การตัดโครมาตินด้วยคลื่นเสียง
การตัดโครมาตินเป็นขั้นตอนสำคัญในกระบวนการทำงานทางชีววิทยาระดับโมเลกุลและอีพิเจเนติกส์หลายประเภท โดยเฉพาะในเทคนิคโครมาตินอิมมูโนพรีซิพิเทชัน (ChIP), ChIP-seq และการทดสอบที่เกี่ยวข้อง เป้าหมายคือการทำให้โครมาตินแตกเป็นชิ้นส่วนของดีเอ็นเอ-โปรตีนที่สามารถทำซ้ำได้ ในขณะที่ยังคงความสมบูรณ์ของเอพิโทปและลดการสูญเสียตัวอย่างให้น้อยที่สุด ในบรรดาวิธีการที่มีอยู่ การแตกโครมาตินด้วยคลื่นเสียงความถี่สูงได้กลายเป็นวิธีที่ได้รับความนิยมอย่างแพร่หลาย เนื่องจากให้การแตกที่เชื่อถือได้โดยไม่ต้องใช้สารรีเอเจนต์และมีความสามารถในการทำซ้ำที่ยอดเยี่ยม
ฉันควรพิจารณาอะไรบ้างเมื่อทำการตัดโครมาติน?
การตัดโครมาตินอย่างมีประสิทธิภาพต้องอาศัยการควบคุมพารามิเตอร์ในการทดลองอย่างระมัดระวัง การแตกหักของชิ้นส่วนที่ไม่เหมาะสมอาจส่งผลกระทบต่อผลการทดลอง ChIP ในขั้นตอนถัดไป โดยอาจก่อให้เกิดชิ้นส่วนที่มีขนาดใหญ่เกินไป เสื่อมสภาพมากเกินไป หรือมีความไม่สม่ำเสมอระหว่างตัวอย่าง
หนึ่งในปัจจัยที่สำคัญที่สุดคือการกระจายขนาดของชิ้นส่วนที่ต้องการ สำหรับการประยุกต์ใช้ ChIP และ ChIP-seq ส่วนใหญ่ ชิ้นส่วนของโครมาตินที่มีขนาดระหว่าง 100 ถึง 600 คู่เบสจะเหมาะสมที่สุด ช่วงขนาดนี้ช่วยให้การตกตะกอนด้วยภูมิคุ้มกันมีประสิทธิภาพในขณะที่ให้ความละเอียดเพียงพอสำหรับการทำแผนที่จีโนม
ปัจจัยสำคัญอีกประการหนึ่งคือประสิทธิภาพของการเชื่อมโยงข้ามก่อนการโซนิค ส่วนใหญ่ของกระบวนการ ChIP จะเกี่ยวข้องกับการตรึงด้วยฟอร์มาลดีไฮด์เพื่อทำให้การปฏิสัมพันธ์ระหว่างโปรตีนกับดีเอ็นเอเสถียร อย่างไรก็ตาม การเชื่อมโยงข้ามที่มากเกินไปอาจทำให้โครมาตินต้านทานการแตกตัวมากขึ้น ซึ่งอาจต้องใช้เวลาโซนิคยาวนานขึ้นและอาจเพิ่มการสัมผัสกับความร้อนได้
การควบคุมอุณหภูมิมีความสำคัญอย่างยิ่งเช่นกัน การสั่นสะเทือนด้วยคลื่นเสียงทำให้เกิดพลังงานเฉพาะจุดซึ่งสามารถทำให้อุณหภูมิของตัวอย่างสูงขึ้นได้ อุณหภูมิที่สูงขึ้นอาจทำลาย DNA หรือทำให้โปรตีนเสียสภาพ ส่งผลต่อการจดจำแอนติบอดีในระหว่างการวิเคราะห์ ChIP นักวิจัยหลายคนจึงทำการสั่นสะเทือนเป็นจังหวะร่วมกับช่วงเวลาการทำให้เย็นเพื่อรักษาเสถียรภาพของตัวอย่าง
ความเข้มข้นและปริมาตรของตัวอย่างก็มีผลต่อประสิทธิภาพของการแตกตัวเช่นกัน สารแขวนลอยโครมาตินที่มีความเข้มข้นสูงอาจต้องใช้เวลาในการโซนิคานานขึ้น ในขณะที่ปริมาตรตัวอย่างที่น้อยต้องการการส่งพลังงานอย่างแม่นยำเพื่อป้องกันการประมวลผลเกิน
ในที่สุด การเลือกอุปกรณ์โซนิเคชันมีอิทธิพลอย่างมากต่อความสามารถในการทำซ้ำของการทดลอง อุปกรณ์ที่ออกแบบมาสำหรับการตัดโครมาตินมักให้พลังงานอัลตราโซนิกที่ควบคุมได้และการจัดการตัวอย่างที่เป็นมาตรฐาน ทำให้เกิดการแตกตัวที่สม่ำเสมอในตัวอย่างหลายตัวอย่าง
เครื่องโซนิเคเตอร์รุ่นใดที่เหมาะสำหรับการตัดโครมาติน?
