Как да използвате ултразвуковите хомогенизатори за тъкани на Hielscher
Преди пречистването или характеризирането на вътреклетъчни макромолекули като протеини, органели, ензими или активни съединения е необходимо да се използва ефективен метод за лизис на тъкани и разрушаване на клетките. Ултразвуковата обработка е високоефективна техника за подготовка на клетки, която бързо освобождава вътреклетъчните материали в буферен разтвор. Механичните сили на срязване, генерирани при ултразвуковата хомогенизация на тъкани, могат да се регулират прецизно според конкретните материали. Това позволява щадяща подготовка на меки тъкани или срязване на ДНК/РНК чрез по-мека ултразвукова обработка, както и интензивна ултразвукова кавитация за разрушаване на клетките (напр. при nannochloropsis и дрожди).
По-долу е представена подборка от тъкани, клетки и други биологични материали с препоръчителни протоколи за ултразвукова обработка и насоки за ефективна подготовка на пробите с ултразвуков хомогенизатор за тъкани или уред за разрушаване на клетки.
Лабораторен ултразвуков апарат UP200Ht (200W, 26kHz) за задачи по подготовка на проби
Как да приготвяте лизати, хомогенати и екстракти от биологични материали
По азбучен ред:
Ацетобактер субоксиданс
Актиномицес
Ултразвуково приложение:
Разрушаване и екстракция на протеини за 3–5 min.
Препоръчителен уред:
UP50H
Разрушаване и екстракция на протеини за 3–5 min.
Препоръчителен уред:
UP50H
Активност на ALP и LDH
Ултразвуково приложение:
Определяне на активността на ALP и LDH и на съдържанието на протеини
Замразените клетъчни проби се размразяват за 20 min върху лед, след което се извършва клетъчен лизис с PBS, съдържащ 1% Triton X-100, за 50 min върху лед. По време на клетъчния лизис всяка проба се обработва с ултразвук за 1 min при 80 W с ултразвуков процесор UP100H (Hielscher Ultrasonics).
Препоръчителен уред:
UP100H
Източник/научна публикация:
Bernhardt, A. et al. (2008): Минерализираният колаген – изкуствена извънклетъчна костна матрица – подобрява остеогенната диференциация на стромални клетки от костния мозък.
Определяне на активността на ALP и LDH и на съдържанието на протеини
Замразените клетъчни проби се размразяват за 20 min върху лед, след което се извършва клетъчен лизис с PBS, съдържащ 1% Triton X-100, за 50 min върху лед. По време на клетъчния лизис всяка проба се обработва с ултразвук за 1 min при 80 W с ултразвуков процесор UP100H (Hielscher Ultrasonics).
Препоръчителен уред:
UP100H
Източник/научна публикация:
Bernhardt, A. et al. (2008): Минерализираният колаген – изкуствена извънклетъчна костна матрица – подобрява остеогенната диференциация на стромални клетки от костния мозък.
Аморфен трикалциев фосфат (ATCP)
Ултразвуково приложение:
Наночастиците ATCP, които са изключително реактивен прекурсор за образуването на хидроксиапатит, се диспергират в хлороформ, съдържащ 5 % (w/w) Tween20 спрямо PLGA, с ултразвуковия уред UP400S на Hielscher при 320W за 5 min, като се прилагат импулсни интервали (50%), за да се позволи релаксация на частиците.
Препоръчителен уред:
UP400S
Източник/научна публикация:
Mohn, Dirk; Ege, Duygu; Feldman, Kirifl; Schneider, Oliver D.; Imfeld, Thomas; Boccaccini, Aldo R. (2014): Сферичните наночастици от калциев фосфат като пълнители позволяват полимерна преработка при производството на устройства за костна фиксация с висока биоактивност. Свободната библиотека 01 май 2010 г. 21 януари 2014 г.
Наночастиците ATCP, които са изключително реактивен прекурсор за образуването на хидроксиапатит, се диспергират в хлороформ, съдържащ 5 % (w/w) Tween20 спрямо PLGA, с ултразвуковия уред UP400S на Hielscher при 320W за 5 min, като се прилагат импулсни интервали (50%), за да се позволи релаксация на частиците.
Препоръчителен уред:
UP400S
Източник/научна публикация:
Mohn, Dirk; Ege, Duygu; Feldman, Kirifl; Schneider, Oliver D.; Imfeld, Thomas; Boccaccini, Aldo R. (2014): Сферичните наночастици от калциев фосфат като пълнители позволяват полимерна преработка при производството на устройства за костна фиксация с висока биоактивност. Свободната библиотека 01 май 2010 г. 21 януари 2014 г.
Антоцианини
Ултразвуково приложение:
Антоцианини: диглюкозиди, моноглюкозид, ацилирани моноглюкозиди и ацилирани диглюкозиди на пеонидин, малвидин, цианидин, петунидин и делфинидин: екстракция от гроздови ципи за 40 sec.; pH 5,0; съотношение материал/екстракционен разтворител 1:6.
Препоръчителен уред:
UP100H
Антоцианини: диглюкозиди, моноглюкозид, ацилирани моноглюкозиди и ацилирани диглюкозиди на пеонидин, малвидин, цианидин, петунидин и делфинидин: екстракция от гроздови ципи за 40 sec.; pH 5,0; съотношение материал/екстракционен разтворител 1:6.
Препоръчителен уред:
UP100H
Антрахинони
Ултразвуково приложение:
Екстракция на антрахинони от корените на Morinda citrifolia
Препоръчителен уред:
UP400S
Екстракция на антрахинони от корените на Morinda citrifolia
Препоръчителен уред:
UP400S
Кайсиеви ядки
Ултразвуково приложение:
Предварителна ултразвукова обработка преди извличането на масло от семената на Jatropha curcas L. за подобряване на екстракцията.
Препоръчителен уред:
UP400S
Предварителна ултразвукова обработка преди извличането на масло от семената на Jatropha curcas L. за подобряване на екстракцията.
Препоръчителен уред:
UP400S
Артемизия селенгензис Турч
Ултразвуково приложение:
Екстракция на рутин (1,0g смляна проба в 30 mL метанол) при 25°C за 5–10 min.
Препоръчителен уред:
UP50H
Екстракция на рутин (1,0g смляна проба в 30 mL метанол) при 25°C за 5–10 min.
Препоръчителен уред:
UP50H
Аспергилус флавус
Ултразвуково приложение:
Ултразвукова инактивация на Aspergillus flavus в хранителна среда Sabouraud
Препоръчителен уред:
UP200S
Ултразвукова инактивация на Aspergillus flavus в хранителна среда Sabouraud
Препоръчителен уред:
UP200S
Б. сферикус / Бацилус сферикус
Спори на Bacillus anthracis sterne 34F2
Ултразвуково приложение:
Ултразвуково отстраняване на спори на Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 и Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Използването на 150 ppm натриев хипохлорит заедно с ултразвук води до инактивация на спорите.
Препоръчителен уред:
UP200S при 100% амплитуда
Източник/научна публикация:
Pamarthi, S.R. et al.: Ефективност на ултразвука при отстраняване на замърсявания със спори на Bacillus spp, включени в сложни хранителни матрици, прилепнали към различни контактни повърхности.
Ултразвуково отстраняване на спори на Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 и Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Използването на 150 ppm натриев хипохлорит заедно с ултразвук води до инактивация на спорите.
Препоръчителен уред:
UP200S при 100% амплитуда
Източник/научна публикация:
Pamarthi, S.R. et al.: Ефективност на ултразвука при отстраняване на замърсявания със спори на Bacillus spp, включени в сложни хранителни матрици, прилепнали към различни контактни повърхности.
Спори на Bacillus cereus ATCC 21281
Ултразвуково приложение:
Ултразвуково отстраняване на спори на Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 и Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Използването на 150 ppm натриев хипохлорит заедно с ултразвук води до инактивация на спорите.
Препоръчителен уред:
UP200S при 100% амплитуда
Източник/научна публикация:
Pamarthi, S.R. et al.: Ефективност на ултразвука при отстраняване на замърсявания със спори на Bacillus spp, включени в сложни хранителни матрици, прилепнали към различни контактни повърхности.
Ултразвуково отстраняване на спори на Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 и Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Използването на 150 ppm натриев хипохлорит заедно с ултразвук води до инактивация на спорите.
Препоръчителен уред:
UP200S при 100% амплитуда
Източник/научна публикация:
Pamarthi, S.R. et al.: Ефективност на ултразвука при отстраняване на замърсявания със спори на Bacillus spp, включени в сложни хранителни матрици, прилепнали към различни контактни повърхности.
Бацилус субтилис
Ултразвуково приложение:
Ултразвукът с висока мощност и ниска честота в малки обеми бактериална суспензия води до непрекъснато намаляване на броя на бактериалните клетки, т.е. преобладава скоростта на унищожаване. При по-големи обеми ултразвуковата обработка води до първоначално увеличаване на броя на клетките, което предполага разпадане на бактериалните струпвания, но след това броят намалява, когато разпадането на струпванията приключи и скоростта на унищожаване придобие по-голямо значение.
Препоръчителен уред:
UP200St
Източник/научна публикация:
Joyce, E.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P.; Mason, T. J. (2003): Разработване и оценяване на ултразвука за обработка на бактериални суспензии. Изследване на влиянието на честотата, мощността и времето на ултразвукова обработка върху култивирани видове Bacillus. Ultrason. Sonochem. 10/2003. стр. 315–318.
Ултразвукът с висока мощност и ниска честота в малки обеми бактериална суспензия води до непрекъснато намаляване на броя на бактериалните клетки, т.е. преобладава скоростта на унищожаване. При по-големи обеми ултразвуковата обработка води до първоначално увеличаване на броя на клетките, което предполага разпадане на бактериалните струпвания, но след това броят намалява, когато разпадането на струпванията приключи и скоростта на унищожаване придобие по-голямо значение.
Препоръчителен уред:
UP200St
Източник/научна публикация:
Joyce, E.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P.; Mason, T. J. (2003): Разработване и оценяване на ултразвука за обработка на бактериални суспензии. Изследване на влиянието на честотата, мощността и времето на ултразвукова обработка върху култивирани видове Bacillus. Ultrason. Sonochem. 10/2003. стр. 315–318.
Алфа-амилаза от ечемик
Ултразвуково приложение:
Стимулиране или инхибиране на активността на алфа-амилазата в ечемика: пробата (10 g ечемични семена) се диспергира в 80 ml чешмяна вода чрез директна ултразвукова обработка с ултразвуков интензитет при 20, 60 и 100% амплитуда, работен цикъл 50% и допълнително разбъркване. Сонотродът се потапя на около 9 mm в разтвора. Разтворът се обработва при постоянна температура 30C° за 5, 10 и 15 min.
Препоръчителен уред:
UP200S, амплитуди: 20, 60 и 100%; работен цикъл 50%; сонотрод S3, 30C°.
Източник/научна публикация:
Yaldagard et al. (2008): Влияние на ултразвуковата мощност върху активността на алфа-амилазата в ечемика при обработка на семената след сеитба
Стимулиране или инхибиране на активността на алфа-амилазата в ечемика: пробата (10 g ечемични семена) се диспергира в 80 ml чешмяна вода чрез директна ултразвукова обработка с ултразвуков интензитет при 20, 60 и 100% амплитуда, работен цикъл 50% и допълнително разбъркване. Сонотродът се потапя на около 9 mm в разтвора. Разтворът се обработва при постоянна температура 30C° за 5, 10 и 15 min.
Препоръчителен уред:
UP200S, амплитуди: 20, 60 и 100%; работен цикъл 50%; сонотрод S3, 30C°.
Източник/научна публикация:
Yaldagard et al. (2008): Влияние на ултразвуковата мощност върху активността на алфа-амилазата в ечемика при обработка на семената след сеитба
Науплиуси на морски жълъди
Ултразвуково приложение:
Разрушаване на клетките/унищожаване на мезозоопланктон: чрез ултразвукова обработка при следните условия – четири дебита (200, 400, 520 и 800 lh-1) и четири амплитуди (25, 50, 75 и 100 %) – е постигнат дял на унищожаване между 61 и 97 %.
Препоръчителен уред:
UIP2000hd
Източник/научна публикация:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ултравиолетова светлина, ултразвук и водороден пероксид като средства за обработка на баластни води – експерименти с мезозоопланктон в слабо солени бракични води.
Разрушаване на клетките/унищожаване на мезозоопланктон: чрез ултразвукова обработка при следните условия – четири дебита (200, 400, 520 и 800 lh-1) и четири амплитуди (25, 50, 75 и 100 %) – е постигнат дял на унищожаване между 61 и 97 %.
Препоръчителен уред:
UIP2000hd
Източник/научна публикация:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ултравиолетова светлина, ултразвук и водороден пероксид като средства за обработка на баластни води – експерименти с мезозоопланктон в слабо солени бракични води.
