Hielscher Ultrazvukové technológie

Ultrazvuková príprava vzoriek C. Elegans

C. elegans, červ hláďa, je široko používaný model organizmu v biológii. Príprava vzorky pred analýzou si vyžaduje lýzu, extrakciu bielkovín a lipidov, ako aj fragmentáciu RNA, ktorá sa môže spoľahlivo vykonať ultrazvukom. Ultrazvukové bunkové disruptory sú spoľahlivé, sofistikované a ľahko použiteľné zariadenia pre rýchlu prípravu vzoriek C. elegans.

Ultrazvuková príprava vzoriek C. Elegans

C. elegans sú škrkavky, ktoré sú široko používané vo výskumných laboratóriách na skúmanie genomiky, vývojovej biológie a chorôb. Mnoho génov v genóme C. eegánov má funkčné náprotivky u ľudí. Tým je červ hlucháňa veľmi užitočným modelom pre ľudské choroby. Ďalšie výhody pre široké využitie C. eegánov sú jeho jednoduché a lacné pestovanie na tanieroch obsahujúcich baktérie (napr. E. coli), jeho priehľadnosť, pohodlná manipulácia, ako aj možnosť zmraziť a skladovať červy na dlhšiu dobu.
Analýza bielkovín a lipidov sú pravidelné postupy v laboratóriách a ultrazvukový prípravok vzoriek je zavedenou metódou na lýzu C. elegans háďatká v každom vývojovom štádiu (t. j. embryá, larvy L1-L4, dospelí). Keďže C. elegans sa používa aj ako systém expresie bielkovín na nadmerne expresné cielené proteíny, vyžaduje sa spoľahlivá, reprodukovateľná metóda nalýza a extrakcia proteínov, ktorá poskytuje vysoké výnosy bielkovín. Ultrazvukové bunkové poruchy a extrakčné systémy sú k dispozícii ako homogenizátory typu sondy a ako ultrazvukové zariadenia s viacerými vzorkami. Stravovanie pre pohodlnú prípravu vzoriek a všetky druhy veľkostí vzoriek čísla, Hielscher Ultrazvukom má ideálny ultrazvukový bunkový disruptor pre vaše laboratórne postup.
C. elegans is a widely used model organism in biological research. Ultrasonic lysis is a sophisticated, reliable, reproducible and rapid technique to prepare high-quality protein extracts from C. elegans.

Ultrazvukový C. elegans Lysis pre

  • Príprava homogenátov červov
  • Extrakcia bielkovín
  • Extrakcia lipidov
  • Kvantifikácia bielkovín
  • Imunoprecipitácia
  • Západné blotu
  • Extrakcia RNA
  • Enzymatické testy
Sonotróda MTP-24-8-96 má osem ultrazvukových sond pre ultrazvukom studní mikrotiterových dosiek.

Sonotróda MTP-24-8-96 má osem ultrazvukových sond pre ultrazvukom studní mikrotiterových dosiek.

Žiadosť o informácie





Ultrazvukové protokoly pre C. Elegans narušenie a lyzu

Ultrazvuková homogenizácia a lýza C. eegánov a následná extrakcia bielkovín a lipidov sa môže vykonať pomocou rôznych postupov s použitím rôznych homogenizačných a lýzových tlmivých roztokov atď. Všetky protokoly lyzy majú spoločné to, že vzorky sa musia nepretržite uchovávať na ľade, aby sa zabránilo degradácii proteínov. Nižšie vám predstavíme niekoľko spoľahlivých a rýchlych ultrazvukových lýz a extrakčných protokolov na prípravu vysokokvalitných vzoriek obsahujúcich proteíny alebo lipidy C. elegans.

Výhody ultrazvukové C. elegans Lysis

  • Spoľahlivé
  • Reprodukovateľné
  • presne kontrolované prieterapie
  • spoľahlivá kontrola procesu
  • jemná metóda
  • ľahko použiteľné
  • trezor

Ultrazvuková extrakcia bielkovín zo vzoriek C. elegans

Ultrazvuková lyza a extrakcia proteínov červov C. elegans sa môže vykonávať pomocou rôznych protokolov. Nižšie vám predstavíme niekoľko spoľahlivých a rýchlych protokolov pre reprodukovateľné výsledky extrakcie proteínov.

