Како користити Hielscher ултразвучне хомогенизаторе ткива
Пре пречишћавања или карактеризације унутарћелијских макромолекула као што су протеини, органеле, ензими или активна једињења, неопходно је применити ефикасну методу за лизу ткива и дезинтеграцију ћелија. Ултразвучни третман је веома ефикасна техника за припрему ћелија, којом се унутарћелијски материјал брзо ослобађа у пуферски раствор. Механичке силе смицања које настају током ултразвучне хомогенизације ткива могу се прецизно подесити према конкретном материјалу. То омогућава благу припрему меких ткива или смицање ДНК/РНК блажом соникацијом, као и интензивну ултразвучну кавитацију за деструктивно разарање ћелија (нпр. код нанохлоропсиса и квасца).
У наставку је дат избор ткива, ћелија и другог биолошког материјала са препорученим протоколима соникације и смерницама за ефикасну припрему узорака помоћу ултразвучног хомогенизатора ткива или разарача ћелија.
Лабораторијски ултразвучни уређај UP200Ht (200W, 26kHz) за припрему узорака
Како припремити лизате, хомогенате и екстракте из биолошких материјала
По абецедном реду:
Ацетобактер субоксиданс
Актиномицес
Активност ALP и LDH
Примена ултразвука:
Одређивање активности ALP и LDH и садржаја протеина
Замрзнути узорци ћелија одмрзавани су 20 мин. на леду, након чега је спроведена лиза ћелија помоћу PBS који садржи 1% Triton X-100 током 50 мин. на леду. Током лизе ћелија сваки узорак је соникован 1 мин. при 80 W помоћу ултразвучног процесора UP100H (Hielscher Ultrasonics).
Препоручени уређај:
UP100H
Референца/истраживачки рад:
Bernhardt, A. et al. (2008): Минерализовани колаген – вештачки ванћелијски коштани матрикс – побољшава остеогену диференцијацију стромалних ћелија коштане сржи.
Одређивање активности ALP и LDH и садржаја протеина
Замрзнути узорци ћелија одмрзавани су 20 мин. на леду, након чега је спроведена лиза ћелија помоћу PBS који садржи 1% Triton X-100 током 50 мин. на леду. Током лизе ћелија сваки узорак је соникован 1 мин. при 80 W помоћу ултразвучног процесора UP100H (Hielscher Ultrasonics).
Препоручени уређај:
UP100H
Референца/истраживачки рад:
Bernhardt, A. et al. (2008): Минерализовани колаген – вештачки ванћелијски коштани матрикс – побољшава остеогену диференцијацију стромалних ћелија коштане сржи.
Аморфни трикалцијум-фосфат (ATCP)
Примена ултразвука:
Наночестице ATCP, које су изузетно реактиван прекурсор за формирање хидроксиапатита, дисперговане су у хлороформу који садржи 5 % (w/w) Tween20 у односу на PLGA, помоћу Hielscher ултразвучног уређаја UP400S при 320W током 5 мин., уз примену пулсних интервала (50%) како би се омогућила релаксација честица.
Препоручени уређај:
UP400S
Референца/истраживачки рад:
Mohn, Dirk; Ege, Duygu; Feldman, Kirifl; Schneider, Oliver D.; Imfeld, Thomas; Boccaccini, Aldo R. (2014): Сферна пунила од наночестица калцијум-фосфата омогућавају прераду полимера за израду уређаја за фиксацију костију са високом биоактивношћу. Слободна библиотека 01 May 2010. 21 January 2014.
Наночестице ATCP, које су изузетно реактиван прекурсор за формирање хидроксиапатита, дисперговане су у хлороформу који садржи 5 % (w/w) Tween20 у односу на PLGA, помоћу Hielscher ултразвучног уређаја UP400S при 320W током 5 мин., уз примену пулсних интервала (50%) како би се омогућила релаксација честица.
Препоручени уређај:
UP400S
Референца/истраживачки рад:
Mohn, Dirk; Ege, Duygu; Feldman, Kirifl; Schneider, Oliver D.; Imfeld, Thomas; Boccaccini, Aldo R. (2014): Сферна пунила од наночестица калцијум-фосфата омогућавају прераду полимера за израду уређаја за фиксацију костију са високом биоактивношћу. Слободна библиотека 01 May 2010. 21 January 2014.
Антоцијанини
Примена ултразвука:
Антоцијанини: диглукозиди, моноглукозид, ациловани моноглукозиди и ациловани диглукозиди пеонидина, малвидина, цијанидина, петунидина и делфинидина: екстракција из покожице грожђа за 40 сек.; pH 5,0; однос материјала и растварача за екстракцију 1:6.
Препоручени уређај:
UP100H
Антоцијанини: диглукозиди, моноглукозид, ациловани моноглукозиди и ациловани диглукозиди пеонидина, малвидина, цијанидина, петунидина и делфинидина: екстракција из покожице грожђа за 40 сек.; pH 5,0; однос материјала и растварача за екстракцију 1:6.
Препоручени уређај:
UP100H
Антрахинони
Семенке кајсије
Примена ултразвука:
Ултразвучни предтретман пре екстракције уља из семена Jatropha curcas L. ради побољшања екстракције.
Препоручени уређај:
UP400S
Ултразвучни предтретман пре екстракције уља из семена Jatropha curcas L. ради побољшања екстракције.
Препоручени уређај:
UP400S
Артемизија селенгензис Турч
Примена ултразвука:
Екстракција рутина (1,0g самлевеног узорка у 30 mL метанола) при 25°C за 5–10 мин.
Препоручени уређај:
UP50H
Екстракција рутина (1,0g самлевеног узорка у 30 mL метанола) при 25°C за 5–10 мин.
Препоручени уређај:
UP50H
Аспергилус флавус
Примена ултразвука:
Ултразвучна инактивација Aspergillus flavus у Сабуроовој хранљивој подлози
Препоручени уређај:
UP200S
Ултразвучна инактивација Aspergillus flavus у Сабуроовој хранљивој подлози
Препоручени уређај:
UP200S
Б. сферикус / Бацилус сферикус
Споре Bacillus anthracis sterne 34F2
Примена ултразвука:
Ултразвучно уклањање спора Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 и Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Употреба 150 ppm натријум-хипохлорита заједно са ултразвуком довела је до инактивације спора.
Препоручени уређај:
UP200S при амплитуди од 100%
Референца/истраживачки рад:
Pamarthi, S.R. et al.: Ефикасност ултразвука у уклањању спора Bacillus spp уграђених у сложене матриксе хране прилепљене за различите контактне површине.
Ултразвучно уклањање спора Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 и Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Употреба 150 ppm натријум-хипохлорита заједно са ултразвуком довела је до инактивације спора.
Препоручени уређај:
UP200S при амплитуди од 100%
Референца/истраживачки рад:
Pamarthi, S.R. et al.: Ефикасност ултразвука у уклањању спора Bacillus spp уграђених у сложене матриксе хране прилепљене за различите контактне површине.
Споре Bacillus cereus ATCC 21281
Примена ултразвука:
Ултразвучно уклањање спора Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 и Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Примена 150 ppm натријум-хипохлорита заједно са ултразвуком довела је до инактивације спора.
Препорука уређаја:
UP200S при амплитуди од 100%
Референца/ научни рад:
Pamarthi, S.R. et al.: Ефикасност ултразвука у уклањању нечистоћа које садрже споре Bacillus spp уграђене у сложене прехрамбене матрице причвршћене за различите контактне површине.
Ултразвучно уклањање спора Bacillus anthracis sterne 34F2, Bacillus cereus ATCC 21281 и Bacillus thuringiensis ATCC 33680. Примена 150 ppm натријум-хипохлорита заједно са ултразвуком довела је до инактивације спора.
Препорука уређаја:
UP200S при амплитуди од 100%
Референца/ научни рад:
Pamarthi, S.R. et al.: Ефикасност ултразвука у уклањању нечистоћа које садрже споре Bacillus spp уграђене у сложене прехрамбене матрице причвршћене за различите контактне површине.
Бацилус субтилис
Примена ултразвука:
Ултразвук велике снаге и ниске фреквенције у малим запреминама бактеријске суспензије доводи до непрекидног смањења броја бактеријских ћелија, односно преовлађује брзина уништавања. У већим запреминама соникација доводи до почетног пораста броја ћелија, што указује на разбијање накупина бактерија, али се након тог почетног пораста број ћелија смањује како се разбијање накупина завршава, а брзина уништавања постаје значајнија.
Препорука уређаја:
UP200St
Референца/ научни рад:
Joyce, E.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P.; Mason, T. J. (2003): Развој и процена ултразвука за третман бактеријских суспензија. Студија утицаја фреквенције, снаге и времена соникације на култивисане врсте рода Bacillus. Ultrason. Sonochem. 10/2003. стр. 315–318.
Ултразвук велике снаге и ниске фреквенције у малим запреминама бактеријске суспензије доводи до непрекидног смањења броја бактеријских ћелија, односно преовлађује брзина уништавања. У већим запреминама соникација доводи до почетног пораста броја ћелија, што указује на разбијање накупина бактерија, али се након тог почетног пораста број ћелија смањује како се разбијање накупина завршава, а брзина уништавања постаје значајнија.
Препорука уређаја:
UP200St
Референца/ научни рад:
Joyce, E.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P.; Mason, T. J. (2003): Развој и процена ултразвука за третман бактеријских суспензија. Студија утицаја фреквенције, снаге и времена соникације на култивисане врсте рода Bacillus. Ultrason. Sonochem. 10/2003. стр. 315–318.
Алфа-амилаза јечма
Примена ултразвука:
Подстицање или инхибиција активности алфа-амилазе јечма: Узорак (10 g семена јечма) диспергован је у 80 ml воде из водовода уз директну соникацију, при ултразвучном интензитету од 20, 60 и 100% амплитуде, радном циклусу од 50% и уз додатно мешање. Сонотрода је уроњена око 9 mm у раствор. Раствор је обрађиван при константној температури од 30C° током 5, 10 и 15 min.
Препорука уређаја:
UP200S, амплитуде: 20, 60 и 100%; радни циклус од 50%; сонотрода S3, 30C°.
Референца/ научни рад:
Yaldagard et al. (2008): Утицај ултразвучне снаге на активност алфа-амилазе јечма услед третмана семена после сетве
Подстицање или инхибиција активности алфа-амилазе јечма: Узорак (10 g семена јечма) диспергован је у 80 ml воде из водовода уз директну соникацију, при ултразвучном интензитету од 20, 60 и 100% амплитуде, радном циклусу од 50% и уз додатно мешање. Сонотрода је уроњена око 9 mm у раствор. Раствор је обрађиван при константној температури од 30C° током 5, 10 и 15 min.
Препорука уређаја:
UP200S, амплитуде: 20, 60 и 100%; радни циклус од 50%; сонотрода S3, 30C°.
Референца/ научни рад:
Yaldagard et al. (2008): Утицај ултразвучне снаге на активност алфа-амилазе јечма услед третмана семена после сетве
Науплијуси витичара
Примена ултразвука:
Разарање ћелија/ уништавање мезозоопланктона: соникацијом при следећим условима, са четири протока (200, 400, 520 и 800 lh-1) и четири амплитуде (25, 50, 75 и 100 %), постигнут је удео уништених организама између 61 и 97 %.
Препорука уређаја:
UIP2000hd
Референца/ научни рад:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ултраљубичаста светлост, ултразвук и водоник-пероксид као поступци третмана баластних вода – експерименти са мезозоопланктоном у бочатој води ниског салинитета.
Разарање ћелија/ уништавање мезозоопланктона: соникацијом при следећим условима, са четири протока (200, 400, 520 и 800 lh-1) и четири амплитуде (25, 50, 75 и 100 %), постигнут је удео уништених организама између 61 и 97 %.
Препорука уређаја:
UIP2000hd
Референца/ научни рад:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ултраљубичаста светлост, ултразвук и водоник-пероксид као поступци третмана баластних вода – експерименти са мезозоопланктоном у бочатој води ниског салинитета.
Сојеви бифидобактерија: B. breve ATCC 15700, B. animalis subsp. lactis (BB-12), B. longum (BB-46)
Примена ултразвука:
Разарање бактеријских ћелија и ослобађање ß-галактозидазе из сојева бифидобактерија: B. breve ATCC 15700, B. animalis subsp. Lactis (BB-12), B. longum (BB-46): 100 mL пастеризованог млека помешаног са бактеријском културом третирано је ултразвуком. Кавитација изазива разарање бактеријских ћелија и истовремено ослобађање ß-галактозидазе.