Щамове бифидобактерии: B. breve ATCC 15700, B. animalis subsp. Lactis (BB-12), B. longum (BB-46)
Ултразвуково приложение:
Разрушаване на бактериалните клетки и освобождаване на ß-галактозидаза от щамове Bifidobacteria: B. breve ATCC 15700, B. animalis subsp. Lactis (BB-12), B. longum (BB-46): 100 mL пастьоризирано мляко, смесено с бактериална култура, се обработва с ултразвук. Кавитацията предизвиква разрушаване на бактериалните клетки и едновременно освобождаване на ß-галактозидаза.
Препоръчителен уред:
UIP1000hd: амплитуда: 10%, мощност: 80W, амплитуда: 100%, мощност: 200W; сонотрод BS2d34; 15–30 min.
Източник/научна публикация:
Hung et al. (2009): Подпомагана с ултразвук ферментация на кисело мляко с пробиотици.
Разрушаване на бактериалните клетки и освобождаване на ß-галактозидаза от щамове Bifidobacteria: B. breve ATCC 15700, B. animalis subsp. Lactis (BB-12), B. longum (BB-46): 100 mL пастьоризирано мляко, смесено с бактериална култура, се обработва с ултразвук. Кавитацията предизвиква разрушаване на бактериалните клетки и едновременно освобождаване на ß-галактозидаза.
Препоръчителен уред:
UIP1000hd: амплитуда: 10%, мощност: 80W, амплитуда: 100%, мощност: 200W; сонотрод BS2d34; 15–30 min.
Източник/научна публикация:
Hung et al. (2009): Подпомагана с ултразвук ферментация на кисело мляко с пробиотици.
Клетки BL21(DE3) pAtHNL (клетки на Arabidopsis thaliana)
Ултразвуково приложение:
Разрушаване на клетките: 15 g клетки BL21-(DE3)_pAtHNL се суспендират бавно в 50 mM калиево-фосфатен буфер (pH 7,5) при 0 degC.
Препоръчителен уред:
UP200S + сонотрод S14D: при 70W/cm2 (4 x 5 min), с охлаждане в ледена баня
Източник/научна публикация:
Okrob, D. et al (2009): Хидроксинитрил лиаза от Arabidopsis thaliana: определяне на реакционните параметри за синтез на енантиомерно чисти цианхидрини с чист и имобилизиран катализатор. Adv. Synth. Catal. 2011, 353, 2399 – 2408.
Разрушаване на клетките: 15 g клетки BL21-(DE3)_pAtHNL се суспендират бавно в 50 mM калиево-фосфатен буфер (pH 7,5) при 0 degC.
Препоръчителен уред:
UP200S + сонотрод S14D: при 70W/cm2 (4 x 5 min), с охлаждане в ледена баня
Източник/научна публикация:
Okrob, D. et al (2009): Хидроксинитрил лиаза от Arabidopsis thaliana: определяне на реакционните параметри за синтез на енантиомерно чисти цианхидрини с чист и имобилизиран катализатор. Adv. Synth. Catal. 2011, 353, 2399 – 2408.
Кръвни клетки (червени и бели)
Болдин от листа на болдо (Peumus boldus Molina)
Ултразвуково приложение:
Важно активно съединение в болдо е болдинът ((S)-2,9-dihydroxy-1,10-dimethoxiaporphine), който заедно с катехина ((2S,3R)-2-(3,4-dihydroxy-phenyl)-3,4-dihydro-1(2H)-benzopyran-3,5,7-triol) е сред основните компоненти на алкалоидната и флавоноидната фракция в листата на болдо. Болдинът е силен антиоксидант, който претърпява пероксидативно увреждане, медиирано от свободни радикали, и действа като ефективен уловител на хидроксилни радикали.
Процедура за екстракция: При типична процедура за екстракция проби от листа на болдо се екстрахират с 1L дестилирана вода при атмосферно налягане с ултразвуковия апарат UIP1000hd в партиден и проточен режим. Времето за екстракция е между 10 и 40 min, при ултразвуков интензитет от 10 до 23 W/cm2, и температурен диапазон от 10 до 70°C. Най-добри резултати са постигнати при следните условия: ултразвуков интензитет 23 W/cm2 за 40 min при температура 36°C
Резултати: Резултатите от анализа показват, че ултразвуковата обработка с висока мощност подобрява освобождаването на аналита от растителната матрица на болдо със значително по-висока скорост в сравнение с конвенционалния метод: еднакъв добив се получава чрез ултразвукова обработка за 30 min, докато времето за конвенционална екстракция е 2h.
Chemat (2013) и сътрудници показват, че подпомаганата с ултразвук екстракция подобрява ефективността на екстракцията на растителни материали, като същевременно намалява времето за екстракция и увеличава концентрацията на екстрактите (при еднакво количество разтворител и растителен материал). Анализът разкрива, че оптимизираните условия са: мощност на ултразвуковата обработка 23 W/cm2 с UIP1000hd за 40 min и температура 36°C. Оптимизираните параметри на ултразвуковата екстракция осигуряват по-добра екстракция в сравнение с конвенционалната мацерация по отношение на времето на процеса (30 min вместо 120 min), по-висок добив, по-висока енергийна ефективност, подобрена чистота, по-висока безопасност и по-добро качество на продукта.
Препоръчителен уред:
UIP1000hd със сонотрод BS2d34 и проточна клетка
Източник/научна публикация:
Petigny, L.; Périno-Issartier, S.; Wajsman, J.; Chemat, F. (2013): Партидна и непрекъсната подпомагана с ултразвук екстракция на листа от болдо (Peumus boldus Mol.). International Journal of Molecular Science 14, 2013. 5750–5764.
Важно активно съединение в болдо е болдинът ((S)-2,9-dihydroxy-1,10-dimethoxiaporphine), който заедно с катехина ((2S,3R)-2-(3,4-dihydroxy-phenyl)-3,4-dihydro-1(2H)-benzopyran-3,5,7-triol) е сред основните компоненти на алкалоидната и флавоноидната фракция в листата на болдо. Болдинът е силен антиоксидант, който претърпява пероксидативно увреждане, медиирано от свободни радикали, и действа като ефективен уловител на хидроксилни радикали.
Процедура за екстракция: При типична процедура за екстракция проби от листа на болдо се екстрахират с 1L дестилирана вода при атмосферно налягане с ултразвуковия апарат UIP1000hd в партиден и проточен режим. Времето за екстракция е между 10 и 40 min, при ултразвуков интензитет от 10 до 23 W/cm2, и температурен диапазон от 10 до 70°C. Най-добри резултати са постигнати при следните условия: ултразвуков интензитет 23 W/cm2 за 40 min при температура 36°C
Резултати: Резултатите от анализа показват, че ултразвуковата обработка с висока мощност подобрява освобождаването на аналита от растителната матрица на болдо със значително по-висока скорост в сравнение с конвенционалния метод: еднакъв добив се получава чрез ултразвукова обработка за 30 min, докато времето за конвенционална екстракция е 2h.
Chemat (2013) и сътрудници показват, че подпомаганата с ултразвук екстракция подобрява ефективността на екстракцията на растителни материали, като същевременно намалява времето за екстракция и увеличава концентрацията на екстрактите (при еднакво количество разтворител и растителен материал). Анализът разкрива, че оптимизираните условия са: мощност на ултразвуковата обработка 23 W/cm2 с UIP1000hd за 40 min и температура 36°C. Оптимизираните параметри на ултразвуковата екстракция осигуряват по-добра екстракция в сравнение с конвенционалната мацерация по отношение на времето на процеса (30 min вместо 120 min), по-висок добив, по-висока енергийна ефективност, подобрена чистота, по-висока безопасност и по-добро качество на продукта.
Препоръчителен уред:
UIP1000hd със сонотрод BS2d34 и проточна клетка
Източник/научна публикация:
Petigny, L.; Périno-Issartier, S.; Wajsman, J.; Chemat, F. (2013): Партидна и непрекъсната подпомагана с ултразвук екстракция на листа от болдо (Peumus boldus Mol.). International Journal of Molecular Science 14, 2013. 5750–5764.
Говежди серумен албумин (BSA)
Ултразвуково приложение:
Микрокапсулиране в поли(млечна-ко-гликолова киселина) за 40 sec.
Препоръчителен уред:
GDmini
Източник/научна публикация:
Freitas et al. (2005): Проточно ултразвуково емулгиране, комбинирано със статично микросмесване, за асептично производство на микросфери чрез екстракция с разтворител.
Микрокапсулиране в поли(млечна-ко-гликолова киселина) за 40 sec.
Препоръчителен уред:
GDmini
Източник/научна публикация:
Freitas et al. (2005): Проточно ултразвуково емулгиране, комбинирано със статично микросмесване, за асептично производство на микросфери чрез екстракция с разтворител.
Мозъчен ствол + надбъбречна жлеза
Ултразвуково приложение:
Диспергиране и анализ на нуклеотиди; размер на пробата: проби от 10 mg в 10 ml течност.
Препоръчителен уред:
UP50H
Диспергиране и анализ на нуклеотиди; размер на пробата: проби от 10 mg в 10 ml течност.
Препоръчителен уред:
UP50H
Кандида албиканс
Въглехидрати, полизахариди и други функционални съединения
Ултразвуково приложение:
Екстракция на въглехидрати, полизахариди и други функционални съединения
Препоръчителен уред:
UP200St
Екстракция на въглехидрати, полизахариди и други функционални съединения
Препоръчителен уред:
UP200St
Карнозна киселина от розмарин
Ултразвуково приложение:
Екстракция на карнозна киселина, активно съединение, от розмарин.
Препоръчителен уред:
UP400S
Екстракция на карнозна киселина, активно съединение, от розмарин.
Препоръчителен уред:
UP400S
Капсаициноиди
Ултразвуково приложение:
Екстракция на капсаициноиди (капсаицин, нордихидрокапсаицин) от люти чушки: капсаициноидите от чушки Capsicum frutescens се получават чрез ултразвукова екстракция при следните условия: разтворител: 95% (v/v) етанол, съотношение разтворител/маса 10 ml/g, време за ултразвукова екстракция 40 min, температура на екстракция 45°C. Добив при екстракцията: 85% от капсаициноидите
Препоръчителен уред:
UP400S
Екстракция на капсаициноиди (капсаицин, нордихидрокапсаицин) от люти чушки: капсаициноидите от чушки Capsicum frutescens се получават чрез ултразвукова екстракция при следните условия: разтворител: 95% (v/v) етанол, съотношение разтворител/маса 10 ml/g, време за ултразвукова екстракция 40 min, температура на екстракция 45°C. Добив при екстракцията: 85% от капсаициноидите
Препоръчителен уред:
UP400S
Каротеноиди, бета-каротеноиди
Комплементарна ДНК (cDNA)
Ултразвуково приложение:
Poly-A РНК се пречиства с комплекта Dynabeads mRNA purification kit (Invitrogen) съгласно инструкциите на производителя и се обработва за 30 min при 37°C с TURBO DNase (Ambion; 0,2 единици/1 μg РНК). Синтезът на първата и втората верига се извършва съгласно протокола на производителя. Около 500ng двуверижна cDNA се фрагментира чрез ултразвукова обработка с апарата на Hielscher UTR200. ДНК се разделя в 2% агарозен гел с висока разделителна способност и се изрязват фрагменти от 230–270 bp.
Препоръчителен уред:
UTR200 или TD_CupHorn
Източник/научна публикация:
Delft, J. van; Gaj, St.; Lienhard,M.; Albrecht, M. W.; Kirpiy, A.; Brauers, K.; Claessen, S.; Lizarraga, D.; Lehrach, H.; Herwig, R.; Kleinjans, J. (2012): RNA-Seq предоставя нови сведения за транскриптомните отговори, индуцирани от канцерогена Benzo[a]pyrene. Toxicological Sciences 130/2, 2012. 427–439.
Poly-A РНК се пречиства с комплекта Dynabeads mRNA purification kit (Invitrogen) съгласно инструкциите на производителя и се обработва за 30 min при 37°C с TURBO DNase (Ambion; 0,2 единици/1 μg РНК). Синтезът на първата и втората верига се извършва съгласно протокола на производителя. Около 500ng двуверижна cDNA се фрагментира чрез ултразвукова обработка с апарата на Hielscher UTR200. ДНК се разделя в 2% агарозен гел с висока разделителна способност и се изрязват фрагменти от 230–270 bp.
Препоръчителен уред:
UTR200 или TD_CupHorn
Източник/научна публикация:
Delft, J. van; Gaj, St.; Lienhard,M.; Albrecht, M. W.; Kirpiy, A.; Brauers, K.; Claessen, S.; Lizarraga, D.; Lehrach, H.; Herwig, R.; Kleinjans, J. (2012): RNA-Seq предоставя нови сведения за транскриптомните отговори, индуцирани от канцерогена Benzo[a]pyrene. Toxicological Sciences 130/2, 2012. 427–439.
Кариофанон латум
Ултразвуково приложение:
Екстракция на глюкозамин, мурамова киселина, аланин, глутаминова киселина и лизин от caryophanon datum.
Препоръчителен уред:
UP100H
Екстракция на глюкозамин, мурамова киселина, аланин, глутаминова киселина и лизин от caryophanon datum.