Rýchla preparatácia cytosolického extraktu z C. elegans Worms ultrazvukom

S nasledujúcim protokolom si môžete pripraviť C. elegans lyzáty za menej ako 30 minút.
Zbierka C. elegans
Vyberte požadované červy C. elegans do 1,5 ml skúmavky fosfát tlmený roztok (PBS) alebo ich umyte z platne s 1, 5 ml PBS. Odstreďujte pri 1min pri 2000 ot./min. na pelety. Vzorky uchovávajte po celý čas na ľade.
Potom, umyte červy dvakrát PBS.
Potom, umyte červy dvakrát ddH2O.
Červy sa resuspenduje najmenej v 500ul homogenizačného tlmivého roztoku (HB). Vzorky červov sú teraz pripravené na ultrazvukovú lalzu.
Pre vyššiu kvalitu proteínového extraktu, možno budete chcieť znížiť bakteriálnu kontamináciu umytím červov po dobu 5 min každý v PBS a sterilné, ultra-čistej vody (ddH2O) alebo vykonať sacharózu floatation. Vzorky červov uchovávajte nepretržite na ľade.

Ultrazvukový protokol C. elegans Lysis

  • Uistite sa, že pripravíte ultrazvukový ultrasonicator vopred tak, aby ultrazvukový homogenizátor je pripravený na použitie (sonda namontované, ultrazvukový program pre-set).
  • Ultrasonicator UP200Ht (200 watts, 26kHz) with microtip S26d2 for the preparation of biological samplesAk je váš ultrazvukový je stand-montáž, miesto ľadový kúpeľ s vzorkou rúrky pod ultrazvukové sondy a vložte ultrazvukové sondy do 1,5 ml trubice.

  • Pre C. elegans lysis s UP200St alebo UP200Ht, ultrazvukom by mala byť vykonaná pomocou mikrotipu (napr. 2mm sonda S26d2; pozri obrázok vľavo) na 40% amplitúdy pre 1sec s 30sec pauzy medzi tým. 5 ultrazvukom cyklov pre každú 1 sekundu s 30sec pauzy sú ideálne pre C. elegans lysis. Ak vykonáte lyzu prvýkrát, môžete skontrolovať progresiu lyzy v malých alikvotných alikvotných množstvách vzorky po každom impulze pomocou mikroskopu.
  • Lyza sa úspešne dokončí, keď sú červy narušené. Over-ultrazvukom vedie k rozbitie jadla a stane sa viditeľným, keď vzorka dostane viskózny alebo peny. Aby ste zabránili degradácii vzorky, v prípade potreby použite viac impulzov. Nezvyšujú čas každého ultrazvukového pulzného cyklu získať vysoko kvalitné proteínové extrakty.
  • Číry bunkový lyzát odstreďovanie ultrazvukom lyzované červy pri 14.000 ot/min pre 10min pri 4ºC.
  • Potom preneste supernatant do čerstvej trubice a pripravte sa na imunoprecipitáciu alebo iné testy.

Poznámka pre homogenizačný tlmivý roztok: Pripravte homogenizačný tlmivý roztok pre vyššie uvedený protokol ultrazvukovej lyzýzy takto:

  • 15 mM Hepes pH 7,6 – 15 ml 0,5 M
  • 10 mM KCl – 2,5 ml 2 M
  • 1,5 mM MgCl2 – 0.75 ml 1 M
  • 0.1 mM EDTA – 100 ul 0,5 M
  • 0.5 mM EGTA – 2,5 ml 0,1 M
  • 44 mM Sacharóza – 14,7 ml 50 %
  • Pridať tesne pred použitím: 1mM DTT – 1000x z 1M
  • plus inhibítor proteázy