Препорука уређаја:
UIP1000hd: амплитуда: 10%, снага: 80W, амплитуда: 100%, снага: 200W; сонотрода BS2d34; 15–30 min.
Референца/ научни рад:
Hung et al. (2009): Ферментација јогурта са пробиотицима потпомогнута ултразвуком.
Разарање бактеријских ћелија и ослобађање ß-галактозидазе из сојева бифидобактерија: B. breve ATCC 15700, B. animalis subsp. Lactis (BB-12), B. longum (BB-46): 100 mL пастеризованог млека помешаног са бактеријском културом третирано је ултразвуком. Кавитација изазива разарање бактеријских ћелија и истовремено ослобађање ß-галактозидазе.
Препорука уређаја:
UIP1000hd: амплитуда: 10%, снага: 80W, амплитуда: 100%, снага: 200W; сонотрода BS2d34; 15–30 min.
Референца/ научни рад:
Hung et al. (2009): Ферментација јогурта са пробиотицима потпомогнута ултразвуком.
Ћелије BL21(DE3) pAtHNL (ћелије Arabidopsis thaliana)
Примена ултразвука:
Разарање ћелија: 15 g ћелија BL21-(DE3)_pAtHNL полако је суспендовано у 50 mM калијум-фосфатном пуферу (pH 7,5) при 0 degC.
Препорука уређаја:
UP200S + сонотрода S14D: при 70W/cm2 (4 x 5 min), уз хлађење у леденом купатилу
Референца/ научни рад:
Okrob, D. et al (2009): Хидроксинитрил-лијаза из Arabidopsis thaliana: идентификација реакционих параметара за синтезу енантиомерно чистог цијанохидрина помоћу чистог и имобилисаног катализатора. Adv. Synth. Catal. 2011, 353, 2399 – 2408.
Разарање ћелија: 15 g ћелија BL21-(DE3)_pAtHNL полако је суспендовано у 50 mM калијум-фосфатном пуферу (pH 7,5) при 0 degC.
Препорука уређаја:
UP200S + сонотрода S14D: при 70W/cm2 (4 x 5 min), уз хлађење у леденом купатилу
Референца/ научни рад:
Okrob, D. et al (2009): Хидроксинитрил-лијаза из Arabidopsis thaliana: идентификација реакционих параметара за синтезу енантиомерно чистог цијанохидрина помоћу чистог и имобилисаног катализатора. Adv. Synth. Catal. 2011, 353, 2399 – 2408.
Крвне ћелије (црвене и беле)
Болдин из листова болда (Peumus boldus Molina)
Примена ултразвука:
Важно активно једињење у болду је болдин ((S)-2,9-дихидрокси-1,10-диметоксиапорфин), који је, поред катехина ((2S,3R)-2-(3,4-дихидрокси-фенил)-3,4-дихидро-1(2H)-бензопиран-3,5,7-триол), главна компонента алкалоидне и флавоноидне фракције у листовима болда. Болдин је снажно антиоксидативно средство које подлеже пероксидативном оштећењу посредованом слободним радикалима и делује као ефикасан хватач хидроксилних радикала.
Поступак екстракције: У типичном поступку екстракције, узорци листова болда екстраховани су са 1L дестиловане воде при атмосферском притиску помоћу ултразвучног уређаја UIP1000hd у шаржном и проточном режиму. Време екстракције креће се између 10 и 40 min., уз ултразвучни интензитет од 10 до 23 W/cm2, и температурни опсег од 10 до 70°C. Најбољи резултати постигнути су под следећим условима: ултразвучни интензитет од 23 W/cm2 током 40 min. на температури од 36°C
Резултати: Резултати анализе показују да соникација велике снаге поспешује ослобађање аналита из материјала биљног матрикса болда знатно већом брзином у поређењу са конвенционалном методом: једнак принос постигнут је соникацијом за 30 min., док је време конвенционалне екстракције износило 2h.
Chemat (2013) и сарадници показали су да екстракција потпомогнута ултразвуком побољшава ефикасност биљне екстракције, истовремено скраћујући време екстракције уз повећану концентрацију екстраката (иста количина растварача и биљног материјала). Анализа је показала да су оптимизовани услови били: снага соникације од 23 W/cm2 помоћу UIP1000hd током 40 min. и температура од 36°C. Оптимизовани параметри ултразвучне екстракције омогућавају бољу екстракцију у поређењу са конвенционалном мацерацијом у погледу времена процеса (30 min. уместо 120 min.), већег приноса, веће енергетске ефикасности, побољшане чистоће, веће безбедности и бољег квалитета производа.
Препоручени уређај:
UIP1000hd са сонотродом BS2d34 и проточном ћелијом
Референца/ научни рад:
Petigny, L.; Périno-Issartier, S.; Wajsman, J.; Chemat, F. (2013): Шаржна и континуална екстракција листова болда (Peumus boldus Mol.) потпомогнута ултразвуком. Међународни часопис за молекуларну науку 14, 2013. 5750–5764.
Важно активно једињење у болду је болдин ((S)-2,9-дихидрокси-1,10-диметоксиапорфин), који је, поред катехина ((2S,3R)-2-(3,4-дихидрокси-фенил)-3,4-дихидро-1(2H)-бензопиран-3,5,7-триол), главна компонента алкалоидне и флавоноидне фракције у листовима болда. Болдин је снажно антиоксидативно средство које подлеже пероксидативном оштећењу посредованом слободним радикалима и делује као ефикасан хватач хидроксилних радикала.
Поступак екстракције: У типичном поступку екстракције, узорци листова болда екстраховани су са 1L дестиловане воде при атмосферском притиску помоћу ултразвучног уређаја UIP1000hd у шаржном и проточном режиму. Време екстракције креће се између 10 и 40 min., уз ултразвучни интензитет од 10 до 23 W/cm2, и температурни опсег од 10 до 70°C. Најбољи резултати постигнути су под следећим условима: ултразвучни интензитет од 23 W/cm2 током 40 min. на температури од 36°C
Резултати: Резултати анализе показују да соникација велике снаге поспешује ослобађање аналита из материјала биљног матрикса болда знатно већом брзином у поређењу са конвенционалном методом: једнак принос постигнут је соникацијом за 30 min., док је време конвенционалне екстракције износило 2h.
Chemat (2013) и сарадници показали су да екстракција потпомогнута ултразвуком побољшава ефикасност биљне екстракције, истовремено скраћујући време екстракције уз повећану концентрацију екстраката (иста количина растварача и биљног материјала). Анализа је показала да су оптимизовани услови били: снага соникације од 23 W/cm2 помоћу UIP1000hd током 40 min. и температура од 36°C. Оптимизовани параметри ултразвучне екстракције омогућавају бољу екстракцију у поређењу са конвенционалном мацерацијом у погледу времена процеса (30 min. уместо 120 min.), већег приноса, веће енергетске ефикасности, побољшане чистоће, веће безбедности и бољег квалитета производа.
Препоручени уређај:
UIP1000hd са сонотродом BS2d34 и проточном ћелијом
Референца/ научни рад:
Petigny, L.; Périno-Issartier, S.; Wajsman, J.; Chemat, F. (2013): Шаржна и континуална екстракција листова болда (Peumus boldus Mol.) потпомогнута ултразвуком. Међународни часопис за молекуларну науку 14, 2013. 5750–5764.
Говеђи серумски албумин (BSA)
Ултразвучна примена:
Микроинкапсулација у поли(млечној-ко-гликолној киселини) за 40 sec.
Препоручени уређај:
GDmini
Референца/ научни рад:
Freitas et al. (2005): Проточна ултразвучна емулзификација у комбинацији са статичким микромешањем за асептичну производњу микросфера екстракцијом растварачем.
Микроинкапсулација у поли(млечној-ко-гликолној киселини) за 40 sec.
Препоручени уређај:
GDmini
Референца/ научни рад:
Freitas et al. (2005): Проточна ултразвучна емулзификација у комбинацији са статичким микромешањем за асептичну производњу микросфера екстракцијом растварачем.
Мождано стабло + надбубрежна жлезда
Ултразвучна примена:
Дисперговање и анализа нуклеотида; величина узорка: узорци од 10 mg у 10 ml течности.
Препоручени уређај:
UP50H
Дисперговање и анализа нуклеотида; величина узорка: узорци од 10 mg у 10 ml течности.
Препоручени уређај:
UP50H
Кандида албиканс
Угљени хидрати, полисахариди и друга функционална једињења
Ултразвучна примена:
Екстракција угљених хидрата, полисахарида и других функционалних једињења
Препоручени уређај:
UP200St
Екстракција угљених хидрата, полисахарида и других функционалних једињења
Препоручени уређај:
UP200St
Карнозинска киселина из рузмарина
Ултразвучна примена:
Екстракција карнозинске киселине, активног једињења, из рузмарина.
Препоручени уређај:
UP400S
Екстракција карнозинске киселине, активног једињења, из рузмарина.
Препоручени уређај:
UP400S
Капсаициноиди
Ултразвучна примена:
Екстракција капсаициноида (капсаицина, нордихидрокапсаицина) из чили паприка: Капсаициноиди из паприка врсте Capsicum frutescens добијени су ултразвучном екстракцијом под следећим условима: растварач: 95% (v/v) етанол, однос запремине растварача и масе од 10 ml/g, време соникационе екстракције од 40 min., температура екстракције од 45°C. Принос екстракције: 85% капсаициноида
Препоручени уређај:
UP400S
Екстракција капсаициноида (капсаицина, нордихидрокапсаицина) из чили паприка: Капсаициноиди из паприка врсте Capsicum frutescens добијени су ултразвучном екстракцијом под следећим условима: растварач: 95% (v/v) етанол, однос запремине растварача и масе од 10 ml/g, време соникационе екстракције од 40 min., температура екстракције од 45°C. Принос екстракције: 85% капсаициноида
Препоручени уређај:
UP400S
Каротеноиди, бета-каротеноиди
cDNA
Ултразвучна примена:
Поли-А РНК пречишћена је помоћу комплета Dynabeads mRNA purification kit (Invitrogen) према упутствима произвођача и третирана током 30 min на 37°C помоћу TURBO DNase (Ambion; 0,2 јединице/1 μg РНК). Синтеза првог и другог ланца спроведена је према протоколу произвођача. Око 500ng дволанчане комплементарне ДНК (cDNA) фрагментисано је соникацијом помоћу уређаја компаније Hielscher UTR200. ДНК је раздвојена у 2% агарозном гелу високе резолуције, а фрагменти дужине 230–270 bp су исечени.
Препоручени уређај:
UTR200 или TD_CupHorn
Референца/ научни рад:
Delft, J. van; Gaj, St.; Lienhard,M.; Albrecht, M. W.; Kirpiy, A.; Brauers, K.; Claessen, S.; Lizarraga, D.; Lehrach, H.; Herwig, R.; Kleinjans, J. (2012): RNA-Seq пружа нове увиде у одговоре транскриптома изазване канцерогеном бензо[a]пиреном. Toxicological Sciences 130/2, 2012. 427–439.
Поли-А РНК пречишћена је помоћу комплета Dynabeads mRNA purification kit (Invitrogen) према упутствима произвођача и третирана током 30 min на 37°C помоћу TURBO DNase (Ambion; 0,2 јединице/1 μg РНК). Синтеза првог и другог ланца спроведена је према протоколу произвођача. Око 500ng дволанчане комплементарне ДНК (cDNA) фрагментисано је соникацијом помоћу уређаја компаније Hielscher UTR200. ДНК је раздвојена у 2% агарозном гелу високе резолуције, а фрагменти дужине 230–270 bp су исечени.
Препоручени уређај:
UTR200 или TD_CupHorn
Референца/ научни рад:
Delft, J. van; Gaj, St.; Lienhard,M.; Albrecht, M. W.; Kirpiy, A.; Brauers, K.; Claessen, S.; Lizarraga, D.; Lehrach, H.; Herwig, R.; Kleinjans, J. (2012): RNA-Seq пружа нове увиде у одговоре транскриптома изазване канцерогеном бензо[a]пиреном. Toxicological Sciences 130/2, 2012. 427–439.
Кариофанон латум
Ултразвучна примена:
Екстракција глукозамина, мураминске киселине, аланина, глутаминске киселине и лизина из caryophanon datum.
Препоручени уређај:
UP100H
Екстракција глукозамина, мураминске киселине, аланина, глутаминске киселине и лизина из caryophanon datum.
Препоручени уређај:
UP100H
Целулоза
Ултразвучна примена:
Хомогенизација/ припрема изотопски хомогене целулозе.
