Priprema plazmida pomoću ultrazvuka
Ultrasonication je pouzdana tehnika za fragmentiranje plazmid DNA. Precizno kontrolirana amplituda, pulsirajući način i kontrola temperature najvažnije su značajke ultrasonicatora za fragmentaciju plazmida koja se ne oštećuje. Osim toga, uporaba određenih sredstava pomaže u zaštiti od razgradnje plazmida. Hielscher Ultrasonics nudi različita rješenja za kontroliranu fragmentaciju plazmida iz pojedinačnih bočica, istovremeno ultrazvukom brojnih uzoraka, kao i multi-well ploča. Saznajte više o uspješnoj ultrazvučnoj fragmentaciji plazmida!

The UIP400MTP omogućuje precizno kontroliranu ultrazvukom multi-well ploča. Jedna od primjena UIP400MTP-a je fragmentacija plazmidne DNA kako bi se dobili fragmenti posebno ciljane duljine.
Plasmid šišanje pomoću ultrazvuka
Kada su uzorci DNK podvrgnuti ultrazvučnim valovima, ultrazvučno generirane vibracije stvaraju akustičnu kavitaciju u tekućini koja mehaničkim silama striže ili razbija molekule DNA visoke molekularne težine. Ultrazvukom je najčešće korištena metoda za eksperimente masovnog smicanja DNA, uključujući primjene, kao što je Chromatin Immunoprecipitation (ChIP), za koje su male veličine fragmenata apsolutno ključne za postizanje visoke rezolucije. (usp. Tseng i dr., 2012)
PlazmidSKA DNA (pDNA) je specifičan oblik DNA, karakteriziran oblikom prstena i nalazi se u bakterijama i nekim eukariotima.
Supercoiled pDNA je željeni oblik plazmidne DNA jer pokazuje najbolje rezultate u procesima down-streama kao što su automatizirano sekvenciranje i transfekcija. Ultrasonication je pogodan za fragment pDNA, uključujući supercoiled pDNA, uspješno.
(2008) je pokazala da je ultrazvukom plazmida, za koju se zna da fragmentira supercoiled DNA, učinkovit način za poboljšanje sekvence phred20 duljina čitanja do te mjere da se ne razlikuju značajno od kontrolnog predloška Beckmana Coultera ili enzimski lineariziranih plazmida.
- Precizno kontrolirano
- Rezultati koji se mogu reproducirati
- Podesivo za ciljane duljine fragmenata DNA
- kontrola temperature
- Skalabilno na bilo koju veličinu uzorka
Upotreba Plasmid vektora
Plazmidi se često koriste kao alati za kloniranje, prijenos i manipuliranje genima. Kada se plazmidi koriste eksperimentalno u te svrhe, nazivaju se vektori. Fragmenti DNA ili geni mogu se umetnuti u vektor plazmida, stvarajući takozvani rekombinantni plazmid. Vektori plazmida koriste se kao vozila za tjeranje rekombinantne DNK u ćeliju domaćina i ključna su komponenta molekularnog kloniranja.
“Ne-virusni vektori opsežno se proučavaju zbog njihove potencijalne uporabe u genskoj terapiji za liječenje raznih kompliciranih bolesti. Ne-virusni vektori štite plazmidnu DNK od fizičke, kemijske i enzimske razgradnje i isporučuju molekulu DNA na ciljno mjesto. Na primjer, kationski liposomi, kitozan i druge pozitivno nabijene nanočestice tvore komplekse s plazmidnom DNA kroz elektrostatičke interakcije. Međutim, lako oblikovani kationski liposomi/plazmidni DNA kompleksi relativno su veliki (tj. 300–400 nm) i heterogeni u prirodi što ih čini teškim za uporabu u farmaceutskim primjenama. Veliki i heterogeni plazmid DNA / liposomi, plazmid DNA / aerosoli i kompleksi plazmida DNA / peptida mogu se svesti na manje i homogene čestice pomoću ultrazvuka.” (Sarker i dr., 2019)
Istaknuti primjer za uporabu vektora plazmida je CRISPR–Cas9. CRISPR-Cas9 sustav obično se isporučuje stanicama kao jedan veliki plazmid ili više manjih plazmida koji kodiraju ciljni slijed, CRISPR vodič i Cas9.