Ultrazvuková lyzýza C. eegánov pre kvantitatívne testy čistenia afinity

C. embryá eleganov (∼2 milióny na replikát) boli čerstvo zozbierané v biologickom trilikáte bielením mladých gravid hermafroditov a sonikované na ľade (cyklus: 0,5 s, amplitúda: 40 – 45 %, 5 úderov/relácia, 5 sedení, interval medzi zasadnutiami: 30 s; Ultrazvukový procesor UP200S s mikro-tip S26d2 (Hielscher Ultrasonics GmbH)) v lyzózovom tlmivom roztoku (celkový objem: ∼600 μl; 50 mm Tris-HCl, pH 7,4, 100 mm KCl, 1 mm MgCl2, 1 mm EGTA, 1 mm DTT, 10% glycerol, zmes inhibítora proteázy, 0,1% Náhrada Nonidet P-40). Po sonikácii sa nonidet P-40 Substrát pridal do 1% a lyzáty boli inkubované otáčaním hlavy nad chvostom pri teplote 4 °C počas 30 minút, po ktorom nasledovala odstreďovanie pri 20 000 × g počas 20 minút pri teplote 4 °C. Vymazaný lyzát bol potom nasávaný bez narušenia hornej lipidovej vrstvy a rozdelený na polovicu buď na anti-GFP agarózne korálky, alebo na upchaté kontrolné korálky (40– 50 μl). Po otáčaní hlavy nad chvostom pri teplote 4 °C počas 60 – 90 minút sa korálky raz premyli tlmivým roztokom na lyzu obsahujúcim 0,1 % náhrady Nonidet P-40, po ktorom nasledujú dva krát prania buď v pufri I (25 mm Tris-HCl, pH 7,4, 300 mm NaCl, 1 mm MgCl2) alebo v pufri II (1 mm Tris-HCl, pH 7,4, 150 mm NaCl, 1 mm MgCl2) alebo oboje. Pre ťahy GFP:MBK-2 sa vykonali dva samostatné experimenty s použitím rôznych podmienok prania. Proteíny boli eluované orbitálnym pretrepávaním v 50 μl 6 m močoviny/2 M tiourea pri izbovej teplote. Pre pull-down experimenty MBK-1::GFP boli proteíny eluované dvakrát pretrepaním v 50μl 8 m guanidíniumchloridu pri teplote 90 °C, po ktorom nasledovalo vyzrážanie etanolu. Eluované proteínové vzorky boli potom stráviteľné v roztoku.
(porovnaj Chen a kol., 2016)

VialTweeter at the ultrasonic processor UP200ST

VialTweeter jednotka na prípravu viacerých vzoriek na simultánne ultrazvukom 10 skúmaviek.

Ultrazvukový červ homogenizácia a lyza

V prípade C.elegans lysis a extrakcie bielkovín sa na vzorku odobralo 30 000 háďatka na vzorku a umylo sa v ľadovom S-bazále, koncentrované odstreďovanie pri 1500 ot./min. počas 2 minúty, šesťkrát umyté ľadom studeným S-bazálnym, aby sa odstránili reziduálne baktérie, a potom sa skladovali na ľade, kým nie sú pripravené na použitie. Na extrakciu proteínov mohli gravid-dospelé červy po poslednom S-bazálnu umyť kompaktný pelet. Červie pelety sa potom resuspendovali v 1 ml tlmivého roztoku na extrakciu za studena [20 mM fosforečnanu draselného, pH 7,4, 2mM EDTA, 1% Triton- X- 100, inhibítorov proteázy (Sigma P2714)] a okamžite sa spracovali.
∼30 000 gravid-dospelých červov (čo zodpovedá ∼100 mg mokrej hmotnosti) boli sonikované na ľade pomocou ultrazvukom typu sondy (napr. (porovnaj Baskharan a kol. 2012)

Ultrazvuková extrakcia lipidov z C. eéganov

V lipidomike, vetve metabolomík, je charakterizovaný a analyzovaný lipidný komplement biologických systémov. C. eegáni sú široko používané v lipidomi na preskúmanie interakcie metabolických lipidov a ich účinkov na zdravie a životnosť.
Ultrazvuková lýza a extrakcia sa používa na uvoľňovanie lipidov, ako sú sfingolipidy z embryí C. eegánov, lariev a dospelých červov. Ultrazvukom sa používa na prípravu červa homogenates a následne extrahovať lipidy zo vzorky.
Protokol pre ultrazvukové lipidové extrakcie z C. elegans
Rozmrazte pelet C. elegans na ľad a resuspendujte 0,5 ml ultravody. 
Vzorky C. eleganov sa odoberajú v 1,5 ml skúmavkách, pričom vzorky sa nepretržite držia na ľade.
Ultrazvukom sa môže vykonávať pomocou sondy-ultrazvukom, ako je UP200Ht, ultrazvuková jednotka na prípravu vzoriek VialTweeter (simultánne ultrazvukom po 10 vzoriek) alebo UIP400MTP (UIP400MTP) (pre ultrazvukom multi-dobre dosky, ako je 96-dobre dosky). Pre ultrazvukové lysis s UP200Ht použite mikro-tip S26d2. Pre-nastaviť ultrazvukový cyklus režim v digitálnom menu. Nastavte amplitúdu na 10% a režim ultrazvukového cyklu 2 sec impulzy 20 cyklov s pauzou 30 sec. medzi každým ultrazvukovým pulzáciou praskla.
Supernatanty preneste do sklenených rúrok so skrutkovacím uzáverom. 
Extrakciu foliku vykonajte pridaním 1 ml ultravody do každej sklenenej skúmavky, po ktorej sa pridá 6 ml zmesi chloroformu/metanolu (pomer = 2:1) do každej sklenenej skúmavky.
Každú sklenenú skúmavku premiešajte 30 sekúnd 4-krát. 
Skúmavky odstreďujte pri 1,258 x g počas 15 minút (Eppendorf, 5810 R), aby sa ďalej zvýšila separácia fáz. 
Spodnú hydrofóbnu frakciu preneste do čistej sklenenej skúmavky sklenenou pipetou Pasteur. 
Spodnú hydrofóbnu frakciu vysušte prúdom dusíka v odparovači dusíka. 
Sušené pelety skladujte až do použitia v mrazničke s teplote -80 °C.

