Hielscher ультразвукова технологія

Ультразвукова підготовка зразків C. Elegans

C. elegans, нематодний черв'як, є широко використовуваним модельний організм в біології. Підготовка зразків перед аналізом вимагає лізису, видалення білка і ліпідів, а також фрагментації РНК, яка може бути надійно виконана за допомогою sonication. Ультразвукові клітинні руйнівники є надійними, складними і простими у використанні пристроями для швидкої підготовки зразків C. elegans.

Ультразвукова підготовка зразків C. Elegans

C. elegans є круглими черв'яками, які широко використовуються в дослідницьких лабораторіях для дослідження геноміки, біології розвитку та захворювань. Багато генів в геномі С. елегани мають функціональні аналоги у людини. Тим самим, черв'як нематоди є надзвичайно корисною моделлю для захворювань людини. Іншими перевагами для широкого використання C. elegans є його легке і дешеве вирощування на пластинах, що містять бактерії (наприклад, E. coli), його прозорість, зручне поводження, а також можливість замерзати і зберігати черв'яків протягом більш тривалого періоду.
Аналіз білка і ліпідів є регулярними процедурами в лабораторіях, а ультразвукова підготовка зразків є встановленим методом для лізису C. elegans nematodes на кожній стадії розвитку (тобто ембріонів, личинок L1-L4, дорослих). Оскільки C. elegans також використовується як система експресії білків для надмірного вираження цільових білків, потрібен надійний, відтворюваний лізис і метод екстракції білка, який дає високі врожаї білка. Ультразвукові системи порушення клітин і екстракції доступні як гомогенізатори зондового типу, так і як багатопробивні ультразвукові апарати. Харчування для зручної підготовки зразків і всі види номерів зразків, Hielscher Ultrasonics має ідеальний ультразвуковий клітинний руйнівник для вашої лабораторної процедури.
C. elegans is a widely used model organism in biological research. Ultrasonic lysis is a sophisticated, reliable, reproducible and rapid technique to prepare high-quality protein extracts from C. elegans.

Ультразвуковий C. elegans Лізис для

  • Підготовка гомогенних черв'яків
  • Білок екстракції
  • Видобуток ліпідів
  • Кількісне визначення білка
  • Імунопреціація
  • Вестерн-блотінг
  • Екстракція РНК
  • Ензиматичні аналізи
Соноторд MTP-24-8-96 має вісім ультразвукових зондів для ультразвукової ультразвукової ультразвукової ультразвукової ультразвукової ультразвукової ультразвукової щупів для ультразвукової ультразвукової ультразвукової заслінки колодязів мікротестерних пластин.

Соноторд MTP-24-8-96 має вісім ультразвукових зондів для ультразвукової ультразвукової ультразвукової ультразвукової ультразвукової ультразвукової ультразвукової щупів для ультразвукової ультразвукової ультразвукової заслінки колодязів мікротестерних пластин.

Запит інформації




Зверніть увагу на наші Політика конфіденційності.


Ультразвукові протоколи для порушення C. Elegans і Лізис

Ультразвукова гомогенізація і лізис С. елеганів і подальше вилучення білка і ліпідів можуть бути виконані за допомогою різних процедур з використанням різних буферів гомогенізації і лізису і т.д. Всі протоколи лізису мають спільне значення, що зразки повинні постійно зберігатися на льоду, щоб запобігти деградації білка. Нижче ми представляємо вам деякі надійні і швидкі ультразвуковий лізис і екстракції протоколів для підготовки високоякісних білкових або ліпідвмісних зразків C. elegans.

Переваги ультразвукового C. elegans Lysis

  • надійний
  • відтворюється
  • точно контрольовані
  • надійний контроль процесу
  • ніжний метод
  • легко застосовувати
  • Безпечний

Ультразвукова екстракція білка з зразків C. elegans

Ультразвуковий лізис і вилучення білка черв'яків C. elegans можуть бути виконані за допомогою різних протоколів. Нижче ми представляємо вам кілька надійних і швидких протоколів лізису для відтворюваних результатів вилучення білка.