กระบวนการทำงานในห้องปฏิบัติการที่แตกต่างกันต้องการการตั้งค่าการโซนิเคชันที่แตกต่างกัน ระบบที่เหมาะสมที่สุดขึ้นอยู่กับปริมาณการประมวลผลตัวอย่าง ปริมาตร และรูปแบบการทดลองเป็นหลัก
เครื่องสั่นแบบหัววัด
เครื่องโซนิเคเตอร์แบบหัววัดส่งพลังงานอัลตราโซนิกเข้าสู่ตัวอย่างโดยตรงผ่านหัววัดไททาเนียม การกำหนดค่านี้ให้ความหนาแน่นของพลังงานสูงมาก จึงเหมาะสำหรับการทำลายโครมาตินอย่างรุนแรงในตัวอย่างแต่ละตัวอย่าง
เครื่องสั่นด้วยคลื่นเสียงแบบหัววัดมีประโยชน์อย่างยิ่งสำหรับ:
- จำนวนตัวอย่างขนาดเล็กถึงขนาดกลาง
- โครมาตินที่ย่อยสลายได้ยาก
- โปรโตคอลการทดลองที่ยืดหยุ่น
เครื่องโซนิเคเตอร์แบบหลายหลอด – VialTweeter
สำหรับห้องปฏิบัติการที่ประมวลผลตัวอย่างหลายรายการพร้อมกัน เครื่องโซนิเคเตอร์แบบหลายหลอด VialTweeter มอบโซลูชันที่มีความแม่นยำและสามารถทำซ้ำได้สูง ระบบนี้ส่งพลังงานอัลตราโซนิกโดยอ้อมผ่านที่ยึดหลอด ทำให้สามารถสลายหลอดที่ปิดผนึกหลายหลอดภายใต้สภาวะที่เหมือนกันได้
การกำหนดค่านี้มอบข้อได้เปรียบที่สำคัญ:
- การตัดโครมาตินแบบขนานของตัวอย่างหลายชุด
- การกำจัดสิ่งปนเปื้อนในหัววัด
- ความสม่ำเสมอสูงระหว่างหลอด
- ขั้นตอนการทำงานที่ง่ายขึ้นสำหรับการเตรียมตัวอย่าง ChIP
ระบบหลายหลอดเช่นนี้เหมาะอย่างยิ่งสำหรับการทดลอง ChIP แบบปกติและการศึกษาที่มีปริมาณปานกลาง
ไมโครเพลทโซนิเคเตอร์ – UIP400MTP
การศึกษาอีพิเจเนติกส์แบบผ่านปริมาณสูง (High-throughput epigenetics studies) มากขึ้นเรื่อย ๆ ที่พึ่งพาการประมวลผลตัวอย่างบนไมโครเพลต (microplate-based sample processing) เครื่องโซนิเคเตอร์ไมโครเพลต UIP400MTP ได้รับการออกแบบมาเพื่อทำลายโครมาติน (chromatin) ได้โดยตรงในไมโครเพลตมาตรฐานโดยไม่ต้องถ่ายโอนตัวอย่าง
แนวทางนี้ช่วยให้:
- การประมวลผลตัวอย่างหลายสิบหรือหลายร้อยตัวอย่างพร้อมกัน
- กระบวนการทำงานที่รองรับระบบอัตโนมัติ
- การกระจายพลังงานอัลตราโซนิกที่สม่ำเสมอทั่วทั้งบ่อ
- การลดขั้นตอนในการจัดการตัวอย่างอย่างมีนัยสำคัญ
สำหรับโครงการคัดกรอง ChIP-seq ขนาดใหญ่หรือการศึกษาอีพิเจเนติกส์แบบความจุสูง เครื่องโซนิเคเตอร์แบบไมโครเพลท UIP400MTP มีความสามารถในการปรับขนาดและประสิทธิภาพที่ยอดเยี่ยม เครื่องโซนิเคเตอร์แบบหลายหลุม UIP400MTP เหมาะอย่างยิ่งสำหรับ การผสานเข้ากับระบบจัดการของเหลวและกระบวนการทำงานในห้องปฏิบัติการอัตโนมัติ