Препоручени уређај:
UP200S; у леденом купатилу
Референца/ научни рад:
Laumer и сар. (2009): Нов приступ хомогенизацији целулозе ради употребе микроколичина у анализама стабилних изотопа.
Хомогенизација/ припрема изотопски хомогене целулозе.
Препоручени уређај:
UP200S; у леденом купатилу
Референца/ научни рад:
Laumer и сар. (2009): Нов приступ хомогенизацији целулозе ради употребе микроколичина у анализама стабилних изотопа.
Нанокристали целулозе (CNC) припремљени од нанокристала целулозе еукалиптуса
Примена ултразвука:
Нанокристали целулозе (CNC) припремљени од CNC еукалиптусове целулозе модификовани су реакцијом са метил-адипоил-хлоридом, CNCm, или са смешом сирћетне и сумпорне киселине, CNCa. У ту сврху, лиофилизовани CNC, CNCm и CNCa поново су дисперговани у чистим растварачима (EA, THF или DMF) при 0,1 мас.%, магнетним мешањем преко ноћи на (24 ± 1) C, након чега су обрађени 20 мин у соникационом купатилу помоћу уређаја UP100H компаније Hielscher Ultrasonics (Немачка), опремљеног сонотродом од 130 W/cm2, на 24 ± 1 degC. Након тога, CAB је додат у дисперзију CNC, тако да је коначна концентрација полимера износила 0,9 мас.%.
Препоручени уређај:
UP100H; на 24 degC током 20 мин.
Референца/ научни рад:
Blachechen, L. S. и сар. (2013): Међусобни однос колоидне стабилности нанокристала целулозе и њихове дисперзибилности у матрици целулоза-ацетат-бутирата. Cellulose 2013.
Нанокристали целулозе (CNC) припремљени од CNC еукалиптусове целулозе модификовани су реакцијом са метил-адипоил-хлоридом, CNCm, или са смешом сирћетне и сумпорне киселине, CNCa. У ту сврху, лиофилизовани CNC, CNCm и CNCa поново су дисперговани у чистим растварачима (EA, THF или DMF) при 0,1 мас.%, магнетним мешањем преко ноћи на (24 ± 1) C, након чега су обрађени 20 мин у соникационом купатилу помоћу уређаја UP100H компаније Hielscher Ultrasonics (Немачка), опремљеног сонотродом од 130 W/cm2, на 24 ± 1 degC. Након тога, CAB је додат у дисперзију CNC, тако да је коначна концентрација полимера износила 0,9 мас.%.
Препоручени уређај:
UP100H; на 24 degC током 20 мин.
Референца/ научни рад:
Blachechen, L. S. и сар. (2013): Међусобни однос колоидне стабилности нанокристала целулозе и њихове дисперзибилности у матрици целулоза-ацетат-бутирата. Cellulose 2013.
Целулоза из багасе шећерне трске
ChIP анализа
Примена ултразвука:
Ултразвучна обрада се користи за лизу ћелија ради ослобађања хроматина. Блага (пулсна) соникација се користи за фрагментацију хроматина. Поред тога, ултразвук повећава брзину везивања антитела за циљне протеине и тиме скраћује време имунопреципитације.
Препоручени уређај:
UP100H
Референца/ научни рад:
Basselet, P. и сар. (2008): Обрада узорака за анализу ентерохеморагијске Escherichia coli (EHEC) засновану на ДНК микрочиповима.
Lauri, A. (2005): Молекуларна анализа развоја латица применом X-ChIP и двохибридне технологије. Дисертација, Универзитет у Келну 2005.
Ултразвучна обрада се користи за лизу ћелија ради ослобађања хроматина. Блага (пулсна) соникација се користи за фрагментацију хроматина. Поред тога, ултразвук повећава брзину везивања антитела за циљне протеине и тиме скраћује време имунопреципитације.
Препоручени уређај:
UP100H
Референца/ научни рад:
Basselet, P. и сар. (2008): Обрада узорака за анализу ентерохеморагијске Escherichia coli (EHEC) засновану на ДНК микрочиповима.
Lauri, A. (2005): Молекуларна анализа развоја латица применом X-ChIP и двохибридне технологије. Дисертација, Универзитет у Келну 2005.
Хроматин
Примена ултразвука:
Фрагментација хроматина смицањем
Препоручени уређај:
UP400S; при амплитуди од 30% и циклусу од 0,5; на леду.
Референца/ научни рад:
Oh и сар. (2003): Ген за ацетил-CoA карбоксилазу у јетри регулише протеин-1 који везује регулаторни елемент стерола.
Фрагментација хроматина смицањем
Препоручени уређај:
UP400S; при амплитуди од 30% и циклусу од 0,5; на леду.
Референца/ научни рад:
Oh и сар. (2003): Ген за ацетил-CoA карбоксилазу у јетри регулише протеин-1 који везује регулаторни елемент стерола.
Екстракција хроматина
Примена ултразвука:
Лизат ћелија MEL DS19 сонициран је у 10 серија од по 20 s при 70% максималне излазне снаге помоћу ултразвучног процесора Hielscher UP200H од 200W
Препоручени уређај:
UP200H; 70% максималне излазне снаге; пулсни режим: 10 циклуса од по 20 сек.
Референца/ научни рад:
Kang, H. Ch. и сар. (2010): PIAS1 регулише локализацију CP2c и формирање активног промоторског комплекса при експресији a-глобина специфичној за еритроидне ћелије. Nucleic Acids Res. 38/ 16, 2010. стр. 5456–5471.
Лизат ћелија MEL DS19 сонициран је у 10 серија од по 20 s при 70% максималне излазне снаге помоћу ултразвучног процесора Hielscher UP200H од 200W
Препоручени уређај:
UP200H; 70% максималне излазне снаге; пулсни режим: 10 циклуса од по 20 сек.
Референца/ научни рад:
Kang, H. Ch. и сар. (2010): PIAS1 регулише локализацију CP2c и формирање активног промоторског комплекса при експресији a-глобина специфичној за еритроидне ћелије. Nucleic Acids Res. 38/ 16, 2010. стр. 5456–5471.
Хроматографија
Примена ултразвука:
Соникација адсорбенса у растварачу елиминише агломерате у року од неколико секунди и омогућава припрему уједначене колоне која се лако пакује. Релевантно за припрему адсорбенса (нпр. силика-гела) пре колонске хроматографије.
Препоручени уређај:
UP400S
Соникација адсорбенса у растварачу елиминише агломерате у року од неколико секунди и омогућава припрему уједначене колоне која се лако пакује. Релевантно за припрему адсорбенса (нпр. силика-гела) пре колонске хроматографије.
Препоручени уређај:
UP400S
Рашљотичари
Примена ултразвука:
Разарање ћелија мезозоопланктона
Препоручени уређај:
UP2000hd са проточном ћелијом
Референца/ научни рад:
Viitaslo и сар. (2005): Озон, ултраљубичасто светло, ултразвук и водоник-пероксид као поступци обраде баластних вода – експерименти са мезозоопланктоном у бочатој води ниског салинитета.
Разарање ћелија мезозоопланктона
Препоручени уређај:
UP2000hd са проточном ћелијом
Референца/ научни рад:
Viitaslo и сар. (2005): Озон, ултраљубичасто светло, ултразвук и водоник-пероксид као поступци обраде баластних вода – експерименти са мезозоопланктоном у бочатој води ниског салинитета.
Одрасле копеподе и копеподити
Примена ултразвука:
Разарање ћелија мезозоопланктона: соникацијом при следећим условима, са четири протока (200, 400, 520 и 800 lh-1) и четири амплитуде (25, 50, 75 и 100%), постигнута је стопа усмрћивања између 87 и 99%.
Препоручени уређај:
UIP2000hd са проточном ћелијом
Референца/ научни рад:
Viitaslo и сар. (2005): Озон, ултраљубичасто светло, ултразвук и водоник-пероксид као поступци обраде баластних вода – експерименти са мезозоопланктоном у бочатој води ниског салинитета.
Разарање ћелија мезозоопланктона: соникацијом при следећим условима, са четири протока (200, 400, 520 и 800 lh-1) и четири амплитуде (25, 50, 75 и 100%), постигнута је стопа усмрћивања између 87 и 99%.
Препоручени уређај:
UIP2000hd са проточном ћелијом
Референца/ научни рад:
Viitaslo и сар. (2005): Озон, ултраљубичасто светло, ултразвук и водоник-пероксид као поступци обраде баластних вода – експерименти са мезозоопланктоном у бочатој води ниског салинитета.
Науплијуси копепода
Примена ултразвука:
Разарање ћелија мезозоопланктона: соникацијом при следећим условима, са четири протока (200, 400, 520 и 800 lh-1) и четири амплитуде (25, 50, 75 и 100%), постигнута је стопа усмрћивања између 87 и 99%.
Препоручени уређај:
UIP2000hd са проточном ћелијом
Референца/ научни рад:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ултраљубичаста светлост, ултразвук и водоник-пероксид као поступци третмана баластних вода – експерименти са мезозоопланктоном у бочатој води ниског салинитета.
Разарање ћелија мезозоопланктона: соникацијом при следећим условима, са четири протока (200, 400, 520 и 800 lh-1) и четири амплитуде (25, 50, 75 и 100%), постигнута је стопа усмрћивања између 87 и 99%.
Препоручени уређај:
UIP2000hd са проточном ћелијом
Референца/ научни рад:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ултраљубичаста светлост, ултразвук и водоник-пероксид као поступци третмана баластних вода – експерименти са мезозоопланктоном у бочатој води ниског салинитета.
Ћелије COS7
Ултразвучна примена:
Лиза у 400 μl пуфера
Препорука уређаја:
UP200S; 7 циклуса
Референца/научни рад:
Zaim (2005): Анализа мишева са недостатком несприна-2.
Лиза у 400 μl пуфера
Препорука уређаја:
UP200S; 7 циклуса
Референца/научни рад:
Zaim (2005): Анализа мишева са недостатком несприна-2.
Криптоспоридијум парвум
Ултразвучна примена:
Ултразвучна инактивација Cryptosporidium parvaum (протозое) у води.
Препорука уређаја:
UP400S
Референца/научни рад:
Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Furuta, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Инактивација Saccharomyces cerevisiae ултразвучним озрачивањем. Ultrasonics Sonochemistry 11/2004. стр. 61–65.
Ултразвучна инактивација Cryptosporidium parvaum (протозое) у води.
Препорука уређаја:
UP400S
Референца/научни рад:
Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Furuta, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Инактивација Saccharomyces cerevisiae ултразвучним озрачивањем. Ultrasonics Sonochemistry 11/2004. стр. 61–65.
Кубозоми
Ултразвучна примена:
Кубозоми – празни или допирани молекулима флуорофора – припремљени су дисперговањем одговарајуће количине моноолеина у раствору Pluronic F108 помоћу ултразвучног уређаја UP100H. Да би се добили флуоресцентни кубозоми, флуорофор је диспергован у растопљеном моноолеину благом соникацијом пре дисперговања у Pluronic F108. Исти поступак је примењен када је у флуоресцентне кубозоме додатно уграђиван кверцетин.
Узорак: запремина узорка: 4 mL – приближно 96,4 wt% воде, 3,3 wt % моноолеина, 0,3 wt% Pluronic F108. Процентуални удео флуорофора износио је 2,5 × 10−3 и 2,8 × 10−3 wt%. Количина додатог кверцетина: 6,4 × 10−6 wt%.
Соникација: UP100H, амплитуда 90%, импулсни циклус 0,9, током 10 мин.
Препорука уређаја:
UP100H
Референца/научни рад:
Murgia, S.; Bonacchi,S.; Falchi, A. M.; Lampis, S.; Lippolis, V.; Meli, V.; Monduzzi, M.; Prodi, L.; Schmidt, J.; Talmon, Y.; Caltagirone, C. (2013): Флуоресцентни кубозоми са уграђеним леком: свестране наночестице за потенцијалне тераностичке примене. Langmuir 29, 2013. 6673–6679.
Кубозоми – празни или допирани молекулима флуорофора – припремљени су дисперговањем одговарајуће количине моноолеина у раствору Pluronic F108 помоћу ултразвучног уређаја UP100H. Да би се добили флуоресцентни кубозоми, флуорофор је диспергован у растопљеном моноолеину благом соникацијом пре дисперговања у Pluronic F108. Исти поступак је примењен када је у флуоресцентне кубозоме додатно уграђиван кверцетин.
Узорак: запремина узорка: 4 mL – приближно 96,4 wt% воде, 3,3 wt % моноолеина, 0,3 wt% Pluronic F108. Процентуални удео флуорофора износио је 2,5 × 10−3 и 2,8 × 10−3 wt%. Количина додатог кверцетина: 6,4 × 10−6 wt%.
