PMCA per la rilevazione ad alta produttività di prioni con il sonicatore UIP400MTP
Il sonicatore per piastre multipozzetto UIP400MTP offre una soluzione potente per la preparazione di campioni ad alta produttività nell'amplificazione ciclica del misfolding proteico (PMCA). Grazie alla distribuzione uniforme dell'energia su più pozzetti e al mantenimento di precisi parametri di sonicazione, questo sistema consente l'elaborazione simultanea di numerosi campioni con un'eccezionale riproducibilità. Queste capacità sono fondamentali per ottimizzare la PMCA per rilevare i prioni a basse concentrazioni in campioni biologici difficili, come la saliva, dove gli inibitori del saggio possono oscurare i risultati.
Le malattie da prioni, come la malattia da deperimento cronico (CWD) nei cervidi e la malattia di Creutzfeldt-Jakob (CJD) nell'uomo, sono disturbi neurodegenerativi causati da proteine prioniche mal ripiegate (PrPSc). Queste malattie spesso comportano bassi livelli di prioni infettivi nei fluidi corporei, come saliva, sangue e urina, complicando la diagnosi e la ricerca. La trasmissione orizzontale della CWD attraverso i prioni dispersi nelle matrici ambientali ha implicazioni particolarmente significative per la gestione della fauna selvatica e la salute ecologica. Allo stesso modo, in malattie come la malattia di Creutzfeldt-Jakob, l'amplificazione affidabile di proteine prioniche mal ripiegate da campioni umani è fondamentale per il progresso della diagnostica e la comprensione della progressione della malattia.
Amplificazione del disadattamento proteico ad alta efficienza con il sonicatore ad alta produttività UIP400MTP
L'applicazione di un protocollo PMCA modificato consente di aggirare i comuni inibitori del saggio (ad esempio, le mucine nella saliva) e di ottenere un'elevata sensibilità nell'individuazione di prioni che altrimenti non sarebbero rilevabili o sarebbero ambigui utilizzando tecniche come la conversione indotta dal quaking in tempo reale (RT-QuIC). Questi progressi migliorano la rilevazione dei prioni per varie malattie, rendendo il PMCA uno strumento indispensabile per la ricerca e la diagnostica sui prioni. Il sonicatore per piastre a pozzetti multipli UIP400MTP facilita la sonicazione PMCA ad alta produttività di numerosi campioni in micropiastre (ad esempio piastre a 6, 24 o 96 pozzetti) o fiale in un rack per provette.
Protocollo per l'amplificazione ciclica del disadattamento delle proteine (PMCA) ad alto rendimento
Il seguente protocollo consente di elaborare in modo efficiente un numero elevato di campioni esattamente nelle stesse condizioni per ottenere risultati di ricerca affidabili.
preparazione del campione
Materiale di partenza:
Preparare i campioni mediante:
- Risospendere i pellet di estrazione del sarkosyl nel substrato PMCA.
- Pilotare direttamente omogenati cerebrali o campioni di sangue con semi di prioni.
Substrato:
- Utilizzare un omogenato cerebrale al 10% (wt/vol) preparato da topi transgenici che sovraesprimono la PrPC (ad esempio, topi Tg).
- Omogeneizzare il tessuto cerebrale in:
– 1× PBS.
– 150 mM NaCl.
– 1% Triton X-100. - Conservare il substrato a -80ºC fino al momento dell'uso.
Impostazione del campione in micropiastra o in provetta:
Tubi:
- Aggiungere 90 μL di substrato di omogenato cerebrale e seminare con 10 μL di campione (ad esempio, sangue, omogenato cerebrale o pellet di sarkosyl).
- Posizionare 3 microsfere di teflon (diametro 1,59 mm o 2,38 mm) in ciascuna provetta da 0,2 mL.
- Montare le provette in un rack compatibile con il sonicatore UIP400MTP.
Micropiastra a 6 pozzetti:
- Aggiungere 5 mL di substrato di omogenato cerebrale e seminare con 500 μL di campione per pozzetto.
- Aggiungere 3 microsfere di Teflon in ogni pozzetto.
Procedura PMCA
Collocazione:
Posizionare il rack di provette o la micropiastra a 6 pozzetti nel sonicatore UIP400MTP secondo le istruzioni del produttore.
Programma ciclistico:
Eseguire 144 cicli PMCA come segue:
- Incubazione: 29 minuti e 30 secondi a 37°C.