ทำไมถึงเลือกโซนิเคชันเหนือเทคนิคการตัดโครมาตินแบบอื่น?
เมื่อเปรียบเทียบกับวิธีการทางเอนไซม์ การทำโซนิเคชันสำหรับ ChIP ให้การแตกหักของชิ้นส่วนที่ไม่ลำเอียง เนื่องจากกระบวนการนี้ไม่ขึ้นอยู่กับความสามารถของเอนไซม์ที่จำเพาะต่อลำดับนิวคลีโอไทด์ ซึ่งมีความสำคัญอย่างยิ่งสำหรับการศึกษาอีพีเจเนติกส์ทั่วทั้งจีโนม ที่ต้องการความครอบคลุมที่สม่ำเสมอ
ข้อได้เปรียบที่สำคัญอีกประการหนึ่งคือความสามารถในการปรับขนาด ระบบอัลตราโซนิกสามารถรองรับตัวอย่างเดี่ยว, หลายหลอด, หรือไมโครเพลททั้งหมดได้ ทำให้ห้องปฏิบัติการสามารถเลือกการกำหนดค่าที่เหมาะสมที่สุดสำหรับปริมาณงานการทดลองของพวกเขา
สุดท้ายนี้ การโซนิเคชันให้การควบคุมที่ยอดเยี่ยมต่อพารามิเตอร์การแตกหักของชิ้นส่วน ด้วยการปรับรอบการกระตุ้น ระยะเวลา และระดับพลังงาน นักวิจัยสามารถบรรลุการกระจายขนาดของชิ้นส่วนที่ต้องการได้อย่างน่าเชื่อถือ
การเปรียบเทียบเทคนิคการตัดโครมาติน
| วิธีตัดโครมาติน | หลักการ | ประโยชน์ | ข้อจำกัด |
| การสะท้อนเสียง | พลังงานเสียงความถี่สูงทำให้โครมาตินแตกตัวทางกล | การแตกตัวโดยไม่ใช้สารรีเอเจนต์, ผลลัพธ์ที่แม่นยำและสามารถทำซ้ำได้สูง, การกระจายขนาดของชิ้นส่วนที่สามารถปรับแต่งได้, สามารถใช้ร่วมกับโครมาตินที่เชื่อมโยงข้าม, สามารถปรับขนาดได้ตั้งแต่หลอดเดียวไปจนถึงหลายตัวอย่างและรูปแบบไมโครเพลท | ต้องใช้เครื่องโซนิคและปรับค่าพารามิเตอร์ของการโซนิคให้เหมาะสม |
| การย่อยด้วยเอนไซม์ (MNase) | ไมโครโคคคัส นิวคลีเอส ทำการย่อย DNA ระหว่างนิวคลีโอโซม | การแตกตัวแบบอ่อนและเหมาะสำหรับการวิเคราะห์โครมาตินธรรมชาติ | เอนไซม์มีอคติ, ความชอบในลำดับ, การย่อยที่ยากต่อการควบคุม, ความแปรปรวนที่อาจเกิดขึ้นระหว่างการทดลอง |
| การตัดด้วยแรงกล (เข็ม / เข็มฉีดยา) | โครมาตินถูกทำลายผ่านการกระทำทางกายภาพซ้ำ ๆ | วิธีง่าย ๆ ที่ต้องการอุปกรณ์น้อยมาก | ความสามารถในการทำซ้ำต่ำ, การควบคุมขนาดของชิ้นส่วนที่จำกัด, ต้องใช้แรงงานมากสำหรับตัวอย่างหลายชิ้น |
| การพ่นละอองยา | แรงดันอากาศบีบ DNA ผ่านช่องแคบทำให้เกิดการแตกหัก | กระบวนการแตกตัวเป็นชิ้นอย่างรวดเร็ว | อาจมีการสูญเสียตัวอย่าง, ความสามารถในการขยายตัวจำกัด, ต้องการอุปกรณ์เฉพาะทาง |
ฉันจะวัดปริมาณและคุณภาพของโครมาตินหลังจากการแตกตัวด้วยคลื่นเสียงได้อย่างไร?