Ultrazvuková príprava lyzátov červov

Lyzát červov: L4 javiskové červy boli zozbierané a umyté trikrát tlmivým roztokom M9 (42,26 mM Na2HPO4, 22.04 mM KH2PO4, 85,56 mM NaCl a 0,87 mM MgSO4) s cieľom odstrániť všetky baktérie. Po odstránení čo najviac tlmivého roztoku M9 boli červy resuspendované v tlmivom roztoku na lyzu: 50 mM HEPES, 50 mM KCl, 1mM EDTA, 1mM EGTA, 5 mM fosfát β-glycerol, 0,1 % (v/v) Triton X-100, 50 mM fluorid sodný, 1 mM ortopanát sodný, 5 mM pyrofosforečnan sodný, 0,2 mM fenylmetánsulfonylfluorid a inhibítor proteázy. Červy boli zmrazené v tekutom dusíku a trikrát rozmrazené pri teplote 37 °C, potom boli červy sonikované na suchom ľade ultrazvukovou jednotkou VialTweeter na simultánne prípravu 10 skúmaviek so vzorkou. Ultrazvukom bola vykonaná na 50% amplitúdy v 10 cykloch 2 sec. s 30 sec pauza medzi ultrazvukom praskne. Potom boli vzorky odstreďované pri 12000 ot./min. pri teplote 4 °C počas 15 minút. Supernatant bol odobratý a skladovaný pri teplote -70°C. Alikvotná alikvotná alikvotná časti bola použitá na kvantifikáciu proteínov Bradfordovým testom.
Stanovenie celkového glutatiónu, GSH a GSSG: Na kvantifikáciu glutatiónu sa v ten istý deň vykonali lyzáty a stanovenie. Larvy L4 kŕmené glukózou a kontrolné larvy L4 boli trikrát zozbierané a umyté tlmivým roztokom M9. Po odstránení čo najviac M9 tlmivého roztoku, červy boli resuspend v ľade-studenej kyseliny metafosforečnej (5% w / v), potom červy boli sonikované v ľade s ultrazvukovým VialTweeter na 50% amplitúdy v desiatich ultrazvukových cykloch 2 sec. s 30 sec pauza medzi každým cyklom. Potom sa odstreďuje pri 12000 ot./min. pri 4 °C počas 15 minút.
(porovnaj Alcántar-Fernández a kol., 2018)