Препоръчителен уред:
UP100H
Целулоза
Ултразвуково приложение:
Хомогенизация/подготовка на изотопно хомогенна целулоза.
Препоръчителен уред:
UP200S; в ледена баня
Източник/научна публикация:
Laumer et al. (2009): Нов подход за хомогенизация на целулоза с цел използване на микроколичества за анализи на стабилни изотопи.
Хомогенизация/подготовка на изотопно хомогенна целулоза.
Препоръчителен уред:
UP200S; в ледена баня
Източник/научна публикация:
Laumer et al. (2009): Нов подход за хомогенизация на целулоза с цел използване на микроколичества за анализи на стабилни изотопи.
Целулозни нанокристали (CNC), получени от нанокристали на евкалиптова целулоза
Ултразвуково приложение:
Целулозни нанокристали (CNC), приготвени от евкалиптова целулоза CNCs, се модифицират чрез реакция с метиладипоилхлорид, CNCm, или със смес от оцетна и сярна киселина, CNCa. За целта лиофилизираните CNCs, CNCm и CNCa се редиспергират в чисти разтворители (EA, THF или DMF) при 0,1 wt% чрез магнитно разбъркване през нощта при (24 ± 1) C, последвано от 20 min в баня за ултразвукова обработка с UP100H на Hielscher Ultrasonics (Германия), оборудван със сонотрод с 130 W/cm2, при 24 ± 1 degC. След това към дисперсията на CNC се добавя CAB, така че крайната концентрация на полимера да бъде 0,9 wt%.
Препоръчителен уред:
UP100H; при 24 degC за 20 min.
Източник/научна публикация:
Blachechen, L. S. et al (2013): Взаимодействие между колоидната стабилност на целулозните нанокристали и тяхната диспергируемост в матрица от целулозен ацетат бутират. Cellulose 2013.
Целулозни нанокристали (CNC), приготвени от евкалиптова целулоза CNCs, се модифицират чрез реакция с метиладипоилхлорид, CNCm, или със смес от оцетна и сярна киселина, CNCa. За целта лиофилизираните CNCs, CNCm и CNCa се редиспергират в чисти разтворители (EA, THF или DMF) при 0,1 wt% чрез магнитно разбъркване през нощта при (24 ± 1) C, последвано от 20 min в баня за ултразвукова обработка с UP100H на Hielscher Ultrasonics (Германия), оборудван със сонотрод с 130 W/cm2, при 24 ± 1 degC. След това към дисперсията на CNC се добавя CAB, така че крайната концентрация на полимера да бъде 0,9 wt%.
Препоръчителен уред:
UP100H; при 24 degC за 20 min.
Източник/научна публикация:
Blachechen, L. S. et al (2013): Взаимодействие между колоидната стабилност на целулозните нанокристали и тяхната диспергируемост в матрица от целулозен ацетат бутират. Cellulose 2013.
Целулоза от багаса от захарна тръстика
Ултразвуково приложение:
Екстракция на целулоза от багаса от захарна тръстика
Препоръчителен уред:
UP200St
Екстракция на целулоза от багаса от захарна тръстика
Препоръчителен уред:
UP200St
Анализ чрез хроматинова имунопреципитация (ChIP)
Ултразвуково приложение:
Ултразвуковата обработка се използва за клетъчен лизис с цел освобождаване на хроматина. Мека (импулсна) ултразвукова обработка се използва за фрагментиране на хроматина. Освен това ултразвукът ускорява свързването на антителата с целевите протеини и по този начин намалява времето за имунопреципитация.
Препоръчителен уред:
UP100H
Източник/научна публикация:
Basselet, P. et al. (2008): Обработка на проби за анализ на ентерохеморагична Escherichia coli (EHEC) чрез ДНК микрочипове.
Lauri, A. (2005): Молекулярен анализ на развитието на венчелистчетата чрез X-ChIP и двухибридна технология. Дисертация, University of Cologne 2005.
Ултразвуковата обработка се използва за клетъчен лизис с цел освобождаване на хроматина. Мека (импулсна) ултразвукова обработка се използва за фрагментиране на хроматина. Освен това ултразвукът ускорява свързването на антителата с целевите протеини и по този начин намалява времето за имунопреципитация.
Препоръчителен уред:
UP100H
Източник/научна публикация:
Basselet, P. et al. (2008): Обработка на проби за анализ на ентерохеморагична Escherichia coli (EHEC) чрез ДНК микрочипове.
Lauri, A. (2005): Молекулярен анализ на развитието на венчелистчетата чрез X-ChIP и двухибридна технология. Дисертация, University of Cologne 2005.
Хроматин
Ултразвуково приложение:
Срязване на хроматин
Препоръчителен уред:
UP400S; при 30% амплитуда и работен цикъл 0,5; върху лед.
Източник/научна публикация:
Oh et al. (2003): Генът на ацетил-CoA карбоксилазата се регулира от протеин-1, свързващ стеролния регулаторен елемент, в черния дроб.
Срязване на хроматин
Препоръчителен уред:
UP400S; при 30% амплитуда и работен цикъл 0,5; върху лед.
Източник/научна публикация:
Oh et al. (2003): Генът на ацетил-CoA карбоксилазата се регулира от протеин-1, свързващ стеролния регулаторен елемент, в черния дроб.
Екстракция на хроматин
Ултразвуково приложение:
Лизатът от клетки MEL DS19 се обработва с ултразвук в 10 серии по 20 s всяка при 70% от максималната изходна мощност с ултразвуковия процесор UP200H на Hielscher с мощност 200W
Препоръчителен уред:
UP200H; 70% от максималната изходна мощност; импулсен режим: 10 цикъла по 20 sec всеки.
Източник/научна публикация:
Kang, H. Ch. et al (2010): PIAS1 регулира локализацията на CP2c и образуването на активен промоторен комплекс при специфичната за еритроидните клетки експресия на a-глобин. Nucleic Acids Res. 38/ 16, 2010. стр. 5456–5471.
Лизатът от клетки MEL DS19 се обработва с ултразвук в 10 серии по 20 s всяка при 70% от максималната изходна мощност с ултразвуковия процесор UP200H на Hielscher с мощност 200W
Препоръчителен уред:
UP200H; 70% от максималната изходна мощност; импулсен режим: 10 цикъла по 20 sec всеки.
Източник/научна публикация:
Kang, H. Ch. et al (2010): PIAS1 регулира локализацията на CP2c и образуването на активен промоторен комплекс при специфичната за еритроидните клетки експресия на a-глобин. Nucleic Acids Res. 38/ 16, 2010. стр. 5456–5471.
Хроматография
Ултразвуково приложение:
Ултразвуковата обработка на адсорбента в разтворителя премахва агломератите за няколко секунди и осигурява равномерно запълване на колоната, което се извършва лесно. Приложимо за подготовка на адсорбенти (напр. силикагел) преди колонна хроматография.
Препоръчителен уред:
UP400S
Ултразвуковата обработка на адсорбента в разтворителя премахва агломератите за няколко секунди и осигурява равномерно запълване на колоната, което се извършва лесно. Приложимо за подготовка на адсорбенти (напр. силикагел) преди колонна хроматография.
Препоръчителен уред:
UP400S
Кладоцери
Ултразвуково приложение:
Разрушаване на клетките на мезозоопланктон
Препоръчителен уред:
UP2000hd с проточна клетка
Източник/научна публикация:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ултравиолетова светлина, ултразвук и водороден пероксид като средства за обработка на баластни води – експерименти с мезозоопланктон в слабо солени бракични води.
Разрушаване на клетките на мезозоопланктон
Препоръчителен уред:
UP2000hd с проточна клетка
Източник/научна публикация:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ултравиолетова светлина, ултразвук и водороден пероксид като средства за обработка на баластни води – експерименти с мезозоопланктон в слабо солени бракични води.
Възрастни копеподи и копеподити
Ултразвуково приложение:
Разрушаване на клетките на мезозоопланктон: чрез ултразвукова обработка при следните условия – четири дебита (200, 400, 520 и 800 lh-1) и четири амплитуди (25, 50, 75 и 100%) – е постигнат дял на унищожаване между 87 и 99%.
Препоръчителен уред:
UIP2000hd с проточна клетка
Източник/научна публикация:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ултравиолетова светлина, ултразвук и водороден пероксид като средства за обработка на баластни води – експерименти с мезозоопланктон в слабо солени бракични води.
Разрушаване на клетките на мезозоопланктон: чрез ултразвукова обработка при следните условия – четири дебита (200, 400, 520 и 800 lh-1) и четири амплитуди (25, 50, 75 и 100%) – е постигнат дял на унищожаване между 87 и 99%.
Препоръчителен уред:
UIP2000hd с проточна клетка
Източник/научна публикация:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ултравиолетова светлина, ултразвук и водороден пероксид като средства за обработка на баластни води – експерименти с мезозоопланктон в слабо солени бракични води.
Науплиуси на копеподи
Ултразвуково приложение:
Разрушаване на клетките на мезозоопланктон: чрез ултразвукова обработка при следните условия – четири дебита (200, 400, 520 и 800 lh-1) и четири амплитуди (25, 50, 75 и 100%) – е постигнат дял на унищожаване между 87 и 99%.
Препоръчителен уред:
UIP2000hd с проточна клетка
Източник/научна публикация:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ултравиолетова светлина, ултразвук и водороден пероксид като средства за обработка на баластни води – експерименти с мезозоопланктон в слабо солени бракични води.
Разрушаване на клетките на мезозоопланктон: чрез ултразвукова обработка при следните условия – четири дебита (200, 400, 520 и 800 lh-1) и четири амплитуди (25, 50, 75 и 100%) – е постигнат дял на унищожаване между 87 и 99%.
Препоръчителен уред:
UIP2000hd с проточна клетка
Източник/научна публикация:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ултравиолетова светлина, ултразвук и водороден пероксид като средства за обработка на баластни води – експерименти с мезозоопланктон в слабо солени бракични води.
Клетки COS7
Ултразвуково приложение:
Лизис в 400 μl буфер
Препоръчителен уред:
UP200S; 7 цикъла
Източник/научна публикация:
Zaim (2005): Анализ на мишки с дефицит на Nesprin-2.
Лизис в 400 μl буфер
Препоръчителен уред:
UP200S; 7 цикъла
Източник/научна публикация:
Zaim (2005): Анализ на мишки с дефицит на Nesprin-2.
Криптоспоридиум парвум
Ултразвуково приложение:
Ултразвукова инактивация на Cryptosporidium parvaum (протозои) във вода.
Препоръчителен уред:
UP400S
Източник/научна публикация:
Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Furuta, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Инактивация на Saccharomyces cerevisiae чрез ултразвуково облъчване. Ultrasonics Sonochemistry 11/2004. стр. 61–65.
Ултразвукова инактивация на Cryptosporidium parvaum (протозои) във вода.
Препоръчителен уред:
UP400S
Източник/научна публикация:
Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Furuta, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Инактивация на Saccharomyces cerevisiae чрез ултразвуково облъчване. Ultrasonics Sonochemistry 11/2004. стр. 61–65.
Кубозоми
Ултразвуково приложение:
Кубозоми – празни или с включени флуорофорни молекули – се приготвят чрез диспергиране на подходящото количество моноолеин в разтвор на Pluronic F108 с ултразвуковия апарат UP100H. За получаване на флуоресцентни кубозоми флуорофорът се диспергира в разтопения моноолеин чрез щадяща ултразвукова обработка преди диспергирането в Pluronic F108. Същата процедура се следва и когато във флуоресцентните кубозоми се включва и кверцетин.
Проба: обем на пробата: 4 mL – приблизително 96,4 wt% вода, 3,3 wt % моноолеин, 0,3 wt% Pluronic F108. Процентното съдържание на флуорофора е 2,5 × 10−3 и 2,8 × 10−3 wt%. Количество на добавения кверцетин: 6,4 × 10−6 wt%.
Ултразвукова обработка: UP100H, амплитуда 90%, импулсен работен цикъл 0,9, за 10 min.
Препоръчителен уред:
UP100H
Източник/научна публикация:
Murgia, S.; Bonacchi,S.; Falchi, A. M.; Lampis, S.; Lippolis, V.; Meli, V.; Monduzzi, M.; Prodi, L.; Schmidt, J.; Talmon, Y.; Caltagirone, C. (2013): Флуоресцентни кубозоми с включено лекарство: универсални наночастици за потенциални тераностични приложения. Langmuir 29, 2013. 6673–6679.
Кубозоми – празни или с включени флуорофорни молекули – се приготвят чрез диспергиране на подходящото количество моноолеин в разтвор на Pluronic F108 с ултразвуковия апарат UP100H. За получаване на флуоресцентни кубозоми флуорофорът се диспергира в разтопения моноолеин чрез щадяща ултразвукова обработка преди диспергирането в Pluronic F108. Същата процедура се следва и когато във флуоресцентните кубозоми се включва и кверцетин.
Проба: обем на пробата: 4 mL – приблизително 96,4 wt% вода, 3,3 wt % моноолеин, 0,3 wt% Pluronic F108. Процентното съдържание на флуорофора е 2,5 × 10−3 и 2,8 × 10−3 wt%. Количество на добавения кверцетин: 6,4 × 10−6 wt%.