Швидка підготовка цитозолічного екстракту з хробаків C. elegans за допомогою sonication

За допомогою наступного протоколу ви можете підготувати C. elegans lysates менш ніж за 30 хвилин.
Колекція С. елеганів
Виберіть бажані черв'яки C. elegans в 1,5 мл трубки фосфат буферизованого сольового розчину (PBS) або промийте їх з тарілки з 1,5 мл PBS. Центрифуга на 1 хвилину в 2000 об/хв до гранула. Тримайте зразки в усі часи на льоду.
Потім двічі помийте черв'яків за допомогою PBS.
Після цього двічі помийте черв'яків ddH2О.
Повторно віддячайте хробаків щонайменше в 500ul буфера гомогенізації (НВ). Зразки черв'яків тепер готові до ультразвукового лізису.
Для більш високої якості екстракту білка, ви можете зменшити бактеріальне забруднення, миючи черв'яків по 5 хвилин кожен в PBS і стерильної, ультра-чистої води (ddH2O) або виконати плаваючу сахарозу. Тримайте зразки черв'яків безперервно на льоду.

Ультразвуковий протокол Лізису C. elegans

  • Переконайтеся, що ви готуєте ультразвуковий фронт так, щоб ультразвуковий гомогенізатор був готовий до використання (зонд встановлений, програма ультразвукової ультразвукової ультразвукової зв'язкової ультразвукової матеріали).
  • Ultrasonicator UP200Ht (200 watts, 26kHz) with microtip S26d2 for the preparation of biological samplesЯкщо ваш ультразвук встановлений на стенді, помістіть крижану ванну з вашими зразками трубок під ультразвуковий зонд і вставте ультразвуковий зонд в трубку 1.5ml.

  • Для лізису C. elegans з UP200St або UP200Ht ультразвук слід виконувати за допомогою мікроприказу (наприклад, 2 мм зонд S26d2; див. малюнок ліворуч) при амплітуді 40% для 1sec з паузами 30sec між ними. 5 циклів про sonication для кожної 1 секунди з 30sec пауз ідеально підходять для лізису C. elegans. Якщо виконати лізис вперше, можна перевірити прогресування лізису невеликими алікотами зразка після кожного пульсу за допомогою мікроскопа.
  • Лізис успішно завершується, коли хробаки зривають роботу. Надмірна sonication призводить до поломки ядра і стає видимим, коли зразок отримує в'язкі або піни. Щоб запобігти деградації зразків, використовуйте більше імпульсів, якщо це необхідно. Не збільшуйте час кожного ультразвукового імпульсного циклу, щоб отримати високоякісні екстракти білка.
  • Очистити клітину лизати, центрифугуючи ультразвуково лизати черв'яків на 14000 об/хв для 10min при 4ºC.
  • Потім перенесіть надприродний на свіжу трубку і підготуйтеся до імунопреціації або інших аналізів.

Примітка для буфера гомогенізації: Підготуйте буфер гомогенізації для протоколу ультразвукового лізису вище наступним чином:

  • 15 мМ Hepes pH 7.6 – 15 мл 0,5 м
  • 10 мМ KCl – 2,5 мл 2 м
  • 1,5 мМ MgCl2 – 0.75 мл 1 м
  • 0.1 мМ EDTA – 100 ул 0,5 м
  • 0.5 мМ EGTA – 2,5 мл 0,1 м
  • Сахароза 44 мМ – 14,7 мл 50 %
  • Додати безпосередньо перед використанням: DTT 1mM – 1000x з 1M
  • плюс інгібітор протеази