Соникација: UP100H, амплитуда 90%, импулсни циклус 0,9, током 10 мин.
Препорука уређаја:
UP100H
Референца/научни рад:
Murgia, S.; Bonacchi,S.; Falchi, A. M.; Lampis, S.; Lippolis, V.; Meli, V.; Monduzzi, M.; Prodi, L.; Schmidt, J.; Talmon, Y.; Caltagirone, C. (2013): Флуоресцентни кубозоми са уграђеним леком: свестране наночестице за потенцијалне тераностичке примене. Langmuir 29, 2013. 6673–6679.
Декера брукселензис
Ултразвучна примена:
Ултразвучна инактивација Dekkera bruxellensis у води
Препорука уређаја:
UIP1500hd
Референца/научни рад:
Borthwick, K. A. J.; Coakley, W. T.; McDonnell, M. B.; Nowotny, H.; Benes, E.; Grfschl, .M (2005): Развој новог компактног соникатора за разарање ћелија. J. Microbio. Meths. 60/2005. стр. 207–216. / Lörincz, A. (2004): Ултразвучно разарање ћелија квасца у суспензијама на бази воде. Biosys. Eng. 89/ 2004. стр. 297–308. / Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Furuta, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Инактивација Saccharomyces cerevisiae ултразвучним озрачивањем. Ultrason. Sonochem. 11/2004. стр. 61–65.
Ултразвучна инактивација Dekkera bruxellensis у води
Препорука уређаја:
UIP1500hd
Референца/научни рад:
Borthwick, K. A. J.; Coakley, W. T.; McDonnell, M. B.; Nowotny, H.; Benes, E.; Grfschl, .M (2005): Развој новог компактног соникатора за разарање ћелија. J. Microbio. Meths. 60/2005. стр. 207–216. / Lörincz, A. (2004): Ултразвучно разарање ћелија квасца у суспензијама на бази воде. Biosys. Eng. 89/ 2004. стр. 297–308. / Tsukamoto, I.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Furuta, M.; Hashiba, K.; Maeda, Y. (2004): Инактивација Saccharomyces cerevisiae ултразвучним озрачивањем. Ultrason. Sonochem. 11/2004. стр. 61–65.
Декера/ Бретаномицес брукселензис
Ултразвучна примена:
Инактивација за 90–120 сек.
Препорука уређаја:
UIP1500hd
Референца/научни рад:
видети изнад
Инактивација за 90–120 сек.
Препорука уређаја:
UIP1500hd
Референца/научни рад:
видети изнад
ДНК
Ултразвучна примена:
Фрагментација ДНК: соникација 100μL током 2 мин. помоћу UP100H или соникација 100μL током 4 мин. помоћу UTR200.
Препорука уређаја:
UP100H, UTR200 или VialTweeter
Референца/научни рад:
Larguinho M. et al. (2010): Развој брзе и ефикасне стратегије за фрагментацију ДНК засноване на ултразвуку.
Фрагментација ДНК: соникација 100μL током 2 мин. помоћу UP100H или соникација 100μL током 4 мин. помоћу UTR200.
Препорука уређаја:
UP100H, UTR200 или VialTweeter
Референца/научни рад:
Larguinho M. et al. (2010): Развој брзе и ефикасне стратегије за фрагментацију ДНК засноване на ултразвуку.
Ћелије S2 врсте Drosophila melanogaster
Ултразвучна примена:
Екстракција ћелијских протеина из S2 ћелија Drosophila melanogaster: Замрзнуте S2 ћелије (1,56108) лизиране су у 1 mL ледено хладног пуфера за хомогенизацију (100 mM Tris-HCl pH 7,5, 1% SDS) и остављене на леду 10 мин. Лиза ћелија је довршена ултразвучном обрадом на леду (6615 импулсних серија, импулс од 0,5 s; интензитет 75%) помоћу ултразвучног процесора Hielscher UP200S.
Препорука уређаја:
UP200S (200W), интензитет 75%, импулсни режим: 6615 импулсних серија, импулс од 0,5 s.
Референца/научни рад:
Schwientek, T. et al. (2007): Приступ заснован на серијској примени лектина за анализу O-гликопротеома муцинског типа S2 ћелија Drosophila melanogaster. Proteomics 7, 2007. стр. 3264–3277.
Екстракција ћелијских протеина из S2 ћелија Drosophila melanogaster: Замрзнуте S2 ћелије (1,56108) лизиране су у 1 mL ледено хладног пуфера за хомогенизацију (100 mM Tris-HCl pH 7,5, 1% SDS) и остављене на леду 10 мин. Лиза ћелија је довршена ултразвучном обрадом на леду (6615 импулсних серија, импулс од 0,5 s; интензитет 75%) помоћу ултразвучног процесора Hielscher UP200S.
Препорука уређаја:
UP200S (200W), интензитет 75%, импулсни режим: 6615 импулсних серија, импулс од 0,5 s.
Референца/научни рад:
Schwientek, T. et al. (2007): Приступ заснован на серијској примени лектина за анализу O-гликопротеома муцинског типа S2 ћелија Drosophila melanogaster. Proteomics 7, 2007. стр. 3264–3277.
Деривати E. coli
Ултразвучна примена:
Разарање ћелија деривата E. coli: Замрзнути талози који одговарају запремини узорка Vculture = 4/OD mL ресуспендовани су у 580 μL 10 mM калијум-фосфатног пуфера pH 7, са 1 mM EDTA. Додато је 20 μL лизозима (концентрације 1 g L-1), а ћелијска суспензија је инкубирана на леду око 30 минута. Ћелије су затим разорене континуираном ултразвучном обрадом ултразвучним уређајем (UP 200S Ultraschallprozessor, Dr. Hielscher GmbH, Teltow) на леду, при амплитуди од 50 %, током 20 секунди. Растворљиве и нерастворљиве ћелијске фракције раздвојене су центрифугирањем при 13.000 rpm током 20 минута. Нерастворљиви протеини су двапут испрани 10 mM калијум-фосфатним пуфером pH 7, са 1 mM EDTA, и чувани на –20°C.
Препоручени уређај:
UP200S при амплитуди од 50%
Референца/научни рад:
HA (2005): Оптимизација производње активних рекомбинантних протеина, уз испитивање утицаја малих протеина топлотног шока бактерије Escherichia coli, IbpA и IbpB, на реактивацију инклузионих тела in vivo.
Разарање ћелија деривата E. coli: Замрзнути талози који одговарају запремини узорка Vculture = 4/OD mL ресуспендовани су у 580 μL 10 mM калијум-фосфатног пуфера pH 7, са 1 mM EDTA. Додато је 20 μL лизозима (концентрације 1 g L-1), а ћелијска суспензија је инкубирана на леду око 30 минута. Ћелије су затим разорене континуираном ултразвучном обрадом ултразвучним уређајем (UP 200S Ultraschallprozessor, Dr. Hielscher GmbH, Teltow) на леду, при амплитуди од 50 %, током 20 секунди. Растворљиве и нерастворљиве ћелијске фракције раздвојене су центрифугирањем при 13.000 rpm током 20 минута. Нерастворљиви протеини су двапут испрани 10 mM калијум-фосфатним пуфером pH 7, са 1 mM EDTA, и чувани на –20°C.
Препоручени уређај:
UP200S при амплитуди од 50%
Референца/научни рад:
HA (2005): Оптимизација производње активних рекомбинантних протеина, уз испитивање утицаја малих протеина топлотног шока бактерије Escherichia coli, IbpA и IbpB, на реактивацију инклузионих тела in vivo.
Антиген Echinococcus granulosus
Примена ултразвука:
Лиза и дезинтеграција ћелија: Хомогенизовани узорак растворљивих протеина зрелог E. granulosus, припремљен замрзавањем у течном азоту и одмрзавањем на 42◦C, обрађен је ултразвуком при 110V, 170W, током 3×15 секунди на леду. Након тога, узорак је центрифугиран 15 минута при 10.000g. Концентрација протеина је измерена Бредфордовом методом, а узорак је чуван на -20◦C.
Препоручени уређај:
UP200S; 170W, хлађење на леду; 3 x 15 секунди.
Референца/научни рад:
Tabar et al. (2010): Серодијагностика хидатидозе оваца помоћу хидатидне течности, протосколекса и антигена целог тела Echinococcus granulosus.
Лиза и дезинтеграција ћелија: Хомогенизовани узорак растворљивих протеина зрелог E. granulosus, припремљен замрзавањем у течном азоту и одмрзавањем на 42◦C, обрађен је ултразвуком при 110V, 170W, током 3×15 секунди на леду. Након тога, узорак је центрифугиран 15 минута при 10.000g. Концентрација протеина је измерена Бредфордовом методом, а узорак је чуван на -20◦C.
Препоручени уређај:
UP200S; 170W, хлађење на леду; 3 x 15 секунди.
Референца/научни рад:
Tabar et al. (2010): Серодијагностика хидатидозе оваца помоћу хидатидне течности, протосколекса и антигена целог тела Echinococcus granulosus.
Ешерихија коли Gr-
Примена ултразвука:
Ултразвучна инактивација Escherchia coli Gr- у млеку и соковима.
Препоручени уређај:
UP100H
Референца/научни рад:
Zenker, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Примена термичке обраде потпомогнуте ултразвуком ради конзервисања и очувања квалитета течних намирница. J Food Prot 66/2003. стр. 1642–1649.
Ултразвучна инактивација Escherchia coli Gr- у млеку и соковима.
Препоручени уређај:
UP100H
Референца/научни рад:
Zenker, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Примена термичке обраде потпомогнуте ултразвуком ради конзервисања и очувања квалитета течних намирница. J Food Prot 66/2003. стр. 1642–1649.
Escherichia coli Gr- у физиолошком раствору
Примена ултразвука:
Ултразвучна инактивација Escherchia coli Gr- у физиолошком раствору.
Препоручени уређај:
UP100H
Референца/научни рад:
Duckhouse, H.; Mason, T. J.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P. (2004): Утицај соникације на микробну дезинфекцију хипохлоритом. Ultrason. Sonochem. 11/ 2004. стр. 173–176.
Ултразвучна инактивација Escherchia coli Gr- у физиолошком раствору.
Препоручени уређај:
UP100H
Референца/научни рад:
Duckhouse, H.; Mason, T. J.; Phull, S. S.; Lorimer, J. P. (2004): Утицај соникације на микробну дезинфекцију хипохлоритом. Ultrason. Sonochem. 11/ 2004. стр. 173–176.
Escherichia coli Gr- у води
Примена ултразвука:
Ултразвучна инактивација Escherchia coli Gr- у води.
Препоручени уређај:
UP100H
Референца/научни рад:
Furuta, M.; Yamaguchi, M.; Tsukamoto, T.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Hasiba, K.; Maeda, Y. (2004): Инактивација Escherichia coli ултразвучним озрачивањем. Ultrason. Sonochem. 11/2004. стр. 57–60.
Ултразвучна инактивација Escherchia coli Gr- у води.
Препоручени уређај:
UP100H
Референца/научни рад:
Furuta, M.; Yamaguchi, M.; Tsukamoto, T.; Yim, B.; Stavarache, C. E.; Hasiba, K.; Maeda, Y. (2004): Инактивација Escherichia coli ултразвучним озрачивањем. Ultrason. Sonochem. 11/2004. стр. 57–60.
Глауком, глава видног живца
Примена ултразвука:
Фрагментација РНК из глава видног живца (из очију пацова): Глава видног живца (ONH) замрзнута је на сувом леду и чувана на 80°C пре екстракције. РНК је изолована соникацијом замрзнутих глава видног живца у екстракционом пуферу из комплета, помоћу сонде MS 0,5 (UP50H), а затим праћењем упутстава приложених уз комплет Arcturus, укључујући третман ензимом DNase ради уклањања све ДНК. Количина пречишћене РНК је одређена.
Препоручени уређај:
UP50H са сондом MS0.5
Референца/научни рад:
Johnson et al. (2007): Глобалне промене експресије гена у глави видног живца након излагања повишеном интраокуларном притиску у моделу глаукома код пацова.
Фрагментација РНК из глава видног живца (из очију пацова): Глава видног живца (ONH) замрзнута је на сувом леду и чувана на 80°C пре екстракције. РНК је изолована соникацијом замрзнутих глава видног живца у екстракционом пуферу из комплета, помоћу сонде MS 0,5 (UP50H), а затим праћењем упутстава приложених уз комплет Arcturus, укључујући третман ензимом DNase ради уклањања све ДНК. Количина пречишћене РНК је одређена.