Ултразвукова обработка: UP100H, амплитуда 90%, импулсен работен цикъл 0,9, за 10 min.
Препоръчителен уред:
UP100H
Източник/научна публикация:
Murgia, S.; Bonacchi,S.; Falchi, A. M.; Lampis, S.; Lippolis, V.; Meli, V.; Monduzzi, M.; Prodi, L.; Schmidt, J.; Talmon, Y.; Caltagirone, C. (2013): Флуоресцентни кубозоми с включено лекарство: универсални наночастици за потенциални тераностични приложения. Langmuir 29, 2013. 6673–6679.
Декера брукселензис
Ултразвуково приложение:
Ултразвукова инактивация на Dekkera bruxellensis във вода
Препоръчителен уред:
UIP1500hd
Източник/научна публикация:
Borthwick, K. A. J.; Coakley, W. T.; McDonnell, M. B.; Nowotny, H.; Benes, E.; Grfschl, .M (2005): Разработване на нов компактен ултразвуков апарат за разрушаване на клетките. J. Microbio. Meths. 60/2005. стр. 207–216. / Lörincz, A. (2004): Ултразвуково разрушаване на клетките на дрожди във водни суспензии. Biosys. Eng. 89/ 2004. стр. 297–308. / Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Furuta, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Инактивация на Saccharomyces cerevisiae чрез ултразвуково облъчване. Ultrason. Sonochem. 11/2004. стр. 61–65.
Ултразвукова инактивация на Dekkera bruxellensis във вода
Препоръчителен уред:
UIP1500hd
Източник/научна публикация:
Borthwick, K. A. J.; Coakley, W. T.; McDonnell, M. B.; Nowotny, H.; Benes, E.; Grfschl, .M (2005): Разработване на нов компактен ултразвуков апарат за разрушаване на клетките. J. Microbio. Meths. 60/2005. стр. 207–216. / Lörincz, A. (2004): Ултразвуково разрушаване на клетките на дрожди във водни суспензии. Biosys. Eng. 89/ 2004. стр. 297–308. / Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Furuta, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Инактивация на Saccharomyces cerevisiae чрез ултразвуково облъчване. Ultrason. Sonochem. 11/2004. стр. 61–65.
Декера/Бретаномицес брукселензис
Ултразвуково приложение:
Инактивация за 90–120 sec.
Препоръчителен уред:
UIP1500hd
Източник/научна публикация:
вижте по-горе
Инактивация за 90–120 sec.
Препоръчителен уред:
UIP1500hd
Източник/научна публикация:
вижте по-горе
ДНК
Ултразвуково приложение:
Фрагментиране на ДНК: 2 min ултразвукова обработка на 100μL с UP100H или 4 min ултразвукова обработка на 100μL с UTR200.
Препоръчителен уред:
UP100H, UTR200 или VialTweeter
Източник/научна публикация:
Larguinho M. et al. (2010): Разработване на бърза и ефективна стратегия за фрагментиране на ДНК на базата на ултразвук.
Фрагментиране на ДНК: 2 min ултразвукова обработка на 100μL с UP100H или 4 min ултразвукова обработка на 100μL с UTR200.
Препоръчителен уред:
UP100H, UTR200 или VialTweeter
Източник/научна публикация:
Larguinho M. et al. (2010): Разработване на бърза и ефективна стратегия за фрагментиране на ДНК на базата на ултразвук.
Клетки S2 на Drosophila melanogaster
Ултразвуково приложение:
Екстракция на клетъчни протеини от клетки Drosophila melanogaster S2: замразени S2 клетки (1,56108) се лизират в 1 mL леденостуден буфер за хомогенизация (100 mM Tris-HCl pH 7,5, 1% SDS) и се оставят върху лед за 10 min. Клетъчният лизис се завършва чрез ултразвукова обработка върху лед (6615 серии, импулс 0,5 s; 75% интензитет) с ултразвуков процесор UP200S на Hielscher.
Препоръчителен уред:
UP200S (200W), 75% интензитет; импулсен режим: 6615 серии, импулс 0,5 s.
Източник/научна публикация:
Schwientek, T. et al. (2007): Подход с последователно използване на лектини за изследване на O-гликопротеома от муцинов тип на клетки Drosophila melanogaster S2. Proteomics 7, 2007. стр. 3264–3277.
Екстракция на клетъчни протеини от клетки Drosophila melanogaster S2: замразени S2 клетки (1,56108) се лизират в 1 mL леденостуден буфер за хомогенизация (100 mM Tris-HCl pH 7,5, 1% SDS) и се оставят върху лед за 10 min. Клетъчният лизис се завършва чрез ултразвукова обработка върху лед (6615 серии, импулс 0,5 s; 75% интензитет) с ултразвуков процесор UP200S на Hielscher.
Препоръчителен уред:
UP200S (200W), 75% интензитет; импулсен режим: 6615 серии, импулс 0,5 s.
Източник/научна публикация:
Schwientek, T. et al. (2007): Подход с последователно използване на лектини за изследване на O-гликопротеома от муцинов тип на клетки Drosophila melanogaster S2. Proteomics 7, 2007. стр. 3264–3277.
Производни щамове на E. coli
Ултразвуково приложение:
Разрушаване на клетките на производни на E. coli: замразените утайки, съответстващи на обем на пробата Vculture = 4/OD mL, се ресуспендират в 580 μL 10 mM калиево-фосфатен буфер pH 7, 1 mM EDTA. Добавят се 20 μL лизозим (концентрация 1 g L-1) и клетъчната суспензия се инкубира върху лед за около 30 min. След това клетките се разрушават чрез непрекъсната ултразвукова обработка с ултразвуков апарат (UP 200S Ultraschallprozessor, Dr. Hielscher GmbH, Teltow) върху лед, при амплитуда 50 % за 20 sec. Разтворимите и неразтворимите клетъчни фракции се отделят чрез центрофугиране при 13 000 rpm за 20 min. Неразтворимите протеини се промиват два пъти с 10 mM калиево-фосфатен буфер pH 7, 1 mM EDTA и се съхраняват при –20°C.
Препоръчителен уред:
UP200S с 50% амплитуда
Източник/научна публикация:
HA (2005): Оптимизиране на производството на активни рекомбинантни протеини чрез изследване на влиянието на малките протеини на топлинния шок на Escherichia coli, IbpA и IbpB, върху реактивирането in vivo на включващи телца.
Разрушаване на клетките на производни на E. coli: замразените утайки, съответстващи на обем на пробата Vculture = 4/OD mL, се ресуспендират в 580 μL 10 mM калиево-фосфатен буфер pH 7, 1 mM EDTA. Добавят се 20 μL лизозим (концентрация 1 g L-1) и клетъчната суспензия се инкубира върху лед за около 30 min. След това клетките се разрушават чрез непрекъсната ултразвукова обработка с ултразвуков апарат (UP 200S Ultraschallprozessor, Dr. Hielscher GmbH, Teltow) върху лед, при амплитуда 50 % за 20 sec. Разтворимите и неразтворимите клетъчни фракции се отделят чрез центрофугиране при 13 000 rpm за 20 min. Неразтворимите протеини се промиват два пъти с 10 mM калиево-фосфатен буфер pH 7, 1 mM EDTA и се съхраняват при –20°C.
Препоръчителен уред:
UP200S с 50% амплитуда
Източник/научна публикация:
HA (2005): Оптимизиране на производството на активни рекомбинантни протеини чрез изследване на влиянието на малките протеини на топлинния шок на Escherichia coli, IbpA и IbpB, върху реактивирането in vivo на включващи телца.
Антиген на Echinococcus granulosus
Ултразвуково приложение:
Клетъчен лизис и разрушаване: хомогенизираната проба от разтворими протеини на зрял E. granulosus, приготвена чрез замразяване в течен азот и размразяване при 42◦C, се обработва с ултразвук при 110V, 170W за 3×15 sec върху лед. След това пробата се центрофугира за 15min при 10 000g. Концентрацията на протеините се измерва по метода на Bradford, а пробата се съхранява при -20◦C.
Препоръчителен уред:
UP200S; 170W, охлаждане върху лед; 3 x 15 sec.
Източник/научна публикация:
Tabar et al. (2010): Серодиагностика на хидатидоза при овце с хидатидна течност, протосколекс и антиген от цялото тяло на Echinococcus granulosus.
Клетъчен лизис и разрушаване: хомогенизираната проба от разтворими протеини на зрял E. granulosus, приготвена чрез замразяване в течен азот и размразяване при 42◦C, се обработва с ултразвук при 110V, 170W за 3×15 sec върху лед. След това пробата се центрофугира за 15min при 10 000g. Концентрацията на протеините се измерва по метода на Bradford, а пробата се съхранява при -20◦C.
Препоръчителен уред:
UP200S; 170W, охлаждане върху лед; 3 x 15 sec.
Източник/научна публикация:
Tabar et al. (2010): Серодиагностика на хидатидоза при овце с хидатидна течност, протосколекс и антиген от цялото тяло на Echinococcus granulosus.
Грам-отрицателна Escherichia coli
Ултразвуково приложение:
Ултразвукова инактивация на Escherchia coli Gr- в мляко и сокове.
Препоръчителен уред:
UP100H
Източник/научна публикация:
Zenker, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Прилагане на подпомагана с ултразвук термична обработка за консервиране и запазване на качеството на течни храни. J Food Prot 66/2003. стр. 1642–1649.
Ултразвукова инактивация на Escherchia coli Gr- в мляко и сокове.
Препоръчителен уред:
UP100H
Източник/научна публикация:
Zenker, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Прилагане на подпомагана с ултразвук термична обработка за консервиране и запазване на качеството на течни храни. J Food Prot 66/2003. стр. 1642–1649.
Грам-отрицателна Escherichia coli във физиологичен разтвор
Ултразвуково приложение:
Ултразвукова инактивация на Escherchia coli Gr- във физиологичен разтвор.
Препоръчителен уред:
UP100H
Източник/научна публикация:
Duckhouse, H.; Mason, T. J.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P. (2004): Влияние на ултразвуковата обработка върху микробната дезинфекция с хипохлорит. Ultrason. Sonochem. 11/ 2004. стр. 173–176.
Ултразвукова инактивация на Escherchia coli Gr- във физиологичен разтвор.
Препоръчителен уред:
UP100H
Източник/научна публикация:
Duckhouse, H.; Mason, T. J.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P. (2004): Влияние на ултразвуковата обработка върху микробната дезинфекция с хипохлорит. Ultrason. Sonochem. 11/ 2004. стр. 173–176.
Грам-отрицателна Escherichia coli във вода
Ултразвуково приложение:
Ултразвукова инактивация на Escherchia coli Gr- във вода.
Препоръчителен уред:
UP100H
Източник/научна публикация:
Furuta, M.; Yamaguchi, M.; Tsukamoto, T.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Hasiba, K.; Maeda, Y. (2004): Инактивация на Escherichia coli чрез ултразвуково облъчване. Ultrason. Sonochem. 11/2004. стр. 57–60.
Ултразвукова инактивация на Escherchia coli Gr- във вода.
Препоръчителен уред:
UP100H
Източник/научна публикация:
Furuta, M.; Yamaguchi, M.; Tsukamoto, T.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Hasiba, K.; Maeda, Y. (2004): Инактивация на Escherichia coli чрез ултразвуково облъчване. Ultrason. Sonochem. 11/2004. стр. 57–60.
Глаукома, диск на зрителния нерв
Ултразвуково приложение:
Фрагментиране на РНК от глави на зрителния нерв (от очи на плъхове): главата на зрителния нерв (ONH) се замразява върху сух лед и се съхранява при 80°C преди екстракцията. РНК се изолира чрез ултразвукова обработка на замразените глави на нерва в екстракционния буфер на комплекта със сонда MS 0.5 (UP50H), след което се следват инструкциите на комплекта Arcturus, включително обработка с DNase за отстраняване на всякаква ДНК. Пречистената РНК се определя количествено.
Препоръчителен уред:
UP50H със сонда MS0.5
Източник/научна публикация:
Johnson et al. (2007): Глобални промени в генната експресия в главата на зрителния нерв след излагане на повишено вътреочно налягане при модел на глаукома при плъхове.
Фрагментиране на РНК от глави на зрителния нерв (от очи на плъхове): главата на зрителния нерв (ONH) се замразява върху сух лед и се съхранява при 80°C преди екстракцията. РНК се изолира чрез ултразвукова обработка на замразените глави на нерва в екстракционния буфер на комплекта със сонда MS 0.5 (UP50H), след което се следват инструкциите на комплекта Arcturus, включително обработка с DNase за отстраняване на всякаква ДНК. Пречистената РНК се определя количествено.
Препоръчителен уред:
UP50H със сонда MS0.5
Източник/научна публикация:
Johnson et al. (2007): Глобални промени в генната експресия в главата на зрителния нерв след излагане на повишено вътреочно налягане при модел на глаукома при плъхове.