Ультразвуковий лізис C. elegans для кількісного аналізу очищення спорідненості

Ембріони C. elegans (∼2 млн на реплікат) були свіжозбирані в біологічному триплікаті шляхом відбілювання молодих гравітаційних гермафродитів і sonicated на льоду (цикл: 0,5 с, амплітуда: 40-45%, 5 ударів / сесії, 5 сеансів, інтервал між сеансами: 30 с; Ультразвуковий процесор UP200S з мікро-наконечником S26d2 (Hielscher Ультразвук GmbH)) в буфері лізису (загальний об'єм: ∼600 мкл; 50 мм Tris-HCl, pH 7.4, 100 мм KCl, 1 мм MgCl2, 1 мм EGTA, 1 мм DTT, 10% гліцерин, суміш інгібіторів протеази, 0,1% Неідет Р-40 Замінник). Після просонії, Nonidet P-40 Замінник був доданий до 1% і лисяти були інкубовані головою над хвостом обертання при 4 ° C протягом 30 хв, а потім центрифугація в 20000 × г протягом 20 хв при 4 ° C. Очищений лізат потім аспірований, не порушуючи верхній ліпідний шар і розділений навпіл на анти-GFP агурус бісером або заблокований контроль бісером (40-50 мкл). Після обертання хвоста при 4°C протягом 60-90 хв бісер мили один раз буфером лізису, що містить 0,1% Заміни Nonidet P-40, потім два рази миття в буфері I (25 мм Tris-HCl, pH 7.4, 300 мм NaCl, 1 мм MgCl2) або буфер II (1 мм Tris-HCl, pH 7.4, 150 мм NaCl, 1 мм MgCl2) або обидва. Для GFP:MBK-2 висувні вниз, два окремих експерименти були виконані з використанням різних умов прання. Білки були з'ясовані орбітальним струшуванням в 50 мкл 6 м уреа/2 М тіуреа при кімнатній температурі. Для експериментів MBK-1::GFP, білки були двічі з'ясовані, струшуючи в 50 мкм хлориду гуанідинію при 90°C, а потім опади етанолу. Потім перетравлюються елевовані зразки білка в розчині.
(пор. Чен та ін., 2016)

VialTweeter at the ultrasonic processor UP200ST

VialTweeter багатопробивний блок підготовки до одночасної про sonication 10 пробірок.

Ультразвукова гомогенізація та лізис

Для процедури лізису та екстракції білка C.elegans було зібрано 30 000 немотодів відповідної стадії на зразок і промито в крижаному S-базалі, сконцентрованому центрифугацією при 1500 об/хв протягом 2 хв., промиті шість разів холодним S-базальтом для видалення залишкових бактерій, а потім зберігаються на льоду до готовності до використання. Для екстракції білка хробакам для дорослих gravid дозволили сформувати компактну гранула після останнього S-базальтового прання. Черв'ячні пелети потім були повторно закопані в 1 мл крижаного екстракції буфера [20 мМ фосфат калію, рН 7.4, 2мМ EDTA, 1% Тритон-Х-100, інгібітори протеази (Sigma P2714)] і оброблені негайно.
∼ 30 000 гравітаційно-дорослих черв'яків (що відповідають ∼100 мг вологої ваги), були ультразвукові на льоду за допомогою ультразвукового засобу типу зонда (наприклад, UP50H з мікротипом MS2) при 40% амплітуді протягом 10 циклів по 3 сек, 30 сек off, в 1 мл буфера видобутку льоду. (пор. Башаран та ін. 2012)