Препоручени уређај:
UP50H са сондом MS0.5
Референца/научни рад:
Johnson et al. (2007): Глобалне промене експресије гена у глави видног живца након излагања повишеном интраокуларном притиску у моделу глаукома код пацова.
Гликозаминогликан хондроитин-сулфат (CS)
Примена ултразвука:
Одређивање CS тестом са диметилметиленским плавим
Ресуспендовање ћелија: Талози CS у микроцентрифугалним епруветама ресуспендовани су у 0,5 ml раствора папаина концентрације 0,1mg/ml у Хенксовом балансираном раствору соли (HBSS), применом импулса ултразвучне сонде (UP 100H, Hielscher Ultrasonics GmbH, Немачка), при циклусу 1 и амплитуди од 100 %, током 3 секунде. Након тога, дигестија је вршена на 60 °C током 24 h.
За ензимски имуносорбентни тест (ELISA), ћелије су затим суспендоване у дестилованој и дејонизованој води при концентрацији од 106 ћелија/ml и остављене преко ноћи у замрзивачу на –70°C ради олакшавања лизе ћелија. Ћелије су затим хомогенизоване ултразвуком током 40 секунди помоћу Hielscher ултразвучног хомогенизатора ткива UP100H.
Препоручени уређај:
UP100H
Референца/научни рад:
Vandrovcova et al. (2011): Утицај превлака од колагена и хондроитин-сулфата (CS) на поли(лактид-ко-гликолиду) (PLGA) на ћелије MG 63 сличне остеобластима. Physiol. Res. 60; 2011. 797–813.
Одређивање CS тестом са диметилметиленским плавим
Ресуспендовање ћелија: Талози CS у микроцентрифугалним епруветама ресуспендовани су у 0,5 ml раствора папаина концентрације 0,1mg/ml у Хенксовом балансираном раствору соли (HBSS), применом импулса ултразвучне сонде (UP 100H, Hielscher Ultrasonics GmbH, Немачка), при циклусу 1 и амплитуди од 100 %, током 3 секунде. Након тога, дигестија је вршена на 60 °C током 24 h.
За ензимски имуносорбентни тест (ELISA), ћелије су затим суспендоване у дестилованој и дејонизованој води при концентрацији од 106 ћелија/ml и остављене преко ноћи у замрзивачу на –70°C ради олакшавања лизе ћелија. Ћелије су затим хомогенизоване ултразвуком током 40 секунди помоћу Hielscher ултразвучног хомогенизатора ткива UP100H.
Препоручени уређај:
UP100H
Референца/научни рад:
Vandrovcova et al. (2011): Утицај превлака од колагена и хондроитин-сулфата (CS) на поли(лактид-ко-гликолиду) (PLGA) на ћелије MG 63 сличне остеобластима. Physiol. Res. 60; 2011. 797–813.
Ћелије HaCaT
Примена ултразвука:
Лиза ћелија HaCaT за имунопреципитацију хроматина (ChIP): Ћелије HaCaT су фиксиране 1% формалдехидом током 10 минута на 37uC. Фиксиране ћелије су лизиране у пуферу RIPA и сонициране на леду ултразвучним уређајем од 100W при амплитуди = 1 и радном циклусу = 100% у 12 једноминутних импулса (12 x 1 min.).
Препоручени уређај:
UP100H; током 12 min. на леду,
Референца/научни рад:
Zhang et al. (2007): Базонуклин регулише подскуп гена за рибозомалну РНК у ћелијама HaCaT.
Лиза ћелија HaCaT за имунопреципитацију хроматина (ChIP): Ћелије HaCaT су фиксиране 1% формалдехидом током 10 минута на 37uC. Фиксиране ћелије су лизиране у пуферу RIPA и сонициране на леду ултразвучним уређајем од 100W при амплитуди = 1 и радном циклусу = 100% у 12 једноминутних импулса (12 x 1 min.).
Препоручени уређај:
UP100H; током 12 min. на леду,
Референца/научни рад:
Zhang et al. (2007): Базонуклин регулише подскуп гена за рибозомалну РНК у ћелијама HaCaT.
Хепарин: деполимеризација хепарина
Примена ултразвука:
Ултразвучна метода омогућава производњу хепарина мале молекулске масе (LMWH). У ту сврху, хепарин се подвргава радикалској деполимеризацији катализованој водоник-пероксидом. Реакција је веома брза и траје мање од 1 сата, док се физичкохемијски процес деполимеризације заснива на благим реакционим условима, не захтева агресивне или токсичне реагенсе и даје производ без хемијских артефаката. Стога је ултразвучни процес веома погодан за производњу LMWH у великом обиму, као и аналога произведених од природних сулфатованих полисахарида.
Ултразвучни поступак:
За физичкохемијску деполимеризацију нефракционисаног хепарина радикалском деполимеризацијом потпомогнутом ултразвуком, хепарин је растворен у води до коначне концентрације од 25 mg/mL (5 mL). Реакциона смеша је соницирана ултразвучним уређајем са сондом UP50H. Ултразвучни уређај је био опремљен сондом (микроврх MS3) пречника 3mm, која је обезбеђивала амплитуду од 180μm. Процесор је генерисао механичке уздужне вибрације фреквенције 30 kHz, настале електричном побудом. Реакциона смеша је одржавана на 60°C у реактору Radleys®, а ултразвучни таласи су примењивани у виду импулса од 0,5sec да би се спречило загревање смеше. Аликвот за нулто време (250μl) издвојен је из раствора пре покретања реакције истовременим додавањем водоник-пероксида и применом ултразвучних таласа. Водоник-пероксид је додат тако да се постигне коначни однос водоник-пероксид/хепарин (w/w) од 0,15 (3,75 mg/mL).
Препоручени уређај:
UP50H са сонотродом MS3
Референца/научни рад:
Achour, Oussama; Bridiau, Nicolas; Godhbani, Azza; Le Joubioux, Florian; Bordenave Juchereau, Stephanie; Sannier, Fredéric; Piot, Jean-Marie; Fruitier Arnaudin, Ingrid; Maugard, Thierry (2013): Припрема хепарина мале молекулске масе (LMWH) са антикоагулантном активношћу уз помоћ ултразвука. Carbohydrate Polymers 97; 2013. 684–689.
Ултразвучна метода омогућава производњу хепарина мале молекулске масе (LMWH). У ту сврху, хепарин се подвргава радикалској деполимеризацији катализованој водоник-пероксидом. Реакција је веома брза и траје мање од 1 сата, док се физичкохемијски процес деполимеризације заснива на благим реакционим условима, не захтева агресивне или токсичне реагенсе и даје производ без хемијских артефаката. Стога је ултразвучни процес веома погодан за производњу LMWH у великом обиму, као и аналога произведених од природних сулфатованих полисахарида.
Ултразвучни поступак:
За физичкохемијску деполимеризацију нефракционисаног хепарина радикалском деполимеризацијом потпомогнутом ултразвуком, хепарин је растворен у води до коначне концентрације од 25 mg/mL (5 mL). Реакциона смеша је соницирана ултразвучним уређајем са сондом UP50H. Ултразвучни уређај је био опремљен сондом (микроврх MS3) пречника 3mm, која је обезбеђивала амплитуду од 180μm. Процесор је генерисао механичке уздужне вибрације фреквенције 30 kHz, настале електричном побудом. Реакциона смеша је одржавана на 60°C у реактору Radleys®, а ултразвучни таласи су примењивани у виду импулса од 0,5sec да би се спречило загревање смеше. Аликвот за нулто време (250μl) издвојен је из раствора пре покретања реакције истовременим додавањем водоник-пероксида и применом ултразвучних таласа. Водоник-пероксид је додат тако да се постигне коначни однос водоник-пероксид/хепарин (w/w) од 0,15 (3,75 mg/mL).
Препоручени уређај:
UP50H са сонотродом MS3
Референца/научни рад:
Achour, Oussama; Bridiau, Nicolas; Godhbani, Azza; Le Joubioux, Florian; Bordenave Juchereau, Stephanie; Sannier, Fredéric; Piot, Jean-Marie; Fruitier Arnaudin, Ingrid; Maugard, Thierry (2013): Припрема хепарина мале молекулске масе (LMWH) са антикоагулантном активношћу уз помоћ ултразвука. Carbohydrate Polymers 97; 2013. 684–689.
Хмељ
Примена ултразвука:
Екстракција активних једињења / биљних екстраката у води и етанолу.
Препоручени уређај:
UP400S
Екстракција активних једињења / биљних екстраката у води и етанолу.
Препоручени уређај:
UP400S
Lactobacillus (лиза / изолација ДНК из различитих сојева рода Lactobacillus)
Примена ултразвука:
Сојеви рода Lactobacillus: L. pontis, L. sanfranciscensis, L. farciminis, L. panis, L. oris, L. vaginalis и L. reuteri, L. sp.
Поступак: За изолацију ДНК из појединачних колонија развијен је протокол ултразвучне лизе. Једна колонија (пречника 2–3 mm) суспендована је у 100μl пуфера за лизу (20 mM EDTA, 10 mM Tris [pH 7,9], 1% Triton X-100, 500 mM гванидин-HCl, 250 mM NaCl). Ћелије су лизиране ултразвучним третманом током 1 min помоћу ултразвучног уређаја са сондом UP50H. Након додавања 150μl хладног етанола (-20°C), смеша је центрифугирана кроз колону за центрифугирање из комплета QIAamp за ткиво и на крају елуирана са 60μl пуфера (10 mM Tris [pH 7,5]).
Да би се обезбедила метода за брзу и поуздану идентификацију појединачних чистих култура, PCR анализа је комбинована са брзим поступком изолације ДНК. Дуготрајни поступци ензимске лизе и променљива осетљивост бактерија на лизозим превазиђени су ултразвучним третманом ћелија, уз накнадно пречишћавање и концентровање везивањем ДНК за силицијум-диоксидну матрицу. Утврђено је да је ћелијски материјал једне колоније довољан за PCR.
Препоручени уређај:
UP50H
Референца/научни рад:
Müller, M. R. A. (2000): Карактеризација микробног екосистема ферментације житарица применом молекуларнобиолошких метода. Дисертација, Универзитет у Келну, 2000.
Сојеви рода Lactobacillus: L. pontis, L. sanfranciscensis, L. farciminis, L. panis, L. oris, L. vaginalis и L. reuteri, L. sp.
Поступак: За изолацију ДНК из појединачних колонија развијен је протокол ултразвучне лизе. Једна колонија (пречника 2–3 mm) суспендована је у 100μl пуфера за лизу (20 mM EDTA, 10 mM Tris [pH 7,9], 1% Triton X-100, 500 mM гванидин-HCl, 250 mM NaCl). Ћелије су лизиране ултразвучним третманом током 1 min помоћу ултразвучног уређаја са сондом UP50H. Након додавања 150μl хладног етанола (-20°C), смеша је центрифугирана кроз колону за центрифугирање из комплета QIAamp за ткиво и на крају елуирана са 60μl пуфера (10 mM Tris [pH 7,5]).
Да би се обезбедила метода за брзу и поуздану идентификацију појединачних чистих култура, PCR анализа је комбинована са брзим поступком изолације ДНК. Дуготрајни поступци ензимске лизе и променљива осетљивост бактерија на лизозим превазиђени су ултразвучним третманом ћелија, уз накнадно пречишћавање и концентровање везивањем ДНК за силицијум-диоксидну матрицу. Утврђено је да је ћелијски материјал једне колоније довољан за PCR.
Препоручени уређај:
UP50H
Референца/научни рад:
Müller, M. R. A. (2000): Карактеризација микробног екосистема ферментације житарица применом молекуларнобиолошких метода. Дисертација, Универзитет у Келну, 2000.
Lactobacillus acidophilus, Грам-позитиван
Примена ултразвука:
Ултразвучна инактивација Lactobacillus acidophilus Gr+ у млеку и соковима.
Препоручени уређај:
UIP500hd
Референца/научни рад:
Zenker, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Примена термичке обраде потпомогнуте ултразвуком за конзервисање и очување квалитета течних намирница. J Food Prot 66/2003. стр. 1642–1649.
Ултразвучна инактивација Lactobacillus acidophilus Gr+ у млеку и соковима.
Препоручени уређај:
UIP500hd
Референца/научни рад:
Zenker, M.; Heinz, V.; Knorr, D. (2003): Примена термичке обраде потпомогнуте ултразвуком за конзервисање и очување квалитета течних намирница. J Food Prot 66/2003. стр. 1642–1649.