- Sonicazione: 30 secondi al 60% di ampiezza.
- Monitoraggio della temperatura: Usare il sensore di temperatura collegabile per monitorare la temperatura del campione e programmare l'UIP400MTP a una temperatura massima di 48-50°C.
Turni successivi:
Dopo aver completato il primo ciclo di 144 cicli, trasferire un'aliquota del materiale amplificato:
- Diluire 10 volte in un substrato fresco di omogenato di cervello di topo transgenico.
- Eseguire 96 cicli PMCA per i cicli successivi, mantenendo gli stessi parametri di sonicazione.
- Continuare per il numero di giri desiderato (in genere fino a 5).
Rilevamento della PrPSc
- Digestione con proteinasi K:
– Trattare i campioni con Proteinasi K (50 μg/mL) a 37°C per 1 ora.
– Terminare la digestione aggiungendo il tampone SDS e facendo bollire per 10 minuti. - Analisi del Western Blot:
– Analizzare i campioni digeriti utilizzando:
– 6H4 o anticorpi anti-PrP PRC1.
– Eseguire SDS-PAGE e trasferire su membrane PVDF per la rilevazione.
Elaborazione di più campioni per risultati più robusti
Il sonicatore per piastre multipozzetto UIP400MTP migliora significativamente l'efficienza e la scalabilità dell'amplificazione ciclica del misfolding proteico (PMCA), affrontando la natura tradizionalmente lunga della procedura. Consentendo l'elaborazione simultanea di un massimo di 96 campioni in una piastra da 96 pozzetti, il sistema semplifica i flussi di lavoro PMCA mantenendo condizioni di sonicazione precise e uniformi in tutti i pozzetti. Questa capacità di alta produttività riduce al minimo la manipolazione manuale, riduce le fasi che richiedono molto lavoro e garantisce la riproducibilità, rendendolo uno strumento indispensabile per la ricerca sui prioni. Che si tratti di studi sulla malattia da deperimento cronico o sulla malattia di Creutzfeldt-Jakob, l'UIP400MTP facilita gli studi su larga scala con maggiore efficienza, consentendo ai ricercatori di soddisfare le esigenze delle moderne applicazioni diagnostiche e scientifiche.
Letteratura / Riferimenti
- FactSheet UIP400MTP Multi-well Plate Sonicator – Non-Contact Sonicator – Hielscher Ultrasonics
- Lauren E. Cruchley-Fuge, Martin R. Jones, Ossama Edbali, Gavin R. Lloyd, Ralf J. M. Weber, Andrew D. Southam, Mark R. Viant (2024): Automated extraction of adherent cell lines from 24-well and 96-well plates for multi-omics analysis using the Hielscher UIP400MTP sonicator and Beckman Coulter i7 liquid handling workstation. Metabomeeting 2024, University of Liverpool, 26-28th November 2024.
- De Oliveira A, Cataneli Pereira V, Pinheiro L, Moraes Riboli DF, Benini Martins K, Ribeiro de Souza da Cunha MDL (2016): Antimicrobial Resistance Profile of Planktonic and Biofilm Cells of Staphylococcus aureus and Coagulase-Negative Staphylococci. International Journal of Molecular Sciences 17(9):1423; 2016.
- Martins KB, Ferreira AM, Pereira VC, Pinheiro L, Oliveira A, Cunha MLRS (2019): In vitro Effects of Antimicrobial Agents on Planktonic and Biofilm Forms of Staphylococcus saprophyticus Isolated From Patients With Urinary Tract Infections. Frontiers in Microbiology 2019.
- Dreyer J., Ricci G., van den Berg J., Bhardwaj V., Funk J., Armstrong C., van Batenburg V., Sine C., VanInsberghe M.A., Marsman R., Mandemaker I.K., di Sanzo S., Costantini J., Manzo S.G., Biran A., Burny C., Völker-Albert M., Groth A., Spencer S.L., van Oudenaarden A., Mattiroli F. (2024): Acute multi-level response to defective de novo chromatin assembly in S-phase. Molecular Cell 2024.
