chen, X., Wu, Z., Wang, G., Ahmad, Z., & Chang, M. (2019): Optimization conversion of chitosan from Ganoderma lucidum spore powder using ultrasound‐assisted deacetylation: Influence of processing parameters. Journal of Food Processing and Preservation 2019.
- Li-Fang Zhu, Jing-Song Li, John Mai, Ming-Wei Chang (2019): Ultrasound-assisted synthesis of chitosan from fungal precursors for biomedical applications. Chemical Engineering Journal, Volume 357, 2019. 498-507.
- Zhu, Lifang; Yao, Zhi-Cheng; Ahmad, Zeeshan; Li, Jing-Song; Chang, Ming-Wei (2018): Synthesis and Evaluation of Herbal Chitosan from Ganoderma Lucidum Spore Powder for Biomedical Applications. Scientific Reports 8, 2018.
- G.J. Price, P.J. West, P.F. Smith (1994): Control of polymer structure using power ultrasound. Ultrasonics Sonochemistry, Volume 1, Issue 1, 1994. S51-S57.
Warto wiedzieć
Jak działają ultradźwiękowa ekstrakcja i deacetylacja chityny?
Gdy fale ultradźwiękowe dużej mocy są wprowadzane do cieczy lub zawiesiny (np. zawiesiny chityny w rozpuszczalniku), przemieszczają się przez ciecz, powodując naprzemienne cykle wysokiego / niskiego ciśnienia. Podczas cykli niskiego ciśnienia powstają maleńkie pęcherzyki próżniowe (tak zwane pęcherzyki kawitacyjne), które rosną przez kilka cykli ciśnienia. Po osiągnięciu określonej wielkości, gdy pęcherzyki nie mogą już pochłaniać więcej energii, gwałtownie implodują podczas cyklu wysokiego ciśnienia. Implozja pęcherzyków charakteryzuje się intensywnymi siłami kawitacyjnymi (tak zwanymi siłami sonomechanicznymi). Te warunki sonomechaniczne występują lokalnie w gorącym punkcie kawitacyjnym i charakteryzują się bardzo wysokimi temperaturami i ciśnieniami, wynoszącymi odpowiednio do 4000K i 1000atm, a także odpowiadającymi im dużymi różnicami temperatury i ciśnienia. Ponadto generowane są mikroturbulencje i strumienie cieczy o prędkościach do 100m/s. Ultradźwiękowa ekstrakcja chityny i chitozanu z grzybów i skorupiaków oraz depolimeryzacja i deacetylacja chityny są wywoływane głównie przez efekty sonomechaniczne: mieszanie i turbulencje rozbijają komórki i wspomagają transport masy, a w połączeniu z kwaśnymi lub zasadowymi rozpuszczalnikami mogą również rozcinać łańcuchy polimerów.
Zasada działania ekstrakcji chityny za pomocą sonikacji
Ekstrakcja ultradźwiękowa skutecznie rozbija strukturę komórkową grzybów i uwalnia związki wewnątrzkomórkowe ze ściany komórkowej i wnętrza komórki (tj. polisacharydy, takie jak chityna i chitozan, oraz inne bioaktywne związki fitochemiczne) do rozpuszczalnika. Ekstrakcja ultradźwiękowa opiera się na zasadzie działania kawitacji akustycznej. Efektami kawitacji ultradźwiękowej / akustycznej są duże siły ścinające, turbulencje i znaczne różnice ciśnienia. Te siły sonomechaniczne rozbijają struktury komórkowe, takie jak chitynowe ściany komórkowe grzybów, wspomagają transport masy między biomateriałem grzybowym a rozpuszczalnikiem i zapewniają bardzo wysoki uzysk ekstraktu w szybkim procesie. Dodatkowo sonikacja wspomaga sterylizację ekstraktów poprzez zabijanie bakterii i drobnoustrojów. Inaktywacja drobnoustrojów przez sonikację jest wynikiem niszczącego działania sił kawitacyjnych na błonę komórkową, wytwarzania wolnych rodników i lokalnego ogrzewania.
Zasada działania depolimeryzacji i deacetylacji za pomocą sonikacji
Łańcuchy polimeru zostają uwięzione w polu ścinania wytwarzanym ultradźwiękowo wokół pęcherzyka kawitacyjnego, a segmenty łańcucha kłębka polimerowego znajdujące się blisko zapadającej się kawerny poruszają się z większą prędkością niż te położone dalej. W wyniku względnego ruchu segmentów polimeru i rozpuszczalników w łańcuchu polimeru powstają naprężenia wystarczające do spowodowania rozszczepienia. Proces ten jest zatem podobny do innych efektów ścinania w roztworach polimerów ~2° i daje bardzo podobne wyniki. (por. Price et al., 1994)
Chityna
Chityna jest polimerem N-acetyloglukozaminy (poli-(β-(1–4)-N-acetylo-D-glukozaminy), naturalnie występującym polisacharydem powszechnie obecnym w egzoszkielecie bezkręgowców, takich jak skorupiaki i owady, w szkielecie wewnętrznym kałamarnic i mątw oraz w ścianach komórkowych grzybów. Wbudowana w strukturę ścian komórkowych grzybów chityna odpowiada za kształt i sztywność ściany komórkowej. W wielu zastosowaniach chityna jest przekształcana w procesie depolimeryzacji w swoją deacetylowaną pochodną, znaną jako chitozan.
Chitozan jest najpowszechniejszą i najcenniejszą pochodną chityny. Jest to polisacharyd o dużej masie cząsteczkowej, połączony wiązaniami glikozydowymi b-1,4, złożony z N-acetyloglukozaminy i glukozaminy.
Chitozan można otrzymać poprzez chemiczną lub enzymatyczną N-deacetylację. W procesie deacetylacji chemicznej grupa acetylowa (R-NHCOCH3) jest odszczepiana przez mocną zasadę w wysokich temperaturach. Alternatywnie chitozan można syntetyzować poprzez enzymatyczną deacetylację. Jednak w produkcji na skalę przemysłową preferowaną techniką jest deacetylacja chemiczna, ponieważ deacetylacja enzymatyczna jest znacznie mniej wydajna ze względu na wysoki koszt enzymów deacetylaz i niski uzysk chitozanu. Sonikacja jest stosowana do intensyfikacji chemicznej degradacji wiązania (1→4)-/β (depolimeryzacji) i przeprowadzenia deacetylacji chityny w celu uzyskania chitozanu wysokiej jakości.
Gdy sonikację stosuje się jako obróbkę wstępną przed enzymatyczną deacetylacją, uzysk i jakość chitozanu również ulegają poprawie.
Hielscher Ultrasonics produkuje wysokowydajne homogenizatory ultradźwiękowe o rozmiarach od laboratoryjnych do przemysłowych.