Legionella pneumophila, Грам-позитивна, у разблаженој подлози
Примена ултразвука:
Ултразвучна инактивација Legionella pneumophila Gr+ у разблаженој подлози.
Препоручени уређај:
UIP500hd
Референца/научни рад:
Dadjour, M. F.; Ogino, C.; Matsumura, S.; Nakamura, S.; Shimizu N. (2006): Дезинфекција Legionella pneumophila ултразвучном обрадом са TiO2. Water Res 40/2006. стр.1137–1142.
Ултразвучна инактивација Legionella pneumophila Gr+ у разблаженој подлози.
Препоручени уређај:
UIP500hd
Референца/научни рад:
Dadjour, M. F.; Ogino, C.; Matsumura, S.; Nakamura, S.; Shimizu N. (2006): Дезинфекција Legionella pneumophila ултразвучном обрадом са TiO2. Water Res 40/2006. стр.1137–1142.
Леуконосток мезентероидес
Примена ултразвука:
Активност лизозима леукоцита код мијелоцитне леукемије: ћелијска суспензија је соникована 15 мин. и у узорцима је испитана активност лизозима. Одређена је концентрација лизозима у леукоцитима, ug./10 ћелија.
Препоручени уређај:
UP50H
Активност лизозима леукоцита код мијелоцитне леукемије: ћелијска суспензија је соникована 15 мин. и у узорцима је испитана активност лизозима. Одређена је концентрација лизозима у леукоцитима, ug./10 ћелија.
Препоручени уређај:
UP50H
Активност леукоцитних изоензима код мијелоцитне леукемије
Примена ултразвука:
Припрема узорака: ћелијска суспензија је обрађена ултразвуком и у узорцима је испитана активност лизозима. Одређена је концентрација лизозима у леукоцитима, ug/106.
Препоручени уређај:
UP200St
Припрема узорака: ћелијска суспензија је обрађена ултразвуком и у узорцима је испитана активност лизозима. Одређена је концентрација лизозима у леукоцитима, ug/106.
Препоручени уређај:
UP200St
Липозоми
Примена ултразвука:
Формирање SUVs
Кликните овде да бисте прочитали више о ултразвучној припреми липозома!
Препоручени уређај:
UP50H; 3 циклуса од по 5 мин; у леденом купатилу.
Формирање SUVs
Кликните овде да бисте прочитали више о ултразвучној припреми липозома!
Препоручени уређај:
UP50H; 3 циклуса од по 5 мин; у леденом купатилу.
Малахитно зелено
Примена ултразвука:
Сонофотокаталитичка разградња малахитног зеленог (снажног бактерицида): сама фотокаталитичка разградња је знатно бржа од сонолитичке разградње, а ефикасност се може побољшати спајањем ова два процеса. Малахитно зелено, снажан бактерицид, веома је екотоксично за морске бактерије, али се претвара у органска једињења која су мање токсична или нису токсична.
Препоручени уређај:
UP400S
Сонофотокаталитичка разградња малахитног зеленог (снажног бактерицида): сама фотокаталитичка разградња је знатно бржа од сонолитичке разградње, а ефикасност се може побољшати спајањем ова два процеса. Малахитно зелено, снажан бактерицид, веома је екотоксично за морске бактерије, али се претвара у органска једињења која су мање токсична или нису токсична.
Препоручени уређај:
UP400S
Ацилација мангиферина
Примена ултразвука:
Мангиферин (1,3,6,7-тетрахидрокси-2-[3,4,5-трихидрокси-6-(хидроксиметил)оксан-2-ил]ксантен-9-он; формула: C19H18O11) је полифенол са структуром C-гликозилксантона који се може наћи у многим биљним врстама. Мангиферин испољава различите фармаколошке активности. Региоселективно ациловање мангиферина може се веома ефикасно катализовати липазом уз соникацију. У поређењу са конвенционалним методама, катализа потпомогнута ултразвуком истиче се предностима краћег времена реакције и већих приноса. Утврђено је да су оптимални услови за ултразвучно ациловање мангиферина следећи:
липаза: PCL, донор ацил-групе: винил-ацетат; реакциони растварач: DMSO, температура реакције: 45 degC, ултразвучна снага: 200W; однос супстрата: донор ацил-групе/мангиферин 6/1, количина ензима: 6 mg/ml
Принос региоселективног ациловања износио је до 84%.
Препоручени уређај:
UP200St или UP200Ht
Референца/научни рад:
уп.: Wang, Z.; Wang, R.; Tian, J.; Zhao, B; Wei, X.F.; Su, Y.L.; Li, C.Y.; Cao, S.G.; Wang, L. (2010): Утицај ултразвука на региоселективно ациловање мангиферина катализовано липазом у неводеним растварачима. J. Asian Nat Prod. Res. 12/1, 2010. 56–63.
Мангиферин (1,3,6,7-тетрахидрокси-2-[3,4,5-трихидрокси-6-(хидроксиметил)оксан-2-ил]ксантен-9-он; формула: C19H18O11) је полифенол са структуром C-гликозилксантона који се може наћи у многим биљним врстама. Мангиферин испољава различите фармаколошке активности. Региоселективно ациловање мангиферина може се веома ефикасно катализовати липазом уз соникацију. У поређењу са конвенционалним методама, катализа потпомогнута ултразвуком истиче се предностима краћег времена реакције и већих приноса. Утврђено је да су оптимални услови за ултразвучно ациловање мангиферина следећи:
липаза: PCL, донор ацил-групе: винил-ацетат; реакциони растварач: DMSO, температура реакције: 45 degC, ултразвучна снага: 200W; однос супстрата: донор ацил-групе/мангиферин 6/1, количина ензима: 6 mg/ml
Принос региоселективног ациловања износио је до 84%.
Препоручени уређај:
UP200St или UP200Ht
Референца/научни рад:
уп.: Wang, Z.; Wang, R.; Tian, J.; Zhao, B; Wei, X.F.; Su, Y.L.; Li, C.Y.; Cao, S.G.; Wang, L. (2010): Утицај ултразвука на региоселективно ациловање мангиферина катализовано липазом у неводеним растварачима. J. Asian Nat Prod. Res. 12/1, 2010. 56–63.
Екстракција молекула
Примена ултразвука:
Протокол екстракције из гипса, реолита, базалта, пепела edfell и опсидијанског стакла:
Узорак реголита или уситњене стене од 1g подвргава се течној екстракцији уз ултразвучно озрачивање ради екстракције и солубилизације циљних молекула. У ту сврху, узорку аналога од 1g у стакленој епрувети додато је 3ml MeOH P80, а затим је соникован 20 минута ултразвучним уређајем са сондом UP50H подешеним на амплитуду од 40%. Смеша је остављена да стоји 10 минута, а мутни супернатант који се формирао изнад исталоженог аналогног узорка декантован је у центрифужне епрувете од 1,5 ml. Да би се губитак екстрахованих компонената услед адсорпције на површинама центрифужних епрувета од хидрофобног полимера свео на најмању меру, епрувете су најпре блокиране раствором 0,5% (w/v) BSA у 100 mM HEPES, pH 7,4. Супернатанти су избистрени центрифугирањем на 17.000 G током 10 минута и чувани на 2 – 8°C у стакленим бочицама до испитивања имуноесејем.
Препоручени уређај:
UP50H
Референца/ Научни рад:
Rix, C.(2012): Откривање живота на Марсу и чип Life Marker Chip: тестови засновани на антителима за откривање органских молекула у течним екстрактима марсовских узорака. Докторска дисертација, Универзитет Кранфилд, 2012.
Протокол екстракције из гипса, реолита, базалта, пепела edfell и опсидијанског стакла:
Узорак реголита или уситњене стене од 1g подвргава се течној екстракцији уз ултразвучно озрачивање ради екстракције и солубилизације циљних молекула. У ту сврху, узорку аналога од 1g у стакленој епрувети додато је 3ml MeOH P80, а затим је соникован 20 минута ултразвучним уређајем са сондом UP50H подешеним на амплитуду од 40%. Смеша је остављена да стоји 10 минута, а мутни супернатант који се формирао изнад исталоженог аналогног узорка декантован је у центрифужне епрувете од 1,5 ml. Да би се губитак екстрахованих компонената услед адсорпције на површинама центрифужних епрувета од хидрофобног полимера свео на најмању меру, епрувете су најпре блокиране раствором 0,5% (w/v) BSA у 100 mM HEPES, pH 7,4. Супернатанти су избистрени центрифугирањем на 17.000 G током 10 минута и чувани на 2 – 8°C у стакленим бочицама до испитивања имуноесејем.
Препоручени уређај:
UP50H
Референца/ Научни рад:
Rix, C.(2012): Откривање живота на Марсу и чип Life Marker Chip: тестови засновани на антителима за откривање органских молекула у течним екстрактима марсовских узорака. Докторска дисертација, Универзитет Кранфилд, 2012.
Талози мишје јетре
Примена ултразвука:
Талози су испрани и соницирани током 5 min уз додатних 0,5 mL LB2 и центрифугирани на 12.000 g још 20 min, а затим су прикупљене две добијене фракције супернатанта. На крају су талози растворени у 0,5 mL пуфера који садржи 40 mM базе трис, 5 M урее, 2 M тиоурее, 4% CHAPS, 100 mM DTT, 0,5% (v/v) biolyte 3-10 (LB3), а затим су соницирани и центрифугирани на 12.000 g током 20 min.
Препоручени уређај:
UP200S; током 5min.
Референца/ Научни рад:
Gazzana и сар. (2009): Ажурирани преглед протеома јетре миша.
Талози су испрани и соницирани током 5 min уз додатних 0,5 mL LB2 и центрифугирани на 12.000 g још 20 min, а затим су прикупљене две добијене фракције супернатанта. На крају су талози растворени у 0,5 mL пуфера који садржи 40 mM базе трис, 5 M урее, 2 M тиоурее, 4% CHAPS, 100 mM DTT, 0,5% (v/v) biolyte 3-10 (LB3), а затим су соницирани и центрифугирани на 12.000 g током 20 min.
Препоручени уређај:
UP200S; током 5min.
Референца/ Научни рад:
Gazzana и сар. (2009): Ажурирани преглед протеома јетре миша.
Суспензија мишје јетре
Примена ултразвука:
Хомогенизација узорка ради добијања ћелијског лизата.
Препоручени уређај:
UP200S; током 3 x 20 сек.
Референца/ Научни рад:
Gazzana и сар. (2009): Ажурирани преглед протеома јетре миша.
Хомогенизација узорка ради добијања ћелијског лизата.
Препоручени уређај:
UP200S; током 3 x 20 сек.
Референца/ Научни рад:
Gazzana и сар. (2009): Ажурирани преглед протеома јетре миша.
Пеницилијум дигитатум
Примена ултразвука:
Ултразвучна инактивација Penicillium digitatum (биљног патогена) у Сабуроовој хранљивој подлози.
Препоручени уређај:
UP200St
Референца/ Научни рад:
López-Malo, A.; Palou, E.; Jiménez-Fernández, M.; Alzamora, S. M.; Guerrero, S. (2005): Мултифакторска инактивација гљива комбиновањем термосоникације и антимикробних средстава. J. Food Eng. 67/ 2005. стр. 87–93.
Ултразвучна инактивација Penicillium digitatum (биљног патогена) у Сабуроовој хранљивој подлози.
Препоручени уређај:
UP200St
Референца/ Научни рад:
López-Malo, A.; Palou, E.; Jiménez-Fernández, M.; Alzamora, S. M.; Guerrero, S. (2005): Мултифакторска инактивација гљива комбиновањем термосоникације и антимикробних средстава. J. Food Eng. 67/ 2005. стр. 87–93.
Фикоцијанин из Spirulina platensis (Arthrospira platensis)
Примена ултразвука:
Екстракција фикоцијанина из ћелија Spirulina platensis (Arthrospira platensis).
Препоручени уређај:
UP400S
Екстракција фикоцијанина из ћелија Spirulina platensis (Arthrospira platensis).
Препоручени уређај:
UP400S
Биљне ћелије и биљно ткиво
Примена ултразвука:
30% пакованих биљних ћелија (W/V) у дестилованој води разара се соникацијом током 1–15 min.; дезинтеграција биљног ткива: 1 g осушеног ткива суспендованог у алкохолу дезинтегрише се током соникације у трајању од око 5 min.
Препоручени уређај:
UP100H
30% пакованих биљних ћелија (W/V) у дестилованој води разара се соникацијом током 1–15 min.; дезинтеграција биљног ткива: 1 g осушеног ткива суспендованог у алкохолу дезинтегрише се током соникације у трајању од око 5 min.