Гликозаминогликан хондроитин сулфат (CS)
Ултразвуково приложение:
Определяне на CS чрез анализ с диметилметиленово синьо
Ресуспендиране на клетки: утайките от CS в микроцентрофужни епруветки се ресуспендират в 0,5 ml разтвор на папаин с концентрация 0,1mg/ml в балансиран солеви разтвор на Hanks (HBSS) чрез импулси от ултразвуков сонотрод (UP 100H, Hielscher Ultrasonics GmbH, Германия) при работен цикъл 1 и 100 % амплитуда за 3 sec. След това се извършва ензимно разграждане при 60 °C за 24 h.
За ензимно-свързания имуносорбентен анализ (ELISA) клетките след това се суспендират в дестилирана и дейонизирана вода при концентрация 106 клетки/ml и се оставят във фризер при –70°C през нощта, за да се улесни клетъчният лизис. След това клетките се хомогенизират чрез ултразвукова обработка за 40 sec с ултразвуковия хомогенизатор за тъкани UP100H на Hielscher.
Препоръчителен уред:
UP100H
Източник/научна публикация:
Vandrovcova et al. (2011): Влияние на покрития от колаген и хондроитин сулфат (CS) върху поли(лактид-ко-гликолид) (PLGA) върху остеобластоподобни клетки MG 63. Physiol. Res. 60; 2011. 797–813.
Определяне на CS чрез анализ с диметилметиленово синьо
Ресуспендиране на клетки: утайките от CS в микроцентрофужни епруветки се ресуспендират в 0,5 ml разтвор на папаин с концентрация 0,1mg/ml в балансиран солеви разтвор на Hanks (HBSS) чрез импулси от ултразвуков сонотрод (UP 100H, Hielscher Ultrasonics GmbH, Германия) при работен цикъл 1 и 100 % амплитуда за 3 sec. След това се извършва ензимно разграждане при 60 °C за 24 h.
За ензимно-свързания имуносорбентен анализ (ELISA) клетките след това се суспендират в дестилирана и дейонизирана вода при концентрация 106 клетки/ml и се оставят във фризер при –70°C през нощта, за да се улесни клетъчният лизис. След това клетките се хомогенизират чрез ултразвукова обработка за 40 sec с ултразвуковия хомогенизатор за тъкани UP100H на Hielscher.
Препоръчителен уред:
UP100H
Източник/научна публикация:
Vandrovcova et al. (2011): Влияние на покрития от колаген и хондроитин сулфат (CS) върху поли(лактид-ко-гликолид) (PLGA) върху остеобластоподобни клетки MG 63. Physiol. Res. 60; 2011. 797–813.
Клетки HaCaT
Ултразвуково приложение:
Лизис на клетки HaCaT за имунопреципитация на хроматин (ChIP): клетките HaCaT се фиксират с 1% формалдехид за 10 минути при 37uC. Фиксираните клетки се лизират в буфер RIPA и се обработват с ултразвук върху лед с ултразвуков уред с мощност 100W при амплитуда = 1 и работен цикъл = 100% в 12 едноминутни (12 x 1 min.) импулса.
Препоръчителен уред:
UP100H; за 12 min върху лед,
Източник/научна публикация:
Zhang et al. (2007): Базонуклинът регулира подгрупа от гените за рибозомна РНК в клетки HaCaT.
Лизис на клетки HaCaT за имунопреципитация на хроматин (ChIP): клетките HaCaT се фиксират с 1% формалдехид за 10 минути при 37uC. Фиксираните клетки се лизират в буфер RIPA и се обработват с ултразвук върху лед с ултразвуков уред с мощност 100W при амплитуда = 1 и работен цикъл = 100% в 12 едноминутни (12 x 1 min.) импулса.
Препоръчителен уред:
UP100H; за 12 min върху лед,
Източник/научна публикация:
Zhang et al. (2007): Базонуклинът регулира подгрупа от гените за рибозомна РНК в клетки HaCaT.
Хепарин: деполимеризация на хепарин
Ултразвуково приложение:
Ултразвуковият метод позволява получаване на нискомолекулен хепарин (LMWH). За целта хепаринът се подлага на радикална деполимеризация, катализирана от водороден пероксид. Реакцията е много бърза и отнема по-малко от 1 час, като физикохимичният процес на деполимеризация протича при меки реакционни условия, не изисква агресивни или токсични реагенти и осигурява продукт без химични артефакти. Така ултразвуковият процес е подходящ за мащабно производство на LMWH, както и на аналози, получени от естествени сулфатирани полизахариди.
Ултразвукова процедура:
За физикохимичната деполимеризация на нефракциониран хепарин чрез подпомагана с ултразвук радикална деполимеризация хепаринът се разтваря във вода до крайна концентрация 25 mg/mL (5 mL). Реакционната смес се обработва с ултразвук с помощта на ултразвуков апарат със сонда UP50H. Ултразвуковият апарат е оборудван със сонда (микронакрайник MS3) с диаметър 3mm, която осигурява амплитуда 180μm. Процесорът генерира механични надлъжни вибрации с честота 30 kHz чрез електрическо възбуждане. Реакционната смес се поддържа при 60°C в реактор Radleys®, а ултразвуковите вълни се прилагат като импулс с продължителност 0,5sec, за да се предотврати нагряването на сместа. Аликвотна проба за нулевия момент (250μl) се взема от разтвора преди стартирането на реакцията чрез едновременно добавяне на водороден пероксид и прилагане на ултразвукови вълни. Водородният пероксид се добавя за получаване на крайно съотношение водороден пероксид/хепарин (w/w) 0,15 (3,75 mg/mL).
Препоръчителен уред:
UP50H със сонотрод MS3
Източник/научна публикация:
Achour, Oussama; Bridiau, Nicolas; Godhbani, Azza; Le Joubioux, Florian; Bordenave Juchereau, Stephanie; Sannier, Fredéric; Piot, Jean-Marie; Fruitier Arnaudin, Ingrid; Maugard, Thierry (2013): Подпомагано с ултразвук получаване на нискомолекулен хепарин (LMWH) с антикоагулантна активност. Carbohydrate Polymers 97; 2013. 684–689.
Ултразвуковият метод позволява получаване на нискомолекулен хепарин (LMWH). За целта хепаринът се подлага на радикална деполимеризация, катализирана от водороден пероксид. Реакцията е много бърза и отнема по-малко от 1 час, като физикохимичният процес на деполимеризация протича при меки реакционни условия, не изисква агресивни или токсични реагенти и осигурява продукт без химични артефакти. Така ултразвуковият процес е подходящ за мащабно производство на LMWH, както и на аналози, получени от естествени сулфатирани полизахариди.
Ултразвукова процедура:
За физикохимичната деполимеризация на нефракциониран хепарин чрез подпомагана с ултразвук радикална деполимеризация хепаринът се разтваря във вода до крайна концентрация 25 mg/mL (5 mL). Реакционната смес се обработва с ултразвук с помощта на ултразвуков апарат със сонда UP50H. Ултразвуковият апарат е оборудван със сонда (микронакрайник MS3) с диаметър 3mm, която осигурява амплитуда 180μm. Процесорът генерира механични надлъжни вибрации с честота 30 kHz чрез електрическо възбуждане. Реакционната смес се поддържа при 60°C в реактор Radleys®, а ултразвуковите вълни се прилагат като импулс с продължителност 0,5sec, за да се предотврати нагряването на сместа. Аликвотна проба за нулевия момент (250μl) се взема от разтвора преди стартирането на реакцията чрез едновременно добавяне на водороден пероксид и прилагане на ултразвукови вълни. Водородният пероксид се добавя за получаване на крайно съотношение водороден пероксид/хепарин (w/w) 0,15 (3,75 mg/mL).
Препоръчителен уред:
UP50H със сонотрод MS3
Източник/научна публикация:
Achour, Oussama; Bridiau, Nicolas; Godhbani, Azza; Le Joubioux, Florian; Bordenave Juchereau, Stephanie; Sannier, Fredéric; Piot, Jean-Marie; Fruitier Arnaudin, Ingrid; Maugard, Thierry (2013): Подпомагано с ултразвук получаване на нискомолекулен хепарин (LMWH) с антикоагулантна активност. Carbohydrate Polymers 97; 2013. 684–689.
Хмел
Ултразвуково приложение:
Екстракция на активни съединения/билкови екстракти във вода и етанол.
Препоръчителен уред:
UP400S
Екстракция на активни съединения/билкови екстракти във вода и етанол.
Препоръчителен уред:
UP400S
Lactobacillus (лизис/изолиране на ДНК от различни щамове на Lactobacillus)
Ултразвуково приложение:
Щамове Lactobacillus: L. pontis, L. sanfranciscensis, L. farciminis, L. panis, L. oris, L. vaginalis и L. reuteri, L. sp.
Процедура: разработен е протокол за ултразвуков лизис за изолиране на ДНК от единични колонии. Една колония (с диаметър от 2 до 3 mm) се суспендира в 100μl лизисен буфер (20 mM EDTA, 10 mM Tris [pH 7,9], 1% Triton X-100, 500 mM guanidine-HCl, 250 mM NaCl). Клетките се лизират чрез 1 min ултразвукова обработка с ултразвуков апарат със сонда UP50H. След добавяне на 150μl студен етанол (-20°C) сместа се центрофугира през центрофужна колонка от комплекта QIAamp tissue kit и накрая се елуира с 60μl буфер (10 mM Tris [pH 7,5]).
За да се осигури средство за бързо и надеждно идентифициране на единични чисти култури, PCR анализът се комбинира с бърза процедура за изолиране на ДНК. Продължителните процедури за ензимен лизис и променливата чувствителност на бактериите към лизозима се преодоляват чрез ултразвукова обработка на клетките, последвана от пречистване и концентриране чрез свързване на ДНК с матрица от силициев диоксид. Установено е, че клетъчният материал от една колония е достатъчен за PCR.
Препоръчителен уред:
UP50H
Източник/научна публикация:
Müller, M. R. A. (2000): Характеризиране на микробната екосистема при ферментации на зърнени култури чрез молекулярнобиологични методи. Дисертация, University of Cologne, 2000.
Щамове Lactobacillus: L. pontis, L. sanfranciscensis, L. farciminis, L. panis, L. oris, L. vaginalis и L. reuteri, L. sp.
Процедура: разработен е протокол за ултразвуков лизис за изолиране на ДНК от единични колонии. Една колония (с диаметър от 2 до 3 mm) се суспендира в 100μl лизисен буфер (20 mM EDTA, 10 mM Tris [pH 7,9], 1% Triton X-100, 500 mM guanidine-HCl, 250 mM NaCl). Клетките се лизират чрез 1 min ултразвукова обработка с ултразвуков апарат със сонда UP50H. След добавяне на 150μl студен етанол (-20°C) сместа се центрофугира през центрофужна колонка от комплекта QIAamp tissue kit и накрая се елуира с 60μl буфер (10 mM Tris [pH 7,5]).
За да се осигури средство за бързо и надеждно идентифициране на единични чисти култури, PCR анализът се комбинира с бърза процедура за изолиране на ДНК. Продължителните процедури за ензимен лизис и променливата чувствителност на бактериите към лизозима се преодоляват чрез ултразвукова обработка на клетките, последвана от пречистване и концентриране чрез свързване на ДНК с матрица от силициев диоксид. Установено е, че клетъчният материал от една колония е достатъчен за PCR.
Препоръчителен уред:
UP50H
Източник/научна публикация:
Müller, M. R. A. (2000): Характеризиране на микробната екосистема при ферментации на зърнени култури чрез молекулярнобиологични методи. Дисертация, University of Cologne, 2000.
Лактобацилус ацидофилус, Грам+
Ултразвуково приложение:
Ултразвукова инактивация на Lactobacillus acidophilus Gr+ в мляко и сокове.
Препоръчителен уред:
UIP500hd
Източник/научна публикация:
Zenker, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Прилагане на подпомагана с ултразвук термична обработка за консервиране и запазване на качеството на течни храни. J Food Prot 66/2003. стр. 1642–1649.
Ултразвукова инактивация на Lactobacillus acidophilus Gr+ в мляко и сокове.
Препоръчителен уред:
UIP500hd
Източник/научна публикация:
Zenker, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Прилагане на подпомагана с ултразвук термична обработка за консервиране и запазване на качеството на течни храни. J Food Prot 66/2003. стр. 1642–1649.
Legionella pneumophila Gr+ в разредена среда
Ултразвуково приложение:
Ултразвукова инактивация на Legionella pneumophila Gr+ в разредена среда.
Препоръчителен уред:
UIP500hd
Източник/научна публикация:
Dadjour, M. F.; Ogino, C.; Matsumura, S.; Nakamura, S.; Shimizu N. (2006): Дезинфекция на Legionella pneumophila чрез ултразвукова обработка с TiO2. Water Res 40/2006. стр.1137–1142.
Ултразвукова инактивация на Legionella pneumophila Gr+ в разредена среда.