- Mochizuki, Chika; Taketomi, Yoshitaka; Irie, Atsushi; Kano, Kuniyuki; Nagasaki, Yuki; Miki, Yoshimi; Ono, Takashi; Nishito, Yasumasa; Nakajima, Takahiro; Tomabechi, Yuri; Hanada, Kazuharu; Shirouzu, Mikako; Watanabe, Takashi; Hata, Kousuke; Izumi, Yoshihiro; Bamba, Takeshi; Chun, Jerold; Kudo, Kai; Kotani, Ai; Murakami, Makoto (2024): Secreted phospholipase PLA2G12A-driven lysophospholipid signaling via lipolytic modification of extracellular vesicles facilitates pathogenic Th17 differentiation. BioRxiv 2024.
- Cosenza-Contreras M, Seredynska A, Vogele D, Pinter N, Brombacher E, Cueto RF, Dinh TJ, Bernhard P, Rogg M, Liu J, Willems P, Stael S, Huesgen PF, Kuehn EW, Kreutz C, Schell C, Schilling O. (2024): TermineR: Extracting information on endogenous proteolytic processing from shotgun proteomics data. Proteomics. 2024.
Sonicatore per micropiastre UIP400MTP per una PMCA ad alto rendimento
Domande frequenti
Cosa sono i prioni?
I prioni sono proteine mal ripiegate in grado di indurre un ripiegamento anomalo delle normali proteine cellulari, in particolare nel cervello. A differenza di batteri e virus, i prioni sono privi di acidi nucleici e si propagano attraverso un meccanismo di auto-templazione, portando a malattie neurodegenerative progressive come la malattia di Creutzfeldt-Jakob, l'encefalopatia spongiforme bovina (malattia della mucca pazza) e la scrapie negli ovini. La loro resistenza ai processi di sterilizzazione standard sottolinea la loro patogenicità unica e pone sfide significative in ambito medico e di ricerca.
Che cos'è la tecnica PMCA?
La Protein Misfolding Cyclic Amplification (PMCA) è una tecnica di laboratorio utilizzata per amplificare le proteine prioniche mal ripiegate (PrP^Sc) in vitro. Imita la conversione della normale proteina prionica cellulare (PrP^C) nella sua forma infettiva mal ripiegata (PrP^Sc), caratteristica delle malattie da prioni. Il processo prevede cicli di incubazione e sonicazione per accelerare l'aggregazione della PrP^Sc, rendendolo uno strumento potente per rilevare bassi livelli di prioni.
Quale disfunzione proteica causa la malattia di Creutzfeldt Jakob?
La malattia di Creutzfeldt-Jakob (CJD) è causata da un errato ripiegamento della proteina prionica (PrP). L'isoforma normale (PrPC) adotta una conformazione anomala, ricca di fogli β (PrPSc) che diventa infettiva e forma aggregati amiloidi nel cervello, portando alla neurodegenerazione.
Che cos'è l'amplificazione ciclica del misfolding proteico dei prioni infettivi?
La Protein Misfolding Cyclic Amplification (PMCA) è un metodo per amplificare la forma infettiva dei prioni (PrPSc) incubando ripetutamente la PrP normaleC con piccole quantità di PrPSc. Durante ogni ciclo, la PrPSc catalizza il misfolding della PrPCe la sonicazione frammenta gli aggregati, creando più siti di semina. Questo imita la replicazione dei prioni in vivo e consente di rilevare i prioni in modo sensibile nei campioni biologici.
Cosa provoca l'erosione della PrP?
Il misfolding della PrP nella PrP patogenaSc Il modulo può essere attivato da:
- Misfolding spontaneo nelle malattie sporadiche da prioni.
- Mutazioni genetiche nel gene PRNP (ad esempio, malattie da prioni familiari).
- Esposizione a PrP infettivaSc attraverso alimenti contaminati, procedure mediche o altri mezzi.
- Fattori ambientali o strutturali come pH, ioni metallici o cofattori che destabilizzano la PrPC.
Che cos'è il test RT-QuIC?
La conversione indotta dal quaking in tempo reale (RT-QuIC) è un test diagnostico altamente sensibile per le malattie da prioni. Rileva la PrPSc amplificando la sua capacità di convertire la PrP ricombinanteC in aggregati mal ripiegati. Il test utilizza la fluorescenza per rilevare la formazione di fibrille amiloidi, rendendolo utile per diagnosticare malattie come la MCJ nel liquido cerebrospinale (CSF) o in altri tessuti.
Hielscher Ultrasonics produce omogeneizzatori a ultrasuoni ad alte prestazioni da laboratorio a dimensioni industriali.