Препоручени уређај:
UP100H
Тромбоцити
Плеуротус туберрегијум
Примена ултразвука:
Екстракција полисахарида из јестиве гљиве Pleurotus tuberregium
Препоручени уређај:
UP400S
Екстракција полисахарида из јестиве гљиве Pleurotus tuberregium
Препоручени уређај:
UP400S
Кополимер млечне и гликолне киселине (PLGA)
Примена ултразвука:
Припрема поли(млечне-ко-гликолне киселине) (PLGA) са инкапсулираним говеђим серумским албумином (BSA) соникацијом за 40 сек.
Препоручени уређај:
Dmini; током 40сек.
Референца/ Научни рад:
Freitas и сар. (2005): Проточна ултразвучна емулзификација у комбинацији са статичким микромешањем за асептичну производњу микросфера екстракцијом растварача.
Припрема поли(млечне-ко-гликолне киселине) (PLGA) са инкапсулираним говеђим серумским албумином (BSA) соникацијом за 40 сек.
Препоручени уређај:
Dmini; током 40сек.
Референца/ Научни рад:
Freitas и сар. (2005): Проточна ултразвучна емулзификација у комбинацији са статичким микромешањем за асептичну производњу микросфера екстракцијом растварача.
Полифеноли из јабуке
Примена ултразвука:
Ултразвучна екстракција полифенола из јабуке. Растварач: водени. Повећање приноса за 6%; интензитет соникације: 20–75Ws/ml; температура процеса: загревање до 80 degC.
Препоручени уређај:
UIP2000hd
Референца/ Научни рад:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвучно издвајање и модификација састојака хране. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвучне технологије за прераду хране и биопроцесе. Њујорк: Springer, 2011. стр. 345–368.
Ултразвучна екстракција полифенола из јабуке. Растварач: водени. Повећање приноса за 6%; интензитет соникације: 20–75Ws/ml; температура процеса: загревање до 80 degC.
Препоручени уређај:
UIP2000hd
Референца/ Научни рад:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвучно издвајање и модификација састојака хране. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвучне технологије за прераду хране и биопроцесе. Њујорк: Springer, 2011. стр. 345–368.
Полифеноли из црног чаја
Примена ултразвука:
Ултразвучна екстракција полифенола из црног чаја. Растварач: водени. Повећање приноса за 6–18%; интензитет соникације: 8–10Ws/ml; притисак околине, температура процеса: загревање до 90 degC.
Препоручени уређај:
UIP2000hd
Референца/ Научни рад:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвучно издвајање и модификација састојака хране. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвучне технологије за прераду хране и биопроцесе. Њујорк: Springer, 2011. стр. 345–368.
Ултразвучна екстракција полифенола из црног чаја. Растварач: водени. Повећање приноса за 6–18%; интензитет соникације: 8–10Ws/ml; притисак околине, температура процеса: загревање до 90 degC.
Препоручени уређај:
UIP2000hd
Референца/ Научни рад:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвучно издвајање и модификација састојака хране. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвучне технологије за прераду хране и биопроцесе. Њујорк: Springer, 2011. стр. 345–368.
Полифеноли из комине црвеног грожђа
Примена ултразвука:
Ултразвучна екстракција полифенола из комине црвеног грожђа. Растварач: водени. Принос повећан за 11–35%; интензитет соникације: 20–75Ws/ml; притисак околине.
Препоручени уређај:
UIP2000hd
Референца/ научни рад:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвучно издвајање и модификација састојака хране. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвучне технологије за прераду хране и биопроцесе. New York: Springer, 2011. стр. 345–368.
Ултразвучна екстракција полифенола из комине црвеног грожђа. Растварач: водени. Принос повећан за 11–35%; интензитет соникације: 20–75Ws/ml; притисак околине.
Препоручени уређај:
UIP2000hd
Референца/ научни рад:
Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвучно издвајање и модификација састојака хране. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвучне технологије за прераду хране и биопроцесе. New York: Springer, 2011. стр. 345–368.
Полифеноли, аминокиселина и кофеин из зеленог чаја
Свињетина: саламурење свињског кареа
Примена ултразвука:
За саламурење потпомогнуто ултразвуком, свињски каре (Longissimus dorsi) потапан је у саламуру натријум-хлорида (40 g L−1) и третиран на 5°C нискофреквентним ултразвуком (20 kHz) ниског интензитета (2–4 W/cm−2). Испитиван је утицај саламурења потпомогнутог ултразвуком на микроструктуру свињског ткива, денатурацију протеина, способност везивања воде (WBC), способност задржавања воде (WHC), коефицијент дифузије натријум-хлорида (D) и профил текстуре меса (TPA). Резултати су показали да је ултразвучни третман изазвао повољне микроструктурне промене у месном ткиву. Ултразвучни третман побољшао је способност задржавања воде и својства текстуре у поређењу и са узорцима саламуреним у тумблеру и са узорцима саламуреним у статичким условима. Међутим, ови позитивни ефекти у великој мери су зависили од интензитета ултразвука. Виши интензитети и/или дуже време третмана изазивали су денатурацију протеина. Модел са константним коефицијентом дифузије могао је прецизно да опише кинетику дифузије NaCl током саламурења. Ултразвучни третман значајно је поспешио дифузију соли у поређењу са узорцима саламуреним у статичким условима, а коефицијент дифузије експоненцијално се повећавао са повећањем интензитета ултразвука.
Препоручени уређај:
UP200Ht са сонотродом S26d40
Референца/ научни рад:
Siro, I.; Ven, Cs.; Balla, Cs.; Jonas, G.; Zeke, I.; Friedrich, L. (2009): Примена технике саламурења потпомогнутог ултразвуком за побољшање дифузије натријум-хлорида у свињском месу. Часопис за прехрамбено инжењерство 91/2, 2009. 353–362.
За саламурење потпомогнуто ултразвуком, свињски каре (Longissimus dorsi) потапан је у саламуру натријум-хлорида (40 g L−1) и третиран на 5°C нискофреквентним ултразвуком (20 kHz) ниског интензитета (2–4 W/cm−2). Испитиван је утицај саламурења потпомогнутог ултразвуком на микроструктуру свињског ткива, денатурацију протеина, способност везивања воде (WBC), способност задржавања воде (WHC), коефицијент дифузије натријум-хлорида (D) и профил текстуре меса (TPA). Резултати су показали да је ултразвучни третман изазвао повољне микроструктурне промене у месном ткиву. Ултразвучни третман побољшао је способност задржавања воде и својства текстуре у поређењу и са узорцима саламуреним у тумблеру и са узорцима саламуреним у статичким условима. Међутим, ови позитивни ефекти у великој мери су зависили од интензитета ултразвука. Виши интензитети и/или дуже време третмана изазивали су денатурацију протеина. Модел са константним коефицијентом дифузије могао је прецизно да опише кинетику дифузије NaCl током саламурења. Ултразвучни третман значајно је поспешио дифузију соли у поређењу са узорцима саламуреним у статичким условима, а коефицијент дифузије експоненцијално се повећавао са повећањем интензитета ултразвука.
Препоручени уређај:
UP200Ht са сонотродом S26d40
Референца/ научни рад:
Siro, I.; Ven, Cs.; Balla, Cs.; Jonas, G.; Zeke, I.; Friedrich, L. (2009): Примена технике саламурења потпомогнутог ултразвуком за побољшање дифузије натријум-хлорида у свињском месу. Часопис за прехрамбено инжењерство 91/2, 2009. 353–362.
Порфира језоензис
Примена ултразвука:
Ултразвучна разградња полисахарида из Porphyra yezoensis: 50mL раствора полисахарида porphyra yezoensis концентрације 1,0 g/100mL (сува маса) соницирано је 4 сата уређајем UP400S.
Препоручени уређај:
UP400S; пулсни ултразвук (циклуси: 2 секунде укључено/ 2 секунде искључено) на 20°C.
Ултразвучна разградња полисахарида из Porphyra yezoensis: 50mL раствора полисахарида porphyra yezoensis концентрације 1,0 g/100mL (сува маса) соницирано је 4 сата уређајем UP400S.
Препоручени уређај:
UP400S; пулсни ултразвук (циклуси: 2 секунде укључено/ 2 секунде искључено) на 20°C.
Прахови
Примена ултразвука:
Млевење, деагломерација и дисперговање до мале, релативно уједначене величине честица.
Препоручени уређај:
UP200St
Млевење, деагломерација и дисперговање до мале, релативно уједначене величине честица.
Препоручени уређај:
UP200St
Кости пацова
Јетра пацова
Примена ултразвука:
Разарање и хомогенизација ткива уређајем UP400S.
Препоручени уређај:
UP400S; 3 пута по 30 секунди; на леду.
Референца/ научни рад:
Oh и сар. (2003): Ген за ацетил-CoA карбоксилазу у јетри регулише протеин-1 који се везује за регулаторни елемент стерола. Часопис за биолошку хемију 2003.
Разарање и хомогенизација ткива уређајем UP400S.
Препоручени уређај:
UP400S; 3 пута по 30 секунди; на леду.
Референца/ научни рад:
Oh и сар. (2003): Ген за ацетил-CoA карбоксилазу у јетри регулише протеин-1 који се везује за регулаторни елемент стерола. Часопис за биолошку хемију 2003.
Кожа пацова
Рауволфија серпентина
Ребаудиозид А
Примена ултразвука:
Узорци од 10g сувих и самлевених листова стевије екстраховани су у 100mL воде уз непрекидно мешање (магнетном мешалицом). Вредност pH контролисана је натријум-фосфатом концентрације 0,01 M и pH 7. Узорак је стављен у стаклену лабораторијску чашу запремине 150 mL и сонициран ултразвучним уређајем са сондом (UIP500hd, 20kHz, 500W). Врх сонотроде је уроњен око 1,5 cm у суспензију листова стевије. Ултразвучни уређај је подешен на излазну снагу од 350W. Благим ултразвучним третманом снаге 350 W током 5–10 min. при сталној процесној температури од 30°C добијен је принос ребаудиозида А од 30–34g на 100g узорка. Након соникације, раствор екстракта је центрифугиран и филтриран кроз микропорозну мембрану од 0,45 μm; филтрат је узет за анализу укупног садржаја ребаудиозида А. Екстракциони принос укупног садржаја ребаудиозида А анализиран је методом HPLC.
Ултразвучно потпомогнутом екстракцијом без растварача добијен је висок принос ребаудиозида А у поређењу са традиционалним методама екстракције, као што су топлотна екстракција или мацерација.
Препорука уређаја:
UIP500hd
Узорци од 10g сувих и самлевених листова стевије екстраховани су у 100mL воде уз непрекидно мешање (магнетном мешалицом). Вредност pH контролисана је натријум-фосфатом концентрације 0,01 M и pH 7. Узорак је стављен у стаклену лабораторијску чашу запремине 150 mL и сонициран ултразвучним уређајем са сондом (UIP500hd, 20kHz, 500W). Врх сонотроде је уроњен око 1,5 cm у суспензију листова стевије. Ултразвучни уређај је подешен на излазну снагу од 350W. Благим ултразвучним третманом снаге 350 W током 5–10 min. при сталној процесној температури од 30°C добијен је принос ребаудиозида А од 30–34g на 100g узорка. Након соникације, раствор екстракта је центрифугиран и филтриран кроз микропорозну мембрану од 0,45 μm; филтрат је узет за анализу укупног садржаја ребаудиозида А. Екстракциони принос укупног садржаја ребаудиозида А анализиран је методом HPLC.
Ултразвучно потпомогнутом екстракцијом без растварача добијен је висок принос ребаудиозида А у поређењу са традиционалним методама екстракције, као што су топлотна екстракција или мацерација.
Препорука уређаја:
UIP500hd
Пиринчани скроб
Примена ултразвука:
Разарање, изоловање скроба и раскидање нековалентних веза између протеина и скроба у суспензији пиринчаног брашна (33%) за 20–40 min.
Препорука уређаја:
UP500hd; 20–40 min.
Разарање, изоловање скроба и раскидање нековалентних веза између протеина и скроба у суспензији пиринчаног брашна (33%) за 20–40 min.
Препорука уређаја:
UP500hd; 20–40 min.
Ротифере
Примена ултразвука:
Разарање ћелија мезозоопланктона: соникацијом при следећим условима, са четири протока (200, 400, 520 и 800lh-1) и четири амплитуде (25, 50, 75 и 100%), постигнута је стопа усмрћивања између 58 и 85%.