Ultrazvučna priprema PLGA nanočestica napunjenih DNA nanočesticama nanoprecipitacijom
(2020) koristila je poli(mliječno-ko-glikolnu kiselinu) (PLGA) kako bi se stvorio nosač nanočestica za isporuku modela CRISPR-Cas9 plazmida u primarne makrofage izvedene iz koštane srži. Za nanoprecipitaciju PLGA nanočestica korištena je PLGA s dvije različite krajnje skupine (esterske i aminske skupine) s ciljem da pozitivno nabijene aminske krajnje kape povećaju učinkovitost enkapsulacije i opterećenje zbog interakcije naboja između nje i negativno nabijene okosnice DNA. U 50 mL polipropilenske konusne centrifuge cijevi, 100 mg Pluronic F127 otopljeno je u 20 mL autoklaviranoj DI vodi miješanjem vrtloga nakon čega je uslijedilo 30 min nježne ultrazvukom pomoću ultrazvučne kupke (pogledajte CupHorn). Dodana je autoklavirana magnetska šipka za miješanje i otopina je miješana pri 600 o / min tijekom 30 minuta dok su ostala rješenja napravljena. Plastični laboratorijski softver korišten je umjesto staklenog posuđa kako bi se smanjila nespecifična adsorpcija DNA. Otopine PLGA otopljene u DMF (44,48 mg/ ml) i TIPS pentacen otopljen u THF (0,667 mg/ml) izrađene su odvojeno. PLGA je ostavljena da se quiescently mokri u DMF-u 30 minuta prije nego što je sonificirana 30 minuta.
- Vađenje DNK
- Enkapsulacija DNA
- Disperzija DNK presvučene nanočesticama
- Isporuka plazmidne DNK u stanice
Zaštita DNA plazmida tijekom ultrazvukom
DNK, uključujući plazmide i supercoiled plazmide, vrlo su osjetljiva degradacija. Sve dostupne metode fragmentacije poznate su po određenim nedostacima. Ultrazvučna fragmentacija DNA jedna je od preferiranih metoda jer kontrolirana ultrazvukom u kombinaciji sa zaštitnim mjerama omogućuje smanjenje oštećenja DNA niti izazvanih smicama i toplinom.
Osim postavki niske amplitude, načina pulsiranja i kontrole temperature tijekom ultrazvučnog smicanja DNA, upotreba određenih sredstava pokazala je značajan zaštitni učinak protiv razgradnje DNA. Na primjer, razni polimeri, peptidi i lipidi štite plazmid DNK tijekom ultrazvuka.

Stabilnost DNA plazmida i nanokompleksa plazmida DNA / IL protiv ultrazvučnog stresa smicanja istražena je pomoću testa elektroforeze agaroznog gela. I plazmid DNA i plazmid DNA / IL nanokompleksi bili su podvrgnuti ultrazvučnom stresu smicanja za različite vremenske točke. PlazmidSKA DNK bila je izložena ultrazvučnom stresu smicanja 0, 10, 20, 30 i 40 minuta. Međutim, nanokompleksi plazmid DNA / IL bili su izloženi ultrazvučnom stresu smicanja 0, 10, 20, 30, 40, 60, 90 i 120 minuta.
(studija i slika: ©Sarker i sur., 2019.)
(2019) pokazala je da kada su nanostrukture plazmida DNA / ionske tekućine (pDNA / IL) bile podvrgnute ultrazvučnom stresu smicanja za 0, 10, 20, 30, 40, 60, 90 i 120 min i složene s komercijalno dostupnim kationskim sredstvom za isporuku gena lipofektaminom, postotak fluorescentnih pozitivnih stanica bio je 80%, 98%, 97%, 85%, 78%, 65%, 65%, odnosno 50% (vidi grafikon u nastavku). Postotak fluorescentnih pozitivnih stanica povećao se kada su nanostrukture bile izložene ultrazvučnom stresu smicanja 10 i 20 minuta, a nakon toga su se polako smanjivale.

Utjecaj ionske tekućine [Bmim][PF6] na isporuku plazmidne DNA COS7 stanicama. Nanokompleksi plazmid DNA / IL (ionska tekućina) bili su podvrgnuti ultrazvučnom stresu smicanja do 120 minuta i složeni s LA-om prije isporuke u COS7 stanice. Podaci pokazuju prosječan broj (%) GFP pozitivnih HeLa stanica izbrojanih u 10 različitih mikroskopskih polja, a eksperiment je proveden više puta u tri različita dana. (Studija i grafikon: ©Sarker i dr., 2019))

Plazmid DNK može se zaštititi dodavanjem sredstva prije ultrazvučne fragmentacije: Degradacija golog pDNA (A) izazvana ultrazvukom i pDNA formulirana s 1,5 mM CaCl2 i 20 % (v / v) t-butanol (B)
Uzorci su sonificirani sondom od 20 W do 120-ih godina, kao što je naznačeno na vrhu svake trake. Lane H odgovara markeru Hyperladder I ™️. Naznačeni su plazmidni pojasevi OC-a i SC-a.
