Протокол аналізу мінімальної інгібіторної концентрації (MIC)
Аналіз мінімальної інгібіторної концентрації на основі біоплівки (MIC) є важливим методом оцінки ефективності антимікробних засобів проти мікроорганізмів, пов'язаних з біоплівкою, які виявляють підвищену резистентність завдяки своєму захисному позаклітинному матриксу. Важливим кроком у цьому аналізі є порушення структур біоплівки для вивільнення вбудованих клітин для точної оцінки життєздатності. Багатолунковий пластинчастий ультразвуковий UIP400MTP полегшує цей процес, використовуючи сфокусований ультразвук для генерації контрольованої кавітації, ефективно від'єднуючи клітини біоплівки та розсіюючи їх у однорідну суспензію. Це точне та відтворюване руйнування біоплівки підвищує надійність та пропускну здатність аналізів МІК, роблячи UIP400MTP важливим інструментом у просуванні досліджень біоплівки.
УЗД при відшаруванні біоплівки
Аналіз МІК на основі біоплівки зазвичай вимірює життєздатність бактерій або пригнічення росту за допомогою таких методів, як покриття, підрахунок колоній або вимірювання оптичної щільності. Ультразвукова діагностика є критично важливим етапом аналізу МІК на основі біоплівки при оцінці антимікробної чутливості мікроорганізмів, пов'язаних з біоплівкою. Його основна функція полягає в від'єднанні та розсіювання клітин, вбудованих у матрикс біоплівки, в однорідну суспензію для точного аналізу.
Біоплівки значно стійкіші до антимікробних агентів порівняно з планктонними клітинами, що робить правильне відшарування критично важливим для точного аналізу. Під час цього процесу ультразвукові хвилі генерують контрольовану кавітацію, розриваючи матрикс біоплівки та вивільняючи вбудовані клітини в однорідну суспензію в середовищі відновлення. Цей крок дозволяє точно оцінити життєздатність клітин, диспергованих біоплівкою, за допомогою таких методів, як покриття, розведення та підрахунок колоній. Правильне руйнування біоплівки за допомогою ультразвуку перешкоджає залишковим компонентам матриксу захищати клітини, що в іншому випадку могло б призвести до недооцінки антимікробної активності. Для цієї мети особливо добре підходить багатолунковий пластинчастий UIP400MTP, пропонуючи точні та відтворювані умови ультразвуку для забезпечення надійного та високопродуктивного приготування пробірних пластин.

UIP400MTP мікропланшетний ультразвуковий апарат для точно контрольованого відшарування біоплівки в аналізах МІК та МБЕК.
Чому ультразвукова діагностика необхідна в аналізі мінімальної інгібітрорної концентрації на основі біоплівки
Для вимірювання життєздатності і підрахунку клітин потрібне повне і надійне від'єднання і розсіювання одиничних клітин. UIP400MTP сприяє рівномірному, не пошкоджуючому відшаруванню біоплівки та дисперсії клітин для отримання надійних результатів аналізу.
- Складність біоплівки: Біоплівки — це структуровані мікробні спільноти, укладені в матрикс позаклітинної полімерної речовини (EPS), яка захищає мікроорганізми та робить їх більш стійкими до антимікробних агентів.
- Рівномірна дисперсія: Щоб точно виміряти життєздатність клітин, вбудованих у біоплівку, або їх чутливість до протимікробних препаратів, біоплівку спочатку необхідно видалити та розбити на однорідну суспензію.
Протокол аналізу мінімальної інгібуючої концентрації на основі біоплівки
Аналіз мінімальної інгібуючої концентрації (MIC) визначає найнижчу концентрацію антимікробного агента, необхідного для пригнічення видимого росту мікроорганізмів. Цей протокол розроблений для мікроорганізмів, пов'язаних з біоплівкою, використовуючи UIP400MTP багатолунковий пластинчастий саунікатор для руйнування біоплівки.
Крок 1: Приготування бактеріального посівного матеріалу
- Приготуйте бактеріальну суспензію:
Вирощують бактерії у відповідних середовищах до середини логарифмічної фази.