C. elegans Ukážka Prípravka pred imunoprecipitáciou a západnej Blotting

Stručne y, pre embryonálne extrakty, C. elegans L1 larvy boli pestované vo veľkom meradle kvapalných S-stredných kultúr až do dospelosti. Embryá boli odobraté metódou štandardného bielidla a suspendované v tlmivom roztoku na lyzu (50 mM tris, pH 7,5, 100 mM KCl, 1 mM EDTA, 1 mM MgCl2, 8,7% glycerol, 0,05% NP-40, 1􏰅 Proteáza inhibítor koktail, a 1􏰅 inhibítor fosfatázy Koktail I a II), rýchlo zmrazené v tekutom dusíku, a lyzované ultrazvukové bunky narušenie pomocou ultrazvukový inhibítor s mikrotipom, ako je mikrotip, ako je UP200Ht s S26d2 pre 10 impulzov nad 10 s pri 30% amplitúde. Ak sa musí pripraviť väčší počet vzoriek, ultrazvukový VialTweeter alebo MultiSample-Ultrasonicator UIP400MTP pre dobre-dosky sú odporúčané. Po ultrazvukom boli extrakty vopred zbavené odstreďovania pri teplote 30 000 g počas 20 minút pri teplote 4 °C. Vopred vyčistený extrakt (300 μg celkového proteínu) bol inkubovaný 40 μ􏰂 g anti-CDC-25,1 afinity čistenej protilátky (táto štúdia) skrížene spojenou s proteínom A-agaróza, alebo ako kontrola sa použilo podobné množstvo králičieho imunoglobulínu (Ig)G skríženého s proteínom A-agaróza v celkovom objeme 200 μl lýzového tlmivého roztoku obsahujúceho 1% NP- 40, ktorého zahrnutie znížilo nešpecifické väzby bielkovín na matricu. Vzorky sa otáčali o 1 hodinu pri teplote 4 °C, korálky sa trikrát premyli tlmivým roztokom na lyzu a eluovali sa 30 μl glycínu/HCl a 200 mM NaCl, pH 2.2. Po imunoprecipitácii sa eluáty zriedili v 30 μ􏰂l Tlmivého roztoku vzorky SDS, zahriate na 95 °C počas 4 minút, a zvyčajne 3% z celkového počtu vstupov a 30% pre eluáty boli použité na SDS-PAGE nasleduje západnej blotting s anti-CDC-25.1 (1:400), anti-LIN-23 (1:750), anti-ubiquitin (1:1000), anti-GSK3􏰁 (1:500), alebo anti-􏰁β-actin (1:2000) protilátky. Ak extrakty neboli podrobené imunoprecipitácii, rovnaké množstvo celkového proteínu získaného z týchto extraktov bolo resuspendované v Tlmivom roztoku vzorky SDS, zahriate na 95 °C a potom priamo aplikované na SDS-PAGE a analyzované západným blottingom. (porovnaj Segref a kol. 2020)

Typ sondy, UP200St pre lýzu

Ultrazvukový bunkový disruptor UP200St s mikro-tip S26d2 pre lyzu a extrakciu bielkovín

Ultrazvuková lyzóza v rámci prescise regulácie teploty

The VialTweeter is a MultiSample Ultraonicator that allows for reliable sample preparation under precisely controlled temperature conditions.Presná a spoľahlivá regulácia teploty je rozhodujúca pri manipulácii s biologickými vzorkami. Vysoké teploty iniciujú tepelne indukovanej degradácie proteínov vo vzorkách.
Ako všetky techniky mechanickej prípravy vzoriek, ultrazvukom vytvára teplo. Avšak, teplota vzoriek môže byť dobre kontrolovaná pri použití VialTweeter. Predstavujeme vám rôzne možnosti pre monitorovanie a kontrolu teploty vašich vzoriek pri ich príprave s VialTweeter a VialPress pre analýzu.

  1. Monitorovanie teploty vzorky: Ultrazvukový procesor UP200St, ktorý poháňa VialTweeter, je vybavený inteligentným softvérom a príkonovým teplotným snímačom. Zapojte snímač teploty do UP200St a zasuňte špičku snímača teploty do jednej zo skúmaviek so vzorkou. Prostredníctvom digitálneho farebného dotykového displeja môžete nastaviť v ponuke UP200St špecifický teplotný rozsah pre vašu sonikáciu vzoriek. Ultrazvukom sa automaticky zastaví, keď sa dosiahne maximálna teplota, a pozastaví sa, až kým teplota vzorky nedosiahne nižšiu hodnotu nastavenej teploty ∆. Potom sa ultrazvukom spustí automaticky znova. Táto inteligentná funkcia zabraňuje degradácii vyvolanej teplom.
  2. Blok VialTweeter je možné predchladiť. Vložte blok VialTweeter (iba sonotróda bez prevodníka!) do chladničky alebo mrazničky, aby sa predchladil titánový blok, ktorý pomáha odložiť zvýšenie teploty vo vzorke. Ak je to možné, vzorka sama o sebe môže byť pre-chladené taky.
  3. Použite suchý ľad vychladnúť počas ultrazvukom. Použite plytký podnos naplnený suchým ľadom a položte VialTweeter na suchý ľad, aby sa teplo rýchlo rozptýlilo.