(studija i slike: ©Wu et al., 2009)
Ultrazvučni lizatni pripravak
Ultrazvučni stanična liza protokol
Započnite s obogaćenim uzorkom stanica koji je pripremljen metodom odvajanja stanica (npr. Odvajanje imunomagnetskih stanica, sortiranje stanica aktiviranih fluorescencijom (FACS), centrifugacija gradijenta gustoće, izolacija stanica imunodenznosti).
Uzorci stanica moraju pokazati volumen pufera lize koji je prikladan za eksperimentalni cilj i sonda tipa ultrasonicator.
Preferiraju se hipotonski puferi jer poboljšavaju ultrazvučnu staničnu lizu. Važno je da se aditivi i koncentracija soli koriste na odgovarajući način.
Odaberite svoj ultrazvučni uređaj za lizu: Za neizravnu ultrazvukom bočica preporučuju se VialTweeter ili CupHorn. Za multiwell-ploče, UIP400MTP je idealan ultrasonicator. I klasična sonda tipa ultrazvukom, ultrazvučni homogenizator kao UP100H ili UP200Ht s mikro-vrhom su najprikladniji.
Protokol za ultrazvukom tipa sonde: Stavite sondu ultrasonicator u volumen uzorka u mikrocentrifuge cijevi i sonificirajte oko 10 sekundi. Ovisno o uzorku DNK, ultrazvukom se može ponoviti još jedan ili dva puta. Potreban ultrazvučni unos energije (Ws/mL) ovisi o viskoznosti uzorka i tipu DNA. Hlađenje putem ledene kupke i pulsiranja načina ultrazvuka pomaže u sprječavanju toplinskog razgradnje uzorka.
Nakon ultrazvučne lize, uzorak se centrifugira kako bi se odvojili ostaci peleta (koji sadrže nelizirane stanice, jezgre i nelizirane organele)
Ako se uzorak ne obradi odmah dalje, može se pohraniti na odgovarajućoj temperaturi kako bi se očuvala njegova održivost.
Ultrasonicators za fragmentaciju DNA
Hielscher Ultrasonics nudi razne ultrazvučne platforme za DNK, RNA, i kromatina fragmentacije. Ove različite platforme uključuju ultrazvučne sonde (sonotrodes), neizravne sonication rješenja za istovremenu pripremu uzoraka više cijevi ili više-bušotinskih ploča (npr. Ploče od 96 bušotina, mikrotiter ploče), sonoreactors, i ultrazvučni cuphorns. Sve platforme za sijeknje DNA pokreću se frekvencijski podešenim ultrazvučnim procesorima visokih performansi, koji se precizno mogu kontrolirati i pružiti ponovljive rezultate.
Ultrazvučni procesori za bilo koji broj i veličinu uzorka
S Hielscherovim višeuzornim ultrasonicators VialTweeter (za do 10 epruveta) i UIP400MTP (za mikroploče / multiwell ploče) postaje lako moguće smanjiti vrijeme obrade uzorka zbog intenzivne i precizno upravljive ultrazvuka uz dobivanje željene raspodjele i prinosa veličine fragmenta DNA. Ultrazvučna fragmentacija DNA čini korake pripreme plazmida učinkovitim, pouzdanim i skalabilnim. Protokoli se mogu linearno skalirati s jednog na brojne uzorke primjenom stalnih ultrazvučnih parametara.
Sonde ultrasonicators s jednim do pet prstiju idealni su za pripremu manjih brojeva uzoraka. Hielscherovi laboratorijski ultrasonicators su dostupni s različitim razinama snage tako da možete odabrati idealan ultrazvučni disruptor za svoju DNK povezanu primjenu.

Ultrazvučna jedinica za pripremu više uzoraka VialTweeter omogućuje istovremenu sonikaciju do 10 bočica. S uređajem za stezanje VialPress, do 4 dodatne cijevi mogu se pritisnuti na prednju stranu radi intenzivne sonikacije.
Točna kontrola procesa
Precizno kontrolirane postavke ultrazvukom su presudne jer iscrpno sonifikacija može uništiti DNA, RNA i kromatin, ali neadekvatno ultrazvučno šišanje rezultira predugim fragmentima DNA i kromatina. Hielscher digitalni ultrasonicators može se lako postaviti na precizan sonication parametar. Specifične postavke ultrazvukom također se mogu spremiti kao programirana postavka za brzo ponavljanje istog postupka.
Sva sonicacija automatski se protokolira i pohranjuje kao CSV datoteka na ugrađenoj SD kartici. To omogućuje točnu dokumentaciju izvedenih ispitivanja i omogućuje jednostavnu reviziju ultrazvukom.