Препоръчителен уред:
UIP500hd
Източник/научна публикация:
Dadjour, M. F.; Ogino, C.; Matsumura, S.; Nakamura, S.; Shimizu N. (2006): Дезинфекция на Legionella pneumophila чрез ултразвукова обработка с TiO2. Water Res 40/2006. стр.1137–1142.
Левконосток мезентероидес
Ултразвуково приложение:
Лизозимна активност на левкоцитите при миелоцитна левкемия: клетъчната суспензия се обработва с ултразвук за 15 min и пробите се анализират за лизозимна активност. Определя се концентрацията на лизозим в левкоцитите в ug./10 клетки.
Препоръчителен уред:
UP50H
Лизозимна активност на левкоцитите при миелоцитна левкемия: клетъчната суспензия се обработва с ултразвук за 15 min и пробите се анализират за лизозимна активност. Определя се концентрацията на лизозим в левкоцитите в ug./10 клетки.
Препоръчителен уред:
UP50H
Левкоцитна изоензимна активност при миелоцитна левкемия
Ултразвуково приложение:
Подготовка на проби: клетъчната суспензия се обработва с ултразвук и пробите се анализират за лизозимна активност. Определя се концентрацията на лизозим в левкоцитите в ug/106.
Препоръчителен уред:
UP200St
Подготовка на проби: клетъчната суспензия се обработва с ултразвук и пробите се анализират за лизозимна активност. Определя се концентрацията на лизозим в левкоцитите в ug/106.
Препоръчителен уред:
UP200St
Липозоми
Ултразвуково приложение:
Образуване на малки еднослойни везикули (SUVs)
Щракнете тук, за да прочетете повече за ултразвуковото приготвяне на липозоми!
Препоръчителен уред:
UP50H; 3 цикъла по 5 min; в ледена баня.
Образуване на малки еднослойни везикули (SUVs)
Щракнете тук, за да прочетете повече за ултразвуковото приготвяне на липозоми!
Препоръчителен уред:
UP50H; 3 цикъла по 5 min; в ледена баня.
Малахитово зелено
Ултразвуково приложение:
Сонофотокаталитично разграждане на малахитово зелено (силен бактерицид): самостоятелното фотокаталитично разграждане е значително по-бързо от сонолитичното разграждане, а ефективността може да се подобри чрез комбиниране на двата процеса. Малахитовото зелено, силен бактерицид, е силно екотоксично за морските бактерии, но се преобразува в органични вещества, които са по-малко токсични или нетоксични.
Препоръчителен уред:
UP400S
Сонофотокаталитично разграждане на малахитово зелено (силен бактерицид): самостоятелното фотокаталитично разграждане е значително по-бързо от сонолитичното разграждане, а ефективността може да се подобри чрез комбиниране на двата процеса. Малахитовото зелено, силен бактерицид, е силно екотоксично за морските бактерии, но се преобразува в органични вещества, които са по-малко токсични или нетоксични.
Препоръчителен уред:
UP400S
Ацилиране на мангиферин
Ултразвуково приложение:
Мангиферинът (1,3,6,7-Tetrahydroxy-2-[3,4,5-trihydroxy-6-(hydroxymethyl)oxan-2-yl]xanthen-9-one; формула: C19H18O11) е полифенол със структура на C-гликозилксантон, който се среща в много растителни видове. Мангиферинът проявява различни фармакологични активности. Региоселективното ацилиране на мангиферин може да бъде много ефективно катализирано от липаза при ултразвукова обработка. В сравнение с конвенционалните методи подпомаганата с ултразвук катализа се отличава с предимствата на по-кратко време за реакция и по-високи добиви. Установени са следните оптимални условия за ултразвуково ацилиране на мангиферин:
липаза: PCL, ацилен донор: винилацетат; реакционен разтворител: DMSO, реакционна температура: 45 degC, ултразвукова мощност: 200W; съотношение на субстратите: ацилен донор/мангиферин 6/1, количество на ензима: 6 mg/ml
Добивът при региоселективното ацилиране достига до 84%.
Препоръчителен уред:
UP200St или UP200Ht
Източник/научна публикация:
срв.: Wang, Z.; Wang, R.; Tian, J.; Zhao, B; Wei, X.F.; Su, Y.L.; Li, C.Y.; Cao, S.G.; Wang, L. (2010): Влияние на ултразвука върху катализираното от липаза региоселективно ацилиране на мангиферин в неводни разтворители. J. Asian Nat Prod. Res. 12/1, 2010. 56–63.
Мангиферинът (1,3,6,7-Tetrahydroxy-2-[3,4,5-trihydroxy-6-(hydroxymethyl)oxan-2-yl]xanthen-9-one; формула: C19H18O11) е полифенол със структура на C-гликозилксантон, който се среща в много растителни видове. Мангиферинът проявява различни фармакологични активности. Региоселективното ацилиране на мангиферин може да бъде много ефективно катализирано от липаза при ултразвукова обработка. В сравнение с конвенционалните методи подпомаганата с ултразвук катализа се отличава с предимствата на по-кратко време за реакция и по-високи добиви. Установени са следните оптимални условия за ултразвуково ацилиране на мангиферин:
липаза: PCL, ацилен донор: винилацетат; реакционен разтворител: DMSO, реакционна температура: 45 degC, ултразвукова мощност: 200W; съотношение на субстратите: ацилен донор/мангиферин 6/1, количество на ензима: 6 mg/ml
Добивът при региоселективното ацилиране достига до 84%.
Препоръчителен уред:
UP200St или UP200Ht
Източник/научна публикация:
срв.: Wang, Z.; Wang, R.; Tian, J.; Zhao, B; Wei, X.F.; Su, Y.L.; Li, C.Y.; Cao, S.G.; Wang, L. (2010): Влияние на ултразвука върху катализираното от липаза региоселективно ацилиране на мангиферин в неводни разтворители. J. Asian Nat Prod. Res. 12/1, 2010. 56–63.
Екстракция на молекули
Ултразвуково приложение:
Протокол за екстракция от гипс, rheolite, базалт, пепел от edfell и обсидианово стъкло:
Проба от 1g реголит или натрошена скала се подлага на течна екстракция при ултразвуково облъчване за извличане и солюбилизиране на целевите молекули. За целта към 1g аналогова проба в стъклена епруветка се добавят 3ml MeOH P80 и се извършва ултразвукова обработка за 20 минути с ултразвуков уред със сонда UP50H при настройка на амплитудата 40%. Сместа се оставя да престои 10 минути и мътният супернатант, образувал се над утаената аналогова проба, се декантира в центрофужни епруветки от 1,5 ml. За да се сведе до минимум загубата на извлечени компоненти чрез адсорбция върху повърхностите на хидрофобните полимерни центрофужни епруветки, епруветките първо се блокират с 0,5% (w/v) BSA в 100 mM HEPES pH 7,4. Супернатантите се избистрят чрез центрофугиране при 17 000 G за 10 минути и се съхраняват при 2 – 8°C в стъклени флакони до изследването им чрез имуноанализ.
Препоръчителен уред:
UP50H
Източник/научна публикация:
Rix, C.(2012): Откриване на живот на Марс и чипът Life Marker Chip: анализи с антитела за откриване на органични молекули в течни екстракти от марсиански проби. Дисертация, Cranfield University 2012.
Протокол за екстракция от гипс, rheolite, базалт, пепел от edfell и обсидианово стъкло:
Проба от 1g реголит или натрошена скала се подлага на течна екстракция при ултразвуково облъчване за извличане и солюбилизиране на целевите молекули. За целта към 1g аналогова проба в стъклена епруветка се добавят 3ml MeOH P80 и се извършва ултразвукова обработка за 20 минути с ултразвуков уред със сонда UP50H при настройка на амплитудата 40%. Сместа се оставя да престои 10 минути и мътният супернатант, образувал се над утаената аналогова проба, се декантира в центрофужни епруветки от 1,5 ml. За да се сведе до минимум загубата на извлечени компоненти чрез адсорбция върху повърхностите на хидрофобните полимерни центрофужни епруветки, епруветките първо се блокират с 0,5% (w/v) BSA в 100 mM HEPES pH 7,4. Супернатантите се избистрят чрез центрофугиране при 17 000 G за 10 минути и се съхраняват при 2 – 8°C в стъклени флакони до изследването им чрез имуноанализ.
Препоръчителен уред:
UP50H
Източник/научна публикация:
Rix, C.(2012): Откриване на живот на Марс и чипът Life Marker Chip: анализи с антитела за откриване на органични молекули в течни екстракти от марсиански проби. Дисертация, Cranfield University 2012.
Утайки от миши черен дроб
Ултразвуково приложение:
Утайките се промиват и се обработват с ултразвук за 5 min с още 0,5 mL LB2, след което се центрофугират при 12 000 g за още 20 min и получените две фракции супернатант се събират. Накрая утайките се разтварят с 0,5 mL буфер, съдържащ 40 mM Tris база, 5 M урея, 2 M тиоурея, 4% CHAPS, 100 mM DTT, 0,5% (v/v) biolyte 3-10 (LB3), обработват се с ултразвук и се центрофугират при 12 000 g за 20 min.
Препоръчителен уред:
UP200S; за 5min.
Източник/научна публикация:
Gazzana et al. (2009): Актуални данни за протеома на черния дроб на мишки.
Утайките се промиват и се обработват с ултразвук за 5 min с още 0,5 mL LB2, след което се центрофугират при 12 000 g за още 20 min и получените две фракции супернатант се събират. Накрая утайките се разтварят с 0,5 mL буфер, съдържащ 40 mM Tris база, 5 M урея, 2 M тиоурея, 4% CHAPS, 100 mM DTT, 0,5% (v/v) biolyte 3-10 (LB3), обработват се с ултразвук и се центрофугират при 12 000 g за 20 min.
Препоръчителен уред:
UP200S; за 5min.
Източник/научна публикация:
Gazzana et al. (2009): Актуални данни за протеома на черния дроб на мишки.
Суспензия от миши черен дроб
Ултразвуково приложение:
Хомогенизация на пробата за получаване на клетъчен лизат.
Препоръчителен уред:
UP200S; за 3 x 20 sec.
Източник/научна публикация:
Gazzana et al. (2009): Актуални данни за протеома на черния дроб на мишки.
Хомогенизация на пробата за получаване на клетъчен лизат.
Препоръчителен уред:
UP200S; за 3 x 20 sec.
Източник/научна публикация:
Gazzana et al. (2009): Актуални данни за протеома на черния дроб на мишки.
Пеницилиум дигитатум
Ултразвуково приложение:
Ултразвукова инактивация на Penicillium digitatum (растителен патоген) в хранителна среда Sabouraud.
Препоръчителен уред:
UP200St
Източник/научна публикация:
López-Malo, A.; Palou, E.; Jiménez-Fernández, M.; Alzamora, S. M.; Guerrero, S. (2005): Многофакторна инактивация на гъби чрез комбиниране на термосоникация и антимикробни средства. J. Food Eng. 67/ 2005. стр. 87–93.
Ултразвукова инактивация на Penicillium digitatum (растителен патоген) в хранителна среда Sabouraud.
Препоръчителен уред:
UP200St
Източник/научна публикация:
López-Malo, A.; Palou, E.; Jiménez-Fernández, M.; Alzamora, S. M.; Guerrero, S. (2005): Многофакторна инактивация на гъби чрез комбиниране на термосоникация и антимикробни средства. J. Food Eng. 67/ 2005. стр. 87–93.
Фикоцианин от Spirulina platensis (Arthrospira platensis)
Ултразвуково приложение:
Екстракция на фикоцианин от клетки на Spirulina platensis (Arthrospira platensis).
Препоръчителен уред:
UP400S
Екстракция на фикоцианин от клетки на Spirulina platensis (Arthrospira platensis).
Препоръчителен уред:
UP400S
Растителни клетки и растителна тъкан
Ултразвуково приложение:
30% уплътнени растителни клетки (W/V) в дестилирана вода се разрушават чрез ултразвукова обработка за 1–15 min; разрушаване на растителна тъкан: 1 g изсушена тъкан, суспендирана в алкохол, се разрушава при ултразвукова обработка за около 5 min.
Препоръчителен уред:
UP100H
30% уплътнени растителни клетки (W/V) в дестилирана вода се разрушават чрез ултразвукова обработка за 1–15 min; разрушаване на растителна тъкан: 1 g изсушена тъкан, суспендирана в алкохол, се разрушава при ултразвукова обработка за около 5 min.
Препоръчителен уред:
UP100H
Тромбоцити
Ултразвуково приложение:
Приготвяне на тромбоцитен лизат: разрушаване за 1–5 min.
Препоръчителен уред:
UP200Ht
Приготвяне на тромбоцитен лизат: разрушаване за 1–5 min.
Препоръчителен уред:
UP200Ht
Плевротус туберрегиум
Ултразвуково приложение:
Екстракция на полизахариди от ядливата гъба Pleurotus tuberregium
Препоръчителен уред:
UP400S
Екстракция на полизахариди от ядливата гъба Pleurotus tuberregium
Препоръчителен уред:
UP400S
Поли(млечна-ко-гликолова киселина) (PLGA)
Ултразвуково приложение:
Приготвяне на поли(млечна-ко-гликолова киселина) (PLGA) с включен говежди серумен албумин (BSA) чрез ултразвукова обработка за 40 sec.