หลังจากการโซนิคสำหรับการทำ ChIP นักวิจัยต้องประเมินทั้งปริมาณและคุณภาพของโครมาตินที่ถูกตัดเป็นชิ้น ขั้นตอนการตรวจสอบนี้ช่วยให้มั่นใจว่าโครมาตินที่ถูกตัดเป็นชิ้นตรงตามข้อกำหนดของการประยุกต์ใช้ในขั้นตอนต่อไป เช่น ChIP-qPCR หรือ ChIP-seq
การวัดปริมาณมักเริ่มต้นด้วยการวัดความเข้มข้นของ DNA วิธีการทางสเปกโทรโฟโตเมตรี เช่น การวิเคราะห์ด้วย Nanodrop หรือการทดสอบด้วยวิธีฟลูออเรสเซนต์ เช่น การวัดปริมาณ DNA ด้วย Qubit ให้ค่าประมาณที่น่าเชื่อถือของผลผลิตโครมาตินหลังจากการแยกพันธะและการทำให้บริสุทธิ์
อย่างไรก็ตาม ความเข้มข้นของ DNA เพียงอย่างเดียวไม่สามารถบ่งชี้ได้ว่าการแตกตัวของชิ้นส่วน DNA ประสบความสำเร็จหรือไม่ นักวิจัยจึงประเมินการกระจายขนาดของชิ้นส่วน DNA โดยใช้เทคนิคทางอิเล็กโทรโฟรีซิส การแยกด้วยเจลอะกาโรสยังคงเป็นวิธีที่ใช้กันอย่างแพร่หลายในการมองเห็นชิ้นส่วน DNA และตรวจสอบว่าส่วนใหญ่มีขนาดอยู่ในช่วงเป้าหมายที่ต้องการ
ห้องปฏิบัติการขั้นสูงมักใช้ระบบอิเล็กโทรโฟเรซิสแบบแคปิลลารี เช่น Agilent Bioanalyzer หรือ TapeStation แพลตฟอร์มเหล่านี้ให้ข้อมูลโปรไฟล์การกระจายขนาดที่แม่นยำและช่วยให้นักวิจัยสามารถตรวจจับการแตกหักเกินหรือการตัดที่ไม่สมบูรณ์ได้
เมื่อประเมินคุณภาพของโครมาตินหลังจากการแตกตัวด้วยคลื่นเสียงความถี่สูง นักวิจัยมักจะยืนยัน:
- ส่วนใหญ่ของชิ้นส่วน DNA ตกอยู่ในช่วง 100–600 bp
- การกระจายของชิ้นส่วนมีความสม่ำเสมอในตัวอย่างที่ซ้ำกัน
- การเสื่อมสภาพของดีเอ็นเอมีน้อยมาก
- ปริมาณโครมาตินทั้งหมดที่ได้เพียงพอสำหรับการทดสอบ ChIP ที่วางแผนไว้
การควบคุมคุณภาพที่เหมาะสมช่วยให้แน่ใจว่าขั้นตอนการตัดโครมาตินด้วยคลื่นเสียงความถี่สูงให้ผลลัพธ์ที่สามารถทำซ้ำได้และมีความหมายทางชีวภาพ
บทสรุป: การตัดโครมาตินด้วยคลื่นเสียงความถี่สูงเพื่อการวิจัยที่เชื่อถือได้
การตัดโครมาตินที่เชื่อถือได้เป็นพื้นฐานสำคัญสำหรับความสำเร็จในการวิจัย ChIP และอีพิเจเนติกส์ การแตกชิ้นด้วยคลื่นเสียงความถี่สูงเป็นวิธีที่มีประสิทธิภาพเนื่องจากสามารถทำลายโครมาตินได้อย่างแม่นยำ ทำซ้ำได้ และปราศจากสารรีเอเจนต์ในหลากหลายรูปแบบการทดลอง