Nájdite optimálny ultrazvukový bunkový disruptor pre vašu aplikáciu Lysis

Hielscher Ultrazvukom je dlhoročný skúsený výrobca vysokovýkonných ultrazvukových bunkových disruptorov a homogenizátorov pre laboratóriá, bench-top a priemyselné systémy stupnice. Vaša veľkosť bakteriálnej bunkovej kultúry, váš výskum alebo výrobný cieľ a objem buniek na spracovanie za hodinu alebo deň sú základnými faktormi na nájdenie správneho ultrazvukového bunkového disruptora pre vašu aplikáciu.
Hielscher Ultrazvukom ponúka rôzne riešenia pre simultánne ultrazvukom multi-vzorky (až 10 injekčných liekoviek), rovnako ako masové vzorky (tj mikrotiter dosky / 96-dobre dosky), klasické sondy-typ laboratórne ultrazvukom s rôznymi úrovňami výkonu od 50 do 400 wattov na plne priemyselné ultrazvukové procesory s až 16.000wattov na jednotku pre komerčné bunkové narušenie a extrakciu bielkovín vo veľkej výrobe. Všetky Hielscher ultrazvukom sú postavené pre 24/7/365 prevádzku pri plnom zaťažení. Robustnosť a spoľahlivosť sú základnými funkciami našich ultrazvukových zariadení.
Všetky digitálne ultrazvukové homogenizátory sú vybavené inteligentným softvérom, farebným dotykovým displejom a automatickým protokolom dát, vďaka ktorému sa ultrazvukové zariadenie mení na pohodlný pracovný nástroj v laboratórnych a výrobných zariadeniach.
Dajte nám vedieť, aký druh buniek, aký objem, s akou frekvenciou a s akým cieľom musíte spracovať svoje biologické vzorky. Odporúčame vám najvhodnejší ultrazvukový bunkový disruptor pre vaše požiadavky na proces.

Nižšie uvedený stôl vám dáva údaj o približnej spracovateľnosti našich ultrazvukových systémov od kompaktných ručných homogenizátorov a multisample ultrasonicators až po priemyselné ultrazvukové procesory pre komerčné aplikácie:

Objem šarže prietok Odporúčané Devices
96-dobre / mikrotiter dosky neuv UIP400MTP (UIP400MTP)
10 injekčných liekoviek à 0,5 až 1,5 ml neuv VialTweeter, UP200St
0.01 až 250 ml 5 až 100 ml/min. UP50H
0.01 až 500 ml 10 až 200mL/min UP100H
10 až 2000mL 20 až 400mL/min UP200Ht, UP400St
0.1 až 20L 02 až 4 l / min UIP2000hdT
10 až 100L 2 až 10 l / min UIP4000hdT
neuv 10 až 100 l / min UIP16000
neuv väčšia strapec UIP16000

Kontaktuj nás! / Opýtajte sa nás!

Požiadajte o ďalšie informácie

Prosím, použite formulár nižšie požiadať o ďalšie informácie o ultrazvukové procesory, aplikácie a ceny. Budeme radi diskutovať o vašom procese s vami a ponúknuť vám Ultrazvukový systém spĺňajúci vaše požiadavky!









Vezmite prosím na vedomie naše Zásady ochrany osobných údajov,


Ultrasonic high-shear homogenizers are used in lab, bench-top, pilot and industrial processing.

Hielscher Ultrazvukom vyrába vysokovýkonné ultrazvukové homogenizátory pre miešanie aplikácií, disperzie, emulgácie a extrakcie na laboratórne, pilotné a priemyselné meradle.