Препоръчителен уред:
Dmini; за 40sec.
Източник/научна публикация:
Freitas et al. (2005): Проточно ултразвуково емулгиране, комбинирано със статично микросмесване, за асептично производство на микросфери чрез екстракция с разтворител.
Приготвяне на поли(млечна-ко-гликолова киселина) (PLGA) с включен говежди серумен албумин (BSA) чрез ултразвукова обработка за 40 sec.
Препоръчителен уред:
Dmini; за 40sec.
Източник/научна публикация:
Freitas et al. (2005): Проточно ултразвуково емулгиране, комбинирано със статично микросмесване, за асептично производство на микросфери чрез екстракция с разтворител.
Полифеноли от ябълка
Ултразвуково приложение:
Ултразвукова екстракция на полифеноли от ябълка. Разтворител: воден. Увеличен добив с 6%; интензитет на ултразвуковата обработка: 20–75Ws/ml; температура на процеса: нагряване до 80 degC.
Препоръчителен уред:
UIP2000hd
Източник/научна публикация:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвуково извличане и модификация на хранителни съставки. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвукови технологии за преработка на храни и биопроцеси. New York: Springer, 2011. стр. 345–368.
Ултразвукова екстракция на полифеноли от ябълка. Разтворител: воден. Увеличен добив с 6%; интензитет на ултразвуковата обработка: 20–75Ws/ml; температура на процеса: нагряване до 80 degC.
Препоръчителен уред:
UIP2000hd
Източник/научна публикация:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвуково извличане и модификация на хранителни съставки. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвукови технологии за преработка на храни и биопроцеси. New York: Springer, 2011. стр. 345–368.
Полифеноли от черен чай
Ултразвуково приложение:
Ултразвукова екстракция на полифеноли от черен чай. Разтворител: воден. Увеличен добив с 6–18%; интензитет на ултразвуковата обработка: 8–10Ws/ml; налягане на околната среда, температура на процеса: нагряване до 90 degC.
Препоръчителен уред:
UIP2000hd
Източник/научна публикация:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвуково извличане и модификация на хранителни съставки. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвукови технологии за преработка на храни и биопроцеси. New York: Springer, 2011. стр. 345–368.
Ултразвукова екстракция на полифеноли от черен чай. Разтворител: воден. Увеличен добив с 6–18%; интензитет на ултразвуковата обработка: 8–10Ws/ml; налягане на околната среда, температура на процеса: нагряване до 90 degC.
Препоръчителен уред:
UIP2000hd
Източник/научна публикация:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвуково извличане и модификация на хранителни съставки. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвукови технологии за преработка на храни и биопроцеси. New York: Springer, 2011. стр. 345–368.
Полифеноли от джибри от червено грозде
Ултразвуково приложение:
Ултразвукова екстракция на полифеноли от джибри от червено грозде. Разтворител: воден. Увеличен добив с 11–35%; интензитет на ултразвуковата обработка: 20–75Ws/ml; налягане на околната среда.
Препоръчителен уред:
UIP2000hd
Източник/научна публикация:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвуково извличане и модификация на хранителни съставки. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвукови технологии за преработка на храни и биопроцеси. New York: Springer, 2011. стр. 345–368.
Ултразвукова екстракция на полифеноли от джибри от червено грозде. Разтворител: воден. Увеличен добив с 11–35%; интензитет на ултразвуковата обработка: 20–75Ws/ml; налягане на околната среда.
Препоръчителен уред:
UIP2000hd
Източник/научна публикация:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвуково извличане и модификация на хранителни съставки. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвукови технологии за преработка на храни и биопроцеси. New York: Springer, 2011. стр. 345–368.
Полифеноли, аминокиселина и кофеин от зелен чай
Ултразвуково приложение:
Екстракция на активни съединения от зелен чай във вода
Препоръчителен уред:
UP400S
Екстракция на активни съединения от зелен чай във вода
Препоръчителен уред:
UP400S
Свинско месо: осоляване на свинско контрафиле в саламура
Ултразвуково приложение:
За подпомаганото с ултразвук осоляване в саламура свински филета (Longissimus dorsi) се потапят в саламура от натриев хлорид (40 g L−1) и се обработват при 5°C с нискочестотен ултразвук (20 kHz) с нисък интензитет (2–4 W/cm−2). Изследвано е влиянието на подпомаганото с ултразвук осоляване върху микроструктурата на свинската тъкан, денатурацията на протеините, водосвързващата способност (WBC), водозадържащата способност (WHC), коефициента на дифузия на натриевия хлорид (D) и текстурния профил на месото (TPA). Резултатите показват, че ултразвуковата обработка предизвиква благоприятни микроструктурни промени в месната тъкан. Водозадържащата способност и текстурните свойства се подобряват чрез ултразвукова обработка в сравнение както с пробите, обработени в тумблер, така и с пробите, осолявани в статична саламура. Тези положителни ефекти обаче са силно зависими от ултразвуковия интензитет. По-високите интензитети и/или по-дългото време на обработка предизвикват денатурация на протеините. Моделът с постоянен коефициент на дифузия позволява точно описание на кинетиката на дифузия на NaCl по време на осоляването в саламура. Ултразвуковата обработка значително подобрява дифузията на солта в сравнение с пробите, осолявани в саламура при статични условия, а коефициентът на дифузия нараства експоненциално с увеличаването на ултразвуковия интензитет.
Препоръчителен уред:
UP200Ht със сонотрод S26d40
Източник/научна публикация:
Siro, I.; Ven, Cs.; Balla, Cs.; Jonas, G.; Zeke, I.; Friedrich, L. (2009): Прилагане на подпомагана с ултразвук техника за осоляване с цел подобряване на дифузията на натриев хлорид в свинско месо. Вестник за хранително инженерство 91/2, 2009. 353–362.
За подпомаганото с ултразвук осоляване в саламура свински филета (Longissimus dorsi) се потапят в саламура от натриев хлорид (40 g L−1) и се обработват при 5°C с нискочестотен ултразвук (20 kHz) с нисък интензитет (2–4 W/cm−2). Изследвано е влиянието на подпомаганото с ултразвук осоляване върху микроструктурата на свинската тъкан, денатурацията на протеините, водосвързващата способност (WBC), водозадържащата способност (WHC), коефициента на дифузия на натриевия хлорид (D) и текстурния профил на месото (TPA). Резултатите показват, че ултразвуковата обработка предизвиква благоприятни микроструктурни промени в месната тъкан. Водозадържащата способност и текстурните свойства се подобряват чрез ултразвукова обработка в сравнение както с пробите, обработени в тумблер, така и с пробите, осолявани в статична саламура. Тези положителни ефекти обаче са силно зависими от ултразвуковия интензитет. По-високите интензитети и/или по-дългото време на обработка предизвикват денатурация на протеините. Моделът с постоянен коефициент на дифузия позволява точно описание на кинетиката на дифузия на NaCl по време на осоляването в саламура. Ултразвуковата обработка значително подобрява дифузията на солта в сравнение с пробите, осолявани в саламура при статични условия, а коефициентът на дифузия нараства експоненциално с увеличаването на ултразвуковия интензитет.
Препоръчителен уред:
UP200Ht със сонотрод S26d40
Източник/научна публикация:
Siro, I.; Ven, Cs.; Balla, Cs.; Jonas, G.; Zeke, I.; Friedrich, L. (2009): Прилагане на подпомагана с ултразвук техника за осоляване с цел подобряване на дифузията на натриев хлорид в свинско месо. Вестник за хранително инженерство 91/2, 2009. 353–362.
Порфира йезоензис
Ултразвуково приложение:
Ултразвуково разграждане на полизахариди от Porphyra yezoensis: 50mL разтвор на полизахариди от porphyra yezoensis с концентрация 1,0 g/100mL (сухо тегло) се обработва с ултразвук за 4 hr с UP400S.
Препоръчителен уред:
UP400S; импулсен ултразвук (цикли: 2 sec включен/2 sec изключен) при 20°C.
Ултразвуково разграждане на полизахариди от Porphyra yezoensis: 50mL разтвор на полизахариди от porphyra yezoensis с концентрация 1,0 g/100mL (сухо тегло) се обработва с ултразвук за 4 hr с UP400S.
Препоръчителен уред:
UP400S; импулсен ултразвук (цикли: 2 sec включен/2 sec изключен) при 20°C.
Прахове
Ултразвуково приложение:
Смилане, деагломерация и диспергиране до малък, сравнително равномерен размер на частиците.
Препоръчителен уред:
UP200St
Смилане, деагломерация и диспергиране до малък, сравнително равномерен размер на частиците.
Препоръчителен уред:
UP200St
Кости от плъх
Черен дроб от плъх
Ултразвуково приложение:
Разрушаване и хомогенизация на тъкан с UP400S.
Препоръчителен уред:
UP400S; 3 пъти по 30 sec; върху лед.
Източник/научна публикация:
Oh et al. (2003): Генът на ацетил-CoA карбоксилазата се регулира от протеин-1, свързващ стеролния регулаторен елемент, в черния дроб. Journal of Biological Chemistry 2003.
Разрушаване и хомогенизация на тъкан с UP400S.
Препоръчителен уред:
UP400S; 3 пъти по 30 sec; върху лед.
Източник/научна публикация:
Oh et al. (2003): Генът на ацетил-CoA карбоксилазата се регулира от протеин-1, свързващ стеролния регулаторен елемент, в черния дроб. Journal of Biological Chemistry 2003.
Кожа от плъх
Рауволфия серпентина
Ребаудиозид А
Ултразвуково приложение:
Проби от 10g сухи и смлени листа от стевия се екстрахират в 100mL вода при непрекъснато разбъркване (с магнитна бъркалка). Стойността на pH се контролира с 0,01 M натриев фосфат с pH 7. Пробата се поставя в стъклена лабораторна чаша от 150 mL и се обработва с ултразвуков апарат със сонда (UIP500hd, 20kHz, 500W). Върхът на сонотрода се потапя на около 1,5 cm в суспензията от листа на стевия. Ултразвуковият уред се настройва за изходна мощност 350W. Мека ултразвукова обработка при 350 W за 5–10 min при постоянна температура на процеса 30°C осигурява добив на ребаудиозид A от 30–34g на 100g проба. След ултразвуковата обработка екстрактният разтвор се центрофугира и се филтрира през микропореста мембрана 0,45 μm; филтратът се взема за анализ на общото съдържание на ребаудиозид A. Екстракционният добив на общото съдържание на ребаудиозид A се анализира чрез HPLC.
Чрез подпомаганата с ултразвук екстракция без разтворител се получава висок добив на ребаудиозид A в сравнение с традиционните методи за екстракция като топлинна екстракция или мацерация.
Препоръчителен уред:
UIP500hd
Проби от 10g сухи и смлени листа от стевия се екстрахират в 100mL вода при непрекъснато разбъркване (с магнитна бъркалка). Стойността на pH се контролира с 0,01 M натриев фосфат с pH 7. Пробата се поставя в стъклена лабораторна чаша от 150 mL и се обработва с ултразвуков апарат със сонда (UIP500hd, 20kHz, 500W). Върхът на сонотрода се потапя на около 1,5 cm в суспензията от листа на стевия. Ултразвуковият уред се настройва за изходна мощност 350W. Мека ултразвукова обработка при 350 W за 5–10 min при постоянна температура на процеса 30°C осигурява добив на ребаудиозид A от 30–34g на 100g проба. След ултразвуковата обработка екстрактният разтвор се центрофугира и се филтрира през микропореста мембрана 0,45 μm; филтратът се взема за анализ на общото съдържание на ребаудиозид A. Екстракционният добив на общото съдържание на ребаудиозид A се анализира чрез HPLC.
Чрез подпомаганата с ултразвук екстракция без разтворител се получава висок добив на ребаудиозид A в сравнение с традиционните методи за екстракция като топлинна екстракция или мацерация.
Препоръчителен уред:
UIP500hd
Оризово нишесте
Ултразвуково приложение:
Разрушаване, изолиране на нишесте и разкъсване на нековалентни връзки между протеин и нишесте в суспензия от оризово брашно (33%) за 20 – 40 min.
Препоръчителен уред:
UP500hd; 20 – 40 min.
Разрушаване, изолиране на нишесте и разкъсване на нековалентни връзки между протеин и нишесте в суспензия от оризово брашно (33%) за 20 – 40 min.
Препоръчителен уред:
UP500hd; 20 – 40 min.
Ротифери
Ултразвуково приложение:
Разрушаване на клетките на мезозоопланктон: чрез ултразвукова обработка при следните условия – четири дебита (200, 400, 520 и 800lh-1) и четири амплитуди (25, 50, 75 и 100%) – е постигнат дял на унищожаване между 58 и 85%.
Препоръчителен уред:
UP2000 с проточна клетка
Източник/научна публикация:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ултравиолетова светлина, ултразвук и водороден пероксид като средства за обработка на баластни води – експерименти с мезозоопланктон в слабо солени бракични води. Journal of Marine Environmental Engineering, 8(1), 35–55.