โดยการปรับค่าพารามิเตอร์ของการโซนิคอย่างระมัดระวัง ตรวจสอบการกระจายขนาดของชิ้นส่วน และเลือกระบบโซนิคที่เหมาะสม – ไม่ว่าจะเป็นเครื่องโซนิเคเตอร์แบบหัวโพรบ, เครื่อง VialTweeter แบบหลายหลอด, หรือเครื่องโซนิเคเตอร์ไมโครเพลท UIP400MTP สำหรับงานปริมาณมาก – นักวิจัยสามารถบรรลุการแตกตัวของโครมาตินที่สม่ำเสมอซึ่งสนับสนุนผลลัพธ์ ChIP และ ChIP-seq ที่มีคุณภาพสูง
เนื่องจากการวิจัยด้านอีพิเจเนติกส์ยังคงขยายตัวไปสู่การประมวลผลที่สูงขึ้นและความสามารถในการทำซ้ำของการทดลองที่มากขึ้น การตัดโครมาตินด้วยคลื่นเสียงความถี่สูงยังคงเป็นหนึ่งในวิธีการที่มีความหลากหลายและเชื่อถือได้มากที่สุดสำหรับห้องปฏิบัติการชีววิทยาโมเลกุลสมัยใหม่
การออกแบบ การผลิต และการให้คําปรึกษา – คุณภาพ ผลิตในประเทศเยอรมนี
เครื่องอัลตราโซนิก Hielscher เป็นที่รู้จักกันดีในด้านคุณภาพและมาตรฐานการออกแบบสูงสุด ความทนทานและใช้งานง่ายช่วยให้สามารถรวมเครื่องอัลตราโซนิกของเราเข้ากับโรงงานอุตสาหกรรมได้อย่างราบรื่น สภาพที่ขรุขระและสภาพแวดล้อมที่ต้องการสามารถจัดการได้ง่ายโดยเครื่องอัลตราโซนิกของ Hielscher
Hielscher Ultrasonics เป็น บริษัท ที่ได้รับการรับรองมาตรฐาน ISO และให้ความสําคัญเป็นพิเศษกับเครื่องอัลตราโซนิกประสิทธิภาพสูงที่มีเทคโนโลยีล้ําสมัยและเป็นมิตรกับผู้ใช้ แน่นอนว่าเครื่องอัลตราโซนิกของ Hielscher เป็นไปตามมาตรฐาน CE และตรงตามข้อกําหนดของ UL, CSA และ RoHs
วรรณกรรม / อ้างอิง
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mittal, N., Guimaraes, J.C., Gross, T. et al. (2017): The Gcn4 transcription factor reduces protein synthesis capacity and extends yeast lifespan. Nat Commun 8, 457 (2017).
- Shih H.-T., Chen W.-Y., Liu K.-Y., Shih Z.-S., Chen Y.-J., Hsieh P.-C., et al. (2016): dBRWD3 Regulates Tissue Overgrowth and Ectopic Gene Expression Caused by Polycomb Group Mutations. PLoS Genetics 12(9): e1006262.