Putem daljinskog upravljača preglednika, svi digitalni ultrasonicators mogu raditi i pratiti putem bilo kojeg standardnog preglednika. Instalacija dodatnog softvera nije potrebna, jer je LAN veza vrlo jednostavna plug-n-play instalacija.
Najveća prilagođenost korisnicima tijekom ultrazvučne pripreme DNA
Svi Hielscher ultrasonicators su dizajnirani za pružanje ultrazvuka visokih performansi, dok je u isto vrijeme uvijek vrlo jednostavan za korištenje i jednostavan za rukovanje. Sve su postavke dobro strukturirane u jasnom izborniku, kojem se lako može pristupiti putem zaslona osjetljivog na dodir u boji ili daljinskog upravljača preglednika. Pametni softver s programabilnim postavkama i automatskim snimanjem podataka osigurava optimalne postavke ultrazvukom za pouzdane i ponovljive rezultate. Čisto i jednostavno sučelje izbornika pretvara Hielscher ultrasonicators u jednostavne i učinkovite uređaje.
Tablica u nastavku daje vam naznaku približne sposobnosti obrade naših laboratorijskih ultrasonicators za staničnu lizu i fragmentaciju DNA:
Batch Volumen | Protok | Preporučeni uređaji |
---|---|---|
ploče s više bušotina | N/a | UIP400MTP |
bočice, mala čaša | N/a | Ultrazvučno cuphorn |
do 10 bočica | N/a | VialTweeter |
1 do 500 mL | 10 do 200 mL / min | UP100H |
10 do 2000 ml | 20 do 400 mL / min | Uf200 ः t, UP400St |
Kontaktirajte nas! / Pitajte nas!
Književnost / Reference
- Mark D. Thompson, Kelly G. Aukema, Dana M. O’Bryan, Stephen D. Rader, Brent W. Murray (2008): Plasmid sonication improves sequencing efficiency and quality in the Beckman Coulter CEQ system. BioTechniques 2008, 45:3, 327-329
- Fykse, Else; Olsen, Jaran; Skogan, Gunnar (2003): Application of sonication to release DNA from Bacillus cereus for quantitative detection by real-time PCR. Journal of microbiological methods 55, 2003. 1-10.
- Ming L. Wu; Sindélia S. Freitas; Gabriel A. Monteiro; Duarte M. F. Prazeres; José A. L. Santos (2009). Stabilization of naked and condensed plasmid DNA against degradation induced by ultrasounds and high-shear vortices. Biotechnology Applied Biochemistry 53(4), 2009.
- Sarker, Satya Ranjan; Ball, Andrew S.; Bhargava, Suresh Kumar; Soni., Sarvesh K. (2019): Evaluation of plasmid DNA stability against ultrasonic shear stress and its in vitro delivery efficiency using ionic liquid [Bmim][PF6]. RSC Advances 9, 2019. 29225-29231.
- Miguel Larguinho, Hugo M. Santos, Gonçalo Doria, H. Scholz, Pedro V. Baptista, José L. Capelo (2010): Development of a fast and efficient ultrasonic-based strategy for DNA fragmentation. Talanta, Volume 81, Issue 3, 2010. 881-886.
- Julie Ann Wyber; Julie Andrews; Antony D’Emanuele (1997): The Use of Sonication for the Efficient Delivery of Plasmid DNA into Cells. Pharmaceutical Research 14(6), 1997. 750–756.
Činjenice koje vrijedi znati
Što su Plasmidi?
Plazmid je mala kružna molekula DNA koja je fizički odvojena od kromosomske DNA i samostalno se replicira. Plazmidi su često povezani s genima koji doprinose opstanku organizma i daju specifične prednosti, npr. otpornost na antibiotike. Plazmidi se najčešće nalaze kao male kružne, dvolančane molekule DNA u bakterijama; međutim, plazmidi su ponekad prisutni u arhejama i eukariotskim organizmima. Plazmidi su važni alati u molekularnoj biologiji, genetici, biokemiji i znanosti o životu. Poznati kao vektori u genetskom inženjeringu, plazmidi se koriste za repliciranje ili izražavanje određenih gena. Ciljana izmjena vektora naziva se vektorski dizajn.
Analiza GFP-a u istraživanju stanica
Zeleni fluorescentni protein (GFP) svestran je biološki marker za praćenje fizioloških procesa, vizualizaciju lokalizacije proteina i otkrivanje transgene ekspresije in vivo. GFP se može pobuditi laserskom linijom od 488 nm i optimalno se otkriva na 510 nm.

Hielscher Ultrasonics proizvodi ultrazvučne homogenizatore visokih performansi Laboratorija do industrijske veličine.