Ультразвукова видобуток ліпідів від C. elegans

У ліпідоміці, гілці метаболоміки, ліпідні доповнення біологічних систем характеризуються і аналізуються. C. elegans широко використовуються в ліпідоміці для дослідження взаємодії метаболічних ліпідів та їх впливу на здоров'я та тривалість життя.
Ультразвуковий лізис і екстракція використовуються для вивільнення ліпідів, таких як сфінголіпіди з ембріонів C. elegans, личинок і дорослих черв'яків. Ультразвук використовується для приготування гомогенних черв'яків і згодом для вилучення ліпідів зі зразка.
Протокол ультразвукової ліпідної екстракції від C. elegans
Відлига гранула C. elegans на льоду і resuspend з 0,5 мл ультраводних. 
Sonicate C. elegans зразки в 1,5 мл пробірки, в той час як збереження зразків безперервно на льоду.
Ультразвукову свічу можна виконати за допомогою зонд-ультразвукового UP200Ht, ультразвуковий блок попередньої вибірки VialTweeter (одночасна про sonication 10 зразків) або (УІП400МТП) (для ультразвукової ультразвукової ультразвукової лізису з UP200Ht використовуйте мікро-наконечник S26d2. Попередньо встановіть режим ультразвукового циклу в цифровому меню. Встановіть амплітуду до 10% і режим циклу ультразвукової ультразвукової ультразвукової ультразвукової пульсації 2 сек імпульсів по 20 циклів з паузою 30 сек.
Перенесіть суперприроди на скляні трубки з гвинтової кришкою. 
Виконайте екстракцію Фольха, додавши по 1 мл ультраводної води в кожну скляну трубку, а потім додавши 6 мл хлороформу/метанолу (співвідношення = 2:1) суміші в кожну скляну трубку.
Вихор кожної скляної трубки по 30 сек протягом 4 разів. 
Відцентрувати трубки при 1,258 x g протягом 15 хв (Eppendorf, 5810 R) для подальшого посилення фазового поділу. 
Перенесіть нижню гідрофобну фракцію в чисту скляну трубку скляною піпеткою Pasteur. 
Висушіть нижню гідрофобну фракцію під потоком азоту в випарнику азоту. 
Зберігати сушену гранула в морозильній камері -80 °C до використання.

Ультразвукова підготовка хробака

Хробак лізат: L4 стадії черв'яків були зібрані і промиті три рази з буфером M9 (42,26 мМ Na2HPO4, 22.04 мМ КХ2PO4, 85,56 мМ NaCl та 0,87 мМ MgSO4), щоб видалити всі бактерії. Після видалення якомога більше буфера M9, черв'яки були повторно в буфері лізису: 50 мМ HEPES, 50 мМ KCl, 1mM EDTA, 1мМ ЕГТА, фосфат 5 мм β-гліцерин, 0,1% (в/в) Тритон Х-100, фтор натрію 50 мМ, 1 мМ ортовнадат натрію, пірофосфат натрію 5 мМ, 0,2 мм. Хробаки тричі заморожувалися в рідкому азоті і тричі відтавали при 37°C, потім черв'яки були ультразвуковим льодом з ультразвуковим блоком VialTweeter для одночасного приготування 10 зразків труб. Sonication була проведена при амплітуді 50% в 10 циклах по 2 сек. Після цього зразки були відцентровані при 12000 об/хв при 4°C протягом 15 хв. Надприродний був зібраний і зберігався при -70°C. Алікот був використаний для кількісного визначення білка бредфордського аналізу.
Визначення повного глутатіону, GSH і GSSG: Для кількісного визначення глутатіону, лизати і визначення були зроблені в той же день. Личинки Глюкози та контролю L4 тричі збирали та промивали буфером М9. Після видалення якомога більше буфера M9, черв'яки були повторно в крижаній метафосфорній кислоті (5% ж / в), потім черв'яки були ультразвукові VialTweeter на 50% амплітуди в десяти циклах ультразвукової ультразвукової паузи між кожним циклом. Після цього центрифугував при 12000 об/хв при 4 ̊С протягом 15 хв.
(пор. Алькантар-Фернандес та ін., 2018)