Розбавте культуру для досягнення стандартизованої щільності клітин (наприклад, 0,5 стандарту McFarland або OD600 ~ 0,1). - Приготуйте протимікробні розчини:
Розведіть антимікробний засіб у відповідному середовищі для створення діапазону концентрацій (наприклад, дворазове серійне розведення). - Вилийте в тарілку 96well:
Додайте антимікробні розчини в лунки стандартної 96-лункової пластини з кінцевим об'ємом свердловини ~150–200 мкл.
Включають контроль росту (без антимікробних препаратів) і контроль стерильності (без бактеріального інокуляту).
Крок 2: Формування біоплівки на кришці Peg Lid
- Прикріпіть кришку з кілочками:
Помістіть спеціальну кришку з кілочками на інокульовані лунки, переконавшись, що кілочки повністю занурені в бактеріальну суспензію. - Інкубують тарілку:
Інкубувати при відповідній температурі (наприклад, 37 ° C) протягом певного часу (наприклад, 24 години) в статичних умовах, щоб забезпечити утворення біоплівки на кілочках. - Промийте кілочки:
Зніміть кришку з бактеріальної суспензії та обережно промийте її в стерильному фізіологічному розчині або PBS, щоб видалити нещільно прикріплені планктонні клітини. - Піддавати впливу протимікробних препаратів:
Перемістіть кришку з кілочками в нову пластину на 96 лунок, що містить антимікробні розведення, приготовані раніше.
Інкубувати протягом певного періоду (наприклад, 24 години) у статичних умовах, щоб антимікробний засіб міг діяти на біоплівки.
Крок 3: Антимікробний вплив

Багатолунковий пластинчастий сонник UIP400MTP для високопродуктивної пробопідготовки
Крок 4: Ультразвукове дослідження за допомогою мікропланшетного сонікатора UIP400MTP
Етап ультразвукової діагностики має вирішальне значення для від'єднання біоплівок від кришок для оцінки життєздатності. Дотримуйтесь цих кроків для UIP400MTP УЗД:
- Підготуйте налаштування:
У кожну лунку наповніть свіжу 96-лункову тарілку середовищем для відновлення (наприклад, нейтралізуючим бульйоном або стерильним середовищем для росту). - Перемістіть кришку з кілочками:
Зніміть кришку з антимікробної обробної пластини.
Промийте кришку в стерильному фізіологічному розчині або PBS, щоб видалити залишки антимікробних засобів. - Розташуйте пластину в ультразвуковому апараті:
Прикріпіть кришку з кілочками до пластини середовища відновлення.
Помістіть пластину середовища відновлення в UIP400MTP ультразвуковий прилад, переконавшись, що пластина розташована по центру та стабільна, як описано в описаному посібнику. - Відрегулюйте параметри ультразвуку:
Встановіть параметри УЗД на UIP400MTP (налаштування можуть бути скориговані відповідно до біоплівки):
Амплітуда: 70–100%.
Час ультразвуку: 1–3 хвилини (коригування залежно від структури біоплівки) в режимі циклу. - Зробіть звук:
Запустіть процес ультразвукового дослідження. Ультразвукові хвилі порушать матрикс біоплівки і витіснять клітини в середовище відновлення. - Слідкуйте за процесом:
Використовуйте змінний датчик температури для контролю температури зразка в лунках. Для охолодження UIP400MTP можна підключити до лабораторного чиллера. - Обробка після УЗД:
Негайно перенесіть середовище відновлення, що містить відшаровані біоплівки, у свіжу стерильну пластину для подальшого аналізу.

(A) Планшет, що містить TSB з 2% глюкозою, що використовується для формування біоплівки, відновлення клітин та визначення MIC та MBEC; (B) Кришка зі штифтами для формування стафілококових біоплівок.
Клітини біоплівки, що утворилися на штифтах, витісняли методом ультразвуку (ультразвукова технологія Hielscher) протягом 5 хв у 96-лункових пластинах, що містили свіже живильне середовище для відновлення клітин.