Разрушаване на клетките на мезозоопланктон: чрез ултразвукова обработка при следните условия – четири дебита (200, 400, 520 и 800lh-1) и четири амплитуди (25, 50, 75 и 100%) – е постигнат дял на унищожаване между 58 и 85%.
Препоръчителен уред:
UP2000 с проточна клетка
Източник/научна публикация:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ултравиолетова светлина, ултразвук и водороден пероксид като средства за обработка на баластни води – експерименти с мезозоопланктон в слабо солени бракични води. Journal of Marine Environmental Engineering, 8(1), 35–55.
С. фрагилис
Сахаромицес церевизие
Ултразвуково приложение:
Разрушаване
Препоръчителен уред:
UP400S
Източник/научна публикация:
Guerrero, S,; López-Malo, A.; Alzamora, S. M. (2001): Влияние на ултразвука върху преживяемостта на Saccharomyces cerevisiae: влияние на температурата, pH и амплитудата. Innov. Food Sci. Emerg Technol. 2/2001. стр. 31–39.
Разрушаване
Препоръчителен уред:
UP400S
Източник/научна публикация:
Guerrero, S,; López-Malo, A.; Alzamora, S. M. (2001): Влияние на ултразвука върху преживяемостта на Saccharomyces cerevisiae: влияние на температурата, pH и амплитудата. Innov. Food Sci. Emerg Technol. 2/2001. стр. 31–39.
Сахаромицес церевизие
Ултразвуково приложение:
Ултразвукова инактивация на Saccharomyces cerevisiae в хранителна среда Sabouraud и във физиологичен разтвор.
Препоръчителен уред:
UP400S
Източник/научна публикация:
Yap, A.; Jiranek, V.; Grbin, P.; Barnes, M.; Bates, D. (2007): Изследвания върху прилагането на ултразвук с висока мощност за почистване и дезинфекция на бъчви и дъски. Austr. NZ Wine Indust. J. 22(3)/ 2007. стр. 96–104.
Ултразвукова инактивация на Saccharomyces cerevisiae в хранителна среда Sabouraud и във физиологичен разтвор.
Препоръчителен уред:
UP400S
Източник/научна публикация:
Yap, A.; Jiranek, V.; Grbin, P.; Barnes, M.; Bates, D. (2007): Изследвания върху прилагането на ултразвук с висока мощност за почистване и дезинфекция на бъчви и дъски. Austr. NZ Wine Indust. J. 22(3)/ 2007. стр. 96–104.
Шафран, Crocus sativus
Ултразвуково приложение:
Екстракция на активни съединения (ароматизиращи и оцветяващи вещества).
Щракнете тук, за да прочетете повече за екстракцията от шафран!
Препоръчителен уред:
UP50H
Източник/научна публикация:
Kadkhodaee et al. (2007): Ултразвукова екстракция на активни съединения от шафран. Acta Hortic. 739, 2007. 417–425.
Екстракция на активни съединения (ароматизиращи и оцветяващи вещества).
Щракнете тук, за да прочетете повече за екстракцията от шафран!
Препоръчителен уред:
UP50H
Източник/научна публикация:
Kadkhodaee et al. (2007): Ултразвукова екстракция на активни съединения от шафран. Acta Hortic. 739, 2007. 417–425.
Салмонела Сенфтенберг 775W, Грам-
Ултразвуково приложение:
Ултразвукова инактивация на Salmonella Senftenberg 775W Gr- в цитратно-фосфатен буфер McIlvaine или хранителен бульон.
Препоръчителен уред:
UP100H
Източник/научна публикация:
Álvarez, I.; Manas, P.; Virto, R.; Condón, S. (2006): Инактивация на Salmonella Senftenberg 775W чрез ултразвукови вълни под налягане при различни стойности на водната активност. Int. J. Food Microbiol. 108/2006. стр. 218–225.
Ултразвукова инактивация на Salmonella Senftenberg 775W Gr- в цитратно-фосфатен буфер McIlvaine или хранителен бульон.
Препоръчителен уред:
UP100H
Източник/научна публикация:
Álvarez, I.; Manas, P.; Virto, R.; Condón, S. (2006): Инактивация на Salmonella Senftenberg 775W чрез ултразвукови вълни под налягане при различни стойности на водната активност. Int. J. Food Microbiol. 108/2006. стр. 218–225.
Салвия милтиориза Бунге
Ултразвуково приложение:
Екстракция на биологично активни съединения: натриев Danshensu и четири таншинона (dihydrotanshione I, таншинон I, криптотаншинон и таншинон IIA).
Препоръчителен уред:
UP100H
Екстракция на биологично активни съединения: натриев Danshensu и четири таншинона (dihydrotanshione I, таншинон I, криптотаншинон и таншинон IIA).
Препоръчителен уред:
UP100H
Салвия официналис
Ултразвуково приложение:
Екстракция на активни съединения от Salvia Officinalis (градински чай) за по-малко от 2hr.
Препоръчителен уред:
UP50H
Екстракция на активни съединения от Salvia Officinalis (градински чай) за по-малко от 2hr.
Препоръчителен уред:
UP50H
Серум
Черен дроб и бели дробове с кисти и положителна кръвна проба от овце (антигени на Echinococcus granulosus)
Ултразвуково приложение:
Черни дробове и бели дробове с кисти и положителна кръв от овце (антигени на Echinococcus granulosus при агнета): след това пробата се обработва с ултразвук за 2 × 15 sec върху лед, докато вече не се виждат интактни протосколекси.
Препоръчителен уред:
UP200S; 2 x 15 sec.
Източник/научна публикация:
Tabar et al. (2009): Антитялов отговор срещу антигени от хидатидна течност, протосколекс и цялото тяло на Echinococcus granulosus при агнета. Journal of Veterinary Research, том 10, брой 3; 2009. 283–288.
Черни дробове и бели дробове с кисти и положителна кръв от овце (антигени на Echinococcus granulosus при агнета): след това пробата се обработва с ултразвук за 2 × 15 sec върху лед, докато вече не се виждат интактни протосколекси.
Препоръчителен уред:
UP200S; 2 x 15 sec.
Източник/научна публикация:
Tabar et al. (2009): Антитялов отговор срещу антигени от хидатидна течност, протосколекс и цялото тяло на Echinococcus granulosus при агнета. Journal of Veterinary Research, том 10, брой 3; 2009. 283–288.
Сорбитан триолеат, етанол (като разтворител) и прах Bi-2212
Ултразвуково приложение:
Деагломериране на суспензия, съдържаща диспергиращия агент Sorbitant Trioleate, етанол (като разтворител) и прах Bi-2212.
Препоръчителен уред:
UP200S; за 3 min.
Източник/научна публикация:
Mora et al. (2009): Изработване на свръхпроводящи покрития върху строителни керамични плочки.
Деагломериране на суспензия, съдържаща диспергиращия агент Sorbitant Trioleate, етанол (като разтворител) и прах Bi-2212.
Препоръчителен уред:
UP200S; за 3 min.
Източник/научна публикация:
Mora et al. (2009): Изработване на свръхпроводящи покрития върху строителни керамични плочки.
Соеви изофлавони
Ултразвуково приложение:
ултразвукова екстракция на соеви изофлавони във вода и разтворител. Увеличение на добива с до 15% по отношение на ефективността на екстракцията.
Препоръчителен уред:
UP200St
Източник/научна публикация:
Rostagno et al. (2003), цитирани от Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвуково извличане и модификация на хранителни съставки. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвукови технологии за преработка на храни и биопроцеси. New York: Springer, 2011. стр. 345–368.
ултразвукова екстракция на соеви изофлавони във вода и разтворител. Увеличение на добива с до 15% по отношение на ефективността на екстракцията.
Препоръчителен уред:
UP200St
Източник/научна публикация:
Rostagno et al. (2003), цитирани от Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвуково извличане и модификация на хранителни съставки. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвукови технологии за преработка на храни и биопроцеси. New York: Springer, 2011. стр. 345–368.
Соев протеин
Ултразвуково приложение:
Ултразвукова екстракция на соев протеин във вода и основа (натриев хидроксид). Увеличен добив с 53%. Установено е, че ултразвуковата обработка в поток е по-ефективна от партидната екстракция (ултразвуковата обработка в поток осигурява с 23% по-висок добив от партидната ултразвукова обработка).
Препоръчителен уред:
UIP1000hd за партидна обработка/обработка в лабораторна чаша и с реактор с проточна клетка за ултразвукова обработка в поток.
Източник/научна публикация:
Moulton and Wang (1982), цитирани от Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвуково извличане и модификация на хранителни съставки. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвукови технологии за преработка на храни и биопроцеси. New York: Springer, 2011. стр. 345–368.
Ултразвукова екстракция на соев протеин във вода и основа (натриев хидроксид). Увеличен добив с 53%. Установено е, че ултразвуковата обработка в поток е по-ефективна от партидната екстракция (ултразвуковата обработка в поток осигурява с 23% по-висок добив от партидната ултразвукова обработка).
Препоръчителен уред:
UIP1000hd за партидна обработка/обработка в лабораторна чаша и с реактор с проточна клетка за ултразвукова обработка в поток.
Източник/научна публикация:
Moulton and Wang (1982), цитирани от Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвуково извличане и модификация на хранителни съставки. В: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвукови технологии за преработка на храни и биопроцеси. New York: Springer, 2011. стр. 345–368.
Главички на сперматозоиди (човешки)
Опашки на сперматозоиди (човешки)
Стевия ребаудиана Берт
Ултразвуково приложение:
Ултразвукова екстракция на гликозида стевиозид от проби от 10 g сухи листа на Stevia rebaudiana с четири размера на частиците (0,315 mm, 2 mm, 6,3 mm и натрошени сухи листа): пробите се смесват с различни разтворители – дестилирана вода и смеси вода/етанол (55% и 70%) – при различни съотношения на масата на пробата към обема на разтворителя: 1/10, 1/8, 1/5 (w/v), след което се подлагат на ултразвук при стайна температура. Време на ултразвукова обработка: < 5 min.
Препоръчителен уред:
UP200St
Ултразвукова екстракция на гликозида стевиозид от проби от 10 g сухи листа на Stevia rebaudiana с четири размера на частиците (0,315 mm, 2 mm, 6,3 mm и натрошени сухи листа): пробите се смесват с различни разтворители – дестилирана вода и смеси вода/етанол (55% и 70%) – при различни съотношения на масата на пробата към обема на разтворителя: 1/10, 1/8, 1/5 (w/v), след което се подлагат на ултразвук при стайна температура. Време на ултразвукова обработка: < 5 min.
Препоръчителен уред:
UP200St
Свържете се с нас! / Попитайте ни!
Високопроизводителни ултразвукови апарати за всякакви мащаби
Уредите за разрушаване на клетки и хомогенизаторите за тъкани на Hielscher Ultrasonics се предлагат във всякакви размери за всякакви обеми. Независимо дали трябва да обработвате с ултразвук малки проби, множество проби като плаки с 96 ямки, средни обеми или количества, равняващи се на камиони за час, нашето портфолио предлага идеалния ултразвуков апарат за вашето приложение. Компактните ръчни ултразвукови хомогенизатори са оптимални за лабораторна и изследователска работа, а нашата промишлена серия обхваща всичко от 0,5kW до 16kW на ултразвуков процесор. Благодарение на възможността за инсталиране в групи с ултразвуковите апарати на Hielscher можете да обработвате практически всякакъв обем. Здравината на ултразвуковото оборудване на Hielscher позволява работа 24/7 при голямо натоварване и в тежки условия.
Усъвършенстваният интелигентен софтуер осигурява най-високо ниво на контрол на процеса и удобство за оператора. Всички данни за ултразвуковата обработка се записват автоматично на вградена SD карта. Други интелигентни функции включват предварително задаване и запазване на параметрите за ултразвукова обработка, LAN връзка и дистанционно управление чрез браузър.
Таблицата по-долу дава представа за приблизителния капацитет за обработка на нашите лабораторни ултразвукови апарати за хомогенизация на тъкани и други задачи по подготовка на проби:
| Препоръчителни уреди | Обем на партидата | Дебит |
|---|---|---|
| Ултразвуков апарат UIP400MTP за плаки с 96 ямки | плаки с множество ямки/микротитърни плаки | n.a. |
| Ултразвуков CupHorn | CupHorn за флакони или лабораторна чаша | n.a. |
| GDmini2 | ултразвуков микропроточен реактор | n.a. |
| VialTweeter | от 0,5 до 1,5mL | n.a. |
| UP100H | от 1 до 500mL | от 10 до 200mL/min |
| UP200Ht, UP200St | от 10 до 1000mL | от 20 до 200mL/min |
| UP400St | от 10 до 2000mL | от 20 до 400mL/min |
| Ултразвуков ситов вибратор | n.a. | n.a. |
Ултразвуков апарат UP200Ht с микронакрайник S26d2 с диаметър 2mm за ултразвукова обработка на малки проби