C. elegans Зразок преп перед імунпреципітацією і західним промокання

Коротко кажучи, для ембріональних екстрактів личинки C. elegans L1 вирощувалися в великомагістральних рідких S-середніх культурах до дорослого життя. Ембріони були зібрані за допомогою стандартного методу відбілювача і підвішені в буфері лізису (50 мМ Tris, pH 7.5, 100 мМ KCl, 1 мМ EDTA, 1 мМ MgCl2, 8,7% гліцерин, 0,05% NP-40, 1􏰅 Коктейль інгібітор протеази та 1􏰅 Фосфатаза Інгібітор Коктейль I та II), швидко застиг у рідкому азоті, і линяє ультразвуковим порушенням клітин за допомогою ультразвукового засобу з мікроприпом, таким як UP200Ht з S26d2 для 10 імпульсів більше 10 с при амплітуді 30%. Якщо необхідно підготувати більшу кількість зразків, ультразвукові VialTweeter або Рекомендується мультисупельно-ультразвуковий UIP400MTP для добре пластин. Після sonication екстракти були попередньо очищені центрифугацією при 30 000г протягом 20 хв при 4°C. Попередньо очищений екстракт (300 мкг загального білка) був інкубований 40 мк􏰂г анти-CDC-25.1 споріднених антитіл (це дослідження), пов'язаних з білком А-агу, або в якості контролю, аналогічна кількість імуноглобуліну кролика (Ig)G, пов'язаного з білком А-агуз, використовувалася в загальному обсязі 200 мкл буфера лізису, що містить 1% NP-40, включення якого зменшило неспецифічне зв'язування білків з матрицею. Зразки оберталися на 1 год при 4°C, бісер тричі мили буфером лізису, і з'ясували 30 мкл гліцину/ГКл і 200 мМ NaCl, pH 2.2. Після імунопреціпітації елюти розбавляли в буфері зразка SDS 30 мк􏰂л, нагрітого до 95°C протягом 4 хв, і, як правило, 3% від загальної кількості для введення і 30% для елютів були застосовані до SDS-PAGE, а потім західні промокання з анти-CDC-25.1 (1:400), анти-LIN-23 (1 :750), анти-всюдиквітин (1:1000), анти-GSK3􏰁 (1:500) або анти-􏰁β-актін (1:2000) антитіла. Там, де екстракти не піддавалися імунопреципітації, така ж кількість загального білка, отриманого з цих екстрактів, була повторно зачищена в буфері зразка SDS, нагріта до 95°C, а потім безпосередньо нанесена на SDS-PAGE і проаналізована західним промоком. (пор. Сегреф та ін. 2020)

Зондовий тип ізоніфікатора UP200St для лізису

Ультразвуковий клітинний руйнівник UP200St з мікро-наконечником S26d2 для лізису та екстракції білка

Ультразвуковий лізис під контролем температури прессизу

The VialTweeter is a MultiSample Ultraonicator that allows for reliable sample preparation under precisely controlled temperature conditions.Точний і надійний контроль температури має вирішальне значення при поводженні з біологічними зразками. Високі температури ініціюють термічна деградація білка в зразках.
Як і всі методи механічної підготовки зразків, sonication створює тепло. Однак температуру зразків можна добре контролювати при використанні VialTweeter. Ми представляємо вам різні варіанти моніторингу та контролю температури ваших зразків, готуючи їх за допомогою VialTweeter та VialPress для аналізу.

  1. Моніторинг температури зразка: ультразвуковий процесор UP200St, який керує VialTweeter, оснащений інтелектуальним програмним забезпеченням і підключеним датчиком температури. Підключіть датчик температури до UP200St і вставте кінчик датчика температури в одну з зразків трубки. За допомогою цифрового кольорового сенсорного дисплея ви можете встановити в меню UP200St певний діапазон температур для вашої зразка sonication. Ультразвук автоматично зупиниться, коли буде досягнута максимальна температура, і призупиниться, доки температура вибірки не опуститься до меншого значення встановленого температурного ∆. Потім sonication починається автоматично знову. Ця розумна функція запобігає деградації, викликаної теплом.
  2. Блок VialTweeter можна попередньо охолодити. Покладіть блок VialTweeter (тільки сонотрод без датчика!) в холодильник або морозильну камеру, щоб попередньо охолодити титановий блок, що допомагає відкласти підвищення температури в зразку. Якщо можливо, сам зразок також можна попередньо охолодити.
  3. Використовуйте сухий лід для охолодження під час звуження. Використовуйте неглибокий лоток, наповнений сухим льодом, і помістіть VialTweeter на сухий лід, щоб тепло могли швидко розсіятися.