(Малюнок і дослідження: ©de Oliveira et al., 2016)
Крок 4: Оцінка життєздатності
Відокремлені біоплівки пластин і культур:
- Виконайте послідовні розведення відновлювального середовища та пластини на агарі для перерахування колонієутворюючих одиниць (КУО).
- Оцініть MIC:
Визначте МІК як найнижчу концентрацію антимікробів, яка повністю пригнічує видимий ріст мікроорганізмів у відновлювальному середовищі.
Проектування, виробництво та консалтинг – Якість зроблено в Німеччині
Ультразвукові апарати Hielscher добре відомі своїми найвищими стандартами якості та дизайну. Надійність і простота експлуатації дозволяють плавно інтегрувати наші ультразвукові апарати в промислові об'єкти. З важкими умовами та вимогливими умовами легко справляються ультразвукові апарати Hielscher.
Hielscher Ultrasonics є сертифікованою компанією ISO і приділяє особливу увагу високопродуктивним ультразвуковим апаратам, які відрізняються найсучаснішими технологіями та зручністю для використання. Звичайно, ультразвукові апарати Hielscher відповідають вимогам CE та відповідають вимогам UL, CSA та RoHs.

Спрощення підготовки зразків у 96-лункових пластинах та пробірних пластинах Використання багатолункового пластинчастого сонника UIP400MTP
Література / Список літератури
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
Поширені запитання
Що таке аналіз МІК?
Аналіз мінімальної інгібуючої концентрації (MIC) — це стандартизований тест, який використовується для визначення найнижчої концентрації антимікробного агента, необхідної для пригнічення видимого росту мікроорганізму. Зазвичай виконується з використанням методів мікророзведення бульйону або розведення агару, коли мікроорганізми піддаються серійному розведенню протимікробного засобу. Аналізи МІК мають вирішальне значення для оцінки ефективності антимікробних препаратів, керівництва клінічним лікуванням та оцінки рівня резистентності як у планктонних, так і у мікроорганізмів, асоційованих з біоплівкою.
Яка різниця між аналізом мінімальної інгібіторної концентрації на основі біоплівки та аналізом MBIC?
Аналіз мінімальної інгібіторної концентрації (MIC) на основі біоплівки та аналіз мінімальної інгібіторної концентрації біоплівки (MBIC) пов'язані, але різні за своєю метою та методологією.
Аналіз МІК на основі біоплівки оцінює найнижчу концентрацію антимікробного агента, необхідного для пригнічення видимого росту або життєздатності біоплівки, зосереджуючись на клітинах, пов'язаних з біоплівкою, а не на планктонних бактеріях. На противагу цьому, аналіз MBIC спеціально вимірює здатність антимікробного агента запобігати утворенню біоплівки, а не обробляти вже сформовані біоплівки. У той час як обидва аналізи стосуються бактерій, пов'язаних з біоплівкою, аналіз МІК на основі біоплівки стосується лікування, а аналіз MBIC наголошує на профілактиці, що робить їх додатковими інструментами для вивчення антимікробної ефективності проти біоплівок.
Які біоплівки використовуються в аналізі МІК?
Мікробні біоплівки та планктонні клітини використовуються в аналізах мінімальної інгібіторної концентрації (MIC) для вивчення антимікробної ефективності в різних умовах.
- Планктонні клітини:
Планктонні клітини – це вільно плаваючі поодинокі мікробні клітини, які служать стандартною моделлю для традиційних аналізів МІК. Поширені мікроорганізми включають кишкову паличку, синьогнійну паличку, золотистий стафілокок і Candida albicans. Ці аналізи визначають МІК, необхідний для пригнічення росту вільноживучих клітин, і мають вирішальне значення для початкового антимікробного скринінгу. - Клітини, асоційовані з біоплівкою:
Клітини біоплівки – це мікроорганізми, вбудовані в позаклітинний матрикс, що значно підвищує їх стійкість до протимікробних препаратів. Аналіз МІК на біоплівку часто включає:- Грамнегативні бактерії: Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa та Klebsiella pneumoniae, відомі утворенням біоплівки при інфекціях та промислових умовах.