Препорука уређаја:
UP2000 са проточном ћелијом
Референца / научни рад:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ултраљубичаста светлост, ултразвук и водоник-пероксид као поступци третмана баластних вода – експерименти са мезозоопланктоном у бочатој води ниског салинитета. Journal of Marine Environmental Engineering, 8(1), 35–55.
Разарање ћелија мезозоопланктона: соникацијом при следећим условима, са четири протока (200, 400, 520 и 800lh-1) и четири амплитуде (25, 50, 75 и 100%), постигнута је стопа усмрћивања између 58 и 85%.
Препорука уређаја:
UP2000 са проточном ћелијом
Референца / научни рад:
Viitaslo et al. (2005): Озон, ултраљубичаста светлост, ултразвук и водоник-пероксид као поступци третмана баластних вода – експерименти са мезозоопланктоном у бочатој води ниског салинитета. Journal of Marine Environmental Engineering, 8(1), 35–55.
С. фрагилис
Сахаромицес церевизије
Примена ултразвука:
Разарање
Препорука уређаја:
UP400S
Референца / научни рад:
Guerrero, S,; López-Malo, A.; Alzamora, S. M. (2001): Утицај ултразвука на преживљавање Saccharomyces cerevisiae: утицај температуре, pH и амплитуде. Innov. Food Sci. Emerg Technol. 2/2001. стр. 31–39.
Разарање
Препорука уређаја:
UP400S
Референца / научни рад:
Guerrero, S,; López-Malo, A.; Alzamora, S. M. (2001): Утицај ултразвука на преживљавање Saccharomyces cerevisiae: утицај температуре, pH и амплитуде. Innov. Food Sci. Emerg Technol. 2/2001. стр. 31–39.
Сахаромицес церевизије
Примена ултразвука:
Ултразвучна инактивација Saccharomyces cerevisiae у Сабуроовој хранљивој подлози и у физиолошком раствору.
Препорука уређаја:
UP400S
Референца / научни рад:
Yap, A.; Jiranek, V.; Grbin, P.; Barnes, M.; Bates, D. (2007): Истраживања примене ултразвука велике снаге за чишћење и дезинфекцију буради и дасака. Austr. NZ Wine Indust. J. 22(3)/ 2007. стр. 96–104.
Ултразвучна инактивација Saccharomyces cerevisiae у Сабуроовој хранљивој подлози и у физиолошком раствору.
Препорука уређаја:
UP400S
Референца / научни рад:
Yap, A.; Jiranek, V.; Grbin, P.; Barnes, M.; Bates, D. (2007): Истраживања примене ултразвука велике снаге за чишћење и дезинфекцију буради и дасака. Austr. NZ Wine Indust. J. 22(3)/ 2007. стр. 96–104.
Шафран, Crocus sativus
Примена ултразвука:
Екстракција активних једињења (ароматичних материја и бојила).
Кликните овде да бисте прочитали више о екстракцији из шафрана!
Препорука уређаја:
UP50H
Референца / научни рад:
Kadkhodaee et al. (2007): Ултразвучна екстракција активних једињења из шафрана. Acta Hortic. 739, 2007. 417–425.
Екстракција активних једињења (ароматичних материја и бојила).
Кликните овде да бисте прочитали више о екстракцији из шафрана!
Препорука уређаја:
UP50H
Референца / научни рад:
Kadkhodaee et al. (2007): Ултразвучна екстракција активних једињења из шафрана. Acta Hortic. 739, 2007. 417–425.
Salmonella Senftenberg 775W, Грам-негативна
Примена ултразвука:
Ултразвучна инактивација Salmonella Senftenberg 775W Gr- у Мекилвејновом цитратно-фосфатном пуферу или хранљивом бујону.
Препорука уређаја:
UP100H
Референца / научни рад:
Álvarez, I.; Manas, P.; Virto, R.; Condón, S. (2006): Инактивација Salmonella Senftenberg 775W ултразвучним таласима под притиском при различитим активностима воде. Int. J. Food Microbiol. 108/2006. стр. 218–225.
Ултразвучна инактивација Salmonella Senftenberg 775W Gr- у Мекилвејновом цитратно-фосфатном пуферу или хранљивом бујону.
Препорука уређаја:
UP100H
Референца / научни рад:
Álvarez, I.; Manas, P.; Virto, R.; Condón, S. (2006): Инактивација Salmonella Senftenberg 775W ултразвучним таласима под притиском при различитим активностима воде. Int. J. Food Microbiol. 108/2006. стр. 218–225.
Салвија милтиориза Бунге
Примена ултразвука:
Екстракција биолошки активних једињења: натријум-даншенсу и четири таншинона (дихидротаншион I, таншинон I, криптотаншинон и таншинон IIA).
Препорука уређаја:
UP100H
Екстракција биолошки активних једињења: натријум-даншенсу и четири таншинона (дихидротаншион I, таншинон I, криптотаншинон и таншинон IIA).
Препорука уређаја:
UP100H
Салвија официналис
Примена ултразвука:
Екстракција активних једињења из Salvia Officinalis (жалфије) за мање од 2 сата.
Препорука уређаја:
UP50H
Екстракција активних једињења из Salvia Officinalis (жалфије) за мање од 2 сата.
Препорука уређаја:
UP50H
Серум
Јетра и плућа оваца са цистама и позитивна крв (антигени Echinococcus granulosus)
Примена ултразвука:
Овчија јетра и плућа са цистама и позитивна крв (антигени Echinococcus granulosus код јагњади): узорак је затим сонициран током 2 × 15 sec на леду, све док више нису били видљиви неоштећени протосколекси.
Препорука уређаја:
UP200S; 2 x 15 sec.
Референца / научни рад:
Tabar et al. (2009): Одговор антитела на антигене хидатидне течности, протосколекса и целог тела Echinococcus granulosus код јагњади. Journal of Veterinary Research, том 10, број 3; 2009. 283–288.
Овчија јетра и плућа са цистама и позитивна крв (антигени Echinococcus granulosus код јагњади): узорак је затим сонициран током 2 × 15 sec на леду, све док више нису били видљиви неоштећени протосколекси.
Препорука уређаја:
UP200S; 2 x 15 sec.
Референца / научни рад:
Tabar et al. (2009): Одговор антитела на антигене хидатидне течности, протосколекса и целог тела Echinococcus granulosus код јагњади. Journal of Veterinary Research, том 10, број 3; 2009. 283–288.
Сорбитан триолеат, етанол (као растварач) и прах Bi-2212
Примена ултразвука:
Деагломерација суспензије која садржи дисперзант сорбитант триолеат, етанол (као растварач) и прах Bi-2212.
Препоручени уређај:
UP200S; током 3 мин.
Референца/научни рад:
Mora et al. (2009): Израда суперпроводних превлака на конструкцијским керамичким плочицама.
Деагломерација суспензије која садржи дисперзант сорбитант триолеат, етанол (као растварач) и прах Bi-2212.
Препоручени уређај:
UP200S; током 3 мин.
Референца/научни рад:
Mora et al. (2009): Израда суперпроводних превлака на конструкцијским керамичким плочицама.
Изофлавони соје
Примена ултразвука:
Ултразвучна екстракција сојиних изофлавона у води и растварачу. Повећање приноса до 15% у погледу ефикасности екстракције.
Препоручени уређај:
UP200St
Референца/научни рад:
Rostagno et al. (2003), цитирано у Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвучно издвајање и модификација састојака хране. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвучне технологије за прераду хране и биопроцесе. New York: Springer, 2011. стр. 345–368.
Ултразвучна екстракција сојиних изофлавона у води и растварачу. Повећање приноса до 15% у погледу ефикасности екстракције.
Препоручени уређај:
UP200St
Референца/научни рад:
Rostagno et al. (2003), цитирано у Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвучно издвајање и модификација састојака хране. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвучне технологије за прераду хране и биопроцесе. New York: Springer, 2011. стр. 345–368.
Протеин соје
Примена ултразвука:
Ултразвучна екстракција сојиних протеина у води и алкалији (натријум-хидроксиду). Повећање приноса за 53%. Утврђено је да је соникација у протоку ефикаснија од шаржне екстракције (соникација у протоку дала је 23% већи принос од шаржне соникације).
Препоручени уређај:
UIP1000hd за шаржну обраду/обраду у лабораторијској чаши и са реактором са проточном ћелијом за соникацију у протоку.
Референца/научни рад:
Moulton и Wang (1982), цитирано у Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвучно издвајање и модификација састојака хране. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвучне технологије за прераду хране и биопроцесе. New York: Springer, 2011. стр. 345–368.
Ултразвучна екстракција сојиних протеина у води и алкалији (натријум-хидроксиду). Повећање приноса за 53%. Утврђено је да је соникација у протоку ефикаснија од шаржне екстракције (соникација у протоку дала је 23% већи принос од шаржне соникације).
Препоручени уређај:
UIP1000hd за шаржну обраду/обраду у лабораторијској чаши и са реактором са проточном ћелијом за соникацију у протоку.
Референца/научни рад:
Moulton и Wang (1982), цитирано у Vilkhu, K.; Manasseh, R.; Mawson, R.; Ashokkumar, M. (2011): Ултразвучно издвајање и модификација састојака хране. У: Feng/ Barbosa-Cánovas/ Weiss (2011): Ултразвучне технологије за прераду хране и биопроцесе. New York: Springer, 2011. стр. 345–368.
Главе сперматозоида (људских)
Репови сперматозоида (људских)
Стевија ребаудијана Берт
Примена ултразвука:
Ултразвучна екстракција гликозида стевиозида из узорака од 10 g сувих листова Stevia rebaudiana са четири величине честица (0,315 mm, 2 mm, 6,3 mm и уситњени суви листови): узорци су помешани са различитим растварачима – дестилованом водом и смешама воде и етанола (55% и 70%) – при различитим односима масе узорка и запремине растварача: 1/10, 1/8, 1/5 (w/v), а затим изложени ултразвуку на собној температури. Време соникације: < 5 мин.
Препоручени уређај:
UP200St
Ултразвучна екстракција гликозида стевиозида из узорака од 10 g сувих листова Stevia rebaudiana са четири величине честица (0,315 mm, 2 mm, 6,3 mm и уситњени суви листови): узорци су помешани са различитим растварачима – дестилованом водом и смешама воде и етанола (55% и 70%) – при различитим односима масе узорка и запремине растварача: 1/10, 1/8, 1/5 (w/v), а затим изложени ултразвуку на собној температури. Време соникације: < 5 мин.
Препоручени уређај:
UP200St
Контактирајте нас! / Питајте нас!
Ултрасоникатори високих перформанси за све величине
Уређаји за разарање ћелија и хомогенизатори ткива компаније Hielscher Ultrasonics доступни су у свим величинама, за све запремине. Било да треба да соницирате мале узорке, велики број узорака, као што су они у плочама са 96 бунарчића, средње запремине или количине које одговарају камионским товарима на сат, наш асортиман нуди идеалан ултрасоникатор за вашу примену. Компактни, ручни ултразвучни хомогенизатори оптимални су за лабораторијски рад и истраживања, док наша индустријска серија покрива цео опсег од 0,5kW до 16kW по ултразвучном процесору. Захваљујући могућности уградње у групе, са ултрасоникаторима Hielscher можете обрађивати практично било коју запремину. Робусност ултразвучне опреме Hielscher омогућава рад 24/7 при великим оптерећењима и у захтевним окружењима.
Софистицирани и паметни софтвер омогућава највиши ниво контроле процеса и највећу удобност руковаоца. Сви подаци о соникацији аутоматски се бележе на уграђену SD картицу. Друге паметне функције обухватају унапред подешавање и чување параметара соникације, LAN везу и даљинско управљање преко прегледача.
Табела у наставку даје преглед приближног капацитета обраде наших лабораторијских соникатора за хомогенизацију ткива и друге задатке припреме узорака:
| Препоручени уређаји | Запремина шарже | Проток |
|---|---|---|
| UIP400MTP соникатор за плоче са 96 бунарчића | плоче са више бунарчића / микротитарске плоче | n.a. |
| Ултразвучни CupHorn | CupHorn за бочице или лабораторијску чашу | n.a. |
| GDmini2 | ултразвучни микропроточни реактор | n.a. |
| VialTweeter | 0,5 до 1,5mL | n.a. |
| UP100H | 1 до 500mL | 10 до 200mL/min |
| UP200Ht, UP200St | 10 до 1000mL | 20 до 200mL/min |
| UP400St | 10 до 2000mL | 20 до 400mL/min |
| Ултразвучни тресач сита | n.a. | n.a. |
Ултрасоникатор UP200Ht са микроврхом S26d2 од 2mm за соникацију малих узорака