Знайдіть оптимальний ультразвуковий руйнівник клітин для вашого застосування Лізису

Hielscher Ultrasonics є давнім досвідченим виробником високоестійких ультразвукових клітинних руйнівників і гомогенізаторів для лабораторій, систем лавкового та промислового масштабу. Ваш розмір бактерійної клітинної культури, ваша мета дослідження або виробництва і обсяг клітин для обробки на годину або день є важливими факторами, щоб знайти правильний ультразвуковий клітинний руйнівник для вашого застосування.
Hielscher Ultrasonics пропонує різні рішення для одночасної ультразвукової ультразвукової матеріали (до 10 флаконів), а також масові зразки (тобто пластини мікротітерів / 96-колодязні пластини), класичний ультразвуковий апарат зондового типу з різним рівнем потужності від 50 до 400 Вт до повністю промислових ультразвукових процесорів з до 16000 ватт на одиницю для комерційного порушення клітин і вилучення білка у великому виробництві. Всі ультразвукові апарати Hielscher побудовані для роботи 24/7/365 під повним навантаженням. Надійність і надійність є основними особливостями наших ультразвукових пристроїв.
Всі цифрові ультразвукові гомогенізатори оснащені розумним програмним забезпеченням, кольоровим сенсорним дисплеєм і автоматичним протоколом передачі даних, що робить ультразвуковий пристрій зручним інструментом роботи в лабораторії та виробничих потужностях.
Дайте нам знати, які клітини, який обсяг, з якою частотою і з якою метою ви повинні обробляти свої біологічні зразки. Ми будемо рекомендувати вам найбільш підходящий ультразвуковий руйнівник клітин для ваших вимог процесу.

Наведена нижче таблиця дає вам вказівку на приблизну потужність обробки наших ультразвукових систем від компактних ручних гомогенізаторів та ультразвукових процесорів MultiSample до промислових ультразвукових процесорів для комерційних застосувань:

пакетний Обсяг швидкість потоку Рекомендовані пристрої
96-колодязні / мікротестерні пластини застосовується (УІП400МТП)
10 флаконів від 0,5 до 1,5 мл застосовується VialTweeter на UP200St
0.01 до 250mL від 5 до 100мл/хв UP50H
0.01 до 500mL Від 10 до 200мл / хв UP100H
Від 10 до 2000мл Від 20 до 400мл / хв UP200Ht, UP400St
0.1 до 20 л 0.2 до 4л / хв UIP2000hdT
Від 10 до 100 л Від 2 до 10 л / хв UIP4000hdT
застосовується Від 10 до 100 л / хв UIP16000
застосовується більший кластер UIP16000

Зв'яжіться з нами! / Запитати нас!

Запитайте більше інформації

Будь ласка, використовуйте форму нижче, щоб запросити додаткову інформацію про ультразвукові процесори, програми та ціни. Ми будемо раді обговорити ваш процес з вами і запропонувати вам ультразвукову систему, що відповідає вашим вимогам!









Будь ласка, зверніть увагу на наші Політика конфіденційності.


Ultrasonic high-shear homogenizers are used in lab, bench-top, pilot and industrial processing.

Hielscher Ultrasonics виробляє високоефотозні ультразвукові гомогенізатори для змішування застосувань, дисперсії, емульгування та екстракції в лабораторних, пілотних і промислових масштабах.