- Грампозитивні бактерії: золотистий стафілокок (включаючи MRSA), Staphylococcus epidermidis та Enterococcus faecalis, які зазвичай беруть участь у інфекціях, пов'язаних із пристроєм.
- Гриби: Candida albicans та споріднені види, важливі при грибкових інфекціях, пов'язаних з біоплівкою.
- Біоплівки змішаних видів: вони іноді використовуються для відтворення природних полімікробних біоплівок, таких як ті, що зустрічаються в хронічних ранах або промислових біообростаннях.
Порівнюючи значення МІК для планктонних клітин і клітин, пов'язаних з біоплівкою, дослідники можуть оцінити підвищену резистентність біоплівок і визначити агенти, ефективні проти цих більш стійких мікробних спільнот.
У чому різниця між MIC і MBEC?
Мінімальна інгібуюча концентрація (МІК) – це найнижча концентрація антимікробного агента, необхідна для запобігання утворенню біоплівки, тоді як мінімальна концентрація ерадикації біоплівки (MBEC) – це найнижча концентрація, необхідна для знищення встановленої біоплівки. MIC зосереджується на профілактиці біоплівки, тоді як MBEC оцінює ефективність лікування проти зрілих біоплівок.
Які пластини зазвичай використовуються для аналізів MBEC?
Мікротитрові пластини, які зазвичай використовуються для аналізів MBEC, зазвичай являють собою 96-лункові пластини, виготовлені з полістиролу або поліпропілену. Ці матеріали забезпечують придатну поверхню для формування біоплівки та є хімічно стійкими до антимікробних агентів, протестованих під час аналізу. Полістирольні плити широко віддають перевагу через їх оптичну чіткість, що є перевагою для подальших аналізів, таких як спектрофотометричні або флуоресцентні вимірювання. Конструкція цих пластин включає знімні кришки-кілочки, які є важливими для аналізу, оскільки на кілочках, які занурені в лунки, що містять ростові середовища, утворюються біоплівки. Стандартизовані пластини, такі як ті, що відповідають протоколу аналізу MBEC, спеціально розроблені для забезпечення відтворюваності та сумісності з UIP400MTP ультразвуковим апаратом або іншим обладнанням для обробки.
Що таке пластини PEG-Lid?
ПЕГ-кришки – це спеціалізовані багатолункові системи пластин, де кришка оснащена невеликими поліетиленгліколевими (ПЕГ) кілочками або штифтами, що простягаються в кожну свердловину. Ці кілочки забезпечують поверхню для формування мікробної біоплівки в контрольованих умовах, імітуючи ріст біоплівки в реальному світі. Конструкція дозволяє біоплівкам розвиватися на пегах, тоді як лунки містять ростові середовища або антимікробні агенти, що дозволяє проводити високопродуктивне тестування чутливості біоплівки до лікування, наприклад, у аналізах MBEC, MBIC та MIC.
У чому перевага ультразвукового видалення біоплівки в порівнянні з зіскрібком клітин?
Ультразвукове видалення біоплівки дає значну перевагу перед зіскрібком клітин, забезпечуючи неінвазивний, уніфікований і високоефективний метод видалення біоплівок з поверхонь. На відміну від зіскрібка, який може бути непостійним і пошкоджувати підлеглу поверхню або клітини, ультразвукові хвилі проникають в матрикс біоплівки, розриваючи її без порушення цілісності сусідніх структур. Цей метод забезпечує відтворюваність, мінімізує ризик забруднення та є особливо ефективним для застосувань, які вимагають точного видалення біоплівки, наприклад, у мікробіологічних дослідженнях або тестуванні медичних пристроїв. Дізнайтеся більше, як UIP400MTP Sonicator перевершує зіскрібок клітин!

Hielscher Ultrasonics виробляє високоефективні ультразвукові гомогенізатори з Лабораторії до промислові розміри.