- José A. Jarillo, Dorota N. Komar, and Manuel Piñeiro (2018): The Use of the Chromatin Immunoprecipitation Technique for In Vivo Identification of Plant Protein–DNA Interactions. Chapter in book: Luis Oñate-Sánchez (ed.), Two-Hybrid Systems: Methods and Protocols, Methods in Molecular Biology, vol. 1794, 2018.
- Einig, E., Jin, C., Andrioletti, V. et al. (2023): RNAPII-dependent ATM signaling at collisions with replication forks. Nature Communications 14, 5147 (2023)
คําถามที่พบบ่อย
โครมาตินคืออะไร?
โครมาตินคือโครงสร้างซับซ้อนของดีเอ็นเอและโปรตีนที่เกี่ยวข้องซึ่งจัดระเบียบสารพันธุกรรมภายในนิวเคลียสของเซลล์ยูคาริโอต โปรตีนหลักในโครมาตินคือฮิสโตน ซึ่งดีเอ็นเอจะถูกพันรอบเพื่อสร้างนิวคลีโอโซม การจัดระเบียบนี้ทำให้ดีเอ็นเอมีความหนาแน่นมากขึ้นในขณะเดียวกันก็ควบคุมการเข้าถึงข้อมูลทางพันธุกรรมสำหรับกระบวนการต่างๆ เช่น การถอดรหัส การจำลองแบบ และการซ่อมแซมดีเอ็นเอ
ประเภทของโครมาตินมีอะไรบ้าง?
โครมาตินโดยทั่วไปถูกจัดแบ่งออกเป็นสองรูปแบบหลัก ได้แก่ ยูโครมาตินและเฮเทอโรโครมาติน ยูโครมาตินมีลักษณะหลวมและสามารถถูกถอดรหัสได้ ทำให้ยีนสามารถเข้าถึงได้โดยกลไกการถอดรหัส เฮเทอโรโครมาตินมีลักษณะหนาแน่นกว่าและไม่สามารถถอดรหัสได้ โดยทั่วไปประกอบด้วยลำดับดีเอ็นเอที่ซ้ำกันหรือยีนที่ถูกปิดการทำงานเฮเทอโรโครมาตินสามารถแบ่งออกได้อีกเป็นเฮเทอโรโครมาตินแบบคงที่ ซึ่งยังคงอยู่ในสภาพที่บีบตัวถาวร และเฮเทอโรโครมาตินแบบแปรผัน ซึ่งสามารถสลับระหว่างสถานะที่ทำงานและสถานะที่ไม่ทำงานได้ตามสภาวะของเซลล์
อะไรคือการเชื่อมขวาง?
การเชื่อมโยงข้าม (Crosslinking) เป็นกระบวนการทางชีวเคมีที่ใช้เพื่อทำให้การมีปฏิสัมพันธ์ระหว่างชีวโมเลกุลมีความเสถียรโดยการสร้างพันธะโควาเลนต์ระหว่างพวกมัน ในการวิจัยโครมาติน การเชื่อมโยงข้ามมักถูกใช้เพื่อรักษาการมีปฏิสัมพันธ์ระหว่างโปรตีนกับดีเอ็นเอภายในโครมาตินก่อนการวิเคราะห์ สารเคมีเช่นฟอร์มาลดีไฮด์มักถูกใช้เพื่อสร้างพันธะโควาเลนต์ที่สามารถกลับคืนได้ระหว่างดีเอ็นเอกับโปรตีนที่เกี่ยวข้องอย่างมีประสิทธิภาพ “เย็น” ปฏิสัมพันธ์ระดับโมเลกุลในช่วงเวลาเฉพาะ การทำให้เสถียรนี้ช่วยให้คอมเพล็กซ์โครมาตินสามารถถูกแยกเป็นชิ้นและประมวลผลได้โดยไม่สูญเสียการเชื่อมโยงตามธรรมชาติระหว่างดีเอ็นเอและโปรตีนควบคุม ซึ่งเป็นสิ่งสำคัญสำหรับเทคนิคเช่นโครมาตินอิมมูโนพรีซิพิเทชัน (ChIP)
ชิปคืออะไร?
โครมาตินอิมมูโนพรีซิพิเทชัน (ChIP) เป็นเทคนิคทางชีววิทยาโมเลกุลที่ใช้ในการศึกษาปฏิสัมพันธ์ระหว่างโปรตีนและดีเอ็นเอภายในโครมาติน ในวิธีนี้ จะมีการทำให้คอมเพล็กซ์ของดีเอ็นเอกับโปรตีนมีเสถียรภาพก่อน โดยทั่วไปจะใช้วิธีการเชื่อมโยงข้าม จากนั้นจึงทำการตัดโครมาตินเป็นชิ้นเล็ก ๆ ต่อมาจะใช้แอนติบอดีที่จำเพาะต่อโปรตีนเป้าหมายเพื่อจับกับคอมเพล็กซ์โปรตีน-ดีเอ็นเอและตกตะกอนออกมา ทำให้สามารถแยกและวิเคราะห์ลำดับดีเอ็นเอที่เกี่ยวข้องได้
ChIP ใช้ทำอะไร?
ChIP ใช้เพื่อระบุบริเวณในจีโนมที่มีการจับของโปรตีนที่เกี่ยวข้องกับดีเอ็นเอเฉพาะ เช่น ปัจจัยการถอดรหัส การดัดแปลงฮิสโตน หรือโปรตีนควบคุมที่เกี่ยวข้องกับโครมาติน เทคนิคนี้ถูกนำมาใช้อย่างแพร่หลายในการศึกษาการควบคุมยีน การดัดแปลงอีพีเจเนติก ตำแหน่งการจับของปัจจัยการถอดรหัส และโครงสร้างโครมาติน เมื่อใช้ร่วมกับวิธีการวิเคราะห์เชิงลึก เช่น การตรวจวัดเชิงปริมาณด้วย PCR (ChIP-qPCR) หรือการหาลำดับดีเอ็นเอแบบความจุสูง (ChIP-seq) จะช่วยให้สามารถทำแผนที่การปฏิสัมพันธ์ระหว่างโปรตีนกับดีเอ็นเอทั่วทั้งจีโนมได้
ประเภทของ ChIP มีอะไรบ้าง?
มีหลายรูปแบบของการวิเคราะห์โครมาตินด้วยภูมิคุ้มกัน (chromatin immunoprecipitation) ขึ้นอยู่กับการออกแบบการทดลองและการวิเคราะห์ข้อมูลในขั้นตอนต่อไป วิธีการที่ใช้กันทั่วไป ได้แก่ ChIP-qPCR ซึ่งวัดปริมาณการเพิ่มของบริเวณจีโนมเฉพาะ; ChIP-seq ซึ่งใช้การหาลำดับดีเอ็นเอรุ่นถัดไปเพื่อทำแผนที่การปฏิสัมพันธ์ระหว่างโปรตีนกับดีเอ็นเอทั่วทั้งจีโนม; และ ChIP-chip ซึ่งรวมการวิเคราะห์ ChIP กับไมโครอาร์เรย์ดีเอ็นเอนอกจากนี้ยังมีรูปแบบเพิ่มเติม เช่น native ChIP (N-ChIP) ซึ่งวิเคราะห์โครมาตินที่ไม่ผ่านการเชื่อมโยงข้าม และ crosslinked ChIP (X-ChIP) ซึ่งใช้การเชื่อมโยงข้ามทางเคมีเพื่อทำให้การปฏิสัมพันธ์ระหว่างโปรตีนกับดีเอ็นเอสTABLE มากขึ้น ซึ่งทั้งสองรูปแบบนี้ถูกใช้อย่างแพร่หลายเช่นกัน ขึ้นอยู่กับคำถามทางชีววิทยาที่ต้องการศึกษา
Hielscher Ultrasonics ผลิตโฮโมจีไนเซอร์อัลตราโซนิกประสิทธิภาพสูงจาก ห้องทดลอง ถึง ขนาดอุตสาหกรรม