Література/довідники



Факти варті знати

Елегани канорхабдиту

C. elegans є вільножиттєвим прозорим нематодою (круглим черв'яком) довжиною близько 1 мм, яка харчується бактеріями (наприклад, E. coli) і має відносно короткий життєвий цикл. При температурі 20 °C лабораторний штам C. elegans (N2) має середній термін служби близько 2-3 тижнів і час генерації від 3 до 4 днів. Коли C. elegans вирощуються у великій кількості, що можна легко зробити в точно контрольованих лабораторних умовах, їх можна легко відсівати на принцип роботи нових препаратів, а також їх ефекти і взаємодію в рамках складних молекулярних процесів при хворобах людини. Короткий геном, короткий життєвий цикл і просте поводження в лабораторних умовах роблять C. elegans ідеальним модельним організмом для таких досліджень, як геноміка, протеоміка, біологія розвитку, дослідження хвороб, розробка ліків і т.д.
Хробаки з канорхабдиту можуть бути як чоловічими, так і гермафродитами. Гермафродити мають як чоловічі, так і жіночі репродуктивні органи. Однак жіночих черв'яків не існує. Гермафродити можуть або самозаживити, або також можуть розмножуватися з чоловічими черв'яками. C. elegans може виробляти більше 1000 яєць щодня.
Оскільки C. elegans є одним з найпростіших організмів з нервовою системою, хробак нематоди використовується з 1963 року як модельний організм для досліджень. Нейрони не витримує потенціалів дії, і не виражають будь-які канали натрію напруги. У гермафродиті ця система складається з 302 нейрона, модель якого була всебічно нанесена на карту, в тому, що відоме як сполуччя.
Багато генів в геномі C. elegans мають функціональні аналоги у людей, що робить його надзвичайно корисною моделлю для захворювань людини і, наприклад, використовується для вивчення біології розвитку, старіння та факторів, що впливають на довголіття. Крім того, мутанти C. elegans надають моделі для багатьох захворювань людини, включаючи неврологічні розлади (наприклад, хвороби Альцгеймера), вроджені вени серця і захворювання нирок.
Ці фактори зробили C. elegans дуже цінною моделлю для багатьох галузей досліджень. Отже, C. elegans був першим багатоклітинним організмом, який секвенував весь геном. Геном містить приблизно 20 470 генів білкового кодування. Близько 35% генів C. elegans мають людські гомологи. Примітно, що людські гени неодноразово демонструвався, щоб замінити свої Гомологи C. elegans при введенні в C. elegans. І навпаки, багато генів C. elegans можуть функціонувати аналогічно генам ссавців.

Термін служби C. elegans становить близько 3 тижнів і складається з шести етапів життя: ембріогенезу (стадія яєць), чотирьох личинкових стадій (від L1 до L4) і дорослої стадії. Нематоди вилуплюються з яєць як личинки L1, що складаються з 560 клітин. Зростання під час кожної личинкової стадії відбувається шляхом поділу клітин і за допомогою клітинної гіпертрофії. Кутикулярна линька пунктуує кожен личинковий етап. Якщо суворі умови навколишнього середовища сигналізують черв'яку, що розвивається, що умови навряд чи підтримають фертильність дорослих, C. elegans можуть змінити його розвиток і сформувати альтернативну стадію личинки L3, де личинки переходять в стадію дауера. У такому стані тварини надзвичайно стресово толерантні і довгожители і можуть прожити від трьох до дев'яти місяців. Личинки Дауера ізолюють себе від негараздів, запечатуючи як свої букальні, так і анальні порожнини, скорочуючи кишечник, і вмикаючи генетичну програму DAF-16/FOXO, яка, серед іншого, призводить до вираження специфічної кутику dauer. Хендерсон та ін., 2006)

С. Елеганс Дауер Ларве

Личинки Дауера є терміном для личинок нематоди, які вступили в альтернативну стадію розвитку. тер термін "личинки Дауера" особливо використовується для черв'яків сімейств rhabditids, включаючи елегани Канорхабдит. Слово "Дауер" має німецьке походження і означає "тривалість” у значенні “період часу». Личинки Дауера переходять в тип застою і можуть пережити суворі умови. Якщо і коли личинка входить в стадію дауера залежить від умов навколишнього середовища. Личинки Дауера широко вивчаються в біології, тому що личинки показують надзвичайну здатність виживати в суворих середовищах і жити протягом тривалого періоду часу. Наприклад, личинки C. elegans dauer можуть виживати до чотирьох місяців, набагато довше, ніж їх середній термін служби близько трьох тижнів під час нормального репродуктивного розвитку.