Literatúra/referencie



Fakty stojí za to vedieť

Caenorhabditis elegans Caenorhabditis elegans Caenorhabditis elegans Cae

C. elegans je voľne žijúci priehľadný háďatko (škrkavka) s dĺžkou približne 1 mm, ktorý sa živí baktériami (napr. coli) a má relatívne krátky životný cyklus. Pri teplote 20 °C má laboratórny kmeň C. eergans (N2) priemernú životnosť okolo 2 – 3 týždňov a generačnú dobu 3 až 4 dni. Keď C. elegans sú pestované vo veľkom počte, ktoré možno ľahko vykonať za presne kontrolovaných laboratórnych podmienok, môžu byť ľahko preverené pre pracovný princíp nových liekov, rovnako ako ich účinky a interakcie v rámci zložitých molekulárnych procesov v ľudskej choroby. Krátky genóm, krátky životný cyklus a jednoduchá manipulácia v laboratórnych zariadeniach robia z C. eegánov ideálny model organizmu pre výskum, ako je genomika, proteomika, vývojová biológia, výskum chorôb, vývoj liekov atď.
Caenorhabditis elegans červy môžu byť buď muž alebo hermafrodit. Hermafrodity majú mužské aj ženské reprodukčné orgány. Samice červov však neexistujú. Hermafrodity sa môžu buď samoplodiť, alebo sa môžu množiť aj samčie červy. C. eegáni môžu produkovať viac ako 1000 vajec každý deň.
Vzhľadom k tomu, C. elegans je jedným z najjednoduchších organizmov s nervovým systémom, červ hláďa sa používa od roku 1963 ako model organizmu pre výskum. Neuróny nevystrelia a nevyjadruje žiadne sodíkové kanály s napätím. V hermafrodite tento systém obsahuje 302 neurónov, ktorých vzor bol komplexne zmapovaný, v tom, čo je známe ako connectome.
Mnohé z génov v genóme C. elegans majú funkčné náprotivky u ľudí, čo z neho robí veľmi užitočný model pre ľudské choroby a používa sa napríklad na štúdium vývojovej biológie, starnutia a faktorov ovplyvňujúcich dlhovekosť. Okrem toho, C. elegans mutanti poskytujú modely pre mnoho ľudských chorôb, vrátane neurologických porúch (napr. Alzheimerova choroba), vrodené srdcové choroby a ochorenia obličiek.
Tieto faktory urobili z C. eegánov veľmi cenný model pre mnohé výskumné oblasti. V dôsledku toho bol C. elegans prvým multicelulárnym organizmom, ktorý mal celý genóm sekvencovaný. Genóm obsahuje odhadom 20 470 génov kódovacích proteíny. Asi 35% génov C. eegánov má ľudské homológy. Pozoruhodné je, že ľudské gény boli opakovane preukázané, že nahradiť ich C. elegans homológy pri zavádzaní do C. elegans. Naopak, mnoho génov C. elegans môže fungovať podobne ako gény cicavcov.

Životnosť C. eegánov je približne 3 týždne a pozostáva zo šiestich štádií života: embryogenéza (štádium vajíčok), štyri larválne štádiá (L1 až L4) a štádium dospelosti. Háďatká sa vyliahnu z vajec ako larvy L1 zložené z 560 buniek. Rast počas každej larvy fáze dochádza delenie buniek a bunkovej hypertrofie. Cutikulárne molting interpunkčné každý larvy fáze. Ak drsné podmienky prostredia signalizujú vyvíjajúcemu sa červovi, že je nepravdepodobné, že by podmienky podporili plodnosť dospelých, C. elegans môže zmeniť svoj vývoj a vytvoriť alternatívnu larválovú fázu L3, kde larvy idú do dauerovej fázy. V tomto stave sú zvieratá mimoriadne stres-tolerantní a dlho-žíl a môže prežiť tri až deväť mesiacov. Larvy Dauer sa izolujú od priadky tým, že zapečatí ich bukálne aj análne dutiny, zmenšuje ich črevo a zapína genetický program závislý od daf-16/FOXO, ktorý okrem iného vedie k vyjadreniu kutikuly špecifickej pre daf-16/FOXO. (porovnaj Hendersona a kol., 2006)

C. elegans Dauer Larvy

Larvy Dauer sú termínom lariev hlístka, ktoré vstúpili do alternatívnej vývojovej fázy. termín "Larvy Dauer" sa používa najmä pre červy rodiny rabditidov vrátane Caenorhabditis elegans. Slovo "Dauer" je nemeckého pôvodu a znamená "trvanie” v zmysle “časového obdobia". Larvy Dauer idú do typu stázy a môžu prežiť drsné podmienky. Ak a kedy larva vstúpi do dauer fáze je závislá na podmienkach životného prostredia. Larvy Dauer sú vo veľkej miere študované v biológii, pretože larvy ukazujú mimoriadnu schopnosť prežiť drsné prostredie a žiť dlhšiu dobu. Napríklad larvy C. elegans dauer môžu prežiť až štyri mesiace, oveľa dlhšie ako ich priemerná životnosť asi tri týždne počas normálneho reprodukčného